CN117187274A - 2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因及其表达蛋白和应用 - Google Patents
2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因及其表达蛋白和应用 Download PDFInfo
- Publication number
- CN117187274A CN117187274A CN202311473002.8A CN202311473002A CN117187274A CN 117187274 A CN117187274 A CN 117187274A CN 202311473002 A CN202311473002 A CN 202311473002A CN 117187274 A CN117187274 A CN 117187274A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- 7ter
- seq
- pet28a
- gene
- primers
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 title claims abstract description 92
- 230000014509 gene expression Effects 0.000 title claims abstract description 49
- 108010010607 2,4-diaminobutyric acid acetyltransferase Proteins 0.000 title claims abstract description 28
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 title claims abstract description 9
- OTPDWCMLUKMQNO-UHFFFAOYSA-N 1,2,3,4-tetrahydropyrimidine Chemical compound C1NCC=CN1 OTPDWCMLUKMQNO-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 38
- 239000013604 expression vector Substances 0.000 claims abstract description 36
- 108020002494 acetyltransferase Proteins 0.000 claims abstract description 26
- 102000005421 acetyltransferase Human genes 0.000 claims abstract description 26
- 241000588724 Escherichia coli Species 0.000 claims abstract description 25
- 238000003259 recombinant expression Methods 0.000 claims abstract description 22
- 239000002773 nucleotide Substances 0.000 claims abstract description 7
- 125000003729 nucleotide group Chemical group 0.000 claims abstract description 7
- 239000012634 fragment Substances 0.000 claims description 59
- OGNSCSPNOLGXSM-VKHMYHEASA-N L-2,4-diaminobutyric acid Chemical compound NCC[C@H](N)C(O)=O OGNSCSPNOLGXSM-VKHMYHEASA-N 0.000 claims description 29
- 239000013612 plasmid Substances 0.000 claims description 28
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 claims description 16
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 claims description 16
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 claims description 13
- PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N Glycerine Chemical compound OCC(O)CO PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 11
- 239000002609 medium Substances 0.000 claims description 11
- 239000001888 Peptone Substances 0.000 claims description 7
- 108010080698 Peptones Proteins 0.000 claims description 7
- 240000004808 Saccharomyces cerevisiae Species 0.000 claims description 7
- ZPWVASYFFYYZEW-UHFFFAOYSA-L dipotassium hydrogen phosphate Chemical compound [K+].[K+].OP([O-])([O-])=O ZPWVASYFFYYZEW-UHFFFAOYSA-L 0.000 claims description 7
- 229910000402 monopotassium phosphate Inorganic materials 0.000 claims description 7
- 235000019796 monopotassium phosphate Nutrition 0.000 claims description 7
- 235000019319 peptone Nutrition 0.000 claims description 7
- PJNZPQUBCPKICU-UHFFFAOYSA-N phosphoric acid;potassium Chemical compound [K].OP(O)(O)=O PJNZPQUBCPKICU-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 7
- 239000000843 powder Substances 0.000 claims description 7
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 claims description 7
- 241000579120 Coliiformes Species 0.000 claims description 6
- 238000012258 culturing Methods 0.000 claims description 6
- 238000003199 nucleic acid amplification method Methods 0.000 claims description 6
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 claims description 5
- 102000003960 Ligases Human genes 0.000 claims description 5
- 108090000364 Ligases Proteins 0.000 claims description 5
