CN115927473A - 一种用于单纯疱疹病毒感染性疾病的基因治疗药物 - Google Patents

一种用于单纯疱疹病毒感染性疾病的基因治疗药物 Download PDF

Info

Publication number
CN115927473A
CN115927473A CN202210833075.2A CN202210833075A CN115927473A CN 115927473 A CN115927473 A CN 115927473A CN 202210833075 A CN202210833075 A CN 202210833075A CN 115927473 A CN115927473 A CN 115927473A
Authority
CN
China
Prior art keywords
hsv
grna
crispr
vlp
plasmid
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN202210833075.2A
Other languages
English (en)
Inventor
凌思凯
汪啸渊
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Shanghai Bendao Gene Technology Co ltd
Original Assignee
Shanghai Bendao Gene Technology Co ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Shanghai Bendao Gene Technology Co ltd filed Critical Shanghai Bendao Gene Technology Co ltd
Priority to CN202210833075.2A priority Critical patent/CN115927473A/zh
Publication of CN115927473A publication Critical patent/CN115927473A/zh
Priority to PCT/CN2023/088908 priority patent/WO2024011980A1/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Images

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K48/00—Medicinal preparations containing genetic material which is inserted into cells of the living body to treat genetic diseases; Gene therapy
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/12—Antivirals
    • A61P31/20—Antivirals for DNA viruses
    • A61P31/22—Antivirals for DNA viruses for herpes viruses
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/005—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from viruses
    • C07K14/01—DNA viruses
    • C07K14/03—Herpetoviridae, e.g. pseudorabies virus
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/005—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from viruses
    • C07K14/08—RNA viruses
    • C07K14/15—Retroviridae, e.g. bovine leukaemia virus, feline leukaemia virus human T-cell leukaemia-lymphoma virus
    • C07K14/155—Lentiviridae, e.g. visna-maedi virus, equine infectious virus, FIV, SIV
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/11—DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
    • C12N15/113—Non-coding nucleic acids modulating the expression of genes, e.g. antisense oligonucleotides; Antisense DNA or RNA; Triplex- forming oligonucleotides; Catalytic nucleic acids, e.g. ribozymes; Nucleic acids used in co-suppression or gene silencing
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/85—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells
    • C12N15/86—Viral vectors
    • C12N15/867—Retroviral vectors
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14—Hydrolases (3)
    • C12N9/16—Hydrolases (3) acting on ester bonds (3.1)
    • C12N9/22—Ribonucleases RNAses, DNAses
    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Abstract

本发明公开了一种用于单纯疱疹病毒感染性疾病的基因治疗药物；本发明利用慢病毒载体VLP‑CRISPR或VLP‑CRISPR‑2gRNA递送靶向HSV复制相关基因的gRNA；具体是将靶向HSV复制相关的基因中任意一个或者两个基因的向导序列分别放到VLP‑CRISPR或者VLP‑CRISPR‑2gRNA中gRNA骨架前端；得到VLP‑CRISPR‑gRNA1或VLP‑CRISPR‑gRNA1/gRNA2。具体的，得到VLP‑CRISPR‑UL29/UL8或VLP‑CRISPR‑UL52/UL8；其中VLP‑CRISPR‑UL29/UL8可直接清除HSV‑1；通用型VLP‑CRISPR‑UL52/UL8可有效直接清除HSV‑1和HSV‑2，而不仅仅是暂时抑制病毒的复制通路。

