CN116925936B - 新型微生物以及麦角硫因的生产方法 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及新型微生物以及麦角硫因的生产方法。本发明的微生物是Papiliotrema flavescens(NITE BP‑03051)。
Description
本申请是原案申请日为2020年8月6日、申请号为202080085536.1(国际申请号为PCT/JP2020/030145)、发明名称为“新型微生物以及麦角硫因的生产方法”的专利申请的分案申请。
技术领域
本发明涉及一种新型微生物、以及培养该新型微生物得到麦角硫因的麦角硫因的生产方法。
背景技术
麦角硫因是含硫氨基酸的一种。麦角硫因具有比维生素E的抗氧化作用优异的抗氧化作用，在健康和美容等领域中，作为利用价值高的化合物受到关注。
例如，在专利文献1和非专利文献1中，记载有麦角硫因生产能力增强的转化丝状菌。
此外，在非专利文献2中记载有麦角硫因生产能力增强的、经转化的甲基杆菌(Methylobacterium)属的微生物。在非专利文献2中记载有短梗霉(Aureobasidium)属和红酵母(Rhodotorula)属的微生物具有麦角硫因生产能力。
此外，在非专利文献3中记载有侧耳(Pleurotus)属的微生物具有麦角硫因生产能力。
现有技术文献
专利文献
专利文献1：国际公开第2016/121285号
非专利文献
非专利文献1：S.Takusagawa，Biosci.Biotechnol.Biochem.，83，181-184(2019)
非专利文献2：Y.Fujitani et al.，J.Biosci.Bioeng.，126，715-722(2018)
非专利文献3：SY.Lin，Int.J.Med.Mushrooms，17，749-761(2015)
发明内容
发明要解决的技术问题
已知麦角硫因不在人体内生物合成，而在一部分微生物中生物合成。由此，如上述的现有技术文献中记载的那样，正在推进产生麦角硫因的微生物的探索、以及用于使麦角硫因的生产增强的微生物的改造等的研究开发。然而，现有技术文献中记载的微生物的麦角硫因的生产量低，期望探索和开发麦角硫因的生产量高的微生物。
通过基因重组技术，能以使麦角硫因的生产增强的方式对微生物进行改造。然而，通过该微生物生产的麦角硫因无法在食品产业等中利用。因此，强烈期望探索未进行基因重组、未改造的麦角硫因生产量高的微生物。
本发明是鉴于上述课题而完成的，其目的在于，提供一种麦角硫因的生产量高的新型微生物。
技术方案
本发明人等进行了筛选，结果发现比以往微生物的麦角硫因的生产量高的新型微生物，从而完成了本发明。
本发明的微生物是属于Dirkmeia churashimaensis的微生物(NITE BP-03054)、属于Papiliotrema flavescens的微生物(NITE BP-03051)、属于Papiliotremaflavescens的微生物(NITE BP-03052)、或属于Apiotrichum porosum的微生物(NITE BP-03053)。
有益效果
根据本发明的一个方案，能提供一种麦角硫因的生产量高的微生物。
附图说明
图1是表示第一次筛选结果的图表。
图2是表示第二次筛选结果的图表。
图3是表示五株新型微生物的麦角硫因生产量的评价结果的图表。
具体实施方式
本实施方式的微生物是具有生产麦角硫因的能力的属于Dirkmeia属的微生物、具有生产麦角硫因的能力的属于Papiliotrema属的微生物、或具有生产麦角硫因的能力的属于Apiotrichum属的微生物。
本实施方式的微生物的麦角硫因的生产量高。麦角硫因是含硫氨基酸的一种，具有优异的抗氧化作用。此外，本实施方式的微生物未进行利用基因重组技术等的改造，因此也能在食品产业中使用。
以下，对本实施方式的微生物进行详细说明。
〔1.Dirkmeia churashimaensis S111〕
Dirkmeia churashimaensis S111(以下，有时简称为“酵母S111”)是将在茨城县筑波市内收集的树叶(嫩叶)作为分离源首次分离出的微生物。
