CN1532330A - 非木材纤维植物的生物制浆法 - Google Patents
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Abstract
本发明提供一种纸浆的制造方法,尤指一种非木材纤维植物生物制浆的方法,主要包含以下步骤:(a)提供一培养溶液;(b)加入一非木材纤维植物植物体;(c)加入一微生物的悬浮液;(d)进行发酵培养以制备一制浆溶液;(e)蒸煮该制浆溶液;(f)散浆;以及(g)筛分该制浆溶液,以自该制浆溶液中分离出纸浆。
Description
(1)技术领域
本发明有关一种纸浆的制造方法,尤指一种非木材纤维植物生物制浆的方法。
(2)背景技术
造纸工业为世界性的传统工业,其发展为一国经济及生活水准的指标。纸浆的来源多来自于大量的砍伐森林(生产一公吨木浆需四公吨木片,相当于砍伐二十三株树木),使得地球上的森林面积逐渐减少,因而造成严重的生态平衡问题。此外,利用大量的水及化学药剂来漂洗木浆,造成河川及海洋的水资源受到污染。
台湾每年稻草总产量约有235万公吨。稻草的有机物成份约大于95%,其中碳41.3%,氮0.81%,半纤维素20.6%,纤维素24.7%,木质素7.7%。目前处理稻草的方法一般有制做草绳、草袋、草席、纸板,畦面敷盖材料,充当燃料,或混合其他资材做成堆厩肥;也可直接掩埋土中,循环利用其养分或就地燃烧成灰。由于现今科技进步神速及工资昂贵,因此利用稻草做燃料、饲料、草袋及草席等相当少,绝大部份均采用就地燃烧或直接掩埋,故有造成空气或环境污染之虞。稻草拥有丰富的纤维,若能妥善开发利用非木材植物(稻草)的纤维,必有助于缓解「砍伐林木用于造纸」的压力。往昔世界各地利用非木材植物生产纤维的方式,大都采行化学或半化学的处理方法,然而化学制造草浆的方式,却给造纸工业制造三大难题,即(1)制程出现大量的硅酸化物与高黏稠度的黑色液体,引发回收系统产生严重的后遗症;(2)回收废液时,硅酸化物影响碳酸钙的沉降,使蒸气罐出现罐垢,又黑色黏液会使蒸发器的管路沾满鳞状物质,致常需停工清理;(3)蒸煮机器会出现不稳定的状况,因而浪费燃料,造成生产成本提高。
生物科技是二十一世纪各种传统产业结构重整与再起飞的关键技术,因此利用生物科技造纸成为现今不可忽视的重要方向。近年来采用生物技术生产纸浆,可降低生产成本,改善纸浆品质及维护造纸环境安全的方法与产品,已陆续诞生。例如利用酶除去树脂或油墨,采用木聚糖酶(xylanase)或木质素氧化(Ligninoxidizing)酶漂白纸浆及以酶改良纸浆黏稠度(尤其是非木本植物纸浆),但亦存有如化学方法造纸的缺失,常衍生废液污染环境,及耗费能源等问题。因此藉重生物科技解决与克服化学法造纸的缺失,确是势在必行。
欧美各国许多学者尝试利用白腐菌如Phanerochaete chrysosporium及Cereporiopsis subvermispora等接种于木片堆中,企图去除木材中的木质素与节约造纸的能源及成本,虽有部分成效,但在室外接种白腐菌处理木材的时间却相当漫长,极不符合经济效益。
(3)发明内容
因此本发明主要目的在于提供一种非木材纤维植物生物制浆方法,尝试利用微生物分解有机物的能力,应用于废弃稻草的制浆过程,进而建立一种非木材纤维植物的生物制浆流程的模式,将可研发非木材纤维成为纸浆原料的重要来源;并避免制浆工厂的运作产物,破坏自然环境,进而解决在造纸上所遭遇的难题。
根据本发明一方面的纸浆的制造方法,包含以下步骤:(a)提供一培养溶液;(b)加入一非木材纤维植物体;(c)加入一微生物的悬浮液;(d)进行发酵培养以制备一制浆溶液;(e)蒸煮该制浆溶液;(f)散浆;以及(g)筛分该制浆溶液,以自该制浆溶液中分离出纸浆。
根据上述构想,其中该非木材纤维植物体是为一稻草杆。
根据上述构想,其中该非木纤维植物体是经高温高压处理。
根据上述构想,其中该非木纤维植物体是经高温蒸气处理。
根据上述构想,其中该非木纤维植物体是经高温水煮处理。
根据上述构想,其中该非木纤维植物体是经熏蒸剂熏蒸处理。
