CN116042640B - 水稻nac转录因子基因在种子活力改良中的应用 - Google Patents

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Abstract

本发明公开了水稻NAC转录因子基因在种子活力改良中的应用。所述的基因OsNAC3核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示,以及编码相应的蛋白氨基酸序列如序列表SEQ ID NO.2所示。本发明在水稻中首次报道了OsNAC3基因能调控水稻种子活力,通过试验表明突变该基因后,种子活力显著降低,过表达该基因可以显著提高种子发芽速度及成苗速度。证明本发明OsNAC3基因调控了水稻种子活力,利用该基因有助于筛选和培育高活力水稻品种,有利于直播稻生产。

Description

水稻NAC转录因子基因在种子活力改良中的应用
技术领域
本发明属于种子生物技术领域,涉及水稻NAC转录因子基因在种子活力改良中的应用。
背景技术
水稻直播栽培方式具有省工、省力、利于专业化、规模化、绿色生产等优势,近年来在我国已有长足发展。但是,直播稻生产中往往存在发芽慢、难全苗、幼苗长势弱、草害重、易倒伏等问题,严重影响直播稻产量。高活力种子可以提高田间出苗率和整齐度,有利于抑制田间杂草生长,增强作物的抗逆能力,从而保障直播稻生产。NAC蛋白家族是一类植物特异性转录因子,在N端含有一个高度保守的NAC结构域,在水稻基因组中预测有151个NAC基因,报道参与生长发育、抗病和非生物胁迫等生物途径。但有关NAC转录因子调控种子活力的分子机制研究尚少,其在种子萌发早期信号调控中的作用知之甚少。
发明内容
本发明的目的是提供一个调控水稻种子活力的OsNAC3分离克隆、功能验证和应用。
本发明的目的可通过如下技术方案实现:
本发明的一个来自水稻的OsNAC3,其核苷酸序列如序列表SEQ ID NO.1所示。
本发明所述的水稻OsNAC3,其氨基酸序列SEQ ID NO.2所示。
本发明所述的水稻OsNAC3基因或蛋白在筛选或培育高种子活力水稻品种中的应用。
所述的水稻OsNAC3在提高水稻种子活力,促进直播稻生产中的应用。
所述的应用优选,过表达OsNAC3基因以提高水稻种子活力。
本发明所述的水稻OsNAC3基因突变体获得和基因功能验证,包括如下步骤:
(1)获得水稻OsNAC3基因的核苷酸序列及氨基酸序列;
(2)设计靶位点及其引物,以pCBC-MT1T2为模板进行PCR扩增,纯化回收PCR产物,获得MT1T2-PCR载体;
(3)将步骤(2)得到的带有OsNAC3基因的目标片段的MT1T2-PCR胶回收产物构建到pHUE411载体上,获得pHUE411+MT1T2-PCR载体;
(4)将步骤(3)得到的带有OsNAC3基因目标片段的质粒转化农杆菌;将带有转化质粒的农杆菌转化水稻;
(5)水稻突变体筛选与鉴定,并进行发芽表型鉴定。
进一步的,在步骤(1)中利用水稻cDNA为模板,PCR克隆出该基因的序列,所述PCR的上游引物序列如序列表SEQ ID NO.3所示,下游引物序列如序列表SEQ ID NO.4所示。
进一步的,在步骤(2)中构建的水稻OsNAC3 CRISPR/Cas9突变体gRNA靶序列(OsNAC3基因中19bp的目标片段)如序列表SEQ ID NO.5、SEQ ID NO.6(两个靶点);以pCBC-MT1T2为模板进行PCR扩增的引物序列如序列表SEQ ID NO.7、SEQ ID NO.8、SEQ ID NO.9、SEQ ID NO.10;
在步骤(3)中,用BsaI酶切pHUE411载体,利用同源重组法获得pHUE411+MT1T2-PCR载体。
在步骤(5)中,筛选纯合突变体所用上游引物序列如序列表所示SEQ ID NO.11,下游引物序列如序列表SEQ ID NO.12所示。
本发明所述的水稻OsNAC3基因过表达材料的构建和基因功能验证,包括如下步骤:
(1)获得水稻OsNAC3基因的核苷酸序列及氨基酸序列;
(2)以水稻cDNA为模板进行PCR扩增,纯化回收PCR产物,获得OsNAC3基因CDS片段;
(3)将步骤(2)获得OsNAC3基因CDS片段,利用带同源重组接头的引物进行PCR扩增,纯化回收PCR产物,获得带同源重组接头的CDS片段;
(4)将步骤(3)得到的带有OsNAC3基因的目标片段构建到pUN1301体上,获得重组质粒;
