具体实施方式
1 菌种筛选和诱变
从土壤腐殖质中筛选到能在麦麸上生长的菌株41株,分别测定β-葡聚糖酶和木聚糖酶酶活性,同时具有这两种酶活性的菌株有12株,将纯化菌株点种在刚果红地衣多糖平板上,得到5株透明圈较大的菌株。
将这5株菌培养并制成单孢子悬浮液,分别进行紫外(30W紫外灯下30cm处照射60s)和辐射(Co60辐照10s)和化学试剂(亚硝基胍终浓度1mg/ml,28静置60min)诱变,经诱变后将孢子涂布于初筛平皿,挑取形成清晰透明圈的菌株。然后再分别测定β-葡聚糖酶和木聚糖酶酶活性,发现有一株酶活性特别高,是原菌株的50倍。本发明的里氏木霉GXC已于2002年4月17日保藏在中国典型培养物保藏中心,登记入册编号为:CCTCC No M202017。
2 菌种鉴定
(1)形态特征
产生菌该菌株在PDA固体培养基上生长。形成的菌落特征为菌落呈棉絮状,菌落呈淡绿色,菌落扁平,高0.1~0.75mm,菌落边缘白色,整齐;生长速度快,48h菌落直径达1.0~8.5mm,72h达30~50mm;菌丝白色,有隔膜,菌丝壁光滑,直径在2.0~5.0μm。分生孢子梗从菌丝的短侧枝发生,侧枝上对生。分生孢子梗呈瓶状,直立,无色,孢子呈球形,绿色,直径20~100μm。该菌株可在麦麸上生长,主要代谢产物为β-葡聚糖酶和木聚糖酶。根据《AnIntroduction industrial mycology》(George Smith 1954)、《真菌鉴定手册》(魏景超1982)、《常见与常用真菌》(中科院微生物研究所1973),鉴定该菌株为:里氏木霉(Trichoderma reesei)。
(2)培养特征
该菌株产β-葡聚糖酶和木聚糖酶的最适pH分别为3.5~6.0和3.0~6.0;最适温度均为15~35℃。
3 液体发酵产酶条件
生产β-葡聚糖酶的液体发酵方法为:
(1)产β-葡聚糖酶的碳源为麸皮和木聚糖,氮源为硫酸铵、氯化铵、硝酸铵和酵母膏;
(2)产酶促进剂:加入0.1~5.0%吐温80、吐温20和甜菜碱使β-葡聚糖酶和木聚糖酶酶活性提高0.5~5.0倍。
(3)产酶时间:发酵20~30h后,微生物开始分泌β-葡聚糖酶,至40~50h酶活性达到高峰,pH维持在2.5~4.5。
生产木聚糖酶的液体发酵方法为:
(1)产木聚糖酶的碳源为乳糖、棉子糖、甘露糖和木糖、麸皮浸出液和木聚糖,氮源为酵母膏和牛肉膏。
(2)产酶促进剂:加入0.1~5.0%吐温80、吐温20和甜菜碱使β-葡聚糖酶和木聚糖酶酶活性提高0.5~5.0倍。
(3)产酶时间:发酵20~30h后,微生物开始分泌木聚糖酶,至40~50h达到高峰,pH维持在2.5~4.5。
4 固体发酵生产工艺
以麸皮为主要原料生产β-葡聚糖酶和木聚糖酶的固体发酵方法为:
(1)一级种子(试管斜面种子):从原始菌种接种至试管PDA固体培养基,28~32℃培养20~40hr
(2)二级种子(试管液体种子):从一级种子接种至试管PDA液体培养基,28~32℃培养20~40hr
(3)三级种子(三角瓶液体种子):从二级种子接种至含50~150ml 5~20%麸皮浸出液培养基的三角瓶中,28~32℃培养20~34hr
(4)培养基配制:麸皮和稻壳混合原料经粉碎后加入等比例水,0.11Mpa灭菌50min,冷却。
(5)发酵:培养基按1~10%的比例接入三级种子,培养基含水量控制在45~55%,发酵室内相对湿度保持在85%以上,pH范围为4.5~5.0,温度维持在28~35℃,通风发酵32~50hr。
(6)培养物在35~45℃干燥,粉碎,加入配料,混合后包装。
5 实施例
(1)液体发酵
斜面培养基:PDA培养基和10%麸皮浸出液,2%琼脂,自然pH,121℃高压灭菌30min。
