CN1396454A - 利用固相免疫吸附法制备交联抗体的方法 - Google Patents
利用固相免疫吸附法制备交联抗体的方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN1396454A CN1396454A CN 01120463 CN01120463A CN1396454A CN 1396454 A CN1396454 A CN 1396454A CN 01120463 CN01120463 CN 01120463 CN 01120463 A CN01120463 A CN 01120463A CN 1396454 A CN1396454 A CN 1396454A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- antibody
- solid phase
- cross
- linking
- immunoadsorbent
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Images
Abstract
本发明所属技术领域为医疗诊断中应用最广的标记免疫分析和生物芯片,特别涉及利用固相免疫吸附法制备交联抗体的方法。首先用抗原分子偶联活化的固相载体,制备固相免疫吸附剂;将固相免疫吸附剂与纯化的抗体充分混合,使抗体免疫结合于固相免疫吸附剂上;以活化功能试剂分别活化处理大分子探针和与固相免疫吸附剂免疫结合的抗体,然后混合反应,形成交联物;将标记好的抗体由固相免疫吸附剂上解离、脱盐,获得大分子探针与抗体共价结合的标记物--交联抗体。固相免疫吸附剂可循环多次用于固相交联制备标记物交联抗体。本发明制备出的交联抗体,大分子标记物与抗体的共价结合对抗体的抗原结合能力影响较小,交联抗体具有较为完整的抗原结合部位。
Description
技术领域
本发明所属技术领域为医疗诊断中应用最广的标记免疫分析和生物芯片,特别涉及利用固相免疫吸附法制备交联抗体的方法。
背景技术
在标记免疫分析的检测试剂盒和生物芯片的制备中,需选择适当的探针来制备标记物,标记物是建立标记免疫分析方法的关键试剂,它的质量直接影响检测分析的灵敏度、稳定性和准确性。
抗体的分子标记即在不改变抗体的免疫特性的前提下,将报告分子与抗体相连,获得具有示踪效果的抗体或具有治疗作用的抗体。抗体标记是免疫化学最常用技术之一,可达到鉴定抗原、对抗原进行定位等目的。直接标记时标记物直接标在纯化的特异性抗体上。
标记的方法与选用的探针有关。常用的探针包括同位素放射性核素、荧光染料及酶分子等。通过这些报告分子的标记,可以有效地实现放射免疫分析、荧光免疫分析以及酶联免疫分析等。
目前,大分子探针与抗体的交联技术,即以荧光蛋白染料及酶等的标记技术。由于探针与抗体都是蛋白质,因此标记时,可借鉴蛋白质共价交联的一般流程。蛋白质之间的交联反应,主要受到蛋白质分子内所具有的适合于偶联的化学功能团类型和数量的限制。大部分交联反应是通过蛋白质分子中的α-和ε-氨基、亚氨基和巯基的亲核性质实现的,可以采用适当的活化功能试剂。可选的活化功能试剂包括同双功能试剂与异双功能试剂。同双功能试剂包括戊二醛等,异双功能试剂包括N-琥珀酰亚胺基3-(2-吡啶基二硫)丙酸酯(简记为:SPDP)、琥珀酰亚胺基-4-(N-甲基马来酰亚胺)环己烷-1-碳酸酯(简记为:SMCC)、琥珀酰亚胺基-γ-(对-苯基马来酰亚胺)丁酸盐(简记为:SMPB)等。当标记蛋白与抗体蛋白用同型双功能试剂进行交联时,可以采用一步反应或二步反应,但常常形成不均一的混合物,有多种聚合物同时存在。人工合成的异双功能试剂的研制及应用,克服了同型双功能试剂的这一缺点,使共价直接标记方式至今仍被广泛应用。如目前应用较多的SPDP,使用SPDP可将标记物蛋白与抗体蛋白通过两者的氨基进行交联,而不会形成标记物蛋白或抗体蛋白自身的聚合物,具有较高的结合效率。
上述标记方法采用液相交联反应实现,通过抗体分子的游离氨基引入标记物时,共价结合位点较为随机,有时可能位于或邻近抗体的F(ab)段。特别是以荧光蛋白染料或酶等标记时,由于标记物分子较大,这种结合可能会造成交联抗体的抗原结合位点的部分屏蔽或空间位阻,阻碍抗体与抗原的结合,影响标记抗体的抗原结合活性。在蛋白质交联反应中,偶尔也会有某种抗体在偶联过程中部分或全部失活的现象,失活有时是由于抗原结合位点的封闭或构象改变引起的。需通过选择合适的位点特异性偶联方法来解决。
发明内容
