发明内容
本发明所要解决的技术问题是提供细菌总数快速检测方法及其专用试剂与装置,以解决传统的“活细胞平皿计数法”对细菌总数进行检测的速度慢、效率低,而现在的三磷酸腺苷荧光检测法中非细菌细胞ATP的干扰又影响检测准确度等方面存在的问题。
本发明是通过以下技术方案来实现的:
本发明提供两种测定细菌总数的试剂组。
本发明所提供的测定细菌总数的试剂组有两种,试剂组①由体细胞三磷酸腺苷释放试剂组(TRA)和细菌细胞三磷酸腺苷释放、发光试剂组(AFA)构成;试剂组②由体细胞三磷酸腺苷释放、消除试剂组(TREA)、细菌细胞三磷酸腺苷释放试剂组(XRA)和发光反应试剂组(LLR)构成。
试剂组①系统中,所述体细胞三磷酸腺苷释放试剂组由以下成分组成:
Tricine 10-15mM
EDTA 0.2-0.3mM
Triton X-100 0.005-0.015%
pH 6.5-8.0;
所述细菌细胞三磷酸腺苷释放、发光试剂组
萤火虫荧光素酶 1-5mg/ml
虫荧光素 0.5-1.5mM
Triton X-100 0.9-1.0%
Tricine 20-30mM
Mg2+ 8-10mM
EDTA 1.5-3mM
牛血清白蛋白 15-25mg/ml
二硫基苏糖醇或巯基乙醇 0.5-1.5mM
pH值 6.5-8.0
所述Triton X-100的含量为体积百分含量。
试剂组①系统中,所述体细胞三磷酸腺苷释放试剂组优选由以下成分组成:
Tricine 12.5mM
EDTA 0.25mM
Triton X-100 0.01%
pH 7.8;
所述细菌细胞三磷酸腺苷释放、发光试剂组优选由以下成分组成:
萤火虫荧光素酶 3.0mg/ml
虫荧光素 0.95mM
Triton X-100 1.0%
Tricine 25.0mM
Mg2+ 9.0mM
EDTA 2.0mM
牛血清白蛋白 20mg/ml
二硫基苏糖醇或巯基乙醇 1.0mM
pH值 7.8。
试剂组②系统中,所述体细胞三磷酸腺苷释放、消除试剂组由以下成分组成:
Tricine 10-15mM
EDTA 0.2-0.3mM
牛血清白蛋白 8-12mg/ml
Triton X-100 0.005-0.015%
腺苷三磷酸双磷酸酶 0.03-0.07U/ml
pH 6.5-8.0;
所述细菌细胞三磷酸腺苷释放试剂组由以下成分组成:
CTAB 0.2-0.3%
EDTA 1.5-3mM
Tricine 20-30mM
二硫基苏糖醇或巯基乙醇 0.5-1.5mM
Tween 20 0.025-0.075%
pH 6.5-8.0;
所述发光反应试剂组由以下成分组成:
萤火虫荧光素酶 1-5mg/ml
虫荧光素 0.5-1.5mM
Tricine 20-30mM
Mg2+ 8-10mM
EDTA 1.5-3mM
牛血清白蛋白 15-25mg/ml
二硫基苏糖醇或巯基乙醇 0.5-1.5mM
pH 6.5-8.0;
所述Triton X-100的含量为体积百分含量,所述CTAB的含量为质量百分含量
所述Tween 20的含量为体积百分含量。
其中,所述体细胞三磷酸腺苷释放、消除试剂组优选由以下成分组成:
Tricine 12.5mM
EDTA 0.25mM
牛血清白蛋白 10.0mg/ml
Triton X-100 0.01%
腺苷三磷酸双磷酸酶 0.05U/ml
pH 7.8;
所述细菌细胞三磷酸腺苷释放试剂组优选由以下成分组成:
CTAB 0.25%
EDTA 2.0mM
Tricine 25.0mM
二硫基苏糖醇或巯基乙醇 1.0mM
Tween 20 0.05%
pH 7.8;
所述发光反应试剂组由以下成分组成:
萤火虫荧光素酶 3.0mg/ml
虫荧光素 0.95mM