- 108090000992 Transferases Proteins 0.000 claims description 5
- 239000008103 glucose Substances 0.000 claims description 5
- BPHPUYQFMNQIOC-NXRLNHOXSA-N isopropyl beta-D-thiogalactopyranoside Chemical compound CC(C)S[C@@H]1O[C@H](CO)[C@H](O)[C@H](O)[C@H]1O BPHPUYQFMNQIOC-NXRLNHOXSA-N 0.000 claims description 5
- 238000000034 method Methods 0.000 claims description 5
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 claims description 4
- 150000001413 amino acids Chemical group 0.000 claims description 3
- 230000003321 amplification Effects 0.000 claims description 3
- 230000001939 inductive effect Effects 0.000 claims description 3
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 claims description 3
- 238000009472 formulation Methods 0.000 claims 1
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims 1
- 238000010353 genetic engineering Methods 0.000 abstract description 3
- 239000002253 acid Substances 0.000 abstract 1
- 125000003275 alpha amino acid group Chemical group 0.000 abstract 1
- 125000004063 butyryl group Chemical group O=C([*])C([H])([H])C([H])([H])C([H])([H])[H] 0.000 abstract 1
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 15
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 15
- OGNSCSPNOLGXSM-UHFFFAOYSA-N (+/-)-DABA Natural products NCCC(N)C(O)=O OGNSCSPNOLGXSM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 8
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 7
- OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N Methanol Chemical compound OC OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 238000010276 construction Methods 0.000 description 6
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 6
- RAXXELZNTBOGNW-UHFFFAOYSA-N imidazole Natural products C1=CNC=N1 RAXXELZNTBOGNW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- QKNYBSVHEMOAJP-UHFFFAOYSA-N 2-amino-2-(hydroxymethyl)propane-1,3-diol;hydron;chloride Chemical compound Cl.OCC(N)(CO)CO QKNYBSVHEMOAJP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 4
- 239000013068 control sample Substances 0.000 description 4
- 229930027917 kanamycin Natural products 0.000 description 4
- SBUJHOSQTJFQJX-NOAMYHISSA-N kanamycin Chemical compound O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CN)O[C@@H]1O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O[C@@H]2[C@@H]([C@@H](N)[C@H](O)[C@@H](CO)O2)O)[C@H](N)C[C@@H]1N SBUJHOSQTJFQJX-NOAMYHISSA-N 0.000 description 4
- 229960000318 kanamycin Drugs 0.000 description 4
- 229930182823 kanamycin A Natural products 0.000 description 4
- 239000000047 product Substances 0.000 description 4
- 102000004357 Transferases Human genes 0.000 description 3
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 3
- 235000011187 glycerol Nutrition 0.000 description 3
- 238000000589 high-performance liquid chromatography-mass spectrometry Methods 0.000 description 3
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 3
- 230000035772 mutation Effects 0.000 description 3
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 3
- 229920000936 Agarose Polymers 0.000 description 2
- 241000588722 Escherichia Species 0.000 description 2
- PXHVJJICTQNCMI-UHFFFAOYSA-N Nickel Chemical compound [Ni] PXHVJJICTQNCMI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 230000015556 catabolic process Effects 0.000 description 2
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 2
- 239000013078 crystal Substances 0.000 description 2
- 230000006378 damage Effects 0.000 description 2
- 238000006731 degradation reaction Methods 0.000 description 2