Description

一种用于单纯疱疹病毒感染性疾病的基因治疗药物
技术领域
本发明属于基因药物领域，涉及一种用于单纯疱疹病毒感染性疾病的基因治疗药物。
背景技术
单纯疱疹病毒(Herpes simplex virus，HSV)属于人类疱疹病毒科α亚科，是一种有包膜的球形病毒。分单纯疱疹病毒Ⅰ型(Herpes simplex virusⅠ，HSV-1)和单纯疱疹病毒Ⅱ型(Herpes simplex virusⅡ，HSV-2)。都是致病性病毒，可引起疱疹性脑炎、疱疹性角膜炎、生殖器疱疹或新生儿脑炎，至今无药可根治，也没有疫苗预防感染。
单纯疱疹病毒性角膜炎(Herpes simplex keratitis，HSK)是由HSV-1引起的感染型眼角膜疾病，严重时致盲。HSV-1含有约152-kb双链线性DNA，有多种亚型。HSV-1感染可引起多种疾病，其中，感染眼角膜引起病毒性角膜炎，这是世界上感染性角膜病致盲的主要原因。人类是这种病毒的唯一天然宿主，自然状态下人类感染HSV-1的情况非常普遍，据统计，世界上50％-80％人是HSV-1的携带者，每年新增150万由感染了HSV病毒引起的角膜炎患者，其中4万患者视力损坏或失明。
人类是HSV-1病毒的唯一天然宿主，且被HSV-1感染的情况非常普遍。大多数人为携带者，一旦感染HSV-1，病毒将就终身潜伏在神经元中，在机体免疫力低下时可能受到HSV-1的攻击引发炎症，其中，HSV-1感染眼角膜引起病毒性角膜炎症状。HSV-1引起的HSK是世界上角膜瘢痕形成和角膜混浊致盲的主要原因。
现如今，临床上治疗HSK的药物首选是阿昔洛韦(Acyclovir，ACV)、更昔洛韦(Ganciclovir)等类似的广谱性抗病毒药物。轻症患者初次使用抗病毒药物时时抗病毒效果很好，但只能短时抑制患病部位的HSV-1的复制，无法清除病毒，而且对于潜伏在神经中的病毒毫无对策，从而疾病复发。其它正在研究的小分子抑制剂类的药物也是如此。另外，患者长期使用广谱性抗病毒药物易产生耐药性的副作用，所以影响后续的疾病治疗效果。HSK重症患者需要通过角膜移植手术恢复视力，但是角膜供体资源少，不能解决所有患者的移植需求，另外，角膜移植后也有疾病复发的可能。
HSV-2是一种常见的人类病原体，全世界约有15亿人感染了HSV-2，如果不治疗，这种病毒的死亡率高达70％。HSV-2感染通常会引起生殖器周围粘膜和皮肤的特征性病变，终导致生殖器疱疹。在原发感染后，HSV-2在进入周围感觉神经并上升至背根神经节后，在中枢神经系统中复制，随后建立一种潜在感染，可发生周期性重激活和病毒流出，感染组织引起疾病。此外，女性的HSV-2感染率高于男性，分娩期间HSV-2的传播可导致新生儿并发症，致脑损伤或死亡。同时，HSV-2感染使感染HIV的风险增加了大约三倍。ACV可用来阻止病毒复制，随之而来的耐药性和反复发作的问题是困扰疾病根治的关键。
近三十年来，基因治疗的疗法初见雏形。基因治疗分为基因补偿型基因疗法和基因编辑疗法。彼时更快进入临床应用的是基因补偿型，而基因编辑疗法的进展甚微。直到2012年高效的基因编辑工具CRISPR的出现，才快速推进了基因治疗技术的发展。如今已经有很多应用CRISPR的基因编辑治疗进入临床试验阶段，而绝大多数基因编辑疗法都是离体基因编辑，而正在做的在体基因编辑疗法的临床试验只有2例，基于CRISPR的在体基因编辑是基因治疗发展史中的一大突破，不仅可以应用于基因突变性疾病，还可以用于获得性疾病和病毒感染性疾病。对于无根治方法、易复发的单纯疱疹性疾病，可以用在体基因编辑治疗的方法清除感染的病毒HSV以达到疗效。HSV的基因组中与病毒复制密切相关的基因被CRISPR敲除后亦不能再进行复制，本发明中，应用VLP递送mRNA的技术将CRISPR瞬时递送到患者角膜基质层细胞中，靶向已感染的HSV-1复制相关的基因，进行基因敲除，使HSV-1无法继续复制从而被清除。对于HSV-2也有很好的抗病毒效果。现如今还没有类似的已上市基因治疗药物。
发明内容
本发明的目的在于针对上述现有技术存在的不足，提供一种用于单纯疱疹病毒感染性疾病的基因治疗药物。本发明应用VLP递送mRNA的技术将CRISPR瞬时递送到感染了HSV病毒的细胞中，靶向HSV复制相关的基因，进行基因敲除，使HSV无法继续复制从而被清除。对于HSV-1和HSV-2都有很好的清除效果。
本发明的目的是通过以下技术方案来实现的：
<第一方面>
本发明提供一种用于靶向HSV病毒的慢病毒载体，其包装质粒包括表达膜蛋白的质粒pMD.2G、表达含RNA结合蛋白的慢病毒GagPol长链蛋白的质粒、表达野生型慢病毒GagPol长链蛋白的质粒、表达Cas9 mRNA的质粒和表达gRNA的质粒上；所述表达gRNA的质粒中，
将gRNA的骨架基因置于慢病毒载体的3’-LTR的区域，由启动子启动表达，对应的慢病毒载体记为VLP-CRISPR；
或将一个gRNA的骨架基因置于慢病毒载体的3’-LTR的区域，另一个gRNA的骨架基因置于5’-LTR和3’-LTR区域之间，分别由两个相同或者不同启动子启动表达，对应的慢病毒载体记为VLP-CRISPR-2gRNA。
在一些实施例中，还包括辅助质粒pRSV-REV。
作为本发明的一个实施方案，所述gRNA的骨架基因包括序列如SEQ ID NO.9所示的通用型gRNA或序列如SEQ ID NO.10所示的优化型Osp.gRNA。
通用型gRNA骨架序列SEQ ID NO.9：
NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNgttttagagctagaaatagcaagttaaaataaggctagtccgttatcaacttgaaaaagtggcaccgagtcggtgcTTTTTT。
