CN1963507B - 3-甲基喹噁啉-2-羧酸残留的酶联免疫检测方法及试剂盒 - Google Patents
3-甲基喹噁啉-2-羧酸残留的酶联免疫检测方法及试剂盒 Download PDFInfo
- Publication number
- CN1963507B CN1963507B CN2006101648360A CN200610164836A CN1963507B CN 1963507 B CN1963507 B CN 1963507B CN 2006101648360 A CN2006101648360 A CN 2006101648360A CN 200610164836 A CN200610164836 A CN 200610164836A CN 1963507 B CN1963507 B CN 1963507B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- liquid
- carboxylic acid
- mqca
- antibody
- sample
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Fee Related
Links
Images
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本发明属于免疫化学分析技术领域。公开了一种用于3-甲基喹噁啉-2-羧酸残留的酶联免疫检测方法及试剂盒。本发明的方法主要包括免疫原、包被原和特异抗体的制备、样品前处理和ELISA方法的建立。与之相配套的试剂盒由3-甲基喹噁啉-2-羧酸(MQCA)特异性抗体、包被有MQCA与卵清蛋白偶联物的酶标板以及MQCA标准品等组成。样品经偏磷酸水解处理,释放MQCA,MAX柱净化,苯胺衍生处理及间接竞争ELISA方法测定。本发明的方法及试剂盒具有简便、快速、灵敏、准确等优点,能同时快速检测大批样品,组织最低检测限为0.6μg/kg。
Description
技术领域
本发明属于免疫化学分析技术领域,具体涉及一种用于3-甲基喹噁啉-2-羧酸(简称MQCA,下同)残留的酶联免疫检测方法及试剂盒,适用于测定动物性食品中喹乙醇残留标示物MQCA的残留量。
背景技术
喹乙醇又名喹酰胺醇、喹奥多斯、倍育诺,属于喹噁啉-1,4-二氧化物类药物,为人工合成的广谱抗菌药,曾作为促生长剂广泛应用于畜、禽、水产养殖中。毒理学研究发现,喹乙醇具有致癌和致突变性。喹乙醇在动物体内很快被代谢,MQCA最后离开机体,被视为喹乙醇的残留标示物。所以分析喹乙醇残留通常分析其残留标示物MQCA。MQCA的最大残留限量在猪肝脏为50μg/kg,肌肉为4μg/kg,在无公害食品、畜禽水产品中喹乙醇规定为不得检出。目前检测MQCA残留的方法有高效液相色谱法(HPLC)和液质串联质谱法(LC-MS/MS)。
HPLC和LC-MS/MS法虽然灵敏,但所需仪器价格昂贵,对操作人员的要求较高,难于推广,不适合高通量的样品筛选。免疫化学分析法特别是酶联免疫吸附分析技术(ELISA)具有快速、灵敏度高、操作简单、专一性好等优点,适合高通量的样品筛选。目前国内外均未见MQCA残留酶联免疫吸附分析技术的专利和文献报道。
发明内容
本发明的第1个目的是提供一种3-甲基喹噁啉-2-羧酸(MQCA)残留的酶联免疫检测方法。
本发明的第2个目的是提供一种3-甲基喹噁啉-2-羧酸残留的酶联免疫检测试剂盒。
本发明的方法和试剂盒专用于动物可食性组织中MQCA残留的酶联免疫检测,与现有方法相比,本发明的方法和试剂盒具有灵敏度高,检测快速,使用方便和检测成本较低等突出优点。
本发明的技术方案是:
一种3-甲基喹噁啉-2-羧酸残留的酶联免疫检测方法,包括免疫原、包被原和抗体的制备以及样品的前处理,其步骤如下:
(1)将3-甲基喹噁啉-2-羧酸与卵清蛋白相偶联得到包被原;