Tricine 25.0mM
Mg2+ 9.0mM
EDTA 2.0mM
牛血清白蛋白 20mg/ml
二硫基苏糖醇或巯基乙醇 1.0mM
pH 7.8。
所述试剂组②系统中的腺苷三磷酸双磷酸酶可以去除游离ATP及体细胞释放出的ATP。腺苷三磷酸双磷酸酶的作用原理为,腺苷三磷酸双磷酸酶把ATP分解为ADP和AMP,而ADP和AMP不能被萤火虫荧光素酶催化发光,这样可以有效的去除游离及体细胞产生的ATP。
由于腺苷三磷酸双磷酸酶相对过量的,所以要除去没有反应的腺苷三磷酸双磷酸酶。阳离子表面活性剂可使腺苷三磷酸双磷酸酶失去催化活性,所以试剂组②系统中所述XRA所用的细菌细胞三磷酸腺苷释放剂为阳离子表面活性剂。
试剂组①和试剂组②系统中抗氧化剂二硫基苏糖醇(DTT)或巯基乙醇(2-mercaptoethanol)提供二硫键来防止萤火虫荧光素酶被异常氧化。
本发明所提供的测定细菌总数装置,包括细菌ATP检测杯和荧光检测装置,其中,所述细菌ATP检测杯,具有一底端、一开口顶端和透明或不透明的侧壁;
当配合试剂组①使用时,所述细菌ATP检测杯底端带有直径为0.15μm-0.50μm孔径的可浸透的过滤器,将由体细胞三磷酸腺苷释放试剂组得到的体细胞ATP和游离ATP需通过过滤除去。所述可浸透的过滤器的孔径优选为0.45μm。
当配合试剂组②使用时,所述细菌ATP检测杯底端无孔。由体细胞三磷酸腺苷释放试剂组得到的体细胞ATP和游离ATP用腺苷三磷酸双磷酸酶(apyrase)除去,不必通过过滤除去。
所述细菌ATP检测杯的侧壁和杯底由不与体细胞三磷酸腺苷释放试剂组和细菌细胞释放、发光试剂组中的试剂发生发应的材料制成。如侧壁和无孔的杯底可采用玻璃或合成材料构成,合成材料可为聚丙烯或聚苯乙烯;带有直径0.15μm-0.50μm孔的可浸透的过滤器可采用尼龙、聚四氟乙烯或聚碳酸酯材料制成。
所述荧光检测装置可为微量荧光检测仪,如英国Biotrace M3、美国NewHorizons 3650、美国Turner TD 20/20、国产滨松系列产品。
当所述细菌ATP检测杯的底端带有直径为0.15μm-0.50μm孔的可浸透的过滤器时,所述测定细菌总数装置中还包括样品浓缩装置,所述样品浓缩装置可将待测样品中的微生物保留在所述细菌ATP检测杯中的可浸透的过滤器上。
本发明还提供了两种利用上述测定细菌总数装置和试剂测定细菌总数的方法。
本发明所提供的采用试剂组①系统测定细菌总数的方法,包括如下步骤:
1)将待测样品放入上述细菌ATP检测杯中;所述细菌ATP检测杯的底端带有直径为0.15μm-0.50μm孔的可浸透的过滤器;当细菌或被检样品浓度过低时通过上述测定细菌总数装置中的样品浓缩装置将待测样品浓缩,使待测样品中的微生物保留在所述细菌ATP检测杯中的可浸透的过滤器上;
2)向步骤1)的细菌ATP检测杯中加入TRA混匀,释放待测样品中的体细胞ATP;
3)对步骤2)的细菌ATP检测杯施加压力,将游离及体细胞ATP通过所述细菌ATP检测杯的可浸透的过滤器排出;
4)向步骤3)的细菌ATP检测杯中加入AFA;
5)用上述测定细菌总数装置中的荧光检测装置检测步骤4)中的细菌ATP检测杯中发出的荧光,得出待测样品中的细菌总数。
本发明所提供的采用试剂组②系统测定细菌总数的方法,包括如下步骤:
1)将待测样品放入上述细菌ATP检测杯,所述细菌ATP检测杯的底端无孔;
2)向步骤1)的细菌ATP检测杯中加入TREA混匀,释放并消除待测样品中的游离及体细胞ATP;
3)向步骤2)的细菌ATP检测杯中加入XRA混匀并静止5分钟;
4)向步骤3)的细菌ATP检测杯中加入LLR混匀;