营养盐组成(%):KH2PO4,0.1;MgSO4.7H2O,0.5;CaCl2,0.01;NaCl,0.01;FeSO4.7H2O,0.005;MnSO4.H2O,0.0016;ZnSO4.7H2O,0.0014;CoCl2,0.002。
培养基:在营养盐溶液中加入5%麸皮浸出液、1%酵母膏和0.1%P8(吐温80)、0.1%P2(吐温20)和0.1%PB(甜菜碱),调pH5.0。
培养条件:250ml三角瓶装入培养基100ml,用孢子悬液接种1.0ml,100r/min旋转式振摇,在32℃下培养40h。
酶活性:β-葡聚糖酶和木聚糖酶活性达500U/ml和400U/ml。
(2)固体发酵
a一级种子(试管斜面种子):从原菌种接种至PDA固体培养基,30℃培养24hr
b二级种子(试管液体种子):从一级种子接种至PDA液体培养基,30℃培养24hr
c三级种子(三角瓶液体种子):从二级种子接种至5%麸皮浸出液培养基,30℃培养24hr
d培养基配制:原料(麸皮∶稻壳=9∶1)经粉碎后加入等比例水,0.11Mpa灭菌50min,冷却至30℃。
e发酵:培养基按5%的比例接入三级种子,32℃通风发酵32hr。
f酶活测定:β-葡聚糖酶25000u/g,木聚糖酶20000u/g
(3)液体发酵
斜面培养基:PDA培养基和10%麸皮浸出液,2%琼脂,自然pH,121℃高压灭菌30min。
营养盐组成(%):KH2PO4,0.1;MgSO4.7H2O,0.5;CaCl2,0.01;NaCl,0.01;FeSO4.7H2O,0.005;MnSO4.H2O,0.0016;ZnSO4.7H2O,0.0014;CoCl2,0.002。
培养基:在营养盐溶液中加入1%木聚糖、1%牛肉膏和5%P8(吐温80)、5%P2(吐温20)和5%PB(甜菜碱),调pH5.0。
培养条件:250ml三角瓶装入培养基100ml,用孢子悬液接种1.0ml,100r/min旋转式振摇,在32℃下培养40h。
酶活性:β-葡聚糖酶和木聚糖酶活性达610U/ml和480U/ml。
(4)固体发酵
a一级种子(试管斜面种子):从原菌种接种至PDA固体培养基,32℃培养40hr
b二级种子(试管液体种子):从一级种子接种至PDA液体培养基,32℃培养40hr
c三级种子(三角瓶液体种子):从二级种子接种至20%麸皮浸出液培养基,30℃培养40hr
d培养基配制:原料(麸皮∶稻壳=8∶2)经粉碎后加入等比例水,0.11Mpa灭菌50min,冷却。
e发酵:培养基按5%的比例接入三级种子,32℃通风发酵50hr。
f酶活测定:β-葡聚糖酶35000u/g,木聚糖酶30000u/g
6 木聚糖酶活性测定
(1)定义
活力单位(BU):每秒钟产生1纳摩尔木糖。酶量定义为1单位木聚糖酶活(1BU=1nkut)。
(2)原理
木聚糖酶能水解木聚糖,并产生木糖。木糖和3.5-二硝基水杨酸反应显色后可用比色法测定。
(3)试剂和溶液
柠檬酸缓冲液(0.05mol/L,pH5.3):称取10.5g柠檬酸(C6H8O7·H2O)溶解于约800ml蒸馏水中,用1mol/L的NaOH将pH调至5.3(约需110ml NaOH),再用蒸馏水定容至1升。
底物:称取1.00g木聚糖加入80mL预热至60℃的柠檬酸溶液,再加热至沸点,同时磁力搅拌直至溶解,然后边冷却边搅拌,室温放至过夜,最后用柠檬酸缓冲液定容至100mL。
DNS试剂:称取50.00g 3.5-二硝基水杨酸溶解于4.0L水。一边不断地搅拌一边逐渐加入80.0g NaOH,让其溶解。然后逐渐加入1500g酒石酸钾钠,可加热至45℃,冷却后在5.0L的容量瓶中定容。室温存放在棕色瓶中。
(4)仪器设备:水浴锅,旋锅振荡器,分光光度计,磁力搅拌器
(5)分析步骤
a称样称量为200-600mg,样品用柠檬酸缓冲液溶解。应适当稀释使吸光值在0.10-0.70(540nm)之间为佳。