根据上述构想,其中该非木纤维植物体是经常温浸水处理。
根据上述构想,其中该非木纤维植物体是以4~15%的比例添加至该培养溶液中。
根据上述构想,其中该微生物是由该非木纤维植物体上分离而得。
根据上述构想,其中该微生物是由禽畜粪便堆肥中分离而得。
根据上述构想,其中该微生物是培养于营养洋菜(Nutrient Agar,NA)培养基。
根据上述构想,其中该培养基酸碱值为8。
根据上述构想,其中该微生物是培养于马铃薯葡萄糖琼脂(Potato DextroseAgar,PDA)培养基。
根据上述构想,其中该培养基酸碱值为8。
根据上述构想,其中该微生物接种浓度是为0~108cfu/ml。
根据上述构想,其中该微生物是为一格兰氏阳性细菌。
根据上述构想,其中该微生物是为Bacillus licheniformis(PMBP-m5)的细菌。
根据上述构想,其中该微生物是为Bacillus subtilis(PMBP-m6)的细菌。
根据上述构想,其中该微生物是为Bacillus amyloliquefaciens(PMBP-m7)的细菌。
根据上述构想,其中该发酵培养溶液是为蒸馏水。
根据上述构想,其中该发酵培养溶液是为乳醣牛肉煎汁酵母培养液(Lactose Beef extract Yeast extract,LBY)。
根据上述构想,其中该发酵培养溶液是为葡萄糖蛋白酵母培养基(GlucosePeptone Yeast extract,GPY)。
根据上述构想,其中该发酵培养温度是为20~50℃。
根据上述构想,其中该发酵培养是为振荡培养。
根据上述构想,其中该发酵培养是为静置培养。
根据上述构想,其中该发酵培养时间是为0~10天。
根据上述构想,其中蒸煮该发酵溶液还进一步包含添加0~4%(w/v)的生石灰,在120~150℃的温度下,蒸煮25~40分钟。
根据上述构想,其中该发酵溶液是以18筛孔网筛过滤。
根据上述构想,其中该发酵溶液是以200筛孔网筛过滤。
根据上述构想,其中该发酵溶液是以270筛孔网筛过滤。
根据本发明另一方面的生物制浆方法,包含以下步骤:(a)提供一培养溶液;(b)加入一植物体;(c)加入一微生物的悬浮液;(d)进行发酵培养以制备一制浆溶液;(e)蒸煮该制浆溶液;(f)散浆;以及(g)筛分该制浆溶液,以自该制浆溶液中分离出纸浆。
根据上述构想,其中该植物体的纤维是为非木纤维。
根据上述构想,其中该植物体是为稻草杆。
根据上述构想,其中该植物体是经高温高压处理。
根据上述构想,其中该植物体是经高温蒸气处理。
根据上述构想,其中该植物体是经高温水煮处理。
根据上述构想,其中该植物体是经熏蒸剂熏蒸处理。
根据上述构想,其中该植物体是经常温浸水处理。
根据上述构想,其中该植物体是以4~15%的比例添加至该培养溶液中。
根据上述构想,其中该微生物是由该植物体上分离而得。
根据上述构想,其中该微生物是由禽畜粪便堆肥中分离而得。
根据上述构想,其中该微生物是培养于营养洋菜(Nutrient Agar,NA)培养基。
根据上述构想,其中该培养基酸碱值为8。
根据上述构想,其中该微生物是培养于马铃薯葡萄糖琼脂(Potato DextroseAgar,PDA)培养基。
根据上述构想,其中该培养基酸碱值为8。
根据上述构想,其中该微生物接种浓度是为0~108cfu/ml。
根据上述构想,其中该微生物是为一格兰氏阳性细菌。
根据上述构想,其中该微生物是为Bacillus licheniformis(PMBP-m5)的细菌。
根据上述构想,其中该微生物是为Bacillus subtilis(PMBP-m6)的细菌。
根据上述构想,其中该微生物是为Bacillus amyloliquefaciens(PMBP-m7)的细菌。
根据上述构想,其中该发酵培养溶液是为蒸馏水。
根据上述构想,其中该发酵培养溶液是为乳醣牛肉煎汁酵母培养液(Lactose Beef extract Yeast extract,LBY)。
根据上述构想,其中该发酵培养溶液是为葡萄糖蛋白酵母培养液(GlucosePeptone Yeast extract,GPY)。