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 2
- 238000004128 high performance liquid chromatography Methods 0.000 description 2
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 2
- 230000006698 induction Effects 0.000 description 2
- 150000002500 ions Chemical class 0.000 description 2
- 239000012533 medium component Substances 0.000 description 2
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 2
- 230000035939 shock Effects 0.000 description 2
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 2
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 2
- YPUZOECTETYPRF-UHFFFAOYSA-N 1,2,3,4-tetrahydropyrimidine-2-carboxylic acid Chemical compound OC(=O)C1NCC=CN1 YPUZOECTETYPRF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 102000010911 Enzyme Precursors Human genes 0.000 description 1
- 108010062466 Enzyme Precursors Proteins 0.000 description 1
- 206010051246 Photodermatosis Diseases 0.000 description 1
- VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N Silicium dioxide Chemical compound O=[Si]=O VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241001052560 Thallis Species 0.000 description 1
- 208000027418 Wounds and injury Diseases 0.000 description 1
- 230000003213 activating effect Effects 0.000 description 1
- 230000032683 aging Effects 0.000 description 1
- 150000003862 amino acid derivatives Chemical class 0.000 description 1
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 1
- 230000009286 beneficial effect Effects 0.000 description 1
- 230000005540 biological transmission Effects 0.000 description 1
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 1
- 239000002537 cosmetic Substances 0.000 description 1
- 230000029087 digestion Effects 0.000 description 1
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 1
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 1
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 1
- 239000003344 environmental pollutant Substances 0.000 description 1
- 238000001976 enzyme digestion Methods 0.000 description 1
- 238000011067 equilibration Methods 0.000 description 1
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 1
- 239000007789 gas Substances 0.000 description 1
- 230000001976 improved effect Effects 0.000 description 1
- 238000009776 industrial production Methods 0.000 description 1
- 208000014674 injury Diseases 0.000 description 1
- 238000010829 isocratic elution Methods 0.000 description 1
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 1
- 238000001819 mass spectrum Methods 0.000 description 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 1
- 239000012528 membrane Substances 0.000 description 1
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 description 1
- 238000003032 molecular docking Methods 0.000 description 1
- 210000003205 muscle Anatomy 0.000 description 1
- 229910052759 nickel Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000037361 pathway Effects 0.000 description 1
- 230000008845 photoaging Effects 0.000 description 1
- 231100000719 pollutant Toxicity 0.000 description 1
- 229920001184 polypeptide Polymers 0.000 description 1
- 102000004196 processed proteins & peptides Human genes 0.000 description 1
- 108090000765 processed proteins & peptides Proteins 0.000 description 1
- 230000001737 promoting effect Effects 0.000 description 1
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 1
- 230000005855 radiation Effects 0.000 description 1
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 1