(5)将步骤(4)得到的带有OsNAC3基因目标片段的质粒转化农杆菌;将带有转化质粒的农杆菌转化水稻;
(6)水稻OsNAC3基因过表达材料筛选及种子活力表型鉴定。
进一步的,在步骤(2)中利用水稻cDNA为模板PCR克隆出该基因的引物序列,所述PCR的上游引物序列如序列表SEQ ID NO.3所示,下游引物序列如序列表SEQ ID NO.4所示。
进一步的,在步骤(3)中利用OsNAC3基因CDS片段为模板PCR克隆出该基因带同源重组接头的引物序列,所述PCR的上游引物序列如序列表SEQ ID NO.13所示,下游引物序列如序列表SEQ ID NO.14所示。
进一步的,在步骤(4)中,用KpnI和SacI酶切pUN1301载体,利用同源重组法获得重组载体。
在步骤(6)中,利用潮霉素抗性标签筛选阳性过表达材料所用上游引物序列如序列表SEQ ID NO.15所示,下游引物序列如序列表SEQ ID NO.16所示。水稻种子活力鉴定。
本发明所述的一种检测OsNAC3在水稻种子吸胀不同阶段的表达特征,包括如下步骤:
(1)分别取不同吸胀时间水稻种子;
(2)用OMEGA HP Plant RNA Kit(R6837-02)试剂盒提取各个样的RNA;
(3)用II Reverse Transcriptase system(Vazyme Biotech Co.,Ltd)试剂盒反转录形成cDNA,以其为模板;
(4)用荧光定量PCR进行分析,荧光定量PCR检测引物序列,所述上游引物序列如序列表SEQ ID NO.17所示,所述下游引物序列如序列表SEQ ID NO.18所示。
在步骤(4)中,采用水稻内参基因OsActin引物,所述上游引物的序列如序列表SEQID NO.19所示,所述下游引物的序列如序列表SEQ ID NO.20所示。
有益效果:
(1)本发明从水稻中分离、克隆获得OsNAC3基因,通过构建CRISPR/Cas9突变体首次证明了该基因参与水稻种子活力调控。通过构建该基因的过表达载体并将其转染水稻日本晴证实该基因能够正向调控种子萌发及幼苗出土。
(2)本发明为培育高活力水稻品种提供了基础,也为提高水稻直播稻生产提供了重要的基因资源,对生产具有重要意义。
因此,利用参与水稻种子活力调控的OsNAC3,对筛选和培育高活力水稻品种提供帮助,对直播稻生产具有重要意义。
附图说明
图1:水稻OsNAC3基因在种子吸胀过程中的表达分析
图2:OsNAC3野生型、突变体和过表达材料种子活力比较
(A)OsNAC3在过表达材料中的基因表达量检测结果;
(B)OsNAC3突变体材料表型;
(C)OsNAC3过表达材料表型
具体实施方式
本发明结合附图和具体实施例作进一步说明,实施例中所用方法无特别说明均为常规方法,所用引物、测序由广州天一辉远基因科技有限公司完成;实验中用到的各种限制性内切酶、连接酶、DNA Marker、Tag DNA聚合酶、dNTPs等购自广州硕恒生物科技有限公司;反转录试剂盒购于诺唯赞生物科技有限公司;质粒提取试剂盒、胶回收试剂盒以及基因组提取试剂盒购于北京擎科生物科技有限公司,方法均参照说明书进行。
实施例1:基因克隆
利用粳稻品种日本晴cDNA为模板PCR克隆出OsNAC3基因的序列,PCR的上游引物序列如序列表SEQ ID NO.3所示,下游引物序列如序列表SEQ ID NO.4所示。获得水稻OsNAC3基因的核苷酸序列及氨基酸序列,其核苷酸序列如序列表SEQ ID NO.1所示,其氨基酸序列SEQ ID NO.2所示。
实施例2:OsNAC3基因表达分析
利用粳稻品种日本晴,每次重复挑选健康饱满的种子15粒,用0.1%的氯化汞溶液表面消毒5min,蒸馏水冲洗3次,将种子表面擦干,置于培养皿中,加入10ml的蒸馏水,放置25℃条件下光照/黑暗各12h培养,吸胀0、4、8、12、18、24、36、48、60、72h后取样。样品经液氮冷冻处理后迅速磨成粉末,样品贮存于-80℃。试验重复3次。
用OMEGA HP Plant RNA Kit(R6837-02)试剂盒提取各个样的RNA;用IIReverse Transcriptase system(Vazyme Biotech Co.,Ltd)试剂盒反转录形成cDNA,以其为模板;用荧光定量PCR进行分析,荧光定量PCR检测OsNAC3的引物序列,所述上游引物序列如序列表SEQ ID NO.17所示,所述下游引物序列如序列表SEQ ID NO.18所示。采用水稻内参基因OsActin引物,所述上游引物的序列如序列表SEQ ID NO.19所示,所述下游引物的序列如序列表SEQ ID NO.20所示。结果表明,在水稻种子萌发过程中,OsNAC3在种子吸胀8-12h表达量较高。因此,我们推测该基因在种子萌发初期发挥功能,调控种子萌发。