根据上述构想,其中该发酵培养温度是为20~50℃。
根据上述构想,其中该发酵培养是为振荡培养。
根据上述构想,其中该发酵培养是为静置培养。
根据上述构想,其中该发酵培养时间是为0~10天。
根据上述构想,其中蒸煮该发酵溶液进一步包含添加0~4%(w/v)的生石灰,在120~150℃的温度下,蒸煮25~40分钟。
根据上述构想,其中该发酵溶液是以18筛孔网筛过滤。
根据上述构想,其中该发酵溶液是以200筛孔网筛过滤。
根据上述构想,其中该发酵溶液是以270筛孔网筛过滤。
(4)附图说明
图1示出高温高压、高温蒸气、高温水煮及常温浸泡等方式处理稻草杆,振荡培养一星期后,对于稻草杆分解百分率的影响。
图2示出不同菌群分解梗稻稻草杆的效果比较。
图3示出不同接种PMBPIII菌株浓度对稻草杆生产草浆纤维的回收率的影响。
图4示出稻草杆经过不同酸酵时间后,由稻草浆中回收不同大小纤维量的比较。
图5示出比较稻草杆经微生物酸酵与化学处理后,回收不同大小草浆纤维的百分率。
图6示出利用稻草杆生物制浆的流程图。
(5)具体实施方式
本发明的非木材纤维植物(废弃稻草)生物制浆方法,将可由以下的实施例说明而得到充分了解,使得熟习本技术的人士可以据以完成的,然而本发明并不限于下述实施例。
(一)不同处理方式分解稻草杆的效果
本发明的一较佳实施例中,其中稻草杆亦可有不同的处理方式,如利用高温高压灭菌(121℃,15lb/in2,15分钟)、高温蒸气(100℃,30分钟)、熏蒸剂熏蒸(Propylene oxide熏蒸一日)及常温浸水(25~30℃,30分钟)等方式处理,其具有不同分解稻草杆的效果,进而影响纸浆的收成。其详细的实施步骤说明如下:利用高温高压(121℃,15lb/in2,15分钟)、高温蒸气(100℃,30分钟)、熏蒸剂熏蒸(Propylene oxide熏蒸一日)及常温浸水(25~30℃,30分钟)等方式处理过的稻草杆,取各种处理的稻草杆5%(w/v)加入含有100毫升无菌水的三角烧瓶中,随后移置于转速200rpm,温度50℃的振荡培养箱中,进行振荡与不振荡培养一星期后,观察稻草杆外形的变化,调查各种处理的稻草杆的分解百分率。每处理有二重复。
其结果,请参阅图1,调查静置与振荡一星期的各种处理的稻草杆分解状况,计算稻草杆分解百分率[(发酵的稻草杆全干重-完整未改变型态的稻草杆干重)/发酵时的稻草杆全干重×100]。结果证明振荡处理有助于提高稻草杆的分解作用。台中籼稻稻草杆经过振荡处理,其分解百分率显著高于稉稻稻草杆的分解率。比较各种处理的稻草杆分解效果,稻草杆表面的微生物经过熏蒸剂-环氧化炳烯(Propylene oxide)消毒后,随即静置与振荡,它的分解率比较均相当的低。至于高温高压、高温蒸气及常温浸水均有助于提升稻草杆的分解效应。比较常温浸水与熏蒸剂消毒处理的效果,证明微生物有助于稻草杆的分解。振荡培养即证明有氧发酵可使微生物加速分解稻草杆显示稻草杆。
(二)具有分解稻草杆能力的细菌菌群筛选
本发明的一较佳实施例中,其中菌种的来源由下述的方法得。取稻草杆与禽畜的粪便各10公克,分别加入90毫升无菌水琼脂溶液(0.1%,w/v)中,经是列10倍稀释后,取稀释103倍与104倍的稀释液各0.1毫升,均匀涂抹于营养洋菜(Nutrient Agar,NA)(购自Difco)、马铃薯葡萄糖琼脂(PotatoDextrose Agar,PDA)(购自Difco)及酸碱值8等培养基平板后,分别移置在30及50℃的定温箱中。经过24与48小时,分离培养基平板上出现的菌落,经过纯化后,即可得到菌种。由禽畜粪便及稻草杆分离出具有分解稻草杆潜力的微生物共计有200余菌株,采用格兰氏染色法进行初步菌种检定,发现大部分的菌株归属于革兰氏阳性菌。进一步进行具有分解稻草杆能力的细菌菌群的筛选,取分离的PMBP-m1、PMBP-m2、PMBP-m3、PMBP-m4、PMBP-m5、PMBP-m6、PMBP-m7、PMBP-O1、PMBP-O2、PMBP-O3、PMBP-O4、PMBP-e1、PMBP-e2、PMBP-e3、PMBP-e4、PMBP-H1、PMBP-H2、PMBP-H3及PMBP-H4等19支菌株(表一),组合成PMBP-I、II、III、IV、V、VI、O、E及H等9组细菌群,分别于NA培养基平板上培养一天后,制成细菌悬浮液(108cfu/ml)。取各细菌悬浮液1毫升接种于高温高压灭菌过的100毫升稉稻稻草杆(5%,w/v)水溶液中,随后移入转速200rpm,温度50℃的振荡培养箱中,振荡培养一星期后,调查各菌株分解稻草杆的百分率。每菌株进行二次重复试验。