对核糖体RNA基因的26SrDNA的D1/D2区域、和ITS区域的碱基序列进行了确定。然后，进行了在TechnoSuruga实验室微生物鉴定系统(TechnoSuruga Laboratory，Japan)数据库DB-FU10.0、和国际碱基序列数据库(DDBJ/ENA(EMBL)/GenBank)中的BLAST相同检索。其结果是，酵母S111归属于Dirkmeia churashimaensis。此外，如实施例所示，对于作为碳源的赤藓糖醇和琥珀酸盐、以及作为氮源的硝酸盐的同化性；37℃下的生长性确认到不同，除此以外，显示与Dirkmeia churashimaensis大致类似的生理/生化学的性状。
酵母S111在千叶县木更津市上总镰足2-5-8 122号室，独立行政法人制品评价技术基盘机构(Natural Institute of Technology and Evaluation；以下，简称为“NITE”)的专利微生物保藏中心(NPMD)中保藏(原保藏日：2019年10月25日，保藏编号：NITE BP-03054)。
酵母S111的培养方法只要依据对Dirkmeia属的微生物进行的通常培养方法来进行即可。培养方式是使用了液体培养基的批次培养(batch cultivation)、或向培养体系中连续添加碳源和/或有机氮源的分批补料培养(fed-batch culture)，优选通气搅拌。作为培养基，也可以使用含有如下物质的培养基：属于Dirkmeia属的微生物能同化的碳源、氮源或无机盐等必需营养源。培养pH优选为3～8，培养温度优选为20℃～37℃，培养时间优选为2～14天。
〔2.Papiliotrema flavescens EA071〕
Papiliotrema flavescens EA071(以下，有时简称为“酵母EA071”)是将在本栖湖周边收集的芒叶作为分离源首次分离出的微生物。
对核糖体RNA基因的26SrDNA的D1/D2区域、和ITS区域的碱基序列进行了确定。然后，进行了在TechnoSuruga实验室微生物鉴定系统(TechnoSuruga Laboratory，Japan)数据库DB-FU10.0、和国际碱基序列数据库(DDBJ/ENA(EMBL)/GenBank)中的BLAST相同检索。其结果是，酵母EA071归属于Papiliotrema flavescens。此外，如实施例所示，对于作为碳源的菊粉和水溶性淀粉确认到不同，除此以外，显示与Papiliotrema flavescens大致类似的生理/生化学的性状。
酵母EA071在千叶县木更津市上总镰足2-5-8 122号室，独立行政法人制品评价技术基盘机构(NITE)的专利微生物保藏中心(NPMD)中保藏(原保藏日：2019年10月25日，保藏编号：NITE BP-03051)。
酵母EA071的培养方法只要依据对Papiliotrema属的微生物进行的通常培养方法来进行即可。培养方式是使用了液体培养基的批次培养、或向培养体系中连续添加碳源和/或有机氮源的分批补料培养，优选通气搅拌。作为培养基，也可以使用含有如下物质的培养基：属于Papiliotrema属的微生物能同化的碳源、氮源或无机盐等必需营养源。培养pH优选为3～8，培养温度优选为20℃～30℃，培养时间优选为2～14天。
〔3.Papiliotrema flavescens EA361〕
Papiliotrema flavescens EA361(以下，有时简称为“酵母EA361”)是将在诹访湖周边收集的树皮作为分离源首次分离出的微生物。
对核糖体RNA基因的26SrDNA的D1/D2区域、和ITS区域的碱基序列进行了确定。然后，进行了在TechnoSuruga实验室微生物鉴定系统(TechnoSuruga Laboratory，Japan)数据库DB-FU10.0、和国际碱基序列数据库(DDBJ/ENA(EMBL)/GenBank)中的BLAST相同检索。其结果是，酵母EA361归属于Papiliotrema flavescens。此外，如实施例所示，对于作为碳源的菊粉和水溶性淀粉确认到不同，除此以外，显示与Papiliotrema flavescens大致类似的生理/生化学的性状。
酵母EA361在千叶县木更津市上总镰足2-5-8 122号室，独立行政法人制品评价技术基盘机构(NITE)的专利微生物保藏中心(NPMD)中保藏(原保藏日：2019年10月25日，保藏编号：NITE BP-03052)。
