CN117007717A - 一种葡萄籽提取物中原花青素c1的测定方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种葡萄籽提取物中原花青素C1的测定方法,包括步骤:(1)将葡萄籽提取物待测样品加入有机溶剂提取,得供试品溶液;(2)取供试品溶液,采用液质联用仪进行检测,采用外标法定量计算样品中原花青素C1含量;其中色谱条件为:C18色谱柱,以甲酸为流动相A,甲醇为流动相B进行梯度洗脱。本发明方法运用液质联用仪分析技术进行分析,通过采集离子模式和色谱条件的优化,不仅可以排除葡萄籽提取物中与原花青素C1互为旋光异构体的原花青素C2的干扰,特别是能够使原花青素C1与多种原花青素C的同分异构体进行有效分离,并提高了原花青素C1的响应值,从而进一步提高了原花青素C1含量检测的准确性。
Description
技术领域
本发明涉及分析化学领域,具体涉及一种葡萄籽提取物中原花青素C1的测定方法。
背景技术
专利CN114910578A公开了一种葡萄籽提取物中原花青素C1的测定方法,其通过对色谱柱,流动相及洗脱程序进行优化,可以分离葡萄籽提取物中其他多酚类物质,同时可以分离互为旋光异构体的原花青素C1和原花青素C2,从而实现对原花青素C1的定量分析。然而,经四极杆飞行时间液质联用仪分析发现,葡萄籽提取物中不仅存在原花青素C2,同时还存在多种原花青素C的同分异构体(见图1),采用该测试方法并不能将原花青素C1和原花青素C的其他同分异构体进行有效分离,从而导致检测的原花青素C1含量不准确。且由图2可知,采用专利CN114910578A方法实施测定葡萄籽提取物中原花青素C1还存在基质干扰,基线上抬,正模式信号响应小,容易受基质影响定量不准,原花青素C1专属性不足的问题,原花青素C1含量的准确性有待进一步提高。因此,急需开发一种专属性强,能准确定量葡萄籽提取物中原花青素C1含量的测定方法。
发明内容
为解决上述问题,本发明的目的在于提供一种葡萄籽提取物中原花青素C1的测定方法,该方法不仅可以消除与原花青素C1互为旋光异构体的原花青素C2的干扰,特别是能够使原花青素C1与原花青素C的多种同分异构体进行有效分离,并提高了原花青素C1的响应值,从而进一步提高了原花青素C1含量检测的准确性。
本发明是通过以下技术方案实现:
一种葡萄籽提取物中原花青素C1的测定方法,包括以下步骤:
(1)将葡萄籽提取物待测样品加入有机溶剂提取,得供试品溶液;
(2)取供试品溶液,采用液质联用仪进行检测,采用外标法定量计算样品中原花青素C1含量;
其中色谱条件为:采用C18色谱柱,以体积浓度为0.05-0.5%的甲酸水溶液为流动相A,甲醇为流动相B进行梯度洗脱,梯度洗脱的程序为:
时间(min) | 流动相A(%) | 流动相B(%) |
0 | 98 | 2 |
2 | 98 | 2 |
3 | 90 | 10 |
10 | 90 | 10 |
20 | 78 | 22 |
22 | 5 | 95 |
26 | 5 | 95 |
27 | 98 | 2 |
30 | 98 | 2 |
质谱条件为:采用电喷雾负离子模式,以特征质荷比865.2为母离子,以特征质荷比286.9、577.0、575.1为子离子。
本发明方法采用有机溶剂对葡萄籽提取物待测样品进行提取,提取后供试品溶液用液质联用仪分析,以0.05-0.5%甲酸水溶液和甲醇作为流动相进行梯度洗脱,使用C18色谱柱进行原花青素同分异构体分离,并用外标法定量,得到葡萄籽提取物中原花青素C1的含量。
本发明通过采集离子模式,色谱柱,流动相及洗脱程序进行优化,可以分离葡萄籽提取物中多种原花青素C同分异构体,从而实现了对原花青素C1的准确定量。