其结果,请参阅图2,不同组合的细菌群经一星期的振荡培养后,将各处理过的梗稻稻草杆归类分级、烘干及称重后,计算各处理的稻草杆分解百分率[(发酵的稻草杆全干重-完整未改变型态的稻草杆干重)/发酵时的稻草杆全干重×100],结果显示PMBPIII菌群具有较优良的分解能力,分解稻草约10.38%。PMBPIII菌群是由Bacillus licheniformis(PMBP-m5)、B.subtilis(PMBP-m6)及B.amyloloquefaciens(PMBP-m7)]等三菌株组合而成。
表一、组合菌群所使用的细菌菌株及其特性
PMBP-O4 | ++ | + | + |
PMBP-e1 | ++ | + | + |
PMBP-e2 | ++ | + | + |
PMBP-e3 | ++ | + | + |
PMBP-e4 | ++ | + | + |
PMBP-H1 | ++ | + | + |
PMBP-H2 | ++ | + | + |
PMBP-H3 | ++ | + | + |
PMBP-H4 | ++ | + | + |
(三)利用不同的细菌接种浓度进行生物制浆
本发明的一较佳实施例是提供一种非木材纤维植物生物制浆方法,以废弃的稻草杆为材料,不同的微生物接种浓度来比较其对稻草浆的影响,其详细的实施步骤说明如下:
(1)培养液的制备
制备一LBY培养液,其成分是包含0.25%乳醣(Lactose)、0.2%牛肉煎汁(Beef extract)及0.05%酵母抽出物(Yeast extract)。
(2)供试废弃稻草的准备
收集收割水稻后的废弃稻草,其中水稻品种为台中籼稻10号,晒干后,以利刀裁切成2-3cm长的小段稻草杆,装于塑胶袋中备用。
(3)振荡发酵培养
取PMBPIII菌株群[含Bacillus licheniformis(PMBP-m5)、B.subtilis(PMBP-m6)及B.amyloloquefaciens(PMBP-m7)]菌株,将LBY培养液500ml各分装于1000ml凹底三角烧瓶内,并接种PMBPIII菌株群于培养液中,使微生物培养液成为1.5×104(cfu/ml)(LBY-4处理)、1.5×106(cfu/ml)(LBY-6处理)及1.5×108(cfu/ml)(LBY-8处理)等不同浓度,并以不接种为对照(LBY-1处理)。添加5%(w/v)2-3公分长的籼稻稻草杆于微生物培养液,将各烧瓶放置于温度50℃,200rpm转速下,进行振荡培养7天,每种微生物浓度处理组各有四重复,以制备一制浆溶液。
(4)蒸煮该制浆溶液
将各不同培养时间的稻草酸酵液添加1%(w/v)生石灰(CaO)后,随即加温至140℃,蒸煮30分钟。
(5)散浆
将制浆溶液进行散浆15分钟。
(6)筛分该制浆溶液
各稻草酸酵液经散浆15分钟后,分别以18、200及270筛孔的网筛筛分后,回收各层网筛的稻草浆以自该制浆溶液中分离出纸浆,并计算回收率。此外,并检测200筛孔网筛回收的稻草浆制成的手抄纸的物性。
其结果,请参阅图3,经PMBIII菌株群的不同接种浓度的酸酵培养后,分筛与收集各层草浆。各接种浓度的草浆(LBY-8、LBY-6、LBY-4及LBY-1等4处理)回收状况,回收率随接种浓度增加而稍有减少的趋势,PMBIII分解稻草,并未随高菌量而有显著效果。请参阅表一,各处理的手抄纸中,以微生物浓度1.5×106(cfu/ml)(即LBY-6)处理所获得者,其透气度(930.2sec/100ml)与综合强度(17.56)较佳,其余不同浓度处理间差别不大,但在综合强度上,则比未添加PMBIII菌的对照组(LBY-1=16.26)强度较高(表二)。