b酶活测定在试验管和空白中各加入1.8ml底物,50℃水浴中预热5min。在试验管中加200μl已稀释的样品摇匀。精确反应5分钟后,两个管中都加入3.0ml DNS试剂。在空白管中再加入200μl样品。将两个试管同时放入沸水浴。沸水浴5分钟取出试管,冷却至室温。然后以空白为对照在540nm处测定样品的吸光值。从标准曲线上读出酶活,并乘上稀释因子。
c标准曲线配制好10μmol/mL木糖母液(150mg木糖溶解于柠檬酸缓冲液中,定容至100ml)。用柠檬酸缓冲液稀释母液,稀释倍数如下:
稀释倍数 木糖浓度(μmol/ml) 木聚糖酶活力(BU/ml)
1∶1 10.0 33.30
1∶2 5.00 16.70
1∶3 3.33 11.00
1∶5 2.00 6.70
每个标准液做三个重复,各试管中加入1.8ml底物,再加200μl标准稀释液,后面操作步骤和样品测定相同。空白为加入200μl柠檬酸缓冲液而代替加入200μl标准液。
(6)酶活计算方法
U:酶活力(U/g),X:样品吸光度在标准曲线上所查得的木糖浓度(μmol/ml)1000:μmol转化成nmol,n:稀释倍数,300:反应时间(s),W:样品重量(g)
7 β-葡聚糖酶活性测定
(1)定义
活力单位(BU):每秒钟产生1纳摩尔还原糖(葡萄糖)的酶量定义为1单位β-葡聚糖酶活(1BU=1nkut)。
(2)原理
β-葡聚糖酶(1,3-1,4-β-D-葡聚糖4-葡聚糖水解酶)能水解从大麦中提取的葡聚糖,并产生还原糖。还原糖和3.5-二硝基水杨酸反应显色后可用比色法测定。
(3)试剂和溶液
醋酸缓冲液(0.1mol/L,pH4.8)用0.10mol/L的醋酸将醋酸钠溶液(13.6g/L的CH3COONa·3H2O)的pH调至4.8(每L溶液约需700mL醋酸)。
底物称取1.00g β-葡聚糖(大麦β-葡聚糖)溶解于6ml的乙醇中,加90ml醋酸缓冲液。边加热边磁力搅拌直至溶解(约10分钟,冷却后用陶质过滤器G2过滤)。底物在+4℃下可保存一周。
DNS试剂称取50.00g 3.5-二硝基水杨酸溶解于4.0升水。一边不断地搅拌一边逐渐加入80.0g NaOH,让其溶解。然后逐渐加入1500g酒石酸钾钠,可加热至45℃,冷却后在5.0升的容量瓶中定容。室温存放在棕色瓶中。
(4)仪器设备:水浴锅,旋锅振荡器,分光光度计,磁力搅拌器
(5)分析步骤
a取样:样品用醋酸缓冲液溶解。称量为200-600mg。应适当稀释使吸光值在0.10-0.70(540nm)之间为佳。
b酶活测定
在试验管和空白中各加入1.8ml底物,50℃水溶中预热5min。在试验管中加200μl已稀释的样品摇匀。精确反应10分钟后,两个管中都加入3.0ml DNS试制。在空白管中再加入200μl样品。将两个试管同时放入沸水浴。沸水浴5分钟取出试管,冷却至室温,加20mL水混匀,然后以空白为对照在540nm处测定样品的吸光值。从标准曲线上读出酶活,并乘上稀释因子。
c标准曲线:配制好0.078mmol/mL葡萄糖母液(1.405g葡萄糖溶解于醋酸缓冲液中,定容至100ml)。用醋酸缓冲液稀释母液,稀释倍数如下:
稀释倍数 葡葡萄糖浓度 β-葡聚糖酶活力
(μmol/ml) (BU/ml)
1∶2 39 65.00
1∶3 26 43.33
1∶6 13 21.67每个标准液做三个重复,各试管中加入1.8ml底物,再加200μl标准稀释液,后面操作步骤和样品测定相同。空白为加入200μl醋酸缓冲液而代替加入200μl标准液。
(6)酶活计算方法:
U:酶活力(U/g),X:样品吸光度在标准曲线上所查得的葡萄糖浓度(μmol/ml)1000:μmol转化成nmol,n:稀释倍数,600:反应时间(s),W:样品重量(g)