优选的,步骤(1)中,所述有机溶剂为乙醇溶液、甲醇溶液或乙腈溶液,更优选为60-90%甲醇溶液。
优选的,步骤(2)中,所述甲酸浓度优选为0.1%。
优选的,步骤(2)中,所述C18色谱柱的5cm,内径为2.1mm,粒径为1.8μm。
优选的,步骤(2)中,所述C18色谱柱的柱温为25℃-40℃,流速为0.2-0.5mL/min。本发明与现有技术相比,具有如下优点:
本发明方法运用液质联用仪分析技术进行分析,通过采集负离子模式和色谱条件的优化,不仅可以排除葡萄籽提取物中与原花青素C1互为旋光异构体的原花青素C2的干扰,特别是能够使原花青素C1与原花青素C的多种同分异构体进行有效分离,并且提高了原花青素C1的响应值,从而进一步提高了原花青素C1含量检测的准确性。
本发明的检测方法专属性强,其线性、精密度、耐用性试验(稳定性)、专属性试验(空白)、检出限、定量限、准确度(回收率)试验,均符合GB/T27404-2008《实验室质量控制规范》的要求,该方法科学有效,能对葡萄糖籽提取物的原花青素C1含量起到质量控制的目的。
附图说明
图1为葡萄籽提取物经四极杆飞行时间液质联用仪分析色谱图;
图2为采用专利CN114910578A方法测定的色谱图;
图3为本发明原花青素C1标准品在Product Ion模式下的离子色谱图:
图4为专利CN114910578A正离子模式和离子选择的响应值;
图5为本发明负离子模式和离子选择的响应值;
图6为F5色谱柱(柱长15cm,内径4.6mm,粒径2.6μm)分析葡萄籽提取物的色谱图;
图7为C4色谱柱(柱长15cm,内径4.6mm,粒径3.6μm)分析葡萄籽提取物的色谱图;
图8为T3色谱柱(柱长10cm,内径2.1mm,粒径2.5μm)分析葡萄籽提取物的色谱图;
图9为C18色谱柱(柱长5cm,内径2.1mm,粒径1.8μm)分析葡萄籽提取物的色谱图;
图10为采用流动相选择一的色谱图;
图11为采用流动相选择二的色谱图;
图12为采用梯度洗脱程序一的色谱图;
图13为采用梯度洗脱程序二的色谱图;
图14为采用梯度洗脱程序三的色谱图;
图15为空白色谱图;
图16为标准工作溶液色谱图;
图17为样品溶液色谱图;
图18为标准工作曲线图。
具体实施方式
下面通过具体实施方式来进一步说明本发明,以下实施例为本发明具体的实施方式,但本发明的实施方式并不受下述实施例的限制,其他的任何未背离本发明的精神实质与原理下所作的改变、修饰、替代、组合、简化,均应为等效的置换方式,都包含在本发明的保护范围之内。
实施例1:
1仪器
液相色谱-质谱联用仪:液相质谱联用仪:1290InfinityⅡ型液相色谱仪(Agilent,美国)串联G6470B型质谱仪(Agilent,美国);XSE205DU型电子天平(MettlerToledo,瑞士)。
2试剂
试剂:甲酸(色谱纯),甲醇(色谱纯),一级用水。
对照品:
名称 | 厂家 | 批号 | 纯度 |
原花青素C1 | 安谱璀世 | 2354707 | 97.1% |
提取溶液:300mL水,加入700mL甲醇,混匀。
0.1%甲酸水溶液:1000mL水,加入1mL甲酸,混匀。
3分析方法
3.1仪器条件与参数:
3.1.1液相条件
色谱柱:Agilent EclipsePlus C18 RRHD 1.8μm,2.1×50mm;
柱温:30℃;
进样体积:2μL;
流速:0.3mL/min;
流动相:A为0.1%甲酸水溶液,B为甲醇;
洗脱程序见下表1:
表1
时间(min) | 流动相A(%) | 流动相B(%) |
0 | 98 | 2 |
2 | 98 | 2 |
3 | 90 | 10 |
10 | 90 | 10 |
20 | 78 | 22 |
22 | 5 | 95 |
26 | 5 | 95 |
27 | 98 | 2 |