本发明的目的是针对在液相交联反应制备交联抗体中,大分子探针因共价结合位点的随机性(结合位点可能位于或邻近抗体活性部位)而导致交联抗体的抗原结合能力受损;提供一种利用固相免疫吸附法制备交联抗体的方法(大分子探针与抗体的共价结合物)。以固相免疫吸附剂为基础,在抗体的抗原结合部位被保护,且保存抗体的抗原结合能力的前提下,制备大分子探针与抗体的交联物。交联条件温和,制备工艺简单,易于掌握控制,制备的交联抗体完整,且交联后抗体的抗原结合位点受大分子探针空间位阻的影响较小。
抗体具有两个重要的结构域,一个是抗原抗体结合部位,另一个是固定区,抗体活性的保持有赖于抗体中抗原决定簇构型的完整保存。因此抗体与其它蛋白的化学交联时应充分考虑抗体蛋白构型,对活化区域进行优化,最佳方案是有效控制交联反应,并使活化基团避开抗原抗体结合部位。
本发明针对液相交联的随机性对大分子探针与抗体交联所带来的缺陷,产生了以抗原与抗体先行免疫结合再进行标记分子与抗体结合制备标记物有序交联的新思路。
本发明在标记物(如R-藻红蛋白)——交联抗体的制备中,提出与传统液相中制备交联抗体的不同方法和技术,是在固相免疫吸附剂上制备大分子探针与抗体的交联抗体。首先将抗原固定化于固相载体,然后将抗体免疫吸附于固相抗原上,再进行固相交联将大分子探针与抗体交联,最后将交联好的抗体从固相抗原上解离下来,获得探针与抗体结合的标记物,固相化抗原可循环使用多次。在交联过程中由于抗体的抗原结合部位已与抗原分子免疫结合,大分子探针与抗体分子共价结合时,共价结合位点远离抗体的抗原结合部位,对抗体结合抗原能力影响小,获得的交联抗体标记物的活性损失较小。
本发明首先用抗原分子偶联活化的固相载体,制备固相免疫吸附剂;将固相免疫吸附剂与纯化的抗体充分混合,使抗体免疫结合于固相免疫吸附剂上,抗体与固定化抗原免疫结合形成较为稳定的免疫复合物;以活化功能试剂分别活化处理大分子探针和与固相免疫吸附剂免疫结合的抗体,然后混合反应,形成交联物;将标记好的抗体由固相免疫吸附剂上解离、脱盐,获得大分子探针与抗体共价结合的标记物——交联抗体。
固相交联法中所应用的固相免疫吸附剂经回收,可与新制备的固相免疫吸附剂一起,重新用于交联抗体的固相交联制备。
本发明利用固相免疫吸附法制备交联抗体的具体方法:(1)制备固相免疫吸附剂
首先选取固相载体,通过载体表面基团(如羟基等)的活化,将抗原分子固定化于固相载体表面,制成稳定的固相免疫吸附剂,剩余的活性位点以小分子封闭试剂封闭,经充分清洗,获得固相免疫吸附剂。(2)免疫吸附
在pH为有利于免疫复合物结合的中性或偏碱性及低离子强度的环境下,将步骤(1)所制备的固相免疫吸附剂与待交联的抗体蛋白混合,抗体加入量以过量饱和抗原为准,充分温育,将反应混合物离心后,去除过量的未结合抗体,取沉淀充分清洗,获得与抗体免疫结合的固相免疫吸附剂。其固相载体吸附的抗体分子以Fab段与固定化抗原免疫结合,其Fc段远离固相载体表面。(3)固相交联
将步骤(2)所获得的与抗体免疫结合的固相免疫吸附剂用于固相定联;采用液相法交联流程,以活化功能试剂分别活化处理大分子探针与步骤(2)所获得的与抗体免疫结合的固相免疫吸附剂,进而混合反应,其中,抗体与大分子探针的摩尔比为1∶1~1∶5,加入终止液中止交联反应;离心后收集沉淀充分洗涤;得到与固相免疫吸附剂结合的交联抗体。(4)解离标记物
采用离液序列高的解离液进行解离,解离是在解离缓冲液中进行,打断抗原、抗体的免疫结合,使交联抗体从固相免疫吸附剂上解离下来;将解离下来的交联抗体迅速置换到中性缓冲液中,去除解离液成分,获得交联抗体。
本发明将标记物—交联抗体从固相免疫吸附剂上解离下来,参考亲和分离的解离液配方:亲和分离时,常用解离缓冲液,解离缓冲液为pH为2~3的酸性解离液、pH为10~11的碱性解离液或浓盐解离液。
所述的酸性解离液为甘氨酸-HCl解离液,碱性解离液为甘氨酸-NaOH解离液,浓盐解离液为KCSN解离液;其中,所述的甘氨酸-HCl的浓度为0.1~0.5mol/L蒸馏水;所述的甘氨酸-NaOH的浓度为0.1~0.5mol/L蒸馏水;所述的KCSN的浓度为0.5~3mol/L蒸馏水。
大多数抗原-抗体复合物的解离作用在pH 2~3(甘氨酸-HCl)或者pH10~11(甘氨酸-NaOH)的解离液中进行;除此以外,加入某些促溶试剂(如KCSN等)也会影响结合分子的洗脱。选择适当的解离液可以有效的打断抗原、抗体的免疫结合,使交联抗体从固相免疫吸附剂上解离下来。将解离下来的交联抗体迅速置换到中性缓冲液中,去除解离液成分,获得固相交联法制备的目标产物——交联抗体。
另外,还可收获固相免疫吸附剂,经充分洗涤,悬浮于活化缓冲液中,该步骤回收的固相免疫吸附剂可与步骤(1)新制备的固相免疫吸附剂混合,用于待交联抗体的固相交联,可制备抗体与大分子探针的交联物。
所述的固相载体包括琼脂糖凝胶微珠、微载体或聚苯乙烯微珠等。
所述的小分子试剂包括乙醇胺或甘氨酸等。