优化型Osp.gRNA骨架序列SEQ ID NO.10：
NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNgtttCAGAGCTATGCTGGAAACAGCATAGCAAGTTGaaataaggctagtccgttatcaacttgaaaaagtggcaccgagtcggtgcTTTTTT。
作为本发明的一个实施方案，所述表达含RNA结合蛋白的慢病毒GagPol长链蛋白的质粒，是将RNA结合蛋白n个拷贝分别置于慢病毒GagPol长链蛋白N-端或C-端或者同时N-端和C-端；所述RNA结合蛋白的氨基酸序列如SEQ ID NO.2所示；n为RNA结合蛋白所能达到的任意拷贝数。
作为本发明的一个实施方案，所述表达Cas9 mRNA的质粒，是将RNA结合蛋白所识别的茎环结构的基因置于Cas9基因的5’-端或/和3’-端；茎环结构数量为所能达到的任意拷贝数(可以为1～12个拷贝)；Cas9基因的5’-端或/和3’-端均可以加入1到几个拷贝的核定位信号；所述茎环结构序列如SEQ ID NO.3所示。
进一步的，所述表达Cas9 mRNA的质粒含有2个拷贝的NLS和6个拷贝的颈环结构，记为pCMV-2×NLS-Cas9-6×MS2。
进一步的，Cas9包括Sp.Cas9、Sa.Cas9、xCas9、SpG、SpRY、SpCas9-HF1以及与这些Cas9功能相似的变体形式。
<第二方面>
本发明还提供一种用于靶向HSV病毒的慢病毒载体的制备方法，将表达膜蛋白的质粒pMD.2G、表达含RNA结合蛋白的慢病毒GagPol长链蛋白的质粒、表达野生型慢病毒GagPol长链蛋白的质粒、辅助质粒pRSV-REV、表达Cas9 mRNA的质粒和表达gRNA的质粒共转染入病毒生产细胞；收集上清，浓缩，纯化而得。
作为本发明的一个实施方案，所述表达Cas9 mRNA的质粒为pCMV-2×NLS-Cas9-6×MS2；所述表达gRNA的质粒为质粒pLV-egfp-U3-Osp.gRNA。
作为本发明的一个实施方案，质粒pLV-egfp-U3-Osp.gRNA的构建包括如下步骤：
S1、通过基因合成的方法合成U6或H1启动子和Osp.gRNA的DNA序列；
S2、以质粒pCCL-PGK-egfp为模板，用引物5’-gcatctagctagaattaatt-3’和引物5’-ttgtcttcgttgggagtgaa-3’扩增DNA片段；以步骤S1合成的基因为模板，用引物5’-ttcactcccaacgaagacaagagggcctatttcccatgat-3’和引物5’-aattaattctagctagatgctgctagagattttccacact-3’扩增DNA片段；
S3、纯化、连接两个DNA片段；将连接体系转化到细菌感受态中，验证质粒序列正确后，大量扩增单克隆，提取质粒。
<第三方面>
本发明还提供一种用于单纯疱疹病毒感染性疾病的基因治疗药物，利用前述的慢病毒载体递送靶向HSV复制相关基因的gRNA。HSV复制相关的基因包括UL5、UL8、UL9、UL29、UL30、UL42、UL52。
作为本发明的一个实施方案，将靶向HSV复制相关的基因中任意一个或者两个基因的向导序列分别放到VLP-CRISPR或者VLP-CRISPR-2gRNA中gRNA骨架前端。
作为本发明的一个实施方案，所述靶向HSV复制相关基因为UL29、UL8，得到慢病毒载体VLP-CRISPR-UL29/UL8；其向导序列可以是所选基因上的任意符合CRISPR向导序列规则的区域，即其序列3’-端含有PAM序列(NGG)的区域。如：UL29的gRNA序列是5’-gcgagcgtacacgtatccc-3’，UL8的gRNA序列是5’-ggggcagccataccgcgtaa-3’。本发明利用CRISPR/Cas9同时靶向HSV-1复制相关的两个基因，UL8和UL29，使这两个基因被敲除或者HSV-1基因组断裂，最终清除HSV-1基因组。
作为本发明的一个实施方案，所述靶向HSV复制相关基因为UL52、UL8，得到慢病毒载体VLP-CRISPR-UL52/UL8。其向导序列可以是所选基因上的任意符合CRISPR向导序列规则的区域，即其序列3’-端含有PAM序列(NGG)的区域。UL52的gRNA序列是5’-acggagcagccctcgcccct-3’，UL8的gRNA序列是5’-ggggcagccataccgcgtaa-3’。该通用型VLP-CRISPR-UL52/UL8可有效清除HSV-1和HSV-2，可用于HSV-1或HSV-2病毒感染导致疾病的基因编辑治疗。
<第四方面>
本发明还提供一种具有清除HSV-1功能的基因治疗药物的制备方法，将表达膜蛋白的质粒pMD.2G、表达含RNA结合蛋白的慢病毒GagPol长链蛋白的质粒、表达野生型慢病毒GagPol长链蛋白的质粒、辅助质粒pRSV-REV，表达Cas9 mRNA的质粒(pCMV-2×NLS-Cas9-6×MS2)和表达gRNA的质粒(pLV-U6-UL29-U3-UL8)共转染进293T细胞，收取上清液浓缩、纯化、用赋形剂溶解所得。
<第五方面>
本发明还提供一种具有清除HSV-1和HSV-2功能的通用型基因治疗药物的制备方法，将表达膜蛋白的质粒pMD.2G、表达含RNA结合蛋白的慢病毒GagPol长链蛋白的质粒、表达野生型慢病毒GagPol长链蛋白的质粒、辅助质粒pRSV-REV，表达Cas9 mRNA的质粒(pCMV-2×NLS-Cas9-6×MS2)和表达gRNA的质粒(pLV-U6-UL52-U3-UL8)共转染进293T细胞，收取上清液浓缩、纯化、用赋形剂溶解所得。