5)用上述测定细菌总数装置中的荧光检测装置检测步骤4)中的细菌ATP检测杯中发出的荧光,得出待测样品中的细菌总数。
通过本发明技术方案的实施,能够很好地解决传统的“活细胞平皿计数法”对食品污染的微生物总数进行检测的速度慢、效率低,而现在的检测法中非细菌细胞ATP的干扰又影响检测准确度等方面存在的问题。本发明测定细菌总数的方法通过测定细菌总数试剂与测定细菌总数装置的配合,达到可以排除非细菌产生的三磷酸腺苷,进而可以精确测定被测样品表面或其中细菌总数的目的;灵敏、准确,与常规活细胞平皿计数法的符合率达93-98%;并且检测速度快,可在1-5分钟内完成环境或食品的细菌总数检测;由于可采用基因工程或有机合成的方法制备荧光素和荧光素酶,大大降低试剂的成本,也有效提高了产量;本发明的测定细菌总数试剂和测定细菌总数装置携带方便,可在室内外使用。本发明的测定细菌总数的方法及其专用试剂与装置应用范围广,不仅在食品检测领域,并且在水处理、环境监测、啤酒及其它酿酒业、奶牛养殖及奶品制造、纸制品及纸浆制造领域。
具体实施方式
本发明提供两种细菌总数测定试剂,包括两种组合:试剂组①由体细胞三磷酸腺苷释放试剂组(TRA)和细菌细胞三磷酸腺苷释放、发光试剂组(AFA)构成;试剂组②由体细胞三磷酸腺苷释放、消除试剂组(TREA),细菌细胞三磷酸腺苷释放试剂组(XRA)和发光反应试剂组(LLR)构成。
根据对比实验确定,体细胞三磷酸腺苷释放试剂组(TRA)和细胞裂解及三磷酸腺苷释放消除剂(TREA)中的对体细胞有专一性的裂解剂为体积百分含量为0.005-0.015%的Triton X-100;在这个浓度范围内对体细胞有专一性的裂解剂不会裂解细菌细胞,而只裂解体细胞。为了使体细胞的ATP不粘附在细菌ATP检测杯底端带有的直径为0.15μm-0.50μm孔的可浸透的过滤器上而完全去除,TRA和TREA试剂还含有作为分散剂的表面活性剂Tween 20或Tween60或Tween 80。
由于溶液整体的pH值(酸碱度)对整个荧光反应的影响非常大,经实验得到反应适合pH值6.5-8.0,所以必要的缓冲也是本发明的重要组成部分;缓冲液中的8mM-10mM的Mg2+主要为本反应提供必要的金属镁离子;缓冲液中的EDTA是金属螯合剂,对萤火虫荧光素酶有稳定作用;由于萤火虫荧光素酶的性质不稳定,AFA试剂和LLR试剂含有很多对萤火虫荧光素酶活性有影响的物质,所以添加高浓度的牛血清白蛋白(15mg/ml-25mg/ml BSA)对于AFA试剂和LLR试剂的稳定性和长时间保存都是必要的。
在AFA试剂和LLR试剂中,萤火虫荧光素酶(luciferase)、虫荧光素(D-lucifrin)和镁离子相对预测样品中细菌细胞含有的ATP是过量的,这样可以保证裂解发出的荧光量和细菌总数相互对应。此AFA主要创新点在于当细菌细胞裂解发光试剂组中的细菌裂解剂为非离子型去污剂时,所述细菌细胞裂解发光试剂中的所有试剂可在一个体系中存放,使整个细菌细胞裂解和催化发光的体系构建在一起,同时能保证不互相干扰,这样在操作上和便携性上就有了很大的提高,本发明的细菌细胞裂解发光试剂组中的溶液配比能保证细菌细胞的完全裂解而又不干扰整个催化发光体系。
本发明所提供的测定细菌总数装置中的细菌ATP检测杯如图2所示,具有一底端11、一开口顶端12、侧壁10;侧壁10可透明或不透明,底端11无孔或带有直径为0.15μm-0.50μm孔的可浸透的过滤器。带有直径为0.15μm-0.50μm孔的可浸透的过滤器熔接在细菌ATP检测杯的底端。