(2)将3-甲基喹噁啉-2-羧酸与牛血清白蛋白相偶联得到免疫原;
(3)用步骤(2)的免疫原免疫兔得到特异性兔多克隆抗体;
(4)用步骤(1)的包被原包被固相载体;
(5)将所述的样品先经酸解提取后再过MAX柱净化,最后加入衍生试剂和催化剂进行处理,得到待测产物;
(6)将步骤(5)的待测产物进行酶联免疫检测。
其中,所述的固相载体是酶标板。例如可以采用48或96孔酶标板作固相载体。
所述的衍生试剂是苯胺。
所述的催化剂为腈基磷酸二乙酯。
一种基于上述方法的酶联免疫检测试剂盒,包括盒体、设在盒体内的酶标板和设在盒体内的试剂,其特征在于,在酶标板的每孔内,包被有所述的包被原;所述的试剂包括抗3-甲基喹噁啉-2-羧酸特异性兔多克隆抗体,辣根过氧化酶标记羊抗兔抗体,浓缩洗涤液,浓缩样品稀释液,3-甲基喹噁啉-2-羧酸标准溶液,底物显色A液,底物显色B液,终止液,衍生试剂和催化剂。
其中:
所述的底物显色A液为四甲基联苯胺或邻苯二胺。
所述底物显色B液为过氧化氢或过氧化脲。
所述终止液为硫酸溶液或盐酸溶液。
所述的浓缩洗涤液为含有0.05~0.1%吐温-20的磷酸盐缓冲液(PBS)。
所述浓缩样品稀释溶液为pH7.4的磷酸盐缓冲液。
本发明所提供的酶联免疫方法及试剂盒采用间接竞争ELISA法,定性或定量检测动物可食性组织如肝、肌肉中MQCA残留。其采用高特异性的MQCA多克隆抗体,具有高特异性、高灵敏度、高精确度、高准确度等特点,检测范围较宽,假阳性率低,检测结果可靠、准确,组织最低检测限为0.6μg/kg,适用于食品动物的可食性组织如肌肉、肝脏中MQCA残留检测;可以在较短时间内检测大量样品,排除大量阴性样品。由于样品处理既简单、省时、省力,检测又无需昂贵的仪器设备,所以比较适合在基层检验检疫单位推广使用。
附图说明
图1是本发明的抗原合成路线。
图2是本发明免疫原紫外图谱。
图3是本发明MQCA抗体与MQCA标准品的间接竞争反应曲线。
具体实施方式
下面结合实施例对本发明作进一步说明,但不以任何形式限制本发明。
实施例1、抗原的制备
本发明的抗原制备包括免疫原和包被原的制备,其具体合成路线如图1所示。
1.1 免疫原的制备
取3-甲基喹噁啉-2-羧酸(MQCA)0.0376g,N-羟基琥珀酰亚胺(NHS)0.0116g,N,N-二环已基碳二亚胺(DCC)0.0434g加入到1.5mL 1,4-二氧六环中室温搅拌反应过夜;离心除去沉淀,上清再与5mL牛血清白蛋白(BSA)0.34g溶液4℃搅拌反应过夜;离心,上清液用PBS0.1mol/L,pH7.4的磷酸缓冲液,透析3天后,冻干,置4℃保存备用。所得免疫原的紫外图谱如图2所示。
1.2 包被原的制备
取3-甲基喹噁啉-2-羧酸(MQCA)0.0376g,N-羟基琥珀酰亚胺(NHS)0.0116g,N,N-二环已基碳二亚胺(DCC)0.0434g加入到1.5mL 1,4-二氧六环中室温搅拌反应过夜;离心除去沉淀,上清再与5mL卵清蛋白(OVA)(0.18g)溶液4℃搅拌反应过夜;离心,上清液用0.1mol/L,pH7.4的磷酸缓冲液透析3天后,冻干,置4℃保存备用。
实施例2、抗体的制备
2.1 免疫动物
采用新西兰大白兔作为免疫动物,以MQCA与BSA偶联物为免疫原,免疫剂量为0.5~1mg/只,首免时将免疫原与等量的弗氏完全佐剂混合制成乳化剂,在新西兰大白兔颈背部皮下多点注射,间隔2~4周取相同剂量免疫原加等量弗氏不完全佐剂混合乳化,加强免疫一次,免疫期间要监测血清抗体效价及特异性,最后一次不加佐剂。最后一次免疫7~10d后采血,颈动脉放血,经硫酸铵分级沉淀得到纯化的MQCA多克隆抗体。
2.2 抗体纯化
采用辛酸-硫酸铵盐析法纯化抗体。取兔血清5mL,加入0.06mol/L乙酸缓冲液(pH 5.0)15mL,用0.1mol/LHCL调pH至4.5;室温下加入辛酸165μL,搅拌30min;10000r/min4℃离心30min,弃沉淀。用0.1mol/LNaOH调上清液pH至7.4;缓慢滴加等体积饱和硫酸铵溶液,搅拌20min,10000r/min 4℃离心30min,弃上清液。将沉淀用少量0.01mol/L pH 7.2 PBS溶解;对0.01mol/L PBS(pH 7.2)透析过夜。将纯化的抗体分装小瓶,置-20℃冰箱保存。