30 | 98 | 2 |
3.1.2质谱条件
电离方式:电喷雾负离子模式;
检测方式:多反应检测(MRM);
雾化气压力:40psi;
离子喷雾电压:3000V;
干燥气温度:300℃;
干燥气流速:8L/min;
定性离子对、定量离子、碎裂电压和碰撞能量见下表2:
表2
中文名称 | 母离子(m/z) | 子离子(m/z) | 碎裂电压(V) | 碰撞能量(V) |
原花青素C1 | 865.2 | 286.9 | 160 | 30 |
原花青素C1 | 865.2 | 577.0 | 160 | 25 |
原花青素C1 | 865.2 | 575.1 | 160 | 20 |
286.9为定量离子碎片,577、575.1为定性离子碎片。
3.2对照品溶液的配制
精密称取原花青素C1对照品4.19mg,置于10mL容量瓶中,加入70%甲醇溶液溶解定容至刻度,摇匀,即得407μg/mL的对照储备液,同时作为加标溶液。
精密移取0.5mL对照储备液,置25mL容量瓶中,加70%甲醇溶液定容至刻度,摇匀,即得8.14μg/mL的对照中间液。
分别精密移取0.5mL、1.5mL、2.5mL、4.0mL、5.0mL对照中间液,置10mL容量瓶中,加70%甲醇溶液定容至刻度,摇匀,即得0.407μg/mL、1.221μg/mL、2.035μg/mL、3.256μg/mL、4.070μg/mL的标准工作溶液。
3.3标准工作曲线绘制
精密吸取工作标准液2μL,注入液相色谱-质谱联用仪,建立内标法标准曲线方程。
3.4供试品制备
精密称取均匀样品约0.1g,置于50mL容量瓶中,加入约40ml 70%甲醇溶液,摇匀,室温超声至充分溶解,约5min,取出,用70%甲醇溶液定容至容量瓶刻度,摇匀。精密移取1mL置于10mL容量瓶中,加入70%甲醇溶液定容至容量瓶刻度,摇匀,经滤膜过滤,即得样品供试液。
3.5结果计算:
式中:X—试样中原花青素C1的含量,g/100g;
C—试样溶液中原花青素C1的浓度,μg/mL;
M—试样的质量,g;
V—试样稀释的体积,mL;
K—单位转换系数,K=0.0001。
4方法学验证
4.1方法优化试验
4.1.1离子模式的优化
离子模式的选择会导致目标物质的电离效果不同,从而影响目标物质的抗干扰能力和定量,电离效果强,响应高,抗干扰能力强,定量准确。本发明用液质联用仪对原花青素C1分析研究,负模式有较强的响应值,以特征质荷比865.2为母离子,以响应值较大的特征质荷比286.9、577.0、575.1为子离子(见图3)。本发明使用4.07μg/ml的原花青素C1对比CN114910578A测定方法不同离子模式和离子选择的响应值,见表3和图4-5:
表3
由上表可知,原花青素C1采用本发明负离子模式的响应值明显更高,抗干扰能力强,定量更准确。
4.1.2色谱柱的优化
葡萄籽提取物中存在多种原花青素C1的同分异构体,其色谱、质谱行为都非常相似,需开发合适的色谱条件,使原花青素C1到基线分离。
当分离度R≥1.5时,称为6σ分离,曝光峰面积为99.7%,R(>1.5),称为完全分离。本发明试验了不同类型的色谱柱,对原花青素C1进行分离。
由图6色谱图显示F5色谱柱分析葡萄籽提取物,原花青素C同分异构体与杂质集中在25min-27min,原花青素C1的分离度R=1,不能满足完全分离的要求;
由图7色谱图显示C4色谱柱分析葡萄籽提取物,原花青素C同分异构体与杂质没有明显的色谱峰,C4色谱柱对目标物没有明显保留作用,不能满足完全分离的要求;
由图8色谱图显示T3色谱柱分析葡萄籽提取物,原花青素C1与同分异构体或杂质在21min-22min内,色谱峰之间重叠,原花青素C1的分离度R=1.2,不能满足完全分离的要求;