酵母EA361的培养方法只要依据对Papiliotrema属的微生物进行的通常培养方法来进行即可。培养方式是使用了液体培养基的批次培养、或向培养体系中连续添加碳源和/或有机氮源的分批补料培养，优选通气搅拌。作为培养基，也可以使用含有如下物质的培养基：属于Papiliotrema属的微生物能同化的碳源、氮源或无机盐等必需营养源。培养pH优选为3～8，培养温度优选为20℃～30℃，培养时间优选为2～14天。
〔4.Apiotrichum porosum EA702〕
Apiotrichum porosum EA702(以下，有时简称为“酵母EA702”)是将在磐城市收集的土壤作为分离源首次分离出的微生物。
对核糖体RNA基因的26SrDNA的D1/D2区域、和ITS区域的碱基序列进行了确定。然后，进行了在TechnoSuruga实验室微生物鉴定系统(TechnoSuruga Laboratory，Japan)数据库DB-FU10.0、和国际碱基序列数据库(DDBJ/ENA(EMBL)/GenBank)中的BLAST相同检索。其结果是，酵母EA702归属于Apiotrichum porosum。此外，如实施例所示，对于作为碳源的菊粉和耐性试验中的50％D-葡萄糖确认到不同，除此以外，显示与Papiliotremaflavescens大致类似的生理/生化学的性状。
酵母EA702在千叶县木更津市上总镰足2-5-8 122号室，独立行政法人制品评价技术基盘机构(NITE)的专利微生物保藏中心(NPMD)中保藏(原保藏日：2019年10月25日，保藏编号：NITE BP-03053)。
酵母EA702的培养方法只要依据对Apiotrichum属的微生物进行的通常培养方法来进行即可。培养方式是使用了液体培养基的批次培养、或向培养体系中连续添加碳源和/或有机氮源的分批补料培养，优选通气搅拌。作为培养基也可以使用含有如下物质的培养基：属于Apiotrichum属的微生物能同化的碳源、氮源或无机盐等必需营养源。培养pH优选为3～8，培养温度优选为20℃～27℃，培养时间优选为2～14天。
〔麦角硫因的生产方法〕
本实施方式的麦角硫因的生产方法包括：培养上述微生物，得到包含麦角硫因的培养物的工序。
从包含麦角硫因的培养物中回收麦角硫因例如只要以从通常的微生物培养物中回收麦角硫因并提纯的方法来进行即可。在培养物中包含培养上清液、培养菌体、培养菌体破碎物等。例如，将培养物离心分离等而回收菌体。通过将回收的菌体供于热水提取等，得到包含麦角硫因的提取液。然后，通过对该提取液进行提纯，能回收麦角硫因。微生物的麦角硫因的生产量例如可以通过高效液相色谱法和液相色谱–质谱联用(LCMS：liquidchromatography-mass spectroscopy)等质料分析装置测定所得到的提取液，由此进行定量。
〔总结〕
本实施方式的微生物是属于Dirkmeia churashimaensis的微生物(NITE BP-03054)、属于Papiliotrema flavescens的微生物(NITE BP-03051)、属于Papiliotremaflavescens的微生物(NITE BP-03052)、或属于Apiotrichum porosum的微生物(NITE BP-03053)。
此外，本实施方式的麦角硫因的生产方法包括：培养上述微生物，得到包含麦角硫因的培养物的工序。
以下示出实施例，对本发明的实施方式进一步进行详细说明。当然，不言而喻的是，并不限定于本发明的以下的实施例，细节部分可以采用各种形态。而且，本发明并不限定于上述的实施方式，可以在权利要求所示的范围内进行各种变更，将分别公开的技术手段适当组合而得到的实施方式也包含在本发明的技术范围内。此外，本说明书中记载的文献全部作为参考被援引。
实施例
以下的实施例中，只要没有特别记载，％表示质量％。
(1)在从环境中采集的分离源中的富集培养
首先，分两次进行了从植物和土壤等环境中的微生物样品采集。其结果是，采集了合计113个样品(第一次30个，第二次83个)。
接着，将采集到的样品分别浸渍于包含筛选培养基(screening medium)2mL的15mL的塑料管中，在200rpm下、25℃下培养了3～5天。筛选培养基使用了包含抗生素的YM培养基。具体而言，使用了包含1％葡萄糖、0.5％蛋白胨、0.3％酵母提取物、0.3％麦芽提取物、0.01％链霉素硫酸盐、0.005％氯霉素的培养基。
然后，通过目视选拔出培养基浑浊(微生物增殖了)的111个样品(第一次30个，第二次81个)。