本发明所提供的测定细菌总数装置中的样品浓缩装置如图3和图4所示,样品浓缩装置具有上腔室13、下腔室16、同轴的通孔8和9、“O”形圈14和15。使用时可将注射器连接于通孔8,之后对注射器柱塞施加一正压,使细菌ATP检测杯中的溶液从通孔9中流出。“O”形圈14和15提供了防泄漏密封。在完成浓缩后,将上腔室13和下腔室16分开,露出细菌ATP检测杯的开口顶端12,然后从下腔室16中取下细菌ATP检测杯。
细菌ATP检测杯的侧壁10和杯底11由不与体细胞三磷酸腺苷释放试剂组和细菌细胞裂解发光试剂组中的试剂发生发应的材料制成。侧壁10和无孔的杯底11可采用玻璃或合成材料构成,合成材料可为聚丙烯或聚苯乙烯。透明的聚丙烯或聚苯乙烯能够完全传送420-580nm波长范围内的光。带有直径为0.15μm-0.50μm孔的可浸透的过滤器可采用尼龙、聚四氟乙烯或聚碳酸酯材料制成,该过滤器在10MPa的压力下不变形,0.15μm-0.50μm的孔径可保证细菌细胞保留在过滤器的表面上,同时可使任何相关的液体相在压力下能够完全通过。该过滤器具有足够的张力,即使在加湿以后也可保留检测溶液。
荧光检测装置可为微量荧光检测仪,如英国Biotrace M3、美国New Horizons3650、美国Turner TD 20/20、国产滨松系列产品。用于检测细菌ATP检测杯的透明侧壁或开口顶端发出的荧光。
本发明提供了两种测定细菌总数的方法。
对于本领域技术人员来说,制备待测样品的方法是公知的,如可以按照下述任意一种方法取样:
1)可用取样装置通过擦拭固体表面的限定区域来对固体表面取样,将该取样装置放入一容器(如管、小杯)内,向该容器中加入采集溶液,并对其搅拌,以使该表面的微生物从取样装置中释放到采集溶液中,得到待测样品。所述取样装置包括一种吸收或吸附材料,如可以是一块海棉或一个棉签。
2)可使气体通过采集溶液来收集气体中的微生物,得到待测样品。
所述采集溶液可以是保持微生物细胞壁完整的洗涤剂、盐、缓冲液或它们的任意组合,如pH7.2的PBS、含有0.15M NaCl和0.5% Tween20的水溶液等。
接着将该待测样品的等分试样转移到上述细菌ATP检测杯中。然后按照下述1)或2)的方法操作:
1)当该细菌ATP检测杯的底端无孔时,其侧壁可透明或不透明;向该细菌ATP检测杯中加入体细胞三磷酸腺苷释放、消除试剂组(TREA);60秒后,体细胞的ATP完全被释放并被腺苷三磷酸双磷酸酶降解,再加入细菌细胞三磷酸腺苷释放试剂组(XRA),30秒后,腺苷三磷酸双磷酸酶被十六烷基三甲基溴化铵(CTAB)灭活,再加入发光反应液(LLR),用微量荧光检测仪(如英国Biotrace M3、美国New Horizons 3650、美国Turner TD 20/20、国产滨松系列产品)检测细菌ATP检测杯的透明侧壁或开口顶端的荧光,通过软件或人工换算得出待测样品的细菌总数。
2)当该细菌ATP检测杯的底端带有直径为0.15μm-0.50μm孔的可浸透的过滤器时,其侧壁不透明;向该细菌ATP检测杯中加入体细胞三磷酸腺苷释放试剂(TRA)试剂;10秒后,体细胞的ATP完全被释放,向该细菌ATP检测杯施加正压或负压,使该待测样品中的体细胞ATP和体细胞三磷酸腺苷释放试剂组(TRA)中的试剂通过该细菌ATP检测杯的底端带有的过滤器除去,从而只保留被检样品的细菌细胞,以便精确计算细菌总数,同时也对待测样品中的细菌进行了浓缩;然后再加入细菌细胞三磷酸腺苷释放、发光试剂组(AFA),用微量荧光检测仪(如英国Biotrace M3、美国New Horizons 3650、美国Turner TD 20/20、国产滨松系列产品)检测细菌ATP检测杯的开口顶端的荧光,通过软件或人工换算得出待测样品的细菌总数。
加压方式中空气加压为本发明的首选。这种方法具有干扰小,不易带入三磷酸腺苷(ATP)及对细菌菌体无损害的优点。