所述的封闭时的条件是采用摇床室温反应1~8h,或大于0℃小于等于10℃过夜。
所述的温育条件为15~37℃,反应2~4h,或大于0℃小于等于10℃,反应8~16h。
所述的活化功能试剂包括同双功能试剂,如戊二醛或高碘酸钠等;或异双功能试剂,如SPDP、SMCC或SMPB等。
所述的活化处理和混合反应条件为室温振荡反应1~8h,或大于0℃小于等于10℃,反应4~16h。
所述的终止液包括N-乙酰马来酰亚胺或碘乙酸钠等。
所述的中性缓冲液包括pH6~8左右的磷酸盐缓冲液、碳酸盐缓冲液或Tris/HCl缓冲液等生化常用缓冲液。
所述的大分子探针是藻胆蛋白。所述的藻胆蛋白是藻红蓝蛋白、异藻蓝蛋白、藻蓝蛋白、B-藻红蛋白或R-藻红蛋白。
本发明提出了一种新的制备交联抗体的新方法,用于制备大分子探针与抗体的共价结合物——交联抗体,可较大程度地保持抗体的抗原结合能力。
这种固相合成交联抗体的方法原则上与液相合成法相似,由于配基(抗原)与固相载体的化学结合,固相抗原对pH、离子强度等条件具有一定程度的耐受力,固相抗原既有效地保护抗体的抗原决定簇,又提供了较为简便的分离标记物的手段。
例如:通过固相交联法制备的R-藻红蛋白荧光标记抗体HBsAb(见实施例1),用于双抗体夹心法检测血清可溶性抗原HBsAg,探针分子的标记率均一性较好,每分子抗体共价结合1.18个R-藻红蛋白分子;抗体效价高,用于500份血清样品的检测(80份HBsAg阴性血清、44份HBsAg弱阳性血清、376份HBsAg阳性血清),具有较高的检出率(检测结果的正确率),阴性检出率100%,无一例假阳性,阳性检出率99.5%,对弱阳性的检出率为95.5%,总检出率达99.6%;用于临检中心所购的HBsAg血清盘的检测,检出率达100%。我们在实验研究中以液相交联也制备了R-藻红蛋白荧光标记抗体HBsAb,经测定其标记率也在1.2左右,用于上述500份血清样品的免疫检测,阴性检出率100%,无一例假阳性,总检出率96.6%,对弱阳性血清的检测效果较不理想,弱阳性血清的检出率仅为61.4%。
下面结合附图及实施例对本发明的技术方案作进一步的描述。
附图说明
图1.利用固相免疫吸附法制备交联抗体的示意图。
如图所示,通过这种固相合成的方法获得的交联抗体,具有完整的抗原结合部位,引入的大分子探针较少影响其结合抗原的能力。
先将抗原作为配基以共价键方式连接在固相载体上,制成固相免疫吸附剂(固相抗原);通过抗体的抗原决定簇,特异性地与抗原发生免疫反应,形成抗原—抗体免疫复合物,在一定条件下免疫复合物可有效解离;引入大分子探针与抗体共价结合;选择一定的洗涤条件,解离抗体与大分子探针共价结合的标记物——交联抗体,使交联抗体从固定化配基(固相免疫吸附剂)上解离下来。
固相免疫复合物中的抗体的抗原决定簇与固相抗原结合后,在一定程度上抗体的抗原结合部位获得了保护。因此活化处理固相免疫复合物时,活化基团引入抗体的抗原决定簇的机率可大幅度降低,当大分子探针(如藻胆蛋白)通过活化基团与抗体交联时,交联抗体仍保留完整的抗原结合部位。探针藻胆蛋白通过活化基团与抗体形成交联物。
具体实施方式
实施例1:
以荧光探针R-藻红蛋白(大分子蛋白质,分子量240KD)为例,制备R-藻红蛋白与乙肝病毒表面抗原(HBsAg)单克隆抗体的交联抗体。1.制备固相免疫吸附剂
将乙肝病毒表面抗原(HBsAg)固定化于固相载体,制成稳定的免疫吸附剂一固相抗原。采用溴化氰活化的琼脂糖凝胶4B为固相载体,它是亲和纯化单克隆抗体时常用的固相填料,用于制备固相抗原时,已建立了规范的操作流程。采用的制备方法如下:
①称量0.3g的冻干粉,溶涨于10-3N盐酸30min,并以60mL的
盐酸溶液清洗,再迅速以0.1mol/L,pH8.3 NaHCO3溶液洗涤一次
获得1mL活化凝胶;
②立即加入待偶联抗原HBsAg(5mg),HBsAg预先以0.1mol/L,pH
8.3 NaHCO3溶液平衡,室温下缓慢搅拌6h;
③离心,吸取上清,在凝胶中加入2mL 1.0mol/L乙醇胺溶液,室温
下振荡反应2h,使多余的活性基团被封闭;
④以50 mM Tris,1M NaCl,pH 8.0及50 mM Glycine,1 M NaCl,pH
3.5交替清洗凝胶8遍,以去除非特异结合物质;
⑤以50 mM,pH 7.5,PBS清洗凝胶,离心,收获固相免疫吸附剂,
即偶联有HBsAg抗原的凝胶1mL。2.免疫吸附
为使抗体与固相免疫吸附剂形成较为稳定的免疫复合物,选择有利于免疫复合物结合的酸碱度pH7.5、低离子强度(50mM PBS)的缓冲液环境,以过量的抗体完全中和抗原。操作步骤如下:
①将1.5mL抗体(3.2mg/mL,50mM,pH7.5,PBS)与1mL固相