实施例3:突变体构建
登录到网站http://skl.scau.edu.cn/targetdesign/,筛选靶点。靶点序列如序列列表SEQ ID NO.5、SEQ ID NO.6,以靶点序列设计引物,引物结构如序列列表SEQ IDNO.7、SEQ ID NO.8、SEQ ID NO.9、SEQ ID NO.10。以pCBC-MT1T2为模板进行四引物PCR扩增,纯化回收PCR产物,获得MT1T2-PCR载体。用BsaI酶切pHUE411载体,利用同源重组法将MT1T2-PCR胶回收产物构建到pHUE411载体上,获得pHUE411+MT1T2-PCR载体。
得到的含有pHUE411+MT1T2-PCR载体的质粒转化农杆菌;将带有转化质粒的农杆菌转化野生型的粳稻品种日本晴;利用PCR扩增产物测序,与野生型比对,筛选纯合突变体,所用上游引物序列如序列表SEQ ID NO.11所示,下游引物序列如序列表SEQ ID NO.12所示。
实施例4过表达材料的构建
以水稻cDNA为模板进行PCR扩增,纯化回收PCR产物,获得OsNAC3基因CDS片段,所述PCR的上游引物序列如序列表SEQ ID NO.3所示,下游引物序列如序列表SEQ ID NO.4所示。将获得OsNAC3基因CDS片段为模板,利用带同源重组接头的引物进行PCR扩增,纯化回收PCR产物,获得带同源重组接头的CDS片段,所述PCR的上游引物序列如序列表SEQ ID NO.13所示,下游引物序列如序列表SEQ ID NO.14所示。利用同源重组法把带有OsNAC3基因的目标片段构建到pUN1301载体上,获得重组质粒;将重组质粒转化农杆菌,将带有转化质粒的农杆菌转化野生型的粳稻品种日本晴;利用PCR扩增潮霉素抗性标签筛选阳性过表达材料,所用上游引物序列如序列表SEQ ID NO.15所示,下游引物序列如序列表SEQ ID NO.16所示。
实施例5:过表达材料中OsNAC3基因表达量检测
利用粳稻品种日本晴及过表达材料,重复挑选健康饱满的种子15粒,用0.1%的氯化汞溶液表面消毒5min,蒸馏水冲洗3次,将种子表面擦干,置于含有双层滤纸的培养皿中,加入10mL蒸馏水,放置25℃条件下光照/黑暗各12h培养18小时。样品经液氮冷冻处理后迅速磨成粉末,样品贮存于-80℃。试验重复3次。
用OMEGA HP Plant RNA Kit(R6837-02)试剂盒提取野生型和过表达幼苗的RNA;用II Reverse Transcriptase system(Vazyme Biotech Co.,Ltd)试剂盒反转录形成cDNA,以其为模板;用荧光定量PCR进行分析,荧光定量PCR检测OsNAC3的引物序列,所述上游引物序列如序列表SEQ ID NO.17所示,所述下游引物序列如序列表SEQ ID NO.18所示。采用水稻内参基因OsActin引物,所述上游引物的序列如序列表SEQ ID NO.19所示,所述下游引物的序列如序列表SEQ ID NO.20所示。结果表明,OsNAC3在过表达材料中基因的表达量显著高于野生型(图2A)。
实施例6:基因突变及过表达材料表型分析
利用构建的OsNAC3 CRISPR/Cas9突变体OsNAC3-1、OsNAC3-2、过表达及野生型日本晴(WT)水稻品种,进行土培发芽试验。具体方法如下:每次重复挑选健康饱满的种子30粒,用0.1%的氯化汞溶液表面消毒5min,蒸馏水冲洗3次,将种子表面擦干,置于盛有营养土的花盆中进行发芽实验,放置25℃条件下光照/黑暗各12h培养,统计发芽成苗情况。试验重复3次。结果表明,与野生型比较,突变体材料种子活力显著降低(图2B)与野生型比较,过表达OsNAC3基因显著提高了种子活力(图2C)。可见,该基因对提高种子活力具有重要作用。

Claims (2)

1.水稻OsNAC3基因在筛选或培育正向调控种子萌发及幼苗出土的水稻品种中的应用,所述的水稻OsNAC3基因核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示。
2.根据权利要求1所述的应用,其特征在于过表达水稻OsNAC3基因能够正向调控种子萌发及幼苗出土。
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