底端带有过滤器的细菌ATP检测杯具有浓缩和富集细菌的作用,由于被测样品中所含有的细菌总数往往过低,如纯净水、矿泉水、灭菌后的罐头制品等,有可能低于试剂系统或仪器的最低检测限度。此时就有必要对样品进行成倍浓缩或富集才能达到最低检测限度,通过浓缩的倍数推算出被测样品中的原始细菌总数。
下述实施例中的实验方法,如无特别说明,均为常规方法。
下述实施例中的百分含量,如无特别说明,均为体积百分含量。
实施例1、细菌细胞三磷酸腺苷释放、发光试剂组(AFA)中Triton X-100的优化
用0.85%无菌生理盐水配置的108CFU/ml的大肠杆菌悬浮液,取悬浮液10μl放入底端无孔侧壁透明的细菌ATP检测杯中,选用体细胞三磷酸腺苷释放试剂组(TRA)、含有如图1所示的不同浓度Triton X-100的下述细菌细胞三磷酸腺苷释放、发光试剂组(AFA)组合,并按照对应的操作方式进行操作,用微量荧光检测仪(北京滨松光子股份的9504型荧光检测仪)检测细菌ATP检测杯中释放出的荧光值,记录荧光值,结果如图1所示,表明1%的Triton X-100的裂解效果最好。对含有1%Triton X-100的AFA裂解液按常规方法涂LB平板进行菌落计数,结果均未长出菌落,表明所有的大肠杆菌完全被裂解。
其中,体细胞三磷酸腺苷释放试剂组(TRA)由以下成分组成:
Tricine(pH 7.8) 12.5mM
EDTA 0.25mM
Triton X-100 0.01%。
细菌细胞三磷酸腺苷释放、发光试剂组(AFA)由以下成分组成:
萤火虫荧光素酶 3.0mg/ml
虫荧光素 0.95mM
Triton X-100 0.1%、0.2%、0.3%、0.4%、0.5%、0.6%、0.7%、0.8%、0.9%、1.0%或2.0%
Tricine 25.0mM
Mg2+ 9.0mM
EDTA 2.0mM
牛血清白蛋白 20mg/ml
DTT 1.0mM
pH值 7.8。
实施例2、分别利用两种不同的试剂组合和对应的细菌ATP检测杯对108CFU/ml的大肠杆菌悬浮液的检测效果
1.分别将1ml用0.85%无菌生理盐水配置的108CFU/ml的大肠杆菌悬液按10倍梯度用0.85%无菌生理盐水稀释(10-1、10-2、10-3、10-4、10-5)后,各取悬浮液10μl放入细菌ATP检测杯中(底端带有直径为0.45μm孔的滤膜)中,选用体细胞三磷酸腺苷释放试剂组(TRA)和细菌细胞三磷酸腺苷释放、发光试剂组(AFA)中的所有试剂,并按照对应的操作方式进行操作,并用微量荧光检测仪(北京滨松光子股份的9504型荧光检测仪)检测细菌ATP检测杯中释放出的荧光值,记录荧光值并通过计算软件或人工的方式换算出细菌总数。结果如表1所示。
表1.试剂组①测得的大肠杆菌总数与对应荧光值
大肠杆菌总数(cfu/ml) |
相对光单位(RLU) |
1.28×107 |
331870 |
1.30×106 |
35670 |
1.27×105 |
3866 |
1.26×104 |
330 |
1.27×103 |
248 |
1.31×102 |
178 |
由表1数值得到的细菌总数的(Y)与相对荧光单位(X)的曲线为:
lgY=0.6836lgX+0.3207 R2=0.9139。
对各个稀释度的裂解液按常规方法涂LB平板进行菌落计数,结果未得到菌落,表明所有的大肠杆菌完全被裂解。
其中,体细胞三磷酸腺苷释放试剂组(TRA)由以下成分组成:
Tricine(pH 7.8) 12.5mM
EDTA 0.25mM
Triton X-100 0.01%。
细菌细胞三磷酸腺苷释放、发光试剂组(AFA)由以下成分组成:
萤火虫荧光素酶 3.0mg/ml
虫荧光素 0.95mM
Triton X-100 1.0%