免疫吸附剂混合,缓慢搅动,4℃过夜;
②离心,吸取上清(保留),测定280nm的光吸收值A;
③当A不为0时,加入适量PBS(50mM,pH7.5)清洗凝胶,重
复步骤2;
④当A为0时,合并所有上清,浓缩,测得游离抗体22mg,免疫
吸附的抗体的量共2.6mg,需加入的R-藻红蛋白的巯基化衍生物
6.9mg。3.固相交联
固相交联法基本按液相交联法进行。异双功能试剂SMCC已广泛用于蛋白质的液相交联。它的一端有胺重新活化的NHS酯,另一端为马来酰亚胺端,极稳定、水解慢,允许一种蛋白通过氨基对其NHS酯端进行修饰,形成稳定的酰胺键,产生末端马来酰亚胺基,可与含巯基的蛋白特异交联。因此含氨基的载体(与抗体免疫结合的固相免疫吸附剂)也能用SMCC修饰产生末端马来酰亚氨基,供给含巯基的配基(巯基活化的大分子探针)偶联用。
具体步骤如下:
①配制活化缓冲液(促进NHS偶联的缓冲液pH7.2,0.1mol/L PBS,
含0.15mol/L NaCl),4℃预冷,以冰冷的活化缓冲液洗涤所制
得的凝胶,并调整凝胶浓度60%(v/v),振荡混合;
②称量SMCC 5 mg,溶于20μL无水DMSO,边振荡边滴加入凝
胶悬浮液中;
③在4℃继续混合反应4h;
④迅速以冷的活化缓冲液冲洗凝胶,再以1mol/L NaCl冲洗后,以
除去未偶联的交联试剂和反应的副产物,并将凝胶等体积重悬于活
化缓冲液中;
⑤立即加入2-IT巯基衍生化的R-藻红蛋白(蛋白浓度5.5mg/ml),
4℃混合振荡反应4h;
⑥将凝胶灌装入柱,以活化缓冲液流洗,检测至柱后无蛋白流出,
达到平衡,此时取少许凝胶于显微镜下观察,可见明亮的荧光微珠。4.解离标记物
正确的选择洗脱条件关系到标记物的成功解离,适宜的洗脱缓冲液不仅要以最小的体积解离结合的物质,而且解离的标记抗体仍应能保持与抗原再度结合的能力。参考亲和层析分离中解离抗体的成功经验,筛选了适宜的解离液配方:筛选的对象包括0.5mol/L~3mol/L KSCN、pH2.8,0.1~0.2mol/L甘氨酸-HCl缓冲液、以及pH 10.6,0.1mol/L甘氨酸-NaOH缓冲液等。从中获得0.2mol/L甘氨酸-HCl缓冲液,pH2.8,含1mol/L NaCl解离效果最好。
将凝胶与上述解离液按1∶1体积比混合,轻轻振荡,离心,收集上清,迅速将解离的交联抗体过脱盐柱置换缓冲液至50mM,pH7.5,PBS。获得R-藻红蛋白荧光标记HBsAg单克隆抗体,可用于血清HBsAg的免疫检测。
与此同时,解离后的凝胶经充分洗涤,悬浮于活化缓冲液中。可与新制备的有HBsAg偶联凝胶混合,重新用于抗体的固相交联。
实施例2:
以R-藻红蛋白与前列腺特异性抗原单克隆抗体的交联抗体的固相制备为例,对该发明的操作过程再次阐述如下:1.制备固相免疫吸附剂
采用溴化氰活化的琼脂糖凝胶4B为固相载体,将前列腺特异性抗原(PSA)固定化于固相载体,制成稳定的固相免疫吸附剂。制备方法如下:
①称量0.3g的冻干粉,溶涨于10-3N盐酸30min,并以60mL的
盐酸溶液清洗,再迅速以0.1mol/L,pH 8.3 NaHCO3溶液洗涤一
次,获得1mL活化凝胶;
②立即加入待偶联抗原PSA(2mg),抗原预先以0.1mol/L,pH8.3
NaHCO3溶液平衡,室温下缓慢搅拌8h; ③离心,吸取上清,在凝胶中加入2mL 1.0mol/L乙醇胺溶液,室温
下振荡反应8h,使多余的活性基团被封闭;④以50mM Tris,1M NaCl,pH 8.0及50 mM Glycine,1M NaCl,pH
3.5交替清洗凝胶8遍,以去除非特异结合物质;⑤以50mM,pH7.5,PBS清洗凝胶,离心,收获固相免疫吸附剂,
即偶联有PSA的凝胶。2.免疫吸附
以过量的PSA单克隆抗体完全中和上一步骤所制备的固相免疫吸附剂。操作步骤如下:
①将1.5mL PSA抗体(3.2mg/mL,50mM,pH7.5,PBS)与1mL
PSA固相免疫吸附剂混合,缓慢搅动,37℃,温育2h;
②离心,吸取上清(保留),彻底清洗凝胶,至上清280nm无吸
收。3.固相交联
①配制活化缓冲液(pH7.2,0.1mol/L PBS,含0.15mol/L NaCl),
4℃预冷,以冰冷的活化缓冲液洗涤所制得的凝胶,并调整凝胶
浓度60%(v/v),振荡混合;
②称量SMCC 5mg,溶于20μL无水DMSO,边振荡边滴加入凝
胶悬浮液中;
③在4℃继续混合反应4h;
④迅速以冷的活化缓冲液冲洗凝胶,再以1mol/LNaCl冲洗后,以
除去未偶联的交联试剂和反应的副产物,并将凝胶等体积重悬于活
化缓冲液中;
⑤立即加入2-IT巯基衍生化的R-藻红蛋白(蛋白浓度2.5mg/mL )
