CN115927698A - 同时检测小麦抗赤霉病基因Fhb1与Fhb7的多重PCR标记引物组及其应用 - Google Patents
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Abstract
本申请公开了一组可以同时检测小麦抗赤霉病基因Fhb1与Fhb7的多重PCR标记引物组,该引物组由核苷酸序列依次如SEQ ID NO.1‑SEQ ID NO.4所示的引物组成;该引物组首次实现对小麦抗赤霉病基因Fhb1与Fhb7的多重PCR标记的同时检测,通过一次PCR即可这两种抗性基因进行检测,提高分子标记辅助选择效,加快小麦育种进程;此外,该分子标记引物对通过人工比对和校正而获得,扩增效率较高,扩增结果特异性好,进一步提高分子标记辅助选择的准确性。
Description
技术领域
本申请涉及分子标记领域,特别是一种同时检测小麦抗赤霉病基因Fhb1与Fhb7的多重PCR标记引物组及应用。
背景技术
小麦是最重要的粮食作物之一,其生产安全对社会经济稳定具有重要意义。小麦生产易受多种病害影响,由禾谷镰刀菌(Fusarium graminearum)引起的赤霉病与禾布氏白粉菌(Blumeria graminis f.sp.tritici)引起的白粉病严重影响小麦的产量及品质(Parry D W,Jenkinson P,Mcleod L.Fusarium Ear Blight(Scab)in Small GrainCereals-a Review.Plant Pathology,1995,44:207-238;Zhao Z,Sun H,Song W,Lu M,Huang J,Wu L,Wang X,Li H.Genetic analysis and detection of the geneMlLX99onchromosome 2BL conferring resistance to powdery mildew in the wheat cultivarLiangxing 99.Theoretical&Applied Genetics,2013,126:3081-3089.)。在我国,小麦赤霉病过去主要发生于长江中下游麦区、华南冬麦区和东北春麦区,近年来扩展至黄淮麦区、北方麦区、西南麦区和西北麦区。
Fhb1与Fhb7是目前仅有的2个被成功克隆的抗赤霉病基因(Li G,Zhou J,Jia H,Gao Z,Fan M,Luo Y,Zhao P,Xue S,Li N,Yuan Y,Ma S,Kong Z,Jia L,An X,Jiang G,LiuW,Cao W,Zhang R,Fan J,Xu X,Liu Y,Kong Q,Zheng S,Wang Y,Qin B,Cao S,Ding Y,ShiJ,Yan H,Wang X,Ran C,Ma Z.Mutation of a Histidine-Rich Calcium-Binding-Protein Gene in Wheat Confers Resistance to Fusarium Head Blight.NatureGenetics,2019,51:1106-1112;Su Z,Bernardo A,Tian B,Chen H,Wang S,Ma H,Cai S,Liu D,Zhang D,Li T,Trick H,St.Amand P,Yu J,Zhang Z,Bai G.A Deletion Mutationin Tahrc Confers Fhb1 Resistance to Fusarium Head Blight in Wheat.NatureGenetics,2019,51:1099-1105;WANG H W,SUN S L,GE W Y,ZHAO L F,HOU B Q,WANG K,LYU ZF,CHEN L Y,XU S S,GOU J,LI M,SU P S,LI X F,WANG G P,BO C Y,FANG X J,ZHUANG W W,CHENG X X,WU J W,DONG L H,CHEN W Y,LI W,XIAO G L,ZHAO J X,HAO Y C,XU Y,GAO Y,LIU W J,Liu,Y H,Yin,H Y,Li J Z,Li X,Zhao,Y,Wang X Q,Ni F,Ma X,Li AF,Xu,SS,Bai,GH,Nevo,E,Gao,CX,Ohm,H,Kong,LR.Horizontal gene transfer of Fhb7from fungus underlies Fusarium head blight resistance in wheat.Science,2020,368:eaba5435)。