2.3 抗体效价
采用间接ELISA方法对免疫后不同时期的抗体的效价进行监测,以OD值达到1.0左右时判定为阳性。结果抗体的效价为1∶1.6×105。
2.4 抗体特异性
抗体的特异性用交叉反应率来表示,将一系列与MQCA结构相似或与BSA交联相关的化合物,通过间接竞争ELISA步骤,计算交叉反应率(表1)。
表1 本发明抗体的特异性
由表1中可以看出,该抗体对QCA、喹乙醇和喹烯酮也有一定的交叉反应,但对卡巴氧、氨基苯甲酸、γ-氨基丁酸无交叉反应。
2.5 抗体的稳定性
按照间接ELISA方法,在不同时间测定抗体的效价,以研究抗体的稳定性,结果见表2,可以看出该抗体在-20℃至少可以保存3个月其效价不变。
表2 本发明抗体的稳定性
实施例3、样品前处理方法的建立
提取:准确称取猪肌肉组织5g置于具塞离心管中,加5%偏磷酸20%甲醇溶液8mL,旋涡混合2min,在25℃下6000r/min离心15min,取出上清液,然后再向组织样品中加5%偏磷酸20%甲醇溶液8mL重复提取一次,合并2次上清液。于上清液中加乙酸乙酯8mL,旋涡混合1min,4000r/min离心10min,取有机相层,再加乙酸乙酯8mL重复提取,合并2次有机相。有机相中,加磷酸盐缓冲液6mL,旋涡混和1min,放置10min,使下层清晰,收集水相。另用磷酸盐缓冲液6mL提取乙酸乙酯相一次。使水相清晰,合并2次水提取液。
准确称取猪肝脏样品2g置于具塞离心管中,加5%偏磷酸20%甲醇溶液6mL,旋涡混合2min,在25℃下6000r/min离心15min,取出上清液,然后再向组织样品中加5%偏磷酸20%甲醇溶液8mL重复提取一次,合并2次上清液。于上清液中加乙酸乙酯8mL,旋涡混合1min,4000r/min离心10min,取有机相层,再加乙酸乙酯6mL重复提取,合并2次有机相。其余步骤同肌肉样品处理方法。
净化:MAX柱依次用甲醇3mL、水3mL活化。加样品提取液至MAX柱中,控制流速小于3mL/min,先后用0.05mol/L氢氧化钠溶液3mL、甲醇3mL淋洗,抽干,2%甲酸甲醇溶液3mL洗脱,洗脱液置45~50℃水浴氮气吹干,三氯甲烷定容至1mL,充分混合。
衍生:加入催化剂腈基磷酸二乙酯工作液10μL(配制方法参见6.1),加入衍生试剂苯胺工作液20μL(配制方法参见6.1),塞紧,旋涡混匀,于37℃水浴避光反应5h,然后将各离心管于40℃氮气吹干,用样品稀释液定容至2mL,旋涡混匀后待测。
实施例4、酶联免疫检测(ELISA)方法的建立
4.1 标准曲线
将MQCA用三氯甲烷稀释成640ng/mL,另取三氯甲烷1mL作为本底,按照实施例3确定的衍生条件进行衍生,反应完毕后用PBS定容至1mL;然后用本底将衍生好的N-苯基-3-甲基-喹噁啉-2-甲酰胺(MQCA-PAN)结合物稀释配成64ng/mL、16ng/mL、4ng/mL、1ng/mL、0.25ng/mL、0ng/mL系列浓度,按间接竞争ELISA方法测定。以MQCA-PAN结合物浓度的对数值为横坐标,抑制率为纵坐标,绘制标准曲线(如图3所示),曲线在0.25~64ng/mL范围内线性关系良好,相关系数在0.99以上。
4.2 灵敏度
采用IC50评价方法的灵敏度。分别测定20次标准曲线的IC50(见表3)。结果表明IC50的变动范围在1.06μg/L~4.8μg/L之间,均值为2.82ng/mL。测定20份空白组织(猪肌肉、肝脏)样品,将其平均值加3倍标准差,即为组织最低检测限。结果(见表4)显示猪肝脏和肌肉组织最低检测限分别为0.64μg/kg和0.60μg/kg。
表3 本发明方法的灵敏度