1mL,10℃混合振荡反应16h;
⑥以活化缓冲液彻底清洗,检测上清无蛋白。4.解离标记物
选取解离液为0.1mol/L甘氨酸-HCl缓冲液,pH2.8,含1mol/LNaCl。
将第三步所获得的凝胶与上述解离液按1∶1体积比混合,轻轻振荡,离心后,收集上清,并迅速将解离的交联抗体过脱盐柱置换缓冲液至50mM,pH7.5,PBS。同时充分洗涤解离后的凝胶,并悬浮于活化缓冲液中。
所制备的R-藻红蛋白与PSA单克隆抗体的交联物,用于检测5ng/mL的PSA纯化抗原,检出结果呈阳性。
实施例3:
以聚苯乙烯微珠(直径60~250μm)为固相载体,固相制备R-藻红蛋白与HBsAg单克隆抗体的交联抗体:1.制备固相免疫吸附剂
①称量0.5g的聚苯乙烯微珠,室温,在新鲜的戊二醛溶液(体积
百分比为25%)中浸泡4h后,迅速以0.1mol/L,pH 8.3 NaHCO3
溶液洗涤一次;
②立即加入待偶联抗原HBsAg(5mg),抗原预先以0.1mol/L,pH
8.3 NaHCO3溶液平衡,1℃下缓慢搅拌10h;
③离心,吸取上清,在微珠中加入2 mL 0.1 mol/L甘氨酸溶液,室温
下振荡反应1h,使多余的活性基团被封闭;
④以50 mM Tris,1 M NaCl,pH 8.0及50 mM Glycine,1 M NaCl,pH
3.5交替清洗凝胶8遍,以去除非特异结合物质;
⑤以50mM,pH7.5,PBS清洗微珠,离心后,收获固相免疫吸附剂,
即偶联有HBsAg的聚苯乙烯微珠。2.免疫吸附
以过量的HBsAg单克隆抗体完全中和上一步骤所制备的固相免疫吸附剂。操作步骤如下:
①将1.5mL PSA抗体(3.2mg/mL,50mM,pH7.5,PBS)与上述
制备的固相免疫吸附剂混合,缓慢搅动,1℃过夜;
②离心,吸取上清(保留),彻底清洗聚苯乙烯微珠,至上清280nm
无吸收。3.固相交联
①配制活化缓冲液(pH7.2,0.1mol/L PBS,含0.15mol/L NaCl),
4℃预冷,以冰冷的活化缓冲液洗涤聚苯乙烯微珠;
②称量SMCC 5mg,溶于20μL无水DMSO,边振荡边滴加入微
珠悬浮液中;
③在4℃继续混合反应4h;
④迅速以冷的活化缓冲液冲洗微珠,再以1mol/LNaCl冲洗后,以
除去未偶联的交联试剂和反应的副产物,并将微珠重悬于活化缓冲
液中;
⑤立即加入2-IT巯基衍生化的R-藻红蛋白(蛋白浓度2.5mg/mL)
1mL,4℃混合振荡反应4h;
⑥以活化缓冲液彻底清洗,检测上清无蛋白。4.解离标记物
选取解离液为0.1mol/L甘氨酸-HCl缓冲液,pH2.8,含1mol/LNaCl。
将第三步所获得的微珠与上述解离液按1∶1体积比混合,轻轻振荡,离心后,收集上清,并迅速将解离的交联抗体过脱盐柱置换缓冲液至50mM,pH 7.5,PBS。同时充分洗涤解离后的微珠,并悬浮于活化缓冲液中。
所制备的R-藻红蛋白与HBsAg单克隆抗体的交联物,用于检测阴、阳性血清,检出结果正确。
实施例4:
以藻红蓝蛋白(PEC,分子量100KD)为荧光探针,与HBsAg单克隆抗体固相交联制备荧光标记抗体。1.制备固相免疫吸附剂
①称量0.3g的冻干粉,溶涨于10-3N盐酸30min,并以60mL的
盐酸溶液清洗,再迅速以0.1mol/L,pH8.3 NaHCO3溶液洗涤一次,
获得1mL活化凝胶;
②立即加入待偶联抗原HBsAg(5mg),HBsAg预先以0.1mol/L,pH
8.3 NaHCO3溶液平衡,室温下缓慢搅拌6h;
③离心,吸取上清,在凝胶中加入2mL 1.0mol/L乙醇胺溶液,室温
下振荡反应2h,使多余的活性基团被封闭;
④以50mM Tris,1 M NaCl,pH 8.0及50 mM Glycine,1 M NaCl,pH
3.5交替清洗凝胶8遍,以去除非特异结合物质;
⑤以50mM,pH7.5,PBS清洗凝胶,离心,收获固相免疫吸附剂,
即偶联有HBsAg抗原的凝胶1mL。2.免疫吸附
①将1mL HBsAg抗体(5mg/mL,50mM,pH7.5,PBS)与1mL
固相免疫吸附剂混合,缓慢搅动,15℃,温育4h;
②离心,吸取上清(保留),测定280nm的光吸收值A;
③当A不为0时,加入适量PBS(50mM,pH 7.5)清洗凝胶,重
复步骤2;
④当A为0时,合并所有上清,浓缩,测得游离抗体1.3mg,免疫
吸附的抗体的量共3.7mg,需加入的PEC的巯基化衍生物4.6
mg。3.固相交联
①配制活化缓冲液(促进NHS偶联的缓冲液pH7.2,0.1mol/L PBS,
含0.15 mol/L NaCl),4℃预冷,以冰冷的活化缓冲液洗涤所制
得的凝胶,并调整凝胶浓度60%(v/v),振荡混合;