其中,Fhb1位于3B染色体短臂,是目前在小麦抗赤霉病育种中应用最为广泛,也最为成功的抗病位点(Xie GQ,Zhang MC,Chakraborty S,Liu CJ.The effect of3BS locus of Sumai 3 on Fusarium head blight resistance in Australianwheats.Animal Production Science.2007,47:603-607),其诊断标记已得到广泛应用(朱展望,徐登安,程顺和,高春保,夏先春,郝元峰,何中虎.中国小麦品种抗赤霉病基因Fhb1的鉴定与溯源.作物学报,2018,44:473-482),对抗赤霉病育种工作具有重要推动作用。Fhb7来源于小麦近缘种长穗偃麦草(Thinopyrum ponticum)7EL染色体,研究人员通过不断回交,成功创制出携带该位点的小麦-长穗偃麦草的小片段代换系,目前已成功应用于小麦育种工作,携带Fhb7的首个小麦品种于2021年获得审定。小麦赤霉病抗性是由多基因调控的数量性状,通过聚合不同抗性基因可促进产生持久稳定抗性,对小麦抗赤霉病育种具有重要意义。
多重PCR能在同一反应体系中鉴定多个基因位点,大大节约时间和试剂,具有高效、经济的特点(许立奎,潘彬荣,岳高红,梅喜雪,刘永安,张宗宸,周志辉.抗白粉病糯性小麦的多重PCR分子鉴定技术[J].核农学报,2014,28:1203-1207)。但目前在小麦中成功应用的多重PCR引物较少,这是因为多重PCR的引物不是单个PCR引物的简单混合,引物组合的设计时需要考虑:(1)避免引物间形成二聚体,影响目的片段扩增与检测;(2)各引物与其他扩增片段和模板不存在较大的互补性,扩增片段间同源性不能太高;(3)引物的退火温度尽可能接近,长度差异不能太大;(4)扩增片段大小存在一定差异,以便电泳检测等问题,而同时满足这些要求的多重PCR引物较难获得,进而影响了多重PCR引物的应用。目前对Fhb1与Fhb7两个基因均是单独进行PCR鉴定,尚未见同时鉴定两个基因的多重PCR标记报道。
发明内容
针对上述问题,本申请提供一种可以同时检测小麦抗赤霉病基因Fhb1与Fhb7的多重PCR标记引物组,以实现对小麦抗赤霉病基因的一次性检测,提高小麦育种选择效率。
具体而言,本申请是通过如下技术方案实现的:
首先,本申请提供了一组可以同时检测小麦抗赤霉病基因Fhb1与Fhb7的多重PCR标记引物组,该引物组包括核苷酸序列分别如SEQ ID NO.1、SEQ ID NO.2、SEQ ID NO.3、SEQ ID NO.4所示的4组引物。
其次,本申请还提供了上述多重PCR标记引物组在同时检测小麦抗赤霉病基因Fhb1与Fhb7的应用。其具体步骤如下:以小麦基因组DNA为模板,以核苷酸序列分别如SEQID NO.1-SEQ ID NO.4所示的引物组进行PCR扩增,再对扩增产物进行电泳;若电泳产物出现大小为226bp的条带,则判定该小麦携带小麦抗赤霉病基因Fhb1;若出现大小为449bp的条带,则判定该小麦携带抗白粉病基因Fhb7;同时若出现大小为226bp和449bp两个条带,则判定该小麦同时携带小麦抗赤霉病基因Fhb1与Fhb7;若未出现大小为226bp和449bp的两个条带,则认为该小麦不携带小麦抗赤霉病基因Fhb1与Fhb7。其中,226bp条带对应基因Fhb1,449bp条带对应基因Fhb7。
进一步而言,上述PCR扩增体系(10μL):2×Rapid Taq Master Mix 5μl(南京诺唯赞生物科技股份有限公司),浓度为10μM的4条引物各0.25μl,浓度为50ngμL-1的模板DNA 3μl,ddH2O补足至10μl;所述引物核苷酸序列依次如SEQ ID NO.1-SEQ ID NO.4所示;
PCR扩增程序:第一步:94℃,3min;第二步:94℃15s,58℃30s,72℃30s延伸,35个循环;第三步:72℃延伸5min;扩增产物用1.5%琼脂糖凝胶电泳检测。
小麦抗病育种中,在早期世代即可以通过本分子标记的检测结果对小麦的抗性进行选择,加快育种进程。本发明引物组首次实现对小麦抗赤霉病基因Fhb1与Fhb7的多重PCR标记的同时检测,提高分子标记辅助选择效率。此外,本发明中的分子标记引物对通过人工比对和校正而获得,扩增效率较高,扩增结果特异性好,进一步提高分子标记辅助选择的准确性。
附图说明
图1为实施例1中M1P7引物组开发比较电泳图。
图2为实施例1中M1P7引物组验证比较电泳图。
图3为实施例2中92份品系材料检测电泳图。
具体实施方式
以下实施例中涉及的宁麦9号、扬麦158、山农A064和扬麦18由江苏省农业科学院小麦遗传育种团队保存并提供,92份品系材料为宁麦13(携带Fhb1)(参见文献“姜朋,张鹏,姚金保,吴磊,何漪,李畅,马鸿翔,张旭.宁麦系列小麦品种的性状特点及相关基因位点分析.中国农业科学,2022,55:233-247”)与山农A064(携带Fhb7)的杂交后代,实施例中使用为F5世代,由江苏省农业科学院小麦遗传育种团队杂交并提供。