与现有技术相比，本发明具有如下有益效果：
1)可单次给药治疗疾病；
2)VLP-CRISPR-UL29/UL8可直接清除HSV-1，而不仅仅是暂时抑制病毒的复制；
3)通用型VLP-CRISPR-UL52/UL8可有效清除HSV-1和HSV-2。
附图说明
通过阅读参照以下附图对非限制性实施例所作的详细描述，本发明的其它特征、目的和优点将会变得更明显：
图1为比较不同核定位信号和茎环结构拷贝数基因编辑效率示意图；
图2为VLP-CRISPR-gRNA示意图；
图3为HSV-1(表达GFP)阳性细胞数比例示意图；
图4为细胞上清中HSV-1-GFP的滴度示意图；
图5为细胞上清中HSV-1、HSV-2滴度示意图。
具体实施方式
本发明的用于单纯疱疹病毒感染性疾病的基因治疗药物涉及的技术改造包括：
1、改造VLP载体，使其能同时递送Cas9 mRNA和gRNA，得到VLP-CRISPR；
生产VLP-CRISPR，需要将表达膜蛋白的质粒(pMD.2G)、表达含RNA结合蛋白的慢病毒GagPol长链蛋白的质粒、表达野生型慢病毒GagPol长链蛋白的质粒(pMDlg/PRRE-D64V)、辅助质粒pRSV-REV，表达Cas9 mRNA的质粒和表达gRNA的质粒共转染入病毒生产细胞；收集上清，浓缩，制备而得。
首先改造用于生产VLP载体的质粒体系。
a.表达含RNA结合蛋白的慢病毒GagPol长链蛋白的质粒，可将RNA结合蛋白(基因序列SEQ ID NO.1，氨基酸序列SEQ ID NO.2)的1或2个拷贝分别置于慢病毒GagPol长链蛋白N-端或C-端或者同时N-端和C-端。RNA结合蛋白也可以是所能达到的任意拷贝数。
b.表达Cas9 mRNA的质粒，将RNA结合蛋白所识别的茎环结构的基因置于Cas9基因的5’-端或/和3’-端。其茎环结构(SEQ ID NO.3)数量可以是1(SEQ ID NO.3)到12个拷贝(SEQ ID NO.4)等，也可以是所能达到的任意拷贝数。Cas9基因的5’-端或/和3’-端都可以加入1到几个拷贝的核定位信号(NLS，Cas9蛋白N-端NLS序列：SEQ ID NO.5；Cas9蛋白C-端NLS序列：SEQ ID NO.6)来增加蛋白进入细胞核的效率；Cas9可以是Sp.Cas9、Sa.Cas9、xCas9、SpG、SpRY和SpCas9-HF1等其他具有DNA切割功能的Cas9或变体形式。
c.表达gRNA的质粒，将gRNA的骨架基因置于慢病毒载体的3’-LTR的区域；由U6启动子(SEQ ID NO.7)或H1(SEQ ID NO.8)启动子启动表达。gRNA的骨架可以是通用型版本(SEQ ID NO.9)和优化版本(Osp.gRNA，SEQ ID NO.10)。
2、改造能靶向2个基因的VLP-CRISPR-2gRNA，使其能同时递送Cas9 mRNA和靶向2个基因的gRNA；
为了能生产出VLP-CRISPR-2gRNA，需要继续改造表达gRNA的质粒，此质粒需要包含2个gRNA系列，其中1个如1.c所述,另一个gRNA放到质粒的5’-LTR和3’-LTR之间。gRNA也可以是优化骨架序列的Osp.gRNA。
3、改造清除HSV-1病毒或/和HSV-2病毒的VLP-CRISPR，使其能同时递送Cas9 mRNA和靶向HSV-1和HSV-2复制相关基因的gRNA.
为了生产出靶向HSV-1或HSV-2或HSV-1与HSV-2病毒的通用型VLP-CRISPR，需要继续改造表达gRNA的质粒，将靶向HSV复制相关的基因中任意一个或者两个基因的向导序列(HSV-1和HSV-2病毒单独或通用)分别放到VLP-CRISPR或者VLP-CRISPR-2gRNA中gRNA骨架前端；其向导序列可以是所选基因上的任意符合CRISPR向导序列规则的区域，即其序列3’-端含有PAM序列(NGG)的区域。所用到的gRNA骨架为通用型的gRNA或优化的Osp.gRNA。本发明中，选择UL8和UL52两个HSV-1复制相关的重要基因中的向导序列制成通用型治疗单纯疱疹病毒感染性疾病的基因治疗药物。
下面结合实施例对本发明进行详细说明。以下实施例将有助于本领域的技术人员进一步理解本发明，但不以任何形式限制本发明。应当指出的是，对本领域的普通技术人员来说，在不脱离本发明构思的前提下，还可以做出若干调整和改进。这些都属于本发明的保护范围。
实施例1、VLP载体同时递送Cas9 mRNA和Osp.gRNA
VLP载体同时递送Cas9 mRNA和Osp.gRNA的实现首先需要改造生产质粒。
在本实施例中，构建的VLP-CRISPR是将表达膜蛋白的质粒(pMD.2G)、表达含RNA结合蛋白的慢病毒GagPol长链蛋白的质粒(pMS2M-PH-Gag–Pol-D64V，序列如SEQ ID NO.12所示)、表达野生型慢病毒GagPol长链蛋白的质粒(pMDlg/PRRE-D64，序列如SEQ ID NO.13所示)、辅助质粒(pRSV-REV)，表达Cas9 mRNA的质粒(含有2个拷贝的NLS和6个拷贝的颈环结构，pCMV-2×NLS-Cas9-6×MS2，序列如SEQ ID NO.14所示)和表达gRNA的质粒(pLV-egfp-U3-Osp.gRNA，序列如SEQ ID NO.15所示)共转染进293T细胞，收取上清液浓缩、纯化所得。其中本实施例中除了质粒pLV-egfp-U3-Osp.gRNA，都是通过基因合成DNA序列后再环化成质粒。
质粒pLV-egfp-U3-Osp.gRNA的Osp.gRNA表达框在3’LTR区域，构建质粒的步骤是：
①通过基因合成的方法合成U6启动子和Osp.gRNA的DNA序列；