(2)基于氧化应激负荷的样品的选拔
用YM培养基将在上述(1)中选拔出的111个样品的培养液稀释为100倍或100000倍。然后，将经稀释的培养液涂布于YM琼脂培养基和添加了3mM的H2O2的YM琼脂培养基(以下简称为含H2O2的YM琼脂培养基)，在25℃下培养了2～5天。
对在YM琼脂培养基上生长的菌落数和在含H2O2的YM琼脂培养基上生长的菌落数进行了计数。然后，从YM琼脂培养基和含H2O2的YM琼脂培养基的两者中，选拔出生长有菌落的83个样品。
而且，对于选拔出的83个样品在琼脂培养基上生长的菌落，通过目视观察形态和颜色，选拔出种类不同的164个酵母样的菌落(第一次51个，第二次113个)。
(3)选拔菌落的96孔中的培养
将在上述(2)中选拔出的164个菌落接菌至包含1mL的YM培养基的96孔板(96wellplate)中，在1600rpm下、25℃下培养了3～4天。培养后，将回收的培养液在2000rpm下、4℃下进行了10分钟离心分离。用纯粹1mL对通过离心分离得到的菌体颗粒进行清洗，供于再次离心分离。
向通过离心分离得到的菌体颗粒加入0.1mL的纯水并悬浊。将所得到的悬浊液在96℃下加热10分钟，提取出菌体内成分。然后，将提取出的菌体内成分供于离心分离而去除菌体残渣，得到了提取液。
(4)利用LCMS的提取液中的麦角硫因的定量分析
用0.45μm的PVDF滤膜对在上述(3)中得到的提取液0.15mL与乙腈0.35mL混合后的溶液进行过滤。将所得到的滤液用作LCMS测定的样品。
在LCMS分析中使用了岛津制作所公司制LCMS-2020。此外，LC的色谱柱使用了SHODEX公司制的Asahipak NH2P-40 2D+保护柱。作为LC的移动相，使用了10mM甲酸铵与乙腈的混合液(10mM甲酸铵/乙腈＝30/70(v/v))。此外，流速设为0.1mL/min，在25℃下进行了分析。
在MS检测中，以同时进行ESI(Electron Spray Ionization：电喷雾离子)离子化和APCI(Atmospheric Pressure Chemical Ionization：大气压化学电离)离子化的DUIS(Dual Ion Source：双离子源)模式进行了离子化。此外，以能检测麦角硫因的m/z＝230(+)的SIM(Selected Ion Monitoring：选择离子监测)模式进行了检测。
对在上述(2)中所选拔的164个菌落的提取液进行了分析，其结果是，选拔出麦角硫因的生产量高的14个菌落(第一次5个，第二次9个)。
此外，图1和图2分别是表示在微生物样品采集第一次和第二次中采集到的微生物样品所生产的麦角硫因的量的图表。图1和图2的横轴表示在OD(Optical Density：光密度)600下对在上述(3)中培养后得到的培养液进行测定而得到的值。纵轴表示在上述(3)中培养后得到的培养液中的麦角硫因的量(mg/L(培养液))。麦角硫因的量是通过LCMS分析所得到的值。在图1和图2中，用圆围住的菌落是选拔出的14个菌落。(5)在生产麦角硫因的微生物的烧瓶中的放大培养(scale-up culture)
将在上述(4)中选拔的14个菌落接菌至包含50mL的YM培养基的300mL烧瓶中，在200rpm下、25℃下培养了7天(n＝1)。
适当采集了第3～7天的培养液。与上述(3)同样地，对菌体进行离心分离和清洗后，通过热水提取回收了提取液。
与上述(4)同样地，通过LCMS对所得到的提取液进行分析，选拔出麦角硫因的生产量高的五株(S111、EA071、EA361、EA701、EA702)。
将选拔出的五株菌落接菌至包含50mL的YM培养基的300mL烧瓶中，在200rpm下、25℃下培养了5天(n＝3)。然后，通过LCMS对培养第3天和第5天的麦角硫因的生产量进行了测定。将选拔出的五株菌落的麦角硫因的生产量示于图3。
图3中，各株的左边的条形图表示培养第3天的麦角硫因的生产量。各株的右边的条形图表示培养第5天的麦角硫因的生产量。
(7)选拔出的五株的鉴定
选拔出的五株的归属分类群的推定根据核糖体RNA基因的26SrDNA的D1/D2区域和ITS区域的碱基序列的解析来进行。
碱基序列的解析的结果推定为，S111株属于Dirkmeia churashimaensis，EA071株和EA361株属于Papiliotrema flavescens，EA701株和EA702株属于Apiotrichum porosum。