②称量SMCC 5 mg,溶于20μL无水DMSO,边振荡边滴加入凝
胶悬浮液中;
③在4℃继续混合反应4h;
④迅速以冷的活化缓冲液冲洗凝胶,再以1mol/L NaCl冲洗后,以
除去未偶联的交联试剂和反应的副产物,并将凝胶等体积重悬于活
化缓冲液中;
⑤立即加入2-IT巯基衍生化的PEC(2.5mg/mL,1.85mL),4℃
混合振荡反应4h;以活化缓冲液彻底洗涤,离心,取沉淀用于解
离。4.解离标记物
将上述沉淀与0.2mol/L甘氨酸-HCl缓冲液,pH2.8,含1mol/LNaCl按1∶1体积比混合,轻轻振荡,离心,收集上清,迅速将解离的交联抗体过脱盐柱置换缓冲液至50 mM,pH 7.5,PBS。获得藻红蓝蛋白标记HBsAg单克隆抗体。
与此同时,解离后的凝胶经充分洗涤,悬浮于活化缓冲液中。可与新制备的有HBsAg偶联凝胶混合,重新用于抗体的固相交联。
所制备的PEC与HBsAg单克隆抗体的交联物,用于检测阴、阳性血清,检出结果正确。
Claims (16)
1.一种利用固相免疫吸附法制备交联抗体的方法,其特征在于:首先用抗原分子偶联活化的固相载体,制备固相免疫吸附剂;将固相免疫吸附剂与纯化的抗体充分混合,使抗体免疫结合于固相免疫吸附剂上,抗体与固定化抗原免疫结合形成较为稳定的免疫复合物;以活化功能试剂分别活化处理大分子探针和与固相免疫吸附剂免疫结合的抗体,然后混合反应,形成交联物;将标记好的抗体由固相免疫吸附剂上解离、脱盐,获得大分子探针与抗体共价结合的交联抗体。
2.如权利要求1所述的方法,其特征在于:所述方法的具体步骤为:(1)制备固相免疫吸附剂
首先选取固相载体,通过载体表面基团的活化,将抗原分子固定化于固相载体表面,制成稳定的固相免疫吸附剂,剩余的活性位点以小分子封闭试剂封闭,经充分清洗,获得固相免疫吸附剂;(2)免疫吸附
在pH为有利于免疫复合物结合的中性或偏碱性及低离子强度的环境下,将步骤(1)所制备的固相免疫吸附剂与待交联的抗体蛋白混合,抗体加入量以过量饱和抗原为准,充分温育,将反应混合物离心后,去除过量的未结合抗体,取沉淀充分清洗,获得与抗体免疫结合的固相免疫吸附剂;(3)固相交联
将步骤(2)所获得的与抗体免疫结合的固相免疫吸附剂用于固相交联;采用液相法交联流程,以活化功能试剂分别活化处理大分子探针与步骤(2)所获得的与抗体免疫结合的固相免疫吸附剂,其中,抗体与大分子探针的摩尔比为1∶1~1∶5,进而混合反应,加入终止液中止交联反应;离心后收集沉淀充分洗涤;得到与固相免疫吸附剂结合的交联抗体;(4)解离标记物
采用离液序列高的解离液进行解离,解离是在解离缓冲液中进行,打断抗原、抗体的免疫结合,使交联抗体从固相免疫吸附剂上解离下来;将解离下来的交联抗体迅速置换到中性缓冲液中,去除解离液成分,获得交联抗体。
3.如权利要求1或2任意一项所述的方法,其特征在于:所述的固相载体是琼脂糖凝胶微珠、微载体或聚苯乙烯微珠。
4.如权利要求2所述的方法,其特征在于:所述的小分子试剂是乙醇胺或甘氨酸。
5.如权利要求2所述的方法,其特征在于:所述的封闭时的条件是采用摇床室温反应1~8h,或大于0℃小于等于10℃过夜。
6.如权利要求2所述的方法,其特征在于:所述的温育条件为15~37℃,反应2~4h;或大于0℃小于等于10℃,反应8~16h。
7.如权利要求2所述的方法,其特征在于:所述的活化功能试剂包括同双功能试剂或异双功能试剂。
8.如权利要求7所述的方法,其特征在于:所述的双功能试剂是戊二醛或高碘酸钠;所述的异双功能试剂是SPDP、SMCC或SMPB。
9.如权利要求2所述的方法,其特征在于:所述的活化处理和混合反应条件为室温振荡反应1~8h;或大于0℃小于等于10℃,反应4~16h。
10.如权利要求2所述的方法,其特征在于:所述的终止液是N-乙酰马来酰亚胺或碘乙酸钠。
11.如权利要求2所述的方法,其特征在于:所述的中性缓冲液是pH6~8的磷酸盐缓冲液、碳酸盐缓冲液或Tris/HCl缓冲液。
12.如权利要求2所述的方法,其特征在于:所述的解离缓冲液为pH为2~3的酸性解离液、pH为10~11的碱性解离液或浓盐解离液。
13.如权利要求12所述的方法,其特征在于:所述的酸性解离液为甘氨酸-HCl解离液,碱性解离液为甘氨酸-NaOH解离液,浓盐解离液为KCSN解离液;其中,所述的甘氨酸-HCl的浓度为0.1~0.5mol/L蒸馏水;所述的甘氨酸-NaOH的浓度为0.1~0.5mol/L蒸馏水;所述的KCSN的浓度为0.5~3mol/L蒸馏水。
14.如权利要求1或2任意一项所述的方法,其特征在于:所述的大分子探针是藻胆蛋白。
15.如权利要求14所述的方法,其特征在于:所述的藻胆蛋白是藻红蓝蛋白、异藻蓝蛋白、藻蓝蛋白、B-藻红蛋白或R-藻红蛋白。