- 230000008591 skin barrier function Effects 0.000 description 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
Classifications
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
- Y02A50/00—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
- Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
本发明公开了2,4‑二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因及其表达蛋白和应用,属于基因工程技术领域。本发明的2,4‑二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因,其核苷酸序列如SEQ ID NO. 1所示,其氨基酸序列如SEQ ID NO. 2所示。本发明构建了2,4‑二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因的重组表达载体,将所构建的重组表达载体转化到大肠杆菌中,构建重组大肠杆菌表达菌株E. coli BL21 pET28a(+)‑T 7 ‑ectB‑T 7ter ‑T 7 ‑ectAm‑ T 7ter ‑T 7 ‑ectC‑T 7ter 。重组大肠杆菌表达菌株产四氢嘧啶的浓度为67.86±1.76 g/L。
Description
技术领域
本发明属于基因工程技术领域,涉及采用基因工程合成四氢嘧啶的技术领域,更具体地说,涉及2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因及其表达蛋白和应用。
背景技术
四氢嘧啶,又称四氢甲基嘧啶羧酸,是一种氨基酸衍生物。在自然界中,它广泛存在于嗜盐细菌中,在高盐、高温、紫外线辐射等极端条件下,用于保护嗜盐菌免受伤害。鉴于四氢嘧啶具有修护皮肤屏障抵御颗粒污染物侵害、修护及抵抗UV损伤、修复敏感肌及抗刺激、减少光老化及抗衰老等功能,其被广泛应用于化妆品和药品等领域。
在微生物细胞中,四氢嘧啶通过2,4-二氨基丁酸转移酶、2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶和四氢嘧啶合成酶等途径酶共同作用催化天冬氨酸-β-半醛而形成。然而上述3种酶的匹配性问题,尤其是2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶的低底物亲和力问题是制约四氢嘧啶高效合成的关键因素,从而进一步限制了四氢嘧啶的工业化生产及其应用。
发明内容
针对现有技术存在的上述问题,本发明所要解决的技术问题在于提供2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因,用于构建2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体;本发明所要解决的另一技术问题在于提供2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因的表达蛋白;本发明还要解决的另一技术问题在于提供2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因的应用,用于促进四氢嘧啶的高效合成。
为了解决上述技术问题,本发明所采用的技术方案如下:
2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因,其核苷酸序列如SEQ ID NO. 1所示。
2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因的表达蛋白,其氨基酸序列如SEQ ID NO.2所示。
含有所述2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因的重组表达载体、宿主菌,所述重组表达载体为pET28a(+)-T 7 -ectB-T 7ter -T 7 -ectAm-T 7ter -T 7 -ectC-T 7ter ,其表达框的核苷酸序列如SEQ ID NO. 3所示。
所述2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因的重组表达载体的构建方法,步骤如下:
1)设计引物F2、R2,序列分别如SEQ ID NO. 4和SEQ ID NO. 5所示,利用高保真PCR聚合酶PrimeSTAR,以GenBank: FN869568.2为模版扩增获得ectB的基因片段;
设计引物F3、R3,序列分别如SEQ ID NO. 6和SEQ ID NO. 7所示,利用高保真PCR聚合酶PrimeSTAR,以pET28a(+)质粒为模版扩增获得T7启动子的基因片段;
设计引物F4、R4,序列分别如SEQ ID NO. 8和SEQ ID NO. 9所示,利用高保真PCR聚合酶PrimeSTAR,以pET28a(+)质粒为模版扩增获得T7终止子的基因片段;
将ectB的基因片段、T7启动子的基因片段、T7终止子的基因片段使用Gibbson组装,获得2,4-二氨基丁酸转移酶基因的表达框T 7 -ectB-T 7ter ;
2)设计引物F5、R5,序列分别如SEQ ID NO. 10和SEQ ID NO. 11所示,利用高保真PCR聚合酶PrimeSTAR,以SEQ ID NO. 1为模版扩增获得ectAm的基因片段;
设计引物F6、R6,序列分别如SEQ ID NO. 12和SEQ ID NO. 13所示,利用高保真PCR聚合酶PrimeSTAR,以pET28a(+)质粒为模版扩增获得T7启动子的基因片段;
设计引物F7、R7,序列分别如SEQ ID NO. 14和SEQ ID NO. 15所示,利用高保真PCR聚合酶PrimeSTAR,以pET28a(+)质粒为模版扩增获得T7终止子的基因片段;
将ectAm的基因片段、T7启动子的基因片段、T7终止子的基因片段使用Gibbson组装,获得2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因的表达框T 7 -ectAm- T 7ter ;
3)设计引物F8、R8,序列分别如SEQ ID NO. 16和SEQ ID NO. 17所示,利用高保真PCR聚合酶PrimeSTAR,以GenBank: FN869568.2为模版扩增获得ectC的基因片段;
设计引物F9、R9,序列分别如SEQ ID NO. 18和SEQ ID NO. 19所示,利用高保真PCR聚合酶PrimeSTAR,以pET28a(+)质粒为模版扩增获得T7启动子的基因片段;
设计引物F10、R10,序列分别如SEQ ID NO. 20和SEQ ID NO. 21所示,利用高保真PCR聚合酶PrimeSTAR,以pET28a(+)质粒为模版扩增获得T7终止子的基因片段;
将ectC的基因片段、T7启动子的基因片段、T7终止子的基因片段使用Gibbson组装,获得四氢嘧啶合成酶基因的表达框T 7 -ectC-T 7ter ;
4)设计引物F11、R11,序列分别如SEQ ID NO. 22和SEQ ID NO. 23所示,利用高保真PCR聚合酶PrimeSTAR,以pET28a(+)质粒为模版扩增获得pET28a(+)质粒片段,将pET28a(+)质粒片段与T 7 -ectB-T 7ter 经Gibbson组装,获得表达载体pET28a(+)-T 7 -ectB-T 7ter ;
以表达载体pET28a(+)-T 7 -ectB-T 7ter 为模版,经BamH I和EcoR Ⅰ酶切后,与基因表达框T 7 -ectAm-T 7ter 经BamH I 和EcoR Ⅰ 酶切后的片段,利用T4连接酶进行连接获得表达载体pET28a(+)-T 7 -ectB-T 7ter - T 7 -ectAm-T 7ter ;