实施例1
1、材料方法
试验材料包含宁麦9号(仅携带Fhb1)、扬麦158(不携带Fhb1和Fhb7)、山农A064(仅携带Fhb7)和扬麦18(仅携带Fhb1)(参见文献“姜朋,张鹏,姚金保,吴磊,何漪,李畅,马鸿翔,张旭.宁麦系列小麦品种的性状特点及相关基因位点分析.中国农业科学,2022,55:233-247;蒋正宁,吕国锋,王玲,陈甜甜,江伟,李东升,高德荣,张勇.扬麦品种(系)赤霉病抗扩展性基因分子检测及其抗性评价.麦类作物学报,2019,39(12):1406-1415”)及92份高代品系(F5世代)。
本实施例利用Primer 6.0引物设计软件进行多重PCR引物的设计。引物均由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。
将所有试验材料小麦种子室温萌发7d左右,剪取幼嫩叶片,采用CTAB法提取基因组DNA(该提取方法参见文献“Porebski S,Bailey L,Baum B.Modification of Ctab DNAExtraction Protocol for Plants Containing High Polysaccharide and PolyphenolComponents.Plant Molecular Biology Reporter,1997,15:8-15”)。
作为对比例使用的Fhb1的诊断标记JAASM395(参见中国专利ZL201811515195.8)与Fhb7的诊断标记(参见“WANG H W,SUN S L,GE W Y,ZHAO L F,HOU B Q,WANG K,LYU ZF,CHEN L Y,XU S S,GOU J,LI M,SU P S,LI X F,WANG G P,BO C Y,FANG X J,ZHUANG W W,CHENG X X,WU J W,DONG L H,CHEN W Y,LI W,XIAO G L,ZHAO J X,HAO Y C,XU Y,GAO Y,LIU W J,Liu,Y H,Yin,H Y,Li J Z,Li X,Zhao,Y,Wang X Q,Ni F,Ma X,Li A F,Xu,SS,Bai,GH,Nevo,E,Gao,CX,Ohm,H,Kong,LR.Horizontal gene transfer of Fhb7 fromfungus underlies Fusarium head blight resistance in wheat.Science,2020,368:eaba5435”)的报道的PCR程序与体系进行。
2、多重PCR标记的开发与验证
利用现有软件设计引物时,通常是针对单个标记进行标记开发,然后将引物进行混合,但该方法易出现引物发生结合而无法有效扩增的问题。因此本实施例在引物设计过程中,在软件提供的结果基础上,人工进一步对各条引物进行调整和评估,避免不同引物间的特异性结合,增加目的片段扩增效率。
本实施例依照以上设计思路设计多重PCR引物,其中3组多重引物(A/B/C)如下表1所示,每组均包含2条前引物(F1、F2)与2条后引物(R1、R2),F1与R1目的片段对应Fhb1,F2与R2目的片段对应Fhb7。
表1
PCR扩增体系(10μL):2×Rapid Taq Master Mix 5μl(P222-AA,Vazyme),浓度为10μM的前后引物各0.25μl,浓度为50ng/μL的模板DNA3μl,ddH2O补足至10μl;
PCR扩增程序:第一步:94℃,3min;第二步:94℃15s,58℃30s,72℃30s延伸,35个循环;第三步:72℃延伸5min。扩增产物用1.5%琼脂糖凝胶电泳检测。
表1引物扩增结果如图1所示。图1中,M为DL2000 marker,泳道1-19为从92份宁麦13与山农A064的杂交后代中随机选择的品系,后面泳道依次为宁麦9号、扬麦158、扬麦18和山农A064(重复2次)。引物组A扩增结果符合预期,即宁麦9号与扬麦18能够扩增出Fhb1的目的条带,扬麦158无法扩增出两个目的条带,山农A064能够扩增出Fhb7的目的条带。引物组B扩增结果与预期不符。引物组C的扬麦158和山农A064存在Fhb1的弱阳性条带,会影响结果判读。因此引物组A可作为多重PCR引物组,申请人将其自命名为M1P7。
进一步利用20份高代品系(F5世代)小麦材料对JAASM395、Fhb7诊断标记、M1P7进行引物比较检测,结果如图2和下表2所示。
表2