②以质粒pCCL-PGK-egfp(第三代慢病毒包装质粒，用于携带所递送的外源基因，基因序列如SEQ ID NO.11所示)为模板，用引物5’-gcatctagctagaattaatt-3’和引物5’-ttgtcttcgttgggagtgaa-3’扩增DNA片段；以步骤①合成的基因为模板，用引物5’-ttcactcccaacgaagacaagagggcctatttcccatgat-3’和引物5’-aattaattctagctagatgctgctagagattttccacact-3’扩增DNA片段；
③用DNA纯化试剂盒纯化两个DNA片段；
④采用
Figure BDA0003749143160000071
HiFi DNA Assembly试剂连接两个DNA片段；
⑤将连接体系转化到细菌感受态中，挑取单克隆，扩增培养，质粒小提；
⑥用引物5’-gagggcctatttcccatgat-3’进行Sanger测序验证质粒是否与预期序列相符；
⑦验证质粒序列正确后，大量扩增单克隆，提取质粒。
本实施例中还验证了含有1个或2个拷贝的NLS和6个或12个拷贝的颈环结构的表达Cas9 mRNA质粒包装的VLP载体的基因编辑效率，以AAVS1位点(包装VLP时表达AAVS1-gRNA的质粒为pLV-egfp-U3-Osp.gRNA-AAVS1，由退火后的寡核苷酸链“5’-CACCGGGGCCACTAGGGACAGGAT-3’”和“5’-AAACATCCTGTCCCTAGTGGCCCC-3’”插入AarI酶切的质粒pLV-egfp-U3-Osp.gRNA得来)的编辑效率结果做对比。实验时，将293T细胞接种到96孔板里，1×104/孔。24h后分别加入待验证的VLP，150ng p24每孔。感染72h后收集细胞，提取基因组，用引物5’-ttcgggtcacctctcactcc-3’和5’-ggctccatcgtaagcaaacc-3’扩增AAVS1位点周围的DNA片段，用引物5’-ttcgggtcacctctcactcc-3’Sanger测序，将测序文件输入TIDE网站分析工具计算Indel(碱基插入/缺失)结果，感染结果如图1所示。带有2NLS的VLP基因编辑效果更好。6个拷贝和12个拷贝的MS2递送Cas9 mRNA包装而成的VLP都能达到较高的基因编辑效率。StudentT-test做统计分析，**P<0.01,n.s.代表不显著。
实施例2、具有清除HSV-1功能的VLP-CRISPR-UL29/UL8
生产具有清除HSV-1功能的VLP-CRISPR-UL29/UL8，需要将表达膜蛋白的质粒(pMD.2G)、表达含RNA结合蛋白的慢病毒GagPol长链蛋白的质粒(pMS2M-PH-Gag–Pol-D64V)、表达野生型慢病毒GagPol长链蛋白的质粒(pMDlg/PRRE-D64V)、辅助质粒(pRSV-REV)，表达Cas9 mRNA的质粒(含有2个拷贝的NLS和6个拷贝的颈环结构，pCMV-2×NLS-Cas9-6×MS2)和表达gRNA的质粒(pLV-U6-UL29-U3-UL8，SEQ ID NO.16)共转染进293T细胞，收取上清液浓缩、纯化、用赋形剂溶解所得。
与实施例1不同的是，第6个质粒(表达gRNA的质粒)改为pLV-U6-UL29-U3-UL8，UL8-Osp.gRNA表达框在3’LTR区域，UL29-Osp.gRNA的表达框替换GFP表达框。质粒由基因合成DNA序列后再环化构成。VLP-CRISPR-Osp.gRNA示意图见图2,其VLP-CRISPR-UL29/UL8的gRNA表达盒分别是靶向UL29和UL8基因的。其向导序列可以是所选基因上的任意符合CRISPR向导序列规则的区域，即其序列3’-端含有PAM序列(NGG)的区域。
实施例3、VLP-CRISPR-UL29/UL8体外清除HSV-1
按照实施例2的方法生产VLP-CRISPR-UL29/UL8，质粒转染时，按照比例pMD.2G:pRSV-REV:pMDlg/PRRE-D64V:pMS2M-PH-Gag–Pol-D64V:pCMV-2×NLS-Cas9-6×MS2:pLV-U6-UL29-U3-UL8＝3.75：3：6.5：6.5：13：13，质粒总量和细胞数之间的关系为0.76μg/cm2，所用赋形剂为磷酸缓冲液。本实施例中选择UL29的gRNA序列是5’-gcgagcgtacacgtatccc-3’，UL8的gRNA序列是5’-ggggcagccataccgcgtaa-3’来进行HSV-1基因组切割实验。
①用p24 ELISA检测试剂盒检测VLP-CRISPR-UL29/UL8的物理滴度；
②VLP-CRISPR-UL29/UL8感染：将293T细胞接种于96孔板，每孔2x104cells(总体积100μL)，放入37℃、5％CO2细胞培养箱中培养(注：293T所用培养基为DMEM+6％FBS+1％PS)。24h后每个孔加入p24 200ng VLP-CRISPR-UL29/UL8，Scramble Control组加入无基因靶向性的VLP-CRISPR(p24 200ng)，MOCK组和Blank组不加，每组3个复孔，继续培养。14h-18h后拿出96孔板，换液(200μL/孔)。加入2×104PFU HSV-1-GFP(Incorporation of theGreen Fluorescent Ptein into the Herpes Simplex Virus Type 1Capsid.P Desaiand S Person.1998Sep；72(9):7563–7568.)，Blank组不加。轻摇培养板使病毒均匀分布，放回37℃、5％CO2细胞培养箱中继续培养。加HSV-1-GFP 40-48h观察GFP表达情况，当Scramble Control组和MOCK组有较多(>50％)GFP表达时收集细胞上清和细胞沉淀。