Tricine 25.0mM
Mg2+ 9.0mM
EDTA 2.0mM
牛血清白蛋白 20mg/ml
DTT 1.0mM
pH值 7.8。
2.分别将1ml用0.85%无菌生理盐水配置的108CFU/ml的大肠杆菌悬液按10倍梯度用0.85%无菌生理盐水稀释(10-1、10-2、10-3、10-4、10-5)后,各取悬浮液10μl放入细菌ATP检测杯(底端无孔)中,选用体细胞三磷酸腺苷释放、消除试剂组(TREA)、细菌细胞三磷酸腺苷释放试剂组(XRA)和发光反应试剂组(LLR)中的所有试剂,并按照对应的操作方式进行操作,并用微量荧光检测仪(北京滨松光子股份的9504型荧光检测仪)检测细菌ATP检测杯中释放出的荧光,记录荧光值并通过计算软件或人工的方式换算出细菌总数。
表2.试剂组②测得的大肠杆菌总数与对应荧光值
大肠杆菌总数(cfu/ml) |
相对光单位(RLU) |
1.28×107 |
331855 |
1.30×106 |
35660 |
1.27×105 |
3866 |
1.26×104 |
327 |
1.27×103 |
243 |
1.31×102 |
175 |
由表2数值得到的细菌总数的(Y)与相对荧光单位(X)的曲线为:
lgY=0.6855lgX+0.3085 R2=0.9144。
对各个稀释度的裂解液按常规方法涂LB平板进行菌落计数,结果均未长出菌落,表明所有的大肠杆菌完全被裂解。
其中,体细胞三磷酸腺苷释放、消除试剂组由以下成分组成:
Tricine(pH 7.8) 12.5mM
EDTA 0.25mM
牛血清白蛋白 10.0mg/ml
Triton X-100 0.01%
腺苷三磷酸双磷酸酶 0.05U/ml
细菌细胞三磷酸腺苷释放试剂组(XRA)由以下成分组成:
CTAB 0.25%(质量百分含量)
EDTA 2.0mM
Tricine(pH 7.8) 25.0mM
DTT 1.0mM
Tween 20 0.05%。
发光反应试剂组(LLR)由以下成分组成:
萤火虫荧光素酶 3.0mg/ml
虫荧光素 0.95mM
Tricine 25.0mM
Mg2+ 9.0mM
EDTA 2.0mM
牛血清白蛋白 20mg/ml
DTT 1.0mM
pH值 7.8
结果表明①由TRA和AFA组合并配合底端带有虑膜的细菌ATP检测杯;与②由TREA、XRA和LLR组合配合底端无孔的细菌ATP检测杯,最终得到的细菌发光值是相近的。
实施例3、细菌细胞裂解发光试剂组对不同菌体的裂解效果
分别将用0.85%无菌生理盐水配置的106CFU/ml的金黄色葡萄球菌、106CFU/ml的大肠杆菌、106CFU/ml的枯草芽孢杆菌悬液用0.85%无菌生理盐水按10倍梯度稀释(10-1、10-2、10-3、10-4)后,各取悬浮液10μl放入细菌ATP检测杯中(底端带有直径为0.45μm孔的滤膜)中,选用实施例2中的体细胞三磷酸腺苷释放试剂(TRA)、细菌细胞三磷酸腺苷释放、发光试剂组(AFA),并按照对应的操作方式进行操作,并用微量荧光检测仪(北京滨松光子股份的9504型荧光检测仪)检测细菌ATP检测杯中释放出的荧光值,平行操作三次并记录平均值。
表3、菌体总数和相应的相对荧光强度
金黄色葡萄球菌 |
大肠杆菌 |
枯草杆菌 |
实际菌数(cfu/ml) |
相对光单位(RLU) |
实际菌数(cfu/ml) |
相对光单位(RLU) |
实际菌数(cfu/ml) |
相对光单位(RLU) |
1.3×105 |
3886 |
1.3×105 |
3895 |
1.3×105 |
3893 |
1.3×104 |
340 |
1.3×104 |
345 |