表1表示选拔出的五株麦角硫因(EGT)的生产量和生产速度。表2表示公知的微生物的生产量和生产速度。在表1和表2中，只要没有特别记载，麦角硫因(EGT)的生产量的单位就为mg/L，EGT的生产速度就为mg/L/d(麦角硫因每天的生产量)。此外，表1的EGT的生产量表示培养第5天的麦角硫因的生产量。
[表1]
[表2]
| 微生物 | EGT生产量 | EGT生产速度 | 参考文献 |
| 出芽短梗霉kz25 | 14 | 2 | J Biosci Bioeng 126(2018)715 |
| 粘质红酵母z41c | 24 | 3.4 | J Biosci Bioeng 126(2018)715 |
| 酱油曲霉 | 15 | 5 | WO2016/121285 |
| 米曲霉NSAR1 | 11.5(mg/kg) | 2.3(mg/kg/d) | Biosci Biotechnol Biochem 83(2019)181 |
| 金顶侧耳 | 13-98 | 0.8-6.1 | I J Med Mushroom 17(2015)749 |
| 水生甲基杆菌22A | 12.2 | 1.7 | J Biosci Bioeng 126(2018)715 |
由表1和表2可知，选拔出的五株麦角硫因的生产量为已知的生产麦角硫因的微生物的麦角硫因的生产量的同等以上。此外，选拔出的五株麦角硫因的生产速度也为已知的生产麦角硫因的微生物的生产速度的同等以上。
(8)S111株的分子系统学的位置和生理学的性质
对于S111株的26S rDNA的D1/D2区域碱基序列、和ITS-5.8rDNA碱基序列，进行了在国际碱基序列数据库中的BLAST相同检索。其结果是，相对于作为担子菌类酵母的一种的Dirkmeia churashimaensis的多个碱基序列，显示出相同率98.4～100％的相同性。此外，在基于所得到的碱基序列解析出的分子系统树中，S111株显示出与Dirkmeiachurashimaensis的多个碱基序列相同的分子系统学的位置。
将S111株在YM琼脂平板培养基上、27℃下培养7天，对所形成的菌落进行了观察。菌落的周缘的形状为完整，隆起状态为平坦，为褶皱状。此外，菌落的表面的形状为平滑。而且，菌落具有钝光性和黄油样，为淡橙色～奶油色。
此外，将S111株在YM琼脂平板培养基上、27℃下培养7天后，对细胞形态性状也进行了观察。营养细胞为椭圆形～卵形，增殖被确认是由于出芽。在培养开始经过了四周以上的平板上未确认到形成有性生殖器官。
上述S111株的形态学的性质在D1/D2区域和ITS区域的DNA序列解析中，与所归属的Dirkmeia churashimaensis的特征大致一致。将S111株的生理学的性质示于表3。
表3中，“+”表示阳性。“-”表示阴性。“W”表示弱阳性。“D”表示试验开始后历时一周以上的时间缓慢变为阳性，“L”表示试验开始后在两周以后急速变为阳性。
[表3]
由分子系统学的位置和生理学的性质以及麦角硫因的生产量的测定，判断S111株是归属于Dirkmeia churashimaensis的新型微生物。
(9)EA071株的分子系统学的位置和生理学的性质
对于EA071株的26S rDNA的D1/D2区域碱基序列、和ITS-5.8rDNA碱基序列，进行了在国际碱基序列数据库中的BLAST相同检索。其结果是，相对于作为担子菌类酵母的一种的浅黄隐球酵母(Cryptococcus flavescens，现用名Papiliotrema flavescens)的多个碱基序列，显示出相同率99.4～100％的相同性。此外，在基于所得到的碱基序列解析出的分子系统树中，EA071株包含于由Papiliotrema属所构成的系统群中。并且，显示出与浅黄隐球酵母(现用名Papiliotrema flavescens)CBS942T相同的分子系统学的位置。
将EA071株在YM琼脂平板培养基上、27℃下培养7天，对所形成的菌落进行了观察。菌落的周缘的形状为完整，隆起状态为靠垫形。此外，菌落的表面的形状为平滑。而且，菌落具有辉光性和粘稠性，为奶油色。
此外，将EA071株在YM琼脂平板培养基上、27℃下培养7天后，对细胞形态性状也进行了观察。营养细胞为亚球形～椭圆形，增殖被确认是由于出芽。在培养开始经过了四周以上的平板上未确认到形成有性生殖器官。