表4 空白组织测定结果及最低检测限(n=20,LOD=X+3SD)
4.3 准确度
将1mg/mL MQCA液添加到猪肌肉或猪肝脏组织中,使其终浓度为0μg/kg、1μg/kg、5μg/kg、20μg/kg,每个浓度5个重复,重复7天,按照实施例3所述方法提取、净化、衍生,采用间接竞争ELISA测定样品中MQCA浓度,并计算回收率和变异系数(表5)。结果显示,猪肉、猪肝组织中添加1μg/kg、5μg/kg、20μg/kg的MQCA时,回收率均在60%~120%之间,批间变异系数均<20%。
表5 本发明方法的准确度
实施例5、酶联免疫检测试剂盒的制备
5.1 酶联免疫检测试剂盒的组成
试剂盒主要由盒体、酶标板、MQCA标准品液(1mg/mL)、辣根过氧化物酶(HRP)标记的羊抗兔抗体、MQCA抗体液、底物显色A液、底物显色B液、终止液、浓缩洗涤液、样品稀释液、苯胺衍生试剂、腈基磷酸二乙酯(DEPC)催化剂和泡沫托架所组成
5.2 所用试剂的配制
(1)包被稀释液:Na2CO3 1.5g,NaHCO3 2.9g,Na2N3 0.2g,加双蒸水至1000mL,调至pH9.6;(2)封闭液:卵清蛋白0.1g溶于100mL pH7.4 PBS;(3)浓缩洗涤液:NaCl 80g,KH2PO4 2g,Na2HPO4·12H2O 29g,KCl 2g,吐温(Tween)-20 5mL,硫柳汞0.1g,加双蒸水至1000mL,调至pH7.4;(4)浓缩样品稀释液:NaCl 80g,KH2PO4 2g,Na2HPO4·12H2O 29g,KCl 2g,硫柳汞0.1g,加双蒸水至1000mL,调至pH 7.4;(5)底物显色A液:再本实施例中,采用的是四甲基联苯胺溶液,即取四甲基联苯胺200mg,无水乙醇(在另外的实施例中,可将所述的四甲基联苯胺改为邻苯二胺,无水乙醇可改为二甲亚砜)100mL,加双蒸水至1000mL;(6)底物显色B液:取Na2HPO4 14.60g,柠檬酸9.33g,0.75%过氧化氢尿素6.4mL,加双蒸水至1000mL,调至pH 5.0~5.4;(7)底物显色混合液(在本实施例中是四甲基联苯胺-过氧化氢尿素溶液):将底物显色A液和底物显色液B按体积比1∶1混合即为底物显色液混合液;(8)终止液:在本实施例中采用的是2mol/L的硫酸溶液,即取18mol/L浓硫酸100mL,缓慢滴加到双蒸水至900mL,即为终止液(在另外的实施例中可将2mol/L的硫酸溶液改为4mol/L的盐酸溶液)。
5.3 酶标板的制备
用上述制备的包被缓冲液将MQCA与卵清蛋白偶联物稀释成1μg/mL,每孔加入100μL,4℃过夜,倾去包被液,洗涤液洗涤3次,拍干,然后每孔加入200μL封闭液,37℃孵育1h,倾去孔内液体,洗涤液洗涤3次,拍干,用铝膜真空密封保存、备用。
5.4 本发明试剂盒的稳定性
2~8℃稳定性试验:将试剂盒置于4℃下保存,于0、1、2、3、4、5、6、7月分别取试剂盒,测定IC50值、0标准溶液的吸光值和猪肝脏中添加量为4μg/kg时的回收率。以IC50值大于10μg/L、0标准溶液的吸光值小于0.6和回收率不在50%~120%范围内为判定试剂盒失效的标准,结果见表6。
表6 本发明的试剂盒4℃稳定性试验
37℃加速稳定性试验:将试剂盒置于37℃下保存,于0、1、2、3、4、5d分别取试剂盒,测定IC50值、0标准溶液的吸光值和猪肝脏中添加量为4μg/kg时的回收率。以IC50值大于10μg/L、0标准溶液的吸光值小于0.6和回收率不在50%~120%范围内为判定试剂盒失效的标准,结果见表7。
表7 本发明的试剂盒37℃加速稳定性试验
表6和表7结果显示,试剂盒在4℃保存到第3个月时,所有指标均在正常波动范围内。37℃保存到第5d,0标准溶液的吸光值下降到0.64,IC50值为11.26μg/L,回收率为102%,说明试剂盒中的部分试剂已开始失效。根据唐伟国主编,尹行等编,《医学检验诊断试剂的制备与应用》,上海科学技术文献出版社,1996年版文献中的规定,试剂盒在37℃放置一天,相当于2~8℃保存一个半月。稳定性试验结果表明本试剂盒在4℃条件下的保存期至少为6个月。