③流式分析GFP阳性细胞数比例：本实施例中用的HSV-1-GFP是表达GFP蛋白的，GFP表达代表HSV-1。通过流式分析的方法可以检测GFP阳性细胞(代表含有HSV-1)的比例，衡量HSV-1的清除效果。每样品加入400μL 4％PFA固定细胞15min。离心(700g，5min)去上清，加150μL PBS重悬细胞，流式分析GFP阳性细胞数比例，结果见图3；StudentT-test做统计分析，***P<0.001。
④空斑试验检测细胞上清中HSV-1-GFP的分泌量：将Vero细胞接种于12孔板，每孔3x105cells(总体积1mL)，放入37℃、5％CO2细胞培养箱中培养(注：Vero所用培养基为DMEM+6％FBS+1％PS)。24h后加入待测细胞上清液的稀释液，本实施例中，稀释100倍。每孔加入100μL稀释后的病毒液吸附细胞。轻摇培养板使病毒均匀分布，放入37℃、5％CO2细胞培养箱中培养2h。尽可能吸出所有液体，每孔加入1mL固体培养基(固体培养基温度约为37℃)。将12孔板放到4℃冰箱中约5min，待固体培养基凝固后，放回37℃、5％CO2细胞培养箱中继续培养。72h后每个孔加入400μL 4％PFA，于室温固定10min。弃去PFA，每个孔加入500μL1％结晶紫溶液，室温染色1.5-2h。弃去染色液，将固体取出。用ddH2O小心润洗三次12孔板，晾干后肉眼计数病斑数。感染滴度(PFU·mL-1)＝N病斑×稀释倍数/感染体积，数据见图4，其中Scramble Control组空斑过多难以计数，遂不统计Scramble Control组只统计其它组。StudentT-test做统计分析，**P<0.01。
结果显示，VLP-CRISPR-UL29/UL8组的HSV-1数量明显少于Scramble Control组(不靶向HSV-1的VLP-CRISPR)和Mock组(未添加VLP-CRISPR)，说明VLP-CRISPR-UL29/UL8具有清除HSV-1的作用。
实施例4、具有清除HSV-1和HSV-2功能的通用型VLP-CRISPR-UL52/UL8
生产具有清除HSV-1和HSV-2功能的通用型VLP-CRISPR-UL52/UL8，需要将表达膜蛋白的质粒(pMD.2G)、表达含RNA结合蛋白的慢病毒GagPol长链蛋白的质粒(pMS2M-PH-Gag–Pol-D64V)、表达野生型慢病毒GagPol长链蛋白的质粒(pMDlg/PRRE-D64V)、辅助质粒(pRSV-REV)，表达Cas9 mRNA的质粒(含有2个拷贝的NLS和6个拷贝的颈环结构，pCMV-2×NLS-Cas9-6×MS2)和表达gRNA的质粒(pLV-U6-UL52-U3-UL8，SEQ ID NO.17)共转染进293T细胞，收取上清液浓缩、纯化、用赋形剂溶解所得。
与实施例2不同的是，第6个质粒(表达gRNA的质粒)为pLV-U6-UL52-U3-UL8，UL8-Osp.gRNA表达框在3’LTR区域，UL52-Osp.gRNA的表达框替换GFP表达框。质粒由基因合成NDA序列后再环化构成。VLP-CRISPR-Osp.gRNA示意图见图2,其VLP-CRISPR-UL52/UL8的gRNA表达盒分别是靶向UL52和UL8基因的。其向导序列可以是所选基因上的任意符合CRISPR向导序列规则的区域，即其序列3’-端含有PAM序列(NGG)的区域。
实施例5、VLP-CRISPR-UL52/UL8体外清除HSV-1和HSV-2
按照实施例4的方法生产VLP-CRISPR-UL52/UL8，质粒转染时，按照比例pMD.2G:pRSV-REV:pMDlg/PRRE-D64V:pMS2M-PH-Gag–Pol-D64V:pCMV-2×NLS-Cas9-6×MS2:pLV-U6-UL52-U3-UL8＝3.75：3：6.5：6.5：13：13，质粒总量和细胞数之间的关系为0.76μg/cm2，所用赋形剂为磷酸缓冲液。本实施例中以UL52的gRNA序列是5’-acggagcagccctcgcccct-3’，UL8的gRNA序列是5’-ggggcagccataccgcgtaa-3’做HSV基因组切割的gRNA。
按照实施例3中的方法，用每实验孔200ng p24 VLP-CRISPR-UL52/UL8分别清除HSV-1和HSV-2，空斑试验检测细胞上清中HSV-1/HSV-2的分泌量。结果显示两者都能有效清除HSV-1。从清除HSV-2的效果检测结果看，VLP-CRISPR-UL52/UL8的效果高于VLP-CRISPR-UL29/UL8。数据见图5。StudentT-test做统计分析，**P<0.01,***P<0.001,n.s.代表不显著。
以上对本发明的具体实施例进行了描述。需要理解的是，本发明并不局限于上述特定实施方式，本领域技术人员可以在权利要求的范围内做出各种变形或修改，这并不影响本发明的实质内容。
Figure IDA0003749143210000011
Figure IDA0003749143210000021
Figure IDA0003749143210000031
Figure IDA0003749143210000041
Figure IDA0003749143210000051
Figure IDA0003749143210000061
Figure IDA0003749143210000071
Figure IDA0003749143210000081