16.如权利要求2所述的方法,其特征在于:所述的解离后的固相免疫吸附剂,经充分洗涤,悬浮于活化缓冲液中,与步骤(1)新制备的固相免疫吸附剂混合,重新用于待交联抗体的固相交联,制备抗体与大分子探针的交联抗体。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CNB01120463XA CN1164947C (zh) | 2001-07-16 | 2001-07-16 | 利用固相免疫吸附法制备交联抗体的方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CNB01120463XA CN1164947C (zh) | 2001-07-16 | 2001-07-16 | 利用固相免疫吸附法制备交联抗体的方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN1396454A true CN1396454A (zh) | 2003-02-12 |
CN1164947C CN1164947C (zh) | 2004-09-01 |
Family
ID=4664155
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CNB01120463XA Expired - Fee Related CN1164947C (zh) | 2001-07-16 | 2001-07-16 | 利用固相免疫吸附法制备交联抗体的方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN1164947C (zh) |
Cited By (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101936987A (zh) * | 2010-09-16 | 2011-01-05 | 厦门大学 | 基于蛋白a固定化抗体的微珠免疫分析方法 |
CN101957377A (zh) * | 2010-09-17 | 2011-01-26 | 山东省农业科学院畜牧兽医研究所 | 一种检测禽流感病毒的荧光抗体的制备方法及固相免疫荧光检测试剂盒 |
CN101980020A (zh) * | 2010-09-17 | 2011-02-23 | 颜世敢 | 一种r-藻蓝蛋白标记的荧光抗抗体的制备方法 |
CN101980019A (zh) * | 2010-09-17 | 2011-02-23 | 颜世敢 | 一种别藻蓝蛋白标记的荧光抗抗体的制备方法 |
CN102062780A (zh) * | 2010-11-23 | 2011-05-18 | 北京正旦国际科技有限责任公司 | 一种多肽免疫试剂盒及其检测方法 |
CN103776996A (zh) * | 2014-01-23 | 2014-05-07 | 中国人民解放军第一一七医院 | 一种用于免疫复合物缓冲解离剂的cic抗体缓冲液解离剂 |
CN111701576A (zh) * | 2020-05-26 | 2020-09-25 | 武汉瑞法医疗器械有限公司 | 西尼罗病毒免疫吸附剂的制备方法、免疫吸附剂及其应用 |
CN113042016A (zh) * | 2021-04-25 | 2021-06-29 | 上海捷门生物技术有限公司 | 用于纯化抗血清的固相亲和吸附剂以及获得纯化的抗体的方法 |
-
2001
- 2001-07-16 CN CNB01120463XA patent/CN1164947C/zh not_active Expired - Fee Related
Cited By (11)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101936987A (zh) * | 2010-09-16 | 2011-01-05 | 厦门大学 | 基于蛋白a固定化抗体的微珠免疫分析方法 |
CN101957377A (zh) * | 2010-09-17 | 2011-01-26 | 山东省农业科学院畜牧兽医研究所 | 一种检测禽流感病毒的荧光抗体的制备方法及固相免疫荧光检测试剂盒 |
CN101980020A (zh) * | 2010-09-17 | 2011-02-23 | 颜世敢 | 一种r-藻蓝蛋白标记的荧光抗抗体的制备方法 |
CN101980019A (zh) * | 2010-09-17 | 2011-02-23 | 颜世敢 | 一种别藻蓝蛋白标记的荧光抗抗体的制备方法 |