实施例6、酶联免疫检测试剂盒的测定程序
6.1 工作液配制:
(1)样品稀释液配制:将试剂盒中提供的浓缩样品稀释液(pH7.4的磷酸盐缓冲液)用三蒸水10倍稀释后使用,置4℃冰箱保存;
(2)洗涤液配制:将试剂盒中提供的浓缩洗涤液(0.05~0.1%吐温-20的磷酸盐缓冲液)用三蒸水10倍稀释后使用,置4℃冰箱保存;
(3)辣根过氧化物酶(HRP)标记的羊抗兔抗体工作液配制:根据每次所需用量(根据检测样品的多少决定用量),将试剂盒中提供的HRP标记的羊抗兔抗体液用样品稀释液5000倍稀释后使用;
(4)MQCA抗体工作液配制:根据每次所需用量(根据检测样品的多少决定用量),将MQCA抗体液用样品稀释液25000倍稀释后使用;
(5)催化剂工作液配制:取100uL乙腈于1.5mL具塞塑料离心管中,弃去10μL,加入催化剂腈基磷酸二乙酯原液10μL,旋涡混匀;
(6)衍生试剂工作液配制:取0.5mL乙腈于1.5mL具塞塑料离心管中,弃去30μL,加入衍生试剂苯胺30μL,旋涡混匀(衍生试剂对光敏感,操作注意避光);
(7)底物显色A液配制:向底物显色A液瓶中加入10mL无水乙醇,混匀即为底物显色A液浓缩液,根据每次所测样品的数量决定其用量,用三蒸水10倍稀释后使用,现配现用;
(8)底物显色B液配制:将底物显色B液浓缩液用三蒸水10倍稀释,得到底物显色B液稀释液,再按每10ml底物显色B液稀释液加入过氧化氢脲64μL的比例加入过氧化氢脲彻底混匀后使用,现配现用;
(9)底物混合液配制:根据每次所需用量,将配制的底物显色A液和底物显色B液按体积比1∶1混匀,现配现用。
6.2 测定步骤:
(1)将48或96孔酶标板置于室温下回温备用;
(2)将衍生好的标准品液(640ng/mL)用样品稀释液(0ng/mL)稀释成64ng/mL、16ng/mL、4ng/mL、1ng/mL、0.25ng/mL、0ng/mL,用于建立标准曲线,各取40μL加入到微孔中;将样品液取40μL加入到微孔中。标准品和样品做两个平行试验,记下标准品和样品的位置;
(3)在每一微孔中加入MQCA抗体工作液60μL,充分混合后于培养箱37℃孵育1h,覆盖上薄膜或置湿盒中防止蒸发;
(4)倒出孔中的液体,洗涤3次并拍干;
(5)在每一微孔中加入HRP标记的羊抗兔抗体工作液100μL,充分混合后于培养箱37℃孵育1h,覆盖上薄膜或置湿盒中防止蒸发;
(6)倒出孔中的液体,洗涤4次并拍干;
(7)在每一微孔中加入底物混合液100μL,充分混合后于培养箱37℃孵育15到20min;
(8)在每一微孔中加入反应终止液50μL终止反应;
(9)加入终止液后60min内在450nm处测量吸光度值。
6.3 结果判断
所获得的标准品和样品吸光值的平均值除以第一个标准(0标准)的吸光值再乘以100,即为抑制率。以抑制率为纵坐标,MQCA浓度的对数为横坐标作标准曲线,曲线在0.25μg/L~64μg/L范围内趋近直线,每一个样品的浓度(μg/kg)可以从标准曲线上读出。
实施例7、本发明试剂盒的考核与应用
7.1 本发明试剂盒的考核
将本发明试剂盒用HPLC方法进行考核,结果(见表8)显示ELISA具有良好的灵敏度和特异性,与HPLC方法相关性良好。
表8 HPLC法与本发明方法的比较
7.2 本发明试剂盒的应用