1.3×104 |
338 |
1.3×103 |
250 |
1.3×103 |
253 |
1.3×103 |
249 |
1.3×102 |
176 |
1.3×102 |
178 |
1.3×102 |
175 |
结果表明,三种细菌的荧光值相近,说明本发明的细菌细胞三磷酸腺苷释放、发光试剂组对每种细菌裂解效果相同。对各个稀释度的裂解液按常规方法涂LB平板进行菌落计数,结果均未长出菌落,表明所有的细菌完全被裂解。
实施例4、体细胞三磷酸腺苷释放、消除试剂组(TREA)、细菌细胞三磷酸腺苷释放试剂组(XRA)和发光反应试剂组(LLR)组合与体细胞三磷酸腺苷释放试剂组(TRA)、细菌细胞三磷酸腺苷释放试剂组(XRA)和发光反应试剂组(LLR)组合对比试验
分别将1ml用0.85%无菌生理盐水配置的108CFU/ml的大肠杆菌悬液按10倍梯度用0.85%无菌生理盐水稀释(10-1、10-2、10-3、10-4、10-5)后,各取悬浮液10μl放入细菌ATP检测杯(底端无孔)中,选用体细胞三磷酸腺苷释放、消除试剂组(TREA)、细菌细胞三磷酸腺苷释放试剂组(XRA)和发光反应试剂组(LLR)中的所有试剂,并按照对应的操作方式进行操作。同时以选用体细胞三磷酸腺苷释放试剂组(TRA)、细菌细胞三磷酸腺苷释放试剂组(XRA)和发光反应试剂组(LLR)组合中的所有试剂作为对照,并按照对应的操作方式进行操作。用微量荧光检测仪(北京滨松光子股份的9504型荧光检测仪)检测细菌ATP检测杯中释放出的荧光,记录荧光值并通过计算软件或人工的方式换算出细菌总数。
表4.对比实验
体细胞三磷酸腺苷释放、消除试剂组(TREA) |
体细胞三磷酸腺苷释放试剂组(TRA),不含三磷酸腺苷消除剂 |
大肠杆菌总数(cfu/ml) |
相对光单位(RLU) |
大肠杆菌总数(cfu/mL) |
相对光单位(RLU) |
1.2×107 |
316740 |
1.2×107 |
513463 |
1.2×106 |
30995 |
1.2×106 |
58230 |
1.2×105 |
3226 |
1.2×105 |
5577 |
1.2×104 |
312 |
1.2×104 |
528 |
1.2×103 |
234 |
1.2×103 |
405 |
1.2×102 |
125 |
1.2×102 |
337 |
通过表4的数据可以清晰的看到不添加三磷酸腺苷消除剂,虽然整个反应体系的其它部分是完全相同的,但是得到荧光值是不同的,而且相差很大。所以除去游离的ATP或体细胞释放出的ATP是非常必要的。
实施例4、检测自来水的细菌总数
实施例2的体细胞三磷酸腺苷释放试剂组(TRA)和细菌细胞三磷酸腺苷释放、发光试剂组(AFA)并配合一开口顶端的细菌ATP检测杯使用,该细菌ATP检测杯底端带有直径为0.45μm孔的滤膜,其侧壁不透明;
将底端带有虑膜的细菌ATP检测杯与浓缩装置以如图4所示的方式组合,然后将装有自来水的注射器前端与浓缩装置的上端开口密合并推动注射器的活塞将自来水压入浓缩装置,虑出的自来水用一容器收集,水中的细菌将被在虑膜上得到富积和浓缩,以确保达到整个系统的最低检测灵敏度。然后取出细菌ATP检测杯,加入体细胞三磷酸腺苷释放试剂组(TRA)5秒后,体细胞的ATP完全被释放,向该细菌ATP检测杯施加正压或负压,使该待测样品中的体细胞ATP和体细胞三磷酸腺苷释放试剂组(TRA)中的试剂通过该细菌ATP检测杯的底端带有的虑膜除去,从而只保留被检样品的细菌细胞;然后加入细菌细胞三磷酸腺苷释放试剂组(XRA)轻轻混匀,再加入发光反应液(LLR)。用微量荧光检测仪检测细菌ATP检测杯的开口顶端的荧光,读出相对光单位(RLU)(表5),根据实施例2步骤1的标准曲线计算出该自来水中的细菌总数。