由图9色谱图显示C18色谱柱分析葡萄籽提取物,原花青素C1与同分异构体或杂质分离效果明显,原花青素C1的分离度R=2.7,满足完全分离的要求;因此,本发明优选C18色谱柱,原花青素C1达到基线分离,且峰型最好。
4.1.3流动相选择及梯度洗脱程序的优化
要实现原花青素C1与多种同分异构体的有效分离,流动相及洗脱程序的选择也是关键技术之一。
流动相的选择一:以乙腈-甲酸酸水为流动相检测葡萄籽提取物,流速0.3ml/min,起始2%乙腈,保持2分钟,3分钟内乙腈由2%递增至10%,10%乙腈保持7分钟,10分钟内乙腈由10%递增至22%,2分钟内乙腈由22%递增至95%,95%乙腈保持4分钟,1分钟内恢复2%乙腈保持3分钟,其色谱图如图10所示(PCC1保留时间8.579min)。结果显示,乙腈-甲酸水不能很好分离样品中原花青素C1峰与其它同分异构体或杂质峰。
流动相的选择二:以0.1%甲酸溶液和甲醇为流动相检测葡萄籽提取物,流速0.3ml/min,起始2%甲醇,保持2分钟,3分钟内甲醇由2%递增至10%,10%甲醇保持7分钟,10分钟内甲醇由10%递增至22%,2分钟内甲醇由22%递增至95%,95%甲醇保持4分钟,1分钟内恢复2%甲醇保持3分钟。其色谱图如图11所示(PCC1保留时间17.232min),结果显示,0.1%甲酸溶液和甲醇可以分离样品中原花青素C1峰与其它同分异构体或杂质。
梯度洗脱程序一:流速0.3ml/min,起始5%甲醇,保持1分钟,2分钟内甲醇由5%递增至30%,5分钟内甲醇由30%递增至80%,80%甲醇保持2分钟,2分钟内恢复5%甲醇保持3分钟。葡萄籽提取物图谱如图12所示,原花青素C1(保留时间3.25min)与同分异构体或杂质没有很好的分离度。由此可知,甲醇洗脱梯度幅度过大可使原花青素C1和同分异构体或杂质无法分离。
梯度洗脱程序二:流速0.3ml/min,起始2%甲醇,保持2分钟,3分钟内甲醇由2%递增至10%,7分钟内甲醇由10%递增至50%,1分钟内甲醇由5%递增至80%,80%甲醇保持4分钟,1分钟内恢复2%甲醇保持3分钟。葡萄籽提取物图谱如图13所示,原花青素C1(保留时间7.107min)与同分异构体或杂质没有很好的分离,杂峰个数增多。由此可知,甲醇洗脱梯度幅度降低可使原花青素C1和同分异构体或杂质分离情况改善。
梯度洗脱程序三:流速0.3ml/min,起始2%甲醇,保持2分钟,3分钟内甲醇由2%递增至10%,10%甲醇保持7分钟,10分钟内甲醇由10%递增至22%,2分钟内甲醇由22%递增至95%,95%甲醇保持4分钟,1分钟内恢复2%甲醇保持3分钟。葡萄籽提取物图谱如图14所示,原花青素C1(保留时间17.232min)与同分异构体或杂质有很好的分离,基线平整。此梯度洗脱程序可有效分离原花青素C1和同分异构体或杂质。
4.2专属性试验
4.2.1试验方法
按3.4试样制备方法处理空白溶液,按3.1色谱条件测定空白溶液,与原花青素C1标准工作溶液、供试液的出峰时间对比。
4.2.2试验结论:
如图15-17,空白溶液在原花青素C1的出峰时间处均无峰,表明空白对测定结果基本无干扰。
4.3线性范围确认
4.3.1试验数据:
表4
4.3.2标准工作曲线图
以浓度的为横坐标,峰面积的为纵坐标,绘制标准工作曲线如图16所示。
4.3.3线性试验结论
线性评价:原花青素C1相关系数R分别为0.999666,所以用该方法测定原花青素C1在浓度为0.407μg/mL至4.070μg/mL之间呈现良好的线性,符合GB/T27404-2008《实验室质量控制规范》的要求【GB/T27404-2008要求相关系数R≥0.99】。
4.4检出限和定量限
分析方法的检出限DL和定量限QL由信噪比(S/N)计算。DL定义为S/N=3时对应的待分析浓度,QL定义为S/N=10时对应的待分析浓度。