以pET28a(+)-T 7 -ectB-T 7ter - T 7 -ectAm-T 7ter 为模版,经Sal Ⅰ和Hind Ⅲ酶切后,与基因表达框T 7 -ectC-T 7ter 经Sal Ⅰ和Hind Ⅲ酶切后的片段,利用T4连接酶进行连接获得表达载体pET28a(+)-T 7 -ectB-T 7ter - T 7 -ectAm-T 7ter -T 7 -ectC- T 7ter 。
所述2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因或所述2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因的表达蛋白在制备四氢嘧啶中的应用。
所述2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因在制备四氢嘧啶中的应用,包括以下步骤:
1)构建2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因的重组表达载体;
2)将所构建的2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因的重组表达载体转化到大肠杆菌E.coliBL21中,构建获得重组大肠杆菌表达菌株;
3)挑取重组大肠杆菌表达菌株接种于LB培养基培养获得种子液将种子液接种到发酵培养基中,培养至OD 600 nm为0.6-0.8,加入终浓度为0.1mM的IPTG,37℃,诱导24h后,8000rpm,4℃离心5min,收集上清,获得含有四氢嘧啶的发酵液。
所述发酵培养基的配方为:
每升培养基中含5-40g酵母粉,5-20g蛋白胨,2-15g磷酸氢二钾,0.5-6g磷酸二氢钾和10-80mL甘油;
或为:每升培养基中含5-40g酵母粉,5-20g蛋白胨,2-15g磷酸氢二钾,0.5-6g磷酸二氢钾和20-100g葡萄糖。
所述重组大肠杆菌表达菌株为E.coliBL21 pET28a(+)-T 7 -ectB-T 7ter -T 7 -ectAm- T 7ter -T 7 -ectC-T 7ter 。
2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因的重组表达载体或重组大肠杆菌表达菌株E.coliBL21 pET28a(+)-T 7 -ectB-T 7ter -T 7 -ectAm-T 7ter -T 7 -ectC-T 7ter 在制备四氢嘧啶中的应用。
相比于现有技术,本发明的有益效果为:
1)本发明2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因编码的2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体是基于2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶的晶体结构及底物L-2,4-二氨基丁酸的化学结构,利用生物信息学软件分子对接、虚拟突变后获得;该突变体与底物L-2,4-二氨基丁酸具有较高的结合力,结果表明2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体的比酶活为1.45 U/mg,比原酶的比酶活(1.17 U/mg)高24%,其中U代表每分钟催化1mg 2,4-二氨基丁酸降解的酶量。
2)本发明先构建了2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因的重组表达载体,将所构建的2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因的重组表达载体转化到大肠杆菌E.coliBL21中,构建重组大肠杆菌表达菌株E.coliBL21 pET28a(+)-T 7 -ectB-T 7ter -T 7 -ectAm-T 7ter - T 7 -ectC-T 7ter 。结果表明重组大肠杆菌表达菌株E.coliBL21 pET28a(+)-T 7 -ectB-T 7ter -T 7 -ectAm-T 7ter - T 7 -ectC-T 7ter 产四氢嘧啶的浓度为67.86±1.76 g/L,对照样品中四氢嘧啶的浓度为55.67±2.34 g/L。
附图说明
图1是2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体和2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶的活性表征图;
图2是2,4-二氨基丁酸转移酶基因表达框T 7 -ectB-T 7ter 的构建示意图;
图3是2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因表达框T 7 -ectAm-T 7ter 的构建示意图;
图4是四氢嘧啶合成酶基因表达框T 7 -ectC-T 7ter 的构建示意图;
图5是四氢嘧啶表达载体pET28a(+)-T 7 -ectB-T 7ter -T 7 -ectAm-T 7ter -T 7 -ectC-T 7ter 的构建示意图(A为、B为、C为、D为);
图6是四氢嘧啶产量检测结果图;
图7是发酵培养基配方1为培养基组分时的四氢嘧啶产量图;
图8是发酵培养基配方2为培养基组分时的四氢嘧啶产量图。
具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明进一步进行描述。以下实施例中,未详细叙述的操作均为常规生物学实验操作,可参照分子生物学实验手册以及现有公开的期刊文献等进行,或者按照试剂盒和产品说明书进行。下述实施例中所用的材料、试剂等,如无特殊说明,均可从商业途径得到。
以下实施例中所述的T7启动子基因片段和T7终止子基因片段表达相同,但5’端的同源臂不同,所以扩增基因片段使用的引物序列不同。
实施例1
1、根据2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶(GenBank:WP_010928263.1)的晶体结构(PDB:3D3S)及底物L-2,4-二氨基丁酸的化学结构,利用生物信息学软件DiscoveryStudio进行分子对接、虚拟突变后,获得与底物L-2,4-二氨基丁酸结合力提高的2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体(ectAm),其氨基酸序列如SEQ ID NO. 2所示;用于表达ectAm的核苷酸序列如SEQ ID NO. 1(上海生工生物工程有限公司合成)所示。
2、设计引物F1、R1,序列分别如SEQ ID NO. 24和SEQ ID NO. 25所示,利用高保真PCR聚合酶PrimeSTAR分别以SEQ ID NO. 1和GenBank:CP032412.1为模版,扩增ectAm和ectA基因片段;经Gibbson将ectAm基因和ectA基因组装整合到表达载体pET28a(+)质粒(Invitrogen)的BamH Ⅰ和Sac I位点,获得ectAm和ectA的重组表达载体pET28a(+)-ectAm和pET28a(+)-ectA;将重组表达载体pET28a(+)-ectAm和pET28a(+)-ectA分别与大肠杆菌E.coliBL21感受态冰上孵育30min后,于42oC热击90s转化E.coliBL21获得表达ectAm基因和ectA基因的重组大肠杆菌表达菌株E.coliBL21 pET28a(+)-ectAm和E.coliBL21 pET28a(+)-ectA。
3、分别挑取重组大肠杆菌表达菌株E.coliBL21 pET28a(+)-ectAm和E.coliBL21pET28a(+)-ectA单菌落,接种至含有50mg/L卡那霉素的LB培养基中,37℃过夜培养后,按10%(V/V)的比例转接至50mL含有50mg/L卡那霉素的LB培养基中,待菌体培养至OD 600nm=0.6~0.8后,添加终浓度为0.1mM的IPTG诱导ectAm和ectA的表达;诱导培养5h后8000rpm,4℃离心5min,收集菌体;用预冷的Tris-HCl(pH7.0)清洗、重悬菌体至50mL,冰浴超声,条件为:400W,工作2s,间歇3s,200个循环至菌液澄清,14000rpm,4℃离心20min,收集上清,即为粗酶液。