将该自来水用广泛用于监测饮用水的异养菌平皿计数(HPC)法来检测该自来水中的细菌总数,结果表明本发明方法的检测结果与常规异养菌平皿计数(HPC)法的符合率达90%;并且检测速度快,整个检测过程只需不到2分钟。
表5.自来水中的细菌的相对荧光单位
自来水浓缩的倍数 |
未浓缩 |
10倍 |
50倍 |
100倍 |
相对光单位(RLU) |
- |
110 |
531 |
915 |
由上表可知对于自来水,纯净水或包装软饮料等细菌含量很低的检测样品,过滤浓缩的步骤和方法是必要的。
实施例5、体细胞三磷酸腺苷释放剂可专一有效的促使体细胞裂解
1、体细胞三磷酸腺苷释放剂TREA可专一有效的促使体细胞裂解
用实施例2的TREA、XRA和LLR配合细菌ATP检测杯(底端无孔)检测用1ml0.85%无菌生理盐水配制的含有如表6所示的细胞数的悬浮液的荧光,其中,按照表6的添加方式添加试剂,无60秒等待腺苷三磷酸双磷酸酶降解ATP过程,结果如表6所示
表6.
细胞类别 | 细胞数 |
试剂 |
RLU |
TREA |
XRA |
LLR |
1 |
2 |
空白 |
空白 |
- |
- |
+ |
无 |
无 |
淋巴细胞 |
200个 |
+ |
- |
+ |
2083907 |
2155429 |
淋巴细胞 |
144个 |
+ |
- |
+ |
1125802 |
1330417 |
细菌 |
4000000个 |
+ |
- |
+ |
无 |
无 |
- |
+ |
+ |
108689 |
108663 |
细菌 |
3000000个 |
+ |
- |
+ |
无 |
无 |
- |
+ |
+ |
86731 |
86752 |
表6中“+”表示加入相应试剂,“-”表示未加入相应试剂
RLU1,RLU2:平行两次实验结果的相对荧光值
选用仪器为北京滨松光子股份的9504型荧光检测仪。
表6表明,TREA能够很好的将淋巴细胞裂解,并释放出ATP,仪器相应的RLU读数很高,对于细菌细胞则不能起到裂解细胞的作用,仪器相应RLU读数接近空白值。而必须通过加入XRA即细菌细胞三磷酸腺苷释放剂才能有效的将细菌细胞裂解,并释放出ATP。
2、体细胞三磷酸腺苷释放剂TRA可有效的促使体细胞裂解
体细胞和细菌细胞混合的情况下,采用实施例2的TRA、XRA、LLR并配合带有滤膜的ATP检测杯,通过加压过滤的方式排除非细菌ATP进行表7的实验。实验结果如表7所示,表明TRA能够很好的将淋巴细胞裂解并释放出ATP,配合带有滤膜的ATP检测杯能有效排除非细菌ATP干扰,所以能准确的测出细菌释放出的ATP的发光值。
表7.
细胞类别 |
取样体积(μl) | TRA | 加压过滤 | XRA | LLR |
RLU |
1 |
2 |
X |
10 |
- |
- |
+ |
+ |
54131 |
54125 |
T |
10 |
+ |
- |
- |
+ |
305297 |
305215 |
T |
10 |
+ |
+ |
- |
+ |
2140 |
2120 |
H |
20 |
+ |
+ |
+ |
+ |
45209 |
45187 |
表7中,X:细菌细胞稀释液 T:血红细胞稀释液
H:细菌细胞及血红细胞稀释液等体积混合液
“+”:表示加入相应试剂或加压过滤 “-”:表示未加入相应试剂或加压过滤
TRA:体细胞三磷酸腺苷释放剂 XRA:细菌细胞三磷酸腺苷释放剂
LLR:Luciferin-Luciferase发光反应试剂
RLU1,RLU2:平行两次实验结果的相对荧光值
选用仪器为美国NHD公司的3560型荧光检测仪。