Claims (10)

1.一种用于靶向HSV病毒的慢病毒载体，其包装质粒包括表达膜蛋白的质粒pMD.2G、表达含RNA结合蛋白的慢病毒GagPol长链蛋白的质粒、表达野生型慢病毒GagPol长链蛋白的质粒、表达Cas9 mRNA的质粒和表达gRNA的质粒；所述表达gRNA的质粒中，
将gRNA的骨架基因置于慢病毒载体的3’-LTR的区域，由启动子启动表达，对应的慢病毒载体记为VLP-CRISPR；
或将一个gRNA的骨架基因置于慢病毒载体的3’-LTR的区域，另一个gRNA的骨架基因置于5’-LTR和3’-LTR区域之间，由启动非编码短序列RNA的启动子启动表达，对应的慢病毒载体记为VLP-CRISPR-2gRNA。
2.根据权利要求1所述的用于靶向HSV病毒的慢病毒载体，其特征在于，所述gRNA的骨架基因包括序列如SEQ ID NO.9所示的通用型gRNA或序列如SEQ ID NO.10所示的优化型Osp.gRNA。
3.根据权利要求1所述的用于靶向HSV病毒的慢病毒载体，其特征在于，所述表达含RNA结合蛋白的慢病毒GagPol长链蛋白的质粒，是将RNA结合蛋白n个拷贝分别置于慢病毒GagPol长链蛋白N-端或C-端或者同时N-端和C-端；n为RNA结合蛋白所能达到的任意拷贝数。
4.根据权利要求3所述的用于靶向HSV病毒的慢病毒载体，其特征在于，所述RNA结合蛋白的氨基酸序列如SEQ ID NO.2所示。
5.根据权利要求1所述的用于靶向HSV病毒的慢病毒载体，其特征在于，所述表达Cas9mRNA的质粒，是将RNA结合蛋白所识别的茎环结构的基因置于Cas9基因的5’-端或/和3’-端；茎环结构数量为所能达到的任意拷贝数；Cas9基因的5’-端或/和3’-端均可以加入1到几个拷贝的核定位信号；所述茎环结构序列如SEQ ID NO.3所示。
6.根据权利要求5所述的用于靶向HSV病毒的慢病毒载体，其特征在于，Cas9包括Sp.Cas9、Sa.Cas9、xCas9、SpG、SpRY、SpCas9-HF1中的任意一种或任意一种的变体。
7.一种用于单纯疱疹病毒感染性疾病的基因治疗药物，其特征在于，利用如权利要求1-6中任一项所述的慢病毒载体递送靶向HSV复制相关基因的gRNA，HSV复制相关的基因包括UL5、UL8、UL9、UL29、UL30、UL42、UL52。
8.根据权利要求7所述的基因治疗药物，其特征在于，将靶向HSV复制相关的基因中任意一个或者两个基因的向导序列分别放到VLP-CRISPR或者VLP-CRISPR-2gRNA中gRNA骨架前端。
9.根据权利要求7所述的基因治疗药物，其特征在于，所述靶向HSV复制相关基因为UL29、UL8，得到慢病毒载体VLP-CRISPR-UL29/UL8。
10.根据权利要求7所述的基因治疗药物，其特征在于，所述靶向HSV复制相关基因为UL52、UL8，得到慢病毒载体VLP-CRISPR-UL52/UL8。
CN202210833075.2A 2022-07-15 2022-07-15 一种用于单纯疱疹病毒感染性疾病的基因治疗药物 Pending CN115927473A (zh)