4、将获得的ectAm粗酶液和ectA粗酶液经镍柱纯化后,获得ectAm和ectA的纯品(原酶)。纯化程序如下:用Buffer A (20mM Tris-HCl,0.5M NaCl,20mM咪唑,pH7.4)平衡Ni-NTA Agarose Fast Flow柱子后,将ectAm粗酶液和ectA粗酶液分别透过0.22mm滤膜后,上清液以3mL/min的速度通过Ni-NTA Agarose Fast Flow柱子,结合10min后,Buffer B(20mM Tris-HCl,0.5M NaCl,500mM咪唑,pH7.4)洗脱收集酶活性部分,浓缩,冷冻干燥,即得到ectAm(2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体)和ectA(原酶)的纯品。
5、将获得的1mg 2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体和原酶的纯品,分别加入10mg2,4-二氨基丁酸的1mL Tris-HCl(pH7.0)缓冲液,37℃,反应2min后,加入等体积的甲醇溶液终止反应。利用HPLC测定2,4-二氨基丁酸的残留量,进行2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体和原酶活性表征。
结果如图1所示,2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体的比酶活为1.45 U/mg,比原酶的比酶活(1.17 U/mg)高24%,其中U代表每分钟催化1 mg 2,4-二氨基丁酸降解的酶量。
实施例2
1、设计引物F2、R2,序列分别如SEQ ID NO. 4和SEQ ID NO. 5所示,利用高保真PCR聚合酶PrimeSTAR,以GenBank: FN869568.2为模版扩增获得ectB的基因片段;
设计引物F3、R3,序列分别如SEQ ID NO. 6和SEQ ID NO. 7所示,利用高保真PCR聚合酶PrimeSTAR,以pET28a(+)质粒为模版扩增获得T7启动子的基因片段;
设计引物F4、R4,序列分别如SEQ ID NO. 8和SEQ ID NO. 9所示,利用高保真PCR聚合酶PrimeSTAR,以pET28a(+)质粒为模版扩增获得T7终止子的基因片段;
将ectB的基因片段、T7启动子的基因片段、T7终止子的基因片段使用Gibbson组装,获得2,4-二氨基丁酸转移酶基因的表达框T 7 -ectB-T 7ter (图2)。
2、设计引物F5、R5,序列分别如SEQ ID NO. 10和SEQ ID NO. 11所示,利用高保真PCR聚合酶PrimeSTAR,以SEQ ID NO. 1为模版扩增获得ectAm的基因片段;
设计引物F6、R6,序列分别如SEQ ID NO. 12和SEQ ID NO. 13所示,利用高保真PCR聚合酶PrimeSTAR,以pET28a(+)质粒为模版扩增获得T7启动子的基因片段;
设计引物F7、R7,序列分别如SEQ ID NO. 14和SEQ ID NO. 15所示,利用高保真PCR聚合酶PrimeSTAR,以pET28a(+)质粒为模版扩增获得T7终止子的基因片段;
将ectAm的基因片段、T7启动子的基因片段、T7终止子的基因片段使用Gibbson组装,获得2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因的表达框T 7 -ectAm- T 7ter (图3)。
3、设计引物F8、R8,序列分别如SEQ ID NO. 16和SEQ ID NO. 17所示,利用高保真PCR聚合酶PrimeSTAR,以GenBank: FN869568.2为模版扩增获得ectC的基因片段;
设计引物F9、R9,序列分别如SEQ ID NO. 18和SEQ ID NO. 19所示,利用高保真PCR聚合酶PrimeSTAR,以pET28a(+)质粒为模版扩增获得T7启动子的基因片段;
设计引物F10、R10,序列分别如SEQ ID NO. 20和SEQ ID NO. 21所示,利用高保真PCR聚合酶PrimeSTAR,以pET28a(+)质粒为模版扩增获得T7终止子的基因片段;
将ectC的基因片段、T7启动子的基因片段、T7终止子的基因片段使用Gibbson组装,获得四氢嘧啶合成酶基因的表达框T 7 -ectC-T 7ter (图4)。
4、设计引物F11、R11,序列分别如SEQ ID NO. 22和SEQ ID NO. 23所示,利用高保真PCR聚合酶PrimeSTAR,以pET28a(+)质粒为模版扩增获得pET28a(+)质粒片段,将pET28a(+)质粒片段与T 7 -ectB-T 7ter 经Gibbson组装,获得表达载体pET28a(+)-T 7 -ectB-T 7ter 。
5、以重组表达载体pET28a(+)-T 7 -ectB-T 7ter 为模版,经BamH I和EcoR Ⅰ 37℃酶切2小时后回收线性化的重组表达载体,将线性化的重组表达载体与基因表达框T 7 -ectAm- T 7ter 利用T4连接酶16℃过夜连接获得表达载体pET28a(+)-T 7 -ectB-T 7ter -T 7 -ectAm-T 7ter 。
以pET28a(+)-T 7 -ectB-T 7ter - T 7 -ectAm-T 7ter 为模版,经Sal Ⅰ和Hind Ⅲ酶切后,与基因表达框T 7 -ectC-T 7ter 经Sal Ⅰ和Hind Ⅲ酶切后的片段,利用T4连接酶进行连接获得重组表达载体pET28a(+)-T 7 -ectB-T 7ter - T 7 -ectAm-T 7ter - T 7 -ectC-T 7ter (图5),其表达框的核苷酸序列如SEQ ID NO. 3所示。
利用同样的酶切连接方法获得2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶未突变的表达载体pET28a(+)-T 7 -ectB-T 7ter -T 7 -ectA-T 7ter -T 7 -ectC-T 7ter 。
实施例3
1、将表达载体pET28a(+)-T 7 -ectB-T 7ter -T 7 -ectAm-T 7ter -T 7 -ectC-T 7ter 与pET28a(+)-T 7 -ectB-T 7ter -T 7 -ectA-T 7ter -T 7 -ectC-T 7ter 分别冰上孵育30 min后,42℃热击90 s,转化大肠杆菌E.coliBL21获得积累四氢嘧啶的重组大肠杆菌表达菌株E.coliBL21 pET28a(+)-T 7 -ectB-T 7ter -T 7 -ectAm-T 7ter -T 7 -ectC-T 7ter 和对照菌株大肠杆菌E.coliBL21 pET28a(+)-T 7 -ectB-T 7ter -T 7 -ectA-T 7ter -T 7 -ectC- T 7ter ,以备后续四氢嘧啶的生产。
2、挑取重组大肠杆菌表达菌株大肠杆菌E.coliBL21 pET28a(+)-T 7 -ectB- T 7ter - T 7 -ectAm-T 7ter -T 7 -ectC-T 7ter 和对照菌株大肠杆菌E.coliBL21 pET28a(+)-T 7 -ectB-T 7ter - T 7 -ectA-T 7ter -T 7 -ectC-T 7ter 单菌落,分别接种于3mL LB培养基(加入终浓度为50mg/L的卡那霉素)中,37℃,200rpm培养过夜。按1%(v/v)的比例转接50mL发酵培养基(加入终浓度为50mg/L的卡那霉素)中,37℃,培养至OD 600nm为0.6-0.8,加入终浓度为0.1mM的IPTG,37℃,诱导24h后8000rpm,4℃离心5min,收集上清,备测四氢嘧啶含量。
发酵培养基的配方为:每升培养基中含23.6g酵母粉,11.8g蛋白胨,9.4g磷酸氢二钾,2.2g磷酸二氢钾和80g葡萄糖。
3、利用高效液相色谱-质谱联用(HPLC-MS)检测发酵液上清中的四氢嘧啶含量。所用HPLC-MS的高效液相色谱条件为色谱柱:ZORBAX StableBond Aq 4.6´150mm;流动相:2%的甲醇水溶液等度洗脱;流速:1mL/min。检测波长:230nm;其对应的所用质谱条件:离子源:ESI;雾化器流速:1.5L/min;干燥气流速:5L/min;离子源温度:200℃;传输线温度:250℃。