表二:籼稻稻草杆经不同浓度微生物酸酵后,各处理之手抄纸的物性比较。
Kpa m2/g | ||||
内聚力kg-cm | 2.11 | 2.34 | 2.31 | 2.15 |
透气度sec/100ml | 550.8 | 556.5 | 930.2 | 524.0 |
表面强度A | 12 | 13 | 13 | 13 |
挺度g-cm | 1.52 | 1.36 | 1.36 | 1.42 |
不透明度% | 97.3 | 95.6 | 97.0 | 96.5 |
白度% | 22.3 | 22.2 | 21.7 | 23.1 |
灰分% | 11.6 | 11.6 | 11.3 | 11.3 |
*综合强度 | 16.26 | 17.41 | 17.56 | 17.39 |
注:LBY-1、4、6、8分别代表初期接种菌量浓度为0、104、106及108cfu/ml
*综合强度=断裂长+撕裂指数+破裂指数+(内聚力×2)
(四)发酵时间对稻草浆纤维生产的影响
本发明的一较佳实施例中,其中发酵培养时间的长短可有不同的变化,例如将LBY(含0.25%乳醣、0.2%牛肉煎汁及0.05%酵母抽出物)培养液500ml各分装于1000ml凹底三角烧瓶内,并接种PMBPIII菌株群于培养液中,使浓度成为1.5×106(cfu/ml)的LBYIII培养液,添加5%(w/v)2-3公分长的籼稻稻草杆于微生物培养液,将各烧瓶放置于温度50℃,200rpm转速下,进行振荡培养0、1、4、7及10天;每种时间处理组各有四重复。接着将各不同培养时间的稻草酸酵液添加1%(w/v)生石灰(CaO)后,分别加温至140℃,蒸煮30分钟;的后,各稻草酸酵液经散浆15分钟,分别以18、200及270筛孔的网筛筛分后,回收各层网筛的稻草浆,并计算回收率。此外,并检测200筛孔网筛回收的稻草浆制成的手抄纸的物性。
其结果请参阅图4,经不同时间酸酵的稻草浆,总回收率随时间增加而逐渐下降,其中200筛孔网筛上回收的草浆回收率,以酸酵培养1天者较多。请参阅表三,各处理时间的手抄纸的物性状况比较中,透气度以酸酵培养4天(LBY-d4)最佳为368.8(sec/100ml),10天的(LBY-d10)最差,仅57.0(sec/100ml);而综合强度也是酸酵4天(LBY-d4)最佳(15.82)。
表三:籼稻稻草杆接种微生物后,不同酸酵时间对其手抄纸物性的影响。
*综合强度=断裂长+撕裂指数+破裂指数+(内聚力×2)
(五)微生物制浆法与化学制浆法的比较
本发明的另一较佳实施例是以废弃的稻草杆为材料,利用微生物制浆法与化学法制浆的来比较两种方法的差异。其方法为将LBY培养液500ml各分装于1000ml凹底三角烧瓶内,并接种PMBPIII菌株1.5×106(cfu/ml)于培养液中,并添加5%(w/v)2-3公分长的籼稻稻草杆。将各烧瓶放置于温度50℃,200rpm转速下,进行振荡培养4天;接着将稻草酸酵液分别添加与不添加1%(w/v)生石灰(CaO)后,加温至140℃蒸煮30分钟;此外,另以稻草杆直接添加1%(w/v)生石灰水及氢氧化钠(NaOH)溶液两处理作为对照。各处理有四重复,各种蒸煮处理组的稻草经散浆15分钟,及以18、200及270筛孔的网筛筛分后,回收各层网筛的稻草浆,并计算回收率。此外,检测由200筛孔网筛回收的草浆所制成的手抄纸物性。