CN101957377B (zh) * | 2010-09-17 | 2013-11-13 | 山东省农业科学院畜牧兽医研究所 | 一种检测禽流感病毒的荧光抗体的制备方法及固相免疫荧光检测试剂盒 |
CN101980020B (zh) * | 2010-09-17 | 2013-12-25 | 山东轻工业学院 | 一种r-藻蓝蛋白标记的荧光抗抗体的制备方法 |
CN102062780A (zh) * | 2010-11-23 | 2011-05-18 | 北京正旦国际科技有限责任公司 | 一种多肽免疫试剂盒及其检测方法 |
CN103776996A (zh) * | 2014-01-23 | 2014-05-07 | 中国人民解放军第一一七医院 | 一种用于免疫复合物缓冲解离剂的cic抗体缓冲液解离剂 |
CN111701576A (zh) * | 2020-05-26 | 2020-09-25 | 武汉瑞法医疗器械有限公司 | 西尼罗病毒免疫吸附剂的制备方法、免疫吸附剂及其应用 |
CN111701576B (zh) * | 2020-05-26 | 2023-07-28 | 武汉瑞法医疗器械有限公司 | 西尼罗病毒免疫吸附剂的制备方法、免疫吸附剂及其应用 |
CN113042016A (zh) * | 2021-04-25 | 2021-06-29 | 上海捷门生物技术有限公司 | 用于纯化抗血清的固相亲和吸附剂以及获得纯化的抗体的方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN1164947C (zh) | 2004-09-01 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN1905806A (zh) | 带有吸附的或结合的生物分子的胶-壳珠子 | |
CN1047666C (zh) | 从抗体上释放抗原的免疫检测方法 | |
JP5643721B2 (ja) | アフィニティークロマトグラフィーマトリックスおよびその作成および使用法 | |
CN1032164C (zh) | 特异结合的物质的测定方法 | |
CN1051091C (zh) | 检测抗丙型肝炎病毒抗体的方法 | |
CN1926146A (zh) | 抗体纯化 | |
CN1902489A (zh) | 对样品中分析物的诊断试验 | |
CN1842707A (zh) | 朊病毒蛋白结合材料及其使用方法 | |
CN101065136A (zh) | 朊病毒蛋白结合材料及其使用方法 | |
CN1164947C (zh) | 利用固相免疫吸附法制备交联抗体的方法 | |
CN100338465C (zh) | 酶-蛋白质复合物 | |
CN1191312A (zh) | 作为凝集试剂的合成粒子 | |
CN1491359A (zh) | 免疫测定 | |
CN1402004A (zh) | 一种免疫层析一步法检测β-肾上腺素激动剂类药物的方法及试纸的制备 | |
JPS62132172A (ja) | 固相化抗体およびその製造方法 | |
JP2004323508A (ja) | 抗重金属モノクローナル抗体およびその使用方法 | |
CN1682112A (zh) | 使用荧光化抗体的荧光分析方法 | |
CN1113105C (zh) | 使用钒溴过氧化物酶作为产生信号之酶测定特异性结合配体的分析元件和方法 | |
CN1250329C (zh) | 内毒素吸附剂及其制备方法 | |
CN1696698A (zh) | Pat蛋白的亲和层析-酶联免疫检测方法及其专用试剂盒 | |
CN1830546A (zh) | 净化沙丁胺醇和/或克伦特罗的方法及免疫亲和色谱柱 | |
CN1195229C (zh) | 一种检测孕激素受体水平的生物试剂及免疫组化方法 | |
CN1530659A (zh) | 钴胺素的分析方法和试剂盒 | |
CN1484031A (zh) | 检测盐酸克伦特罗的参比免疫层析试纸及其检测方法 | |
CN1918474A (zh) | 搅拌方法、反应容器以及使用该反应容器的测定装置、测定方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant | ||
C17 | Cessation of patent right | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |
Granted publication date: 20040901 Termination date: 20110716 |