结果如图6所示,以目前的色谱条件,四氢嘧啶的出峰时间为3.5min,本发明重组大肠杆菌表达菌株E.coliBL21 pET28a(+)-T 7 -ectB-T 7ter -T 7 -ectAm- T 7ter -T 7 -ectC-T 7ter 产四氢嘧啶的浓度为67.86±1.76 g/L,对照样品中四氢嘧啶的浓度为55.67±2.34 g/L(图6)。
实施例4
重组大肠杆菌表达菌株及发酵和检测方法同实施例3,不同在于:
发酵培养基的配方1为:每升培养基中含5-40g酵母粉,5-20g蛋白胨,2-15g磷酸氢二钾,0.5-6g磷酸二氢钾和10-80mL甘油。
发酵培养基的配方2为:每升培养基中含5-40g酵母粉,5-20g蛋白胨,2-15g磷酸氢二钾,0.5-6g磷酸二氢钾和20-100g葡萄糖。
采用上述发酵培养基,在诱导培养时,将大肠杆菌工程菌株活化后,转接到发酵培养基中,于20-37℃条件下进行发酵培养,培养至OD 600nm为0.6-0.8,加入终浓度为0.01-1mM的IPTG,4℃离心5min,收集上清,备测四氢嘧啶含量。
本发明重组大肠杆菌表达菌株E.coliBL21 pET28a(+)-T 7 -ectB-T 7ter -T 7 -ectAm- T 7ter -T 7 -ectC-T 7ter 以葡萄糖为底物时四氢嘧啶的产量为16.96±1.45~84.82±2.37 g/L,对照样品中四氢嘧啶的浓度为13.92±1.04~69.59±1.52 g/L(图7);以甘油为底物时四氢嘧啶的产量为7.44±0.42 g/L~59.87±1.85 g/L,对照样品中四氢嘧啶的浓度为6.36±0.34~51.27±1.38 g/L(图8)。
Claims (10)
1.2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因,其核苷酸序列如SEQ ID NO. 1所示。
2.权利要求1所述2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因的表达蛋白,其氨基酸序列如SEQ ID NO. 2所示。
3.含有权利要求1所述2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因的重组表达载体、宿主菌。
4.根据权利要求3所述2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因的重组表达载体,其特征在于,所述重组表达载体为pET28a(+)-T 7 -ectB-T 7ter -T 7 -ectAm- T 7ter -T 7 -ectC-T 7ter ,其表达框的核苷酸序列如SEQ ID NO. 3所示。
5.权利要求3所述2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因的重组表达载体的构建方法,其特征在于,步骤如下:
1)设计引物F2、R2,序列分别如SEQ ID NO. 4和SEQ ID NO. 5所示,利用高保真PCR聚合酶PrimeSTAR,以GenBank: FN869568.2为模版扩增获得ectB的基因片段;
设计引物F3、R3,序列分别如SEQ ID NO. 6和SEQ ID NO. 7所示,利用高保真PCR聚合酶PrimeSTAR,以pET28a(+)质粒为模版扩增获得T7启动子的基因片段;
设计引物F4、R4,序列分别如SEQ ID NO. 8和SEQ ID NO. 9所示,利用高保真PCR聚合酶PrimeSTAR,以pET28a(+)质粒为模版扩增获得T7终止子的基因片段;
将ectB的基因片段、T7启动子的基因片段、T7终止子的基因片段使用Gibbson组装,获得2,4-二氨基丁酸转移酶基因的表达框T 7 -ectB-T 7ter ;
2)设计引物F5、R5,序列分别如SEQ ID NO. 10和SEQ ID NO. 11所示,利用高保真PCR聚合酶PrimeSTAR,以SEQ ID NO. 1为模版扩增获得ectAm的基因片段;
设计引物F6、R6,序列分别如SEQ ID NO. 12和SEQ ID NO. 13所示,利用高保真PCR聚合酶PrimeSTAR,以pET28a(+)质粒为模版扩增获得T7启动子的基因片段;
设计引物F7、R7,序列分别如SEQ ID NO. 14和SEQ ID NO. 15所示,利用高保真PCR聚合酶PrimeSTAR,以pET28a(+)质粒为模版扩增获得T7终止子的基因片段;
将ectAm的基因片段、T7启动子的基因片段、T7终止子的基因片段使用Gibbson组装,获得2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因的表达框T 7 -ectAm-T 7ter ;
3)设计引物F8、R8,序列分别如SEQ ID NO. 16和SEQ ID NO. 17所示,利用高保真PCR聚合酶PrimeSTAR,以GenBank: FN869568.2为模版扩增获得ectC的基因片段;
设计引物F9、R9,序列分别如SEQ ID NO. 18和SEQ ID NO. 19所示,利用高保真PCR聚合酶PrimeSTAR,以pET28a(+)质粒为模版扩增获得T7启动子的基因片段;
设计引物F10、R10,序列分别如SEQ ID NO. 20和SEQ ID NO. 21所示,利用高保真PCR聚合酶PrimeSTAR,以pET28a(+)质粒为模版扩增获得T7终止子的基因片段;
将ectC的基因片段、T7启动子的基因片段、T7终止子的基因片段使用Gibbson组装,获得四氢嘧啶合成酶基因的表达框T 7 -ectC-T 7ter ;
4)设计引物F11、R11,序列分别如SEQ ID NO. 22和SEQ ID NO. 23所示,利用高保真PCR聚合酶PrimeSTAR,以pET28a(+)质粒为模版扩增获得pET28a(+)质粒片段,将pET28a(+)质粒片段与T 7 -ectB-T 7ter 经Gibbson组装,获得表达载体pET28a(+)-T 7 -ectB-T 7ter ;
以表达载体pET28a(+)-T 7 -ectB-T 7ter 为模版,经BamH I和EcoR Ⅰ酶切后,与基因表达框T 7 -ectAm-T 7ter 经BamH I 和EcoR Ⅰ 酶切后的片段,利用T4连接酶进行连接获得表达载体pET28a(+)-T 7 -ectB-T 7ter - T 7 -ectAm-T 7ter ;
以pET28a(+)-T 7 -ectB-T 7ter - T 7 -ectAm-T 7ter 为模版,经Sal Ⅰ 和Hind Ⅲ 酶切后,与基因表达框T 7 -ectC-T 7ter 经Sal Ⅰ 和Hind Ⅲ 酶切后的片段,利用T4连接酶进行连接获得表达载体pET28a(+)-T 7 -ectB-T 7ter - T 7 -ectAm-T 7ter -T 7 -ectC- T 7ter 。
6.权利要求1所述2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因或权利要求2所述2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因的表达蛋白在制备四氢嘧啶中的应用。
7.根据权利要求6所述2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因在制备四氢嘧啶中的应用,其特征在于,包括以下步骤:
1)构建2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因的重组表达载体;
2)将所构建的2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因的重组表达载体转化到大肠杆菌E. coli BL21中,构建获得重组大肠杆菌表达菌株;
3)挑取重组大肠杆菌表达菌株接种于LB培养基培养获得种子液将种子液接种到发酵培养基中,培养至OD 600 nm为0.6-0.8,加入终浓度为0.1mM的IPTG,37℃,诱导24h后,8000rpm,4℃离心5min,收集上清,获得含有四氢嘧啶的发酵液。