取21头45日龄,体重15.0±2.0kg品种为“长大”的二元杂交去势健康仔猪,随机分为2组,一组为不添加药物的空白对照组,另一组为加药试验组。试验组饲喂含50mg/kg的喹乙醇7天,停药0天、4天、10天、14天分别屠宰3头,空白对照组分别在停药0天、4天、10天各屠宰3头,按照试剂盒测定程序测定猪肝脏、肌肉中MQCA的含量。测定结果如表9所示:停药0天,ELISA方法测定肝脏、肌肉中MQCA含量分别为83.7ng/g和7.7ng/g,而HPLC方法检测结果分别为82.3ng/g和7.0ng/g,停药14天,用ELISA方法和HPLC方法检测肝脏中MQCA含量分别为4.77ng/g和4.6ng/g,肌肉中均未检出。两种方法测定结果都能反映MQCA在肝脏和肌肉中的残留量随时间的延长逐渐降低,阴性对照组测定结果均为阴性(<1μg/kg),加药组均为阳性(>1μg/kg),说明本发明的试剂盒具有实际检出能力,可以筛选出阳性样品(>1μg/kg)。
表9 猪肝脏和肌肉组织中MQCA含量的测定
注:“-”表示不予计算
Claims (3)
1.一种3-甲基喹噁啉-2-羧酸残留的酶联免疫检测方法,包括免疫原、包被原和抗体的制备以及样品的前处理,其步骤如下:
(1)将3-甲基喹噁啉-2-羧酸与卵清蛋白相偶联得到包被原;
(2)将3-甲基喹噁啉-2-羧酸与牛血清白蛋白相偶联得到免疫原;
(3)用步骤(2)的免疫原免疫兔得到特异性兔多克隆抗体;
(4)用步骤(1)的包被原包被固相载体;
(5)将猪肌肉或肝脏组织先经5%偏磷酸20%甲醇提取后再过MAX柱净化,最后加入衍生试剂苯胺和催化剂腈基磷酸二乙酯进行处理,得到待测产物;
(6)将步骤(5)的待测产物进行酶联免疫检测。
2.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述的固相载体是酶标板。
3.适用于权利要求1或2所述方法的酶联免疫检测试剂盒,包括盒体、设在盒体内的酶标板和设在盒体内的试剂,其特征在于,在酶标板的每孔内,包被有所述的包被原;所述的试剂包括抗3-甲基喹噁啉-2-羧酸特异性兔多克隆抗体,辣根过氧化酶标记羊抗兔抗体,浓缩洗涤液,浓缩样品稀释液,3-甲基喹噁啉-2-羧酸标准溶液,底物显色A液,底物显色B液,终止液,衍生试剂和催化剂;
其中
所述的底物显色A液为四甲基联苯胺或邻苯二胺;
所述底物显色B液为过氧化氢或过氧化脲;
所述终止液为硫酸溶液或盐酸溶液;
所述的浓缩洗涤液为含有0.05~0.1%吐温-20的磷酸盐缓冲液;
所述浓缩样品稀释溶液为pH7.4的磷酸盐缓冲液。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN2006101648360A CN1963507B (zh) | 2006-12-06 | 2006-12-06 | 3-甲基喹噁啉-2-羧酸残留的酶联免疫检测方法及试剂盒 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN2006101648360A CN1963507B (zh) | 2006-12-06 | 2006-12-06 | 3-甲基喹噁啉-2-羧酸残留的酶联免疫检测方法及试剂盒 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN1963507A CN1963507A (zh) | 2007-05-16 |
CN1963507B true CN1963507B (zh) | 2011-05-18 |
Family
ID=38082649
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN2006101648360A Expired - Fee Related CN1963507B (zh) | 2006-12-06 | 2006-12-06 | 3-甲基喹噁啉-2-羧酸残留的酶联免疫检测方法及试剂盒 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN1963507B (zh) |
Families Citing this family (11)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101144816B (zh) * | 2007-10-31 | 2011-05-11 | 江南大学 | 一种3-甲基-喹啉-2-羧酸的免疫磁珠检测方法 |