上述EA071株的形态学的性质在D1/D2区域、和ITS区域的DNA序列解析中，与所归属的Papiliotrema flavescens的特征大致一致。将EA071株的生理学的性质示于表4。
[表4]
由分子系统学的位置和生理学的性质以及麦角硫因的生产量的测定，判断EA071株是归属于Papiliotrema flavescens的新型微生物。
(10)EA361株的分子系统学的位置和生理学的性质
对于EA361株的26S rDNA的D1/D2区域碱基序列、和ITS-5.8rDNA碱基序列，进行了在国际碱基序列数据库中的BLAST相同检索。其结果是，相对于作为担子菌类酵母的一种的浅黄隐球酵母(现用名Papiliotrema flavescens)的多个碱基序列，显示出相同率99.4～100％的相同性。此外，在基于所得到的碱基序列解析出的分子系统树中，EA361株包含于由Papiliotrema属所构成的系统群中。并且，显示出与浅黄隐球酵母(现用名Papiliotremaflavescens)CBS942T相同的分子系统学的位置。
将EA361株在YM琼脂平板培养基上、27℃下培养7天，对所形成的菌落进行观察。菌落的周缘的形状为完整，隆起状态为靠垫形。此外，菌落的表面的形状为平滑。而且，菌落具有辉光性和粘稠性，为奶油色。
此外，将EA361株在YM琼脂平板培养基上、27℃下培养7天后，对细胞形态性状也进行了观察。营养细胞为亚球形～椭圆形，增殖被确认是由于出芽。在培养开始经过了四周以上的平板上未确认到形成有性生殖器官。
上述EA361株的形态学的性质在D1/D2区域和ITS区域的DNA序列解析中，与所归属的Papiliotrema flavescens的特征大致一致。将EA071株的生理学的性质示于表5。
[表5]
由分子系统学的位置和生理学的性质以及麦角硫因的生产量的测定，判断EA361株是归属于Papiliotrema flavescens的新型微生物。
(11)EA702株的分子系统学的位置和生理学的性质
对于EA702株的26S rDNA的D1/D2区域碱基序列、和ITS-5.8rDNA碱基序列，进行了在国际碱基序列数据库中的BLAST相同检索。其结果是，对于作为担子菌类酵母的一种的Trichosporon porosum(现用名Apiotrichum porosum)的多个碱基序列，显示出相同率99.3～100％的相同性。此外，在基于所得到的碱基序列解析出的分子系统树中，EA702株包含于由Trichosporon(Apiotrichum)属所构成的系统群中。并且，显示出与Trichosporonporosum(现用名Apiotrichum porosum)CBS2040T相同的分子系统学的位置。
将EA702株在YM琼脂平板培养基上、27℃下培养7天，对所形成的菌落进行观察。菌落的周缘的形状为菌丝状。菌落的隆起状态中，周缘部扁平，中央部隆起。此外，菌落的表面的形状为褶皱状。菌落具有钝光性。而且，菌落为湿性～略干燥状，颜色为白色～白奶油色。
此外，将EA702株在YM琼脂平板培养基上、27℃下培养7天后，对细胞形态性状也进行了观察。营养细胞为椭圆形～卵形，增殖被确认是由于出芽。此外，随着菌丝伸长，以侧出芽的方式增殖。在培养开始经过了四周以上的平板上未确认到形成有性生殖器官。
上述EA702株的形态学的性质在D1/D2区域和ITS区域的DNA序列解析中，与所归属的Apiotrichum porosum的特征大致一致。将EA702株的生理学的性质示于表6。
[表6]
由分子系统学的位置和生理学的性质以及麦角硫因的生产量的测定，判断EA702株为归属于Papiliotrema flavescens的新型微生物。
工业上的可利用性
本发明的微生物的麦角硫因的生产量高，能在健康和美容等领域中利用。
保藏编号
NITE BP-03051
NITE BP-03052
NITE BP-03053
NITE BP-03054
Claims (2)
1.一种微生物，其是保藏号为NITE BP-03051的、属于Papiliotrema flavescens的微生物。
2.一种麦角硫因的生产方法，其中，包括：
培养权利要求1所述的微生物，得到包含麦角硫因的培养物的工序。
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