其结果,请参考图5,稻草杆经微生物酸酵及各种化学方法的处理,散浆与筛分后,各处理的稻草浆总回收率以生石灰水(CaO)最高,达77.79%;单独微生物酸酵者(LBYIII)次之,回收率约47.31%;氢氧化钠(NaOH)蒸煮者最少,回收率约41.45%;至于微生物酸酵后,再用生石灰水蒸煮(LBYIII-CaO)的方法,回收率则为43.07%。比较200筛孔网筛上回收的草浆,则以氢氧化钠及生石灰水蒸煮者最高,分别达41.21%及41.0%,微生物与生石灰处理法次的,约27.53%,单用微生物酸酵者最少,仅占11.45%。请参阅表四,经过200筛孔网筛回收的草浆制成的手抄纸,经物性测定后,显示各处理的草浆的游离度以生石灰水处理者最高(CaO:325ml),微生物与生石灰水处理法次的(LBYIII-CaO:267ml)。透气度最高者为微生物处理者(LBYIII-CaO:302.3sec/100ml),生石灰水者最差(CaO:110.3sec/100ml),至于微生物与生石灰法(LBYIII-CaO:157.3sec/100ml)则介于两者之间。表面强度以氢氧化钠及微生物与生石灰法两者最佳(NaOH:10A;LBYIII-CaO:9A)。综合强度是以氢氧化钠者最强(NaOH:21.8),微生物与生石灰法次的(LBYIII-CaO:15.13),单独微生物酸酵或生石灰水蒸煮者的综合强度则表现最差,分别为6.9及10.07(表四)。
表四:利用微生物酸酵及化学处理法生产草浆手抄纸之物性。
*综合强度=断裂长+撕裂指数+破裂指数+(内聚力×2)
本发明可用图6的稻草生物制浆流程图来说明利用废弃稻草杆生物制浆的整个过程,是将稻草裁切成2-3公分长的稻草杆,添加于接种106(cfu/ml)PMBPIII菌株的LBY培养液的三角烧瓶中,在50℃,200rpm振荡发酵培养四天后,接着于140℃高温以生石灰水蒸煮30分钟,经散浆筛分后再进行造纸的程序。
Claims (13)
1.一种纸浆的制造方法,其特征在于,包含以下步骤:
(a)提供一培养溶液;
(b)加入一非木纤维植物体;
(c)加入一微生物的悬浮液;
(d)进行发酵培养以制备一制浆溶液;
(e)蒸煮该制浆溶液;
(f)散浆;以及
(g)筛分该制浆溶液,以自该制浆溶液中分离出纸浆。
2.如权利要求1所述的方法,其特征在于,该非木纤维植物体是为一稻草杆。
3.如权利要求1所述的方法,其特征在于,该非木纤维植物体是经高温高压处理、高温蒸气处理、高温水煮处理、熏蒸剂熏蒸处理、常温浸水处理或是以4~15%的比例添加至该培养溶液中。
4.如权利要求1所述的方法,其特征在于:
该微生物是由该非木纤维植物体上或是由禽畜粪便堆肥中分离而得;而是培养于营养洋菜培养基,而该培养基酸碱值为8;或
该微生物是培养于马铃薯葡萄糖琼脂培养基,而该培养基酸碱值为8。
5.如权利要求1所述的方法,其特征在于,该微生物接种浓度是为0~108cfu/ml。
6.如权利要求1所述的方法,其特征在于,该微生物是为一格兰氏阳性细菌,而该微生物是为Bacillus licheniformis(PMBP-m5)的细菌、Bacillussubtilis(PMBP-m6)的细菌或是Bacillus amyloliquefaciens(PMBP-m7)的细菌。
7.如权利要求1所述的方法,其特征在于,该发酵培养溶液是为蒸馏水、是为乳醣牛肉煎汁酵母培养液或是葡萄醣蛋白酵母培养液。
8.如权利要求1所述的方法,其特征在于:
该发酵培养温度是为20~50℃;
该发酵培养是为振荡培养或是为静置培养;及/或
该发酵培养时间是为0~10天。
9.如权利要求1所述的方法,其特征在于,蒸煮该发酵溶液进一步包含添加0~4%(w/v)的生石灰,在120~150℃的温度下,蒸煮25~40分钟。
10.如权利要求1所述的方法,其特征在于,该发酵溶液是以18筛孔网筛过滤、200筛孔网筛过滤或是270筛孔网筛过滤。
11.一种生物制浆方法,其特征在于,包含以下步骤:
(a)提供一培养溶液;
(b)加入一植物体;
(c)加入一微生物的悬浮液;
(d)进行发酵培养以制备一制浆溶液;
(e)蒸煮该制浆溶液;
(f)散浆;以及
(g)筛分该制浆溶液,以自该制浆溶液中分离出纸浆。
12.如权利要求11所述的方法,其特征在于,该植物体的纤维是为一非木材纤维植物。
13.如权利要求11所述的方法,其特征在于,该微生物是由该植物体上分离而得。
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