Priority Applications (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202210833075.2A CN115927473A (zh) 2022-07-15 2022-07-15 一种用于单纯疱疹病毒感染性疾病的基因治疗药物
PCT/CN2023/088908 WO2024011980A1 (zh) 2022-07-15 2023-04-18 一种用于单纯疱疹病毒感染性疾病的基因治疗药物

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202210833075.2A CN115927473A (zh) 2022-07-15 2022-07-15 一种用于单纯疱疹病毒感染性疾病的基因治疗药物

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN115927473A true CN115927473A (zh) 2023-04-07

Family

ID=86551210

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN202210833075.2A Pending CN115927473A (zh) 2022-07-15 2022-07-15 一种用于单纯疱疹病毒感染性疾病的基因治疗药物

Country Status (2)

Country Link
CN (1) CN115927473A (zh)
WO (1) WO2024011980A1 (zh)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN117343153A (zh) * 2023-04-18 2024-01-05 上海本导基因技术有限公司 一种用于治疗亨廷顿疾病的慢病毒样颗粒
WO2024011980A1 (zh) * 2022-07-15 2024-01-18 上海本导基因技术有限公司 一种用于单纯疱疹病毒感染性疾病的基因治疗药物

Citations (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104480144A (zh) * 2014-12-12 2015-04-01 武汉大学 用于艾滋病基因治疗的CRISPR/Cas9重组慢病毒载体及其慢病毒
WO2015153789A1 (en) * 2014-04-01 2015-10-08 Editas Medicine, Inc. Crispr/cas-related methods and compositions for treating herpes simplex virus type 1 (hsv-1)
AU2015101792A4 (en) * 2014-12-24 2016-01-28 Massachusetts Institute Of Technology Engineering of systems, methods and optimized enzyme and guide scaffolds for sequence manipulation
CN107541527A (zh) * 2017-10-25 2018-01-05 陕西省眼科研究所 一种治疗复发性hsk的双基因靶向治疗系统
CN107580504A (zh) * 2015-01-14 2018-01-12 天普大学-联邦高等教育系统 Rna引导的i型单纯性疱疹病毒和其它相关疱疹病毒的根治
WO2018017925A1 (en) * 2016-07-22 2018-01-25 President And Fellows Of Harvard College Targeting lytic and latent herpes simplex