CN102585005B (zh) * | 2012-02-27 | 2014-04-02 | 华中农业大学 | 用于检测3-甲基喹噁啉-2-羧酸的单克隆抗体及酶联免疫方法与试剂盒 |
CN103304495B (zh) * | 2012-03-13 | 2016-09-21 | 北京勤邦生物技术有限公司 | 一种喹乙醇代谢物半抗原制备方法及其应用 |
CN102675455B (zh) * | 2012-05-16 | 2014-04-30 | 中国农业科学院兰州畜牧与兽药研究所 | 一种喹乙醇残留标示物高偶联比的全抗原合成方法 |
CN102854309B (zh) * | 2012-08-24 | 2014-09-10 | 镇江出入境检验检疫局检验检疫综合技术中心 | 一种动物源性食品中吡喹酮含量的酶联免疫检测试剂盒及其检测方法 |
CN103792355A (zh) * | 2012-11-04 | 2014-05-14 | 江苏维赛科技生物发展有限公司 | 喹乙醇代谢物残留快速检测试纸条 |
CN104341409B (zh) * | 2013-07-31 | 2017-11-28 | 北京勤邦生物技术有限公司 | 一种噻苯咪唑半抗原制备方法及其应用 |
CN103499690B (zh) * | 2013-10-14 | 2016-04-27 | 河南科技学院 | 喹乙醇代谢物免疫层析试纸卡及其制备方法 |
CN104569398B (zh) * | 2013-10-22 | 2016-06-22 | 北京勤邦生物技术有限公司 | 检测乙氧基喹啉的酶联免疫试剂盒及其应用 |
CN104597178B (zh) * | 2015-01-14 | 2016-05-11 | 华中农业大学 | 一种3-甲基喹噁啉-2羧酸免疫亲和柱及其制备方法 |
CN104672332B (zh) * | 2015-03-09 | 2018-10-09 | 武汉市畜牧兽医科学研究所 | 用于检测游离棉酚的抗体、elisa方法及试剂盒 |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4800223A (en) * | 1986-03-11 | 1989-01-24 | Tosoh Corporation | Quinoxalinone derivatives and analytical method using said compounds |
-
2006
- 2006-12-06 CN CN2006101648360A patent/CN1963507B/zh not_active Expired - Fee Related
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4800223A (en) * | 1986-03-11 | 1989-01-24 | Tosoh Corporation | Quinoxalinone derivatives and analytical method using said compounds |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
吴玉杰,等.高效液相色谱法测定动物组织中喹乙醇代谢残留标识物3-甲基喹噁啉-2-羧酸残留量.《中国畜牧兽医学会兽医药理毒理学分会第九次学术讨论会议论文与摘要集》.2006,217-223. * |
晁博.喹烯酮残留标示物的ELISA检测方法研究及半抗原设计与合成.《中国优秀博硕士学位论文全文数据库(硕士) 农业科技辑》.2006,(第10期),全文. * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN1963507A (zh) | 2007-05-16 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN1963507B (zh) | 3-甲基喹噁啉-2-羧酸残留的酶联免疫检测方法及试剂盒 | |