8.根据权利要求7所述2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因在制备四氢嘧啶中的应用,其特征在于,所述发酵培养基的配方为:
每升培养基中含5-40g酵母粉,5-20g蛋白胨,2-15g磷酸氢二钾,0.5-6g磷酸二氢钾和10-80mL甘油;
或为:每升培养基中含5-40g酵母粉,5-20g蛋白胨,2-15g磷酸氢二钾,0.5-6g磷酸二氢钾和20-100g葡萄糖。
9.根据权利要求7所述2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因在制备四氢嘧啶中的应用,其特征在于,所述重组大肠杆菌表达菌株为E. coli BL21 pET28a(+)-T 7 -ectB-T 7ter - T 7 -ectAm-T 7ter -T 7 -ectC-T 7ter 。
10.权利要求3所述2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因的重组表达载体或权利要求9所述重组大肠杆菌表达菌株E. coliBL21 pET28a(+)-T 7 -ectB- T 7ter -T 7 -ectAm-T 7ter - T 7 -ectC-T 7ter 在制备四氢嘧啶中的应用。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN202311473002.8A CN117187274B (zh) | 2023-11-07 | 2023-11-07 | 2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因及其表达蛋白和应用 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN202311473002.8A CN117187274B (zh) | 2023-11-07 | 2023-11-07 | 2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因及其表达蛋白和应用 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN117187274A true CN117187274A (zh) | 2023-12-08 |
CN117187274B CN117187274B (zh) | 2024-01-26 |
Family
ID=88990981
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN202311473002.8A Active CN117187274B (zh) | 2023-11-07 | 2023-11-07 | 2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因及其表达蛋白和应用 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN117187274B (zh) |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN111867614A (zh) * | 2018-01-18 | 2020-10-30 | 艾达奈特公司 | 抗lilrb抗体及其用途 |
CN112342254A (zh) * | 2021-01-08 | 2021-02-09 | 江苏省中国科学院植物研究所 | 一种发酵生产四氢甲基嘧啶羧酸的方法 |
CN116515869A (zh) * | 2023-03-05 | 2023-08-01 | 安徽斯拜科生物科技有限公司 | 一种2,4-二氨基丁酸转移酶突变体基因及其应用 |
-
2023
- 2023-11-07 CN CN202311473002.8A patent/CN117187274B/zh active Active
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN111867614A (zh) * | 2018-01-18 | 2020-10-30 | 艾达奈特公司 | 抗lilrb抗体及其用途 |
CN112342254A (zh) * | 2021-01-08 | 2021-02-09 | 江苏省中国科学院植物研究所 | 一种发酵生产四氢甲基嘧啶羧酸的方法 |
CN116515869A (zh) * | 2023-03-05 | 2023-08-01 | 安徽斯拜科生物科技有限公司 | 一种2,4-二氨基丁酸转移酶突变体基因及其应用 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN117187274B (zh) | 2024-01-26 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US11535839B2 (en) | Encoding genes of nitrilase mutants and application thereof | |
CN109609474B (zh) | 一种氨基酸脱氢酶突变体及其在合成l-草铵膦中的应用 | |
CN111676203B (zh) | 一种亮氨酸脱氢酶突变体及其应用 | |
CN111748537B (zh) | 一种尿苷磷酸酶突变体及其应用 | |
CN112877307B (zh) | 一种氨基酸脱氢酶突变体及其应用 | |
CN112175916B (zh) | 一种l-氨基酸连接酶突变体、重组载体、重组菌及其应用 | |
CN110938580A (zh) | 一种提高d-酪氨酸生产效率的方法 | |
CN108865962B (zh) | 一种可高效可溶性表达4-α-糖基转移酶的大肠杆菌工程菌 | |
CN111172142B (zh) | 一种热稳定性高的头孢菌素c酰化酶突变体 | |
CN109777788B (zh) | 一种亮氨酸脱氢酶突变体及其应用 | |
CN116515869B (zh) | 一种2,4-二氨基丁酸转移酶突变体基因及其应用 | |
CN113817697A (zh) | 苯丙氨酸脱氢酶突变体及其在l-高苯丙氨酸合成中的应用 | |
CN109593739B (zh) | 重组酮酸还原酶突变体、基因、工程菌及其应用 | |
CN111454918A (zh) | 一种烯醇还原酶突变体及其在制备(r)-香茅醛中的应用 | |
CN114317510B (zh) | 一种马来酸顺反异构酶突变体 | |
CN115960879A (zh) | 一种d-阿洛酮糖3-差向异构酶突变体文库的高通量筛选方法及获得的突变体 | |
CN111057686A (zh) | 一种醇脱氢酶突变体及应用 | |
CN114507650B (zh) | 亮氨酸脱氢酶突变体及其在合成(s)-邻氯苯甘氨酸中的应用 | |
CN111154746A (zh) | 酰胺酶突变体及其在催化合成2-氯烟酸中的应用 | |
CN117187274B (zh) | 2,4-二氨基丁酸乙酰转移酶突变体基因及其表达蛋白和应用 | |
CN105969751B (zh) | 一种β-葡萄糖苷酶基因及其应用 | |
CN113528495A (zh) | 一种稳定表达几丁二糖脱乙酰酶的枯草芽孢杆菌及其构建方法与应用 | |
WO2020057397A1 (zh) | 一种用于重组蛋白质表达的启动子 | |
CN112921012A (zh) | 谷氨酸棒杆菌meso-2,6-二氨基庚二酸脱氢酶突变体及其应用 | |
CN115247144B (zh) | 生产l-苏式-3-羟基天冬氨酸的基因工程菌及其应用 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PB01 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
GR01 | Patent grant | ||
GR01 | Patent grant |