图2中,A为Fhb1诊断标记JAASM395的扩增(SEQ ID NO.13,引物F:GTCTCCGTTCAATTCGGTGAGT;SEQ IDNO.14引物R:GACAATGTGAAGGCGTTGTCTA),B为Fhb7诊断标记的扩增(SEQ IDNO.15引物F:AACATGCTGCGCCGTCAACCCTTGG;SEQ IDNO.16引物R:ATCCAAGGGAAGTCCGTGGACCATG),C为多重PCR标记M1P7的扩增,泳道1-20所示的20份小麦材料为从92份宁麦13与山农A064的杂交后代中随机选择的高代品系(F5世代),泳道21为宁麦9号,22为扬麦158,23为山农A064,24为扬麦18。226bp条带对应Fhb1,449bp条带对应Fhb7,宁麦9号、扬麦18携带Fhb1,仅能扩增出226bp条带,山农A064携带Fhb7,仅能扩增出449bp条带,扬麦158不携带Fhb1和Fhb7,无法扩增出两个目的条带。多重PCR标记M1P7与JAASM395及Fhb7诊断标记扩增结果完全一致(表2)。
实施例2多重PCR标记引物组M1P7的应用
对92份宁麦13与山农A064的杂交后代F5世代材料进行快速鉴定,PCR体系和扩增程序同实施例1。检测结果如图3及表3所示。
表3
由表3和图3检测结果可知,这92份材料中,携带Fhb1的材料有60份,携带Fhb7的有51份,同时携带2个位点的材料有37份。这些鉴定结果均由一次PCR检测获得,提高了检测效率,可为小麦抗病育种提供支持。
Claims (4)
1.同时检测小麦抗赤霉病基因Fhb1与Fhb7的多重PCR标记引物组,其特征在于,所述多重PCR标记引物组由核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示的引物F1、核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示的引物F2、核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示的引物R1、核苷酸序列如SEQ ID NO.4所示的引物R2组成。
2.如权利要求1所述多重PCR标记引物组在同时检测小麦抗赤霉病基因Fhb1与Fhb7中的应用。
3.如权利要求2所述的应用,其特征在于,步骤如下:以小麦基因组DNA为模板,以所述多重PCR标记引物组为引物进行PCR扩增后电泳;若电泳产物出现大小为226bp的条带,则判定该小麦携带小麦抗赤霉病基因Fhb1;若出现大小为449bp 的条带,则判定该小麦携带抗白粉病基因Fhb7;同时若出现大小为226bp和449bp 两个条带,则判定该小麦同时携带小麦抗赤霉病基因Fhb1与Fhb7。
4.如权利要求3所述的应用,其特征在于,所述PCR扩增是指:
PCR扩增体系:2×Rapid Taq Master Mix 5 µl,浓度为10 µM的所述引物F1 0.25 µl,浓度为10 µM的所述引物F2 0.25 µl,浓度为10 µM的所述引物R1 0.25 µl,浓度为10 µM的所述引物R2 0.25 µl,浓度为50 ng/ μL的模板 DNA 3 µl,ddH2O补足至10 µl;
PCR扩增程序:第一步:94℃,3 min;第二步:94˚C 15 s,58˚C 30 s,72˚C 30 s延伸,35个循环;第三步:72˚C延伸5 min。
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CN102653759A (zh) * | 2012-03-28 | 2012-09-05 | 南京农业大学 | 小麦抗赤霉病扩展基因Fhb1的分子标记及其应用 |
CN103146699A (zh) * | 2012-03-27 | 2013-06-12 | 南京农业大学 | 小麦抗赤霉病侵染基因Fhb4的分子标记MAG7237及其应用 |
CN105123507A (zh) * | 2015-09-08 | 2015-12-09 | 山东农业大学 | 源于长穗偃麦草抗赤霉病基因Fhb7短片段易位系及其应用 |
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CN108359739A (zh) * | 2018-04-24 | 2018-08-03 | 南京农业大学 | 一个抗赤霉病相关基因TaRLK-B的SNP标记引物及其应用 |
CN113005222A (zh) * | 2021-05-12 | 2021-06-22 | 江苏省农业科学院 | 同时检测小麦抗赤霉病基因与抗白粉病基因的多重pcr标记引物组及其应用 |
-
2022
- 2022-07-15 CN CN202210833713.0A patent/CN115927698A/zh active Pending
Patent Citations (8)
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