CN100403030C (zh) | 检测苏丹红药物的酶联免疫试剂盒及方法 | |
Liu et al. | Development of indirect competitive immunoassay for highly sensitive determination of ractopamine in pork liver samples based on surface plasmon resonance sensor | |
CN103901203A (zh) | 一种降钙素原的化学发光定量检测试剂盒及其制备方法和检测方法 | |
CN1971279B (zh) | 喹噁啉-2-羧酸残留的酶联免疫检测方法及试剂盒 | |
CN104655847A (zh) | 检测阿德呋啉的酶联免疫试剂盒及其检测方法 | |
CN100501409C (zh) | 一种检测动物源性食品中氯霉素类药物的酶联免疫试剂盒 | |
CN101799469A (zh) | 检测残留的盐酸克伦特罗的酶联免疫试剂盒及其检测方法 | |
CN101299045B (zh) | 检测氟苯尼考及氟苯尼考胺的方法及其专用酶联免疫试剂盒 | |
CN102086228B (zh) | 一种酶联免疫试剂盒及其应用 | |
CN102967709A (zh) | 检测玉米赤霉烯酮药物的酶联免疫试剂盒及其应用 | |
CN101639477A (zh) | 多西环素残留的elisa检测方法及试剂盒与应用 | |
CN101349693A (zh) | 一种氟苯尼考类药物快速检测试剂盒及其应用 | |
CN100501407C (zh) | 检测阿维菌素类药物的酶联免疫试剂盒及方法 | |
CN1888903A (zh) | 一种检测喹乙醇的酶联免疫试剂盒 | |
CN101315376A (zh) | 喹诺酮类抗生素多残留酶联免疫检测方法 | |
CN105758846A (zh) | 检测克伦特罗的化学发光酶联免疫检测试剂盒 | |
Chung et al. | Immunochemical assay for satratoxin G and other macrocyclic trichothecenes associated with indoor air contamination by Stachybotrys chartarum | |
KO et al. | Direct competitive enzyme-linked immunosorbent assay for sulfamethazine | |
CN101857637A (zh) | 抗诺氟沙星多克隆抗体及其制备方法和应用 | |
CN100498337C (zh) | 一种适用于呋喃唑酮残留分析的酶联免疫检测试剂盒及应用 | |
CN101782579A (zh) | 检测泰妙菌素药物的酶联免疫试剂盒及其应用 | |
CN105301244B (zh) | 检测酸性橙的酶联免疫试剂盒及其应用 | |
CN103808921A (zh) | 检测残留齐帕特罗的酶联免疫试剂盒及其使用方法 | |
CN100492009C (zh) | 检测氟甲喹药物的酶联免疫试剂盒及方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |
Granted publication date: 20110518 Termination date: 20151206 |
|
EXPY | Termination of patent right or utility model |