6.3.1检出限
当信噪比(S/N)为3时,原花青素C1检出限为20.35ng/mL;样品取样量0.1g,定容500mL时,方法的原花青素C1检出限为102μg/g。
6.3.2定量限
当信噪比(S/N)为10时,原花青素C1定量限为40.7ng/mL;样品取样量0.1g,定容500mL时,方法的原花青素C1定量限为204μg/g。
4.5精密度试验
4.5.1试验方法
称取6份样品,按3.4试样制备方法处理样品,检测样品含量,计算其RSD(%)。
4.5.2试验数据(见下表5)【葡萄籽提取物】
表5
4.5.3试验结论
6份样品原花青素C1含量的RSD为1.9%,表明该方法有较好的精密度,符合GB/T27404-2008《实验室质量控制规范》的要求【GB/T27404-2008要求RSD≤2.7%】。
4.6耐用性试验(稳定性)
4.6.1试验方法:
将原花青素C1供试品溶液分别在室温下放置0h、1h、3h、5h、7h、9h后,按5.1条件测定浓度(μg/mL),计算其RSD(%)。
4.6.2试验数据见表6:
表6
4.6.3试验结论
原花青素C1供试品溶液分别在室温下放置0h、1h、3h、5h、7h、9h后,原花青素C1浓度的RSD为1.2%,表明原花青素C1供试品溶液在室温下9小时内的稳定性良好。
4.7准确度试验(回收率)
4.7.1试验方法
加标:精密称取约0.1g样品9份(已知样品的原花青素C1含量:0.47g/100g),分成3组,每组3份,各组分别精密加入对照储备液(407μg/mL)0.5mL、1.0mL、1.5mL。按5.4试样制备方法处理样品。
4.7.2试验数据如下表7【试验样品为:葡萄籽提取物】
表7
测得加入量=加标样品测得量-样品测得量;
回收率(%)=测得加入量/理论加入量×100%。
4.7.3试验结论
平均回收率为:102.5%,RSD为2.2%;符合GB/T27404-2008《实验室质量控制规范》的要求【GB/T27404-2008要求回收率为95~105%】。
综上,本发明测定方法通过改变离子模式,选择C18色谱柱,优化洗脱程序,使得葡萄籽提取物中的原花青素C1和同分异构体或杂质有更好的分离,提高了响应值,准确度进一步提高。
Claims (6)
1.一种葡萄籽提取物中原花青素C1的测定方法,其特征在于,包括以下步骤:
(1)将葡萄籽提取物待测样品加入有机溶剂提取,得供试品溶液;
(2)取供试品溶液,采用液质联用仪进行检测,采用外标法定量计算样品中原花青素C1含量;
其中色谱条件为:采用C18色谱柱,以体积浓度为0.05-0.5%的甲酸水溶液为流动相A,甲醇为流动相B进行梯度洗脱,梯度洗脱的程序为:
2.质谱条件为:采用电喷雾负离子模式,以特征质荷比865.2为母离子,以特征质荷比286.9、577.0、575.1为子离子。
3.根据权利要求1所述的一种葡萄籽提取物中原花青素C1的测定方法,其特征在于,步骤(2)中,所述甲酸的质量浓度为0.1%。
4.根据权利要求1所述的一种葡萄籽提取物中原花青素C1的测定方法,其特征在于,步骤(1)中,所述有机溶剂为乙醇溶液、甲醇溶液或乙腈溶液,优选为60%-90%的甲醇溶液。
5.根据权利要求1所述的一种葡萄籽提取物中原花青素C1的测定方法,其特征在于,步骤(2)中,所述C18色谱柱的5cm,内径为2.1mm,粒径为1.8μm。
6. 根据权利要求1所述的一种葡萄籽提取物中原花青素C1的测定方法,其特征在于,步骤(2)中,所述C18色谱柱的柱温为25℃-40℃,流速为0.2-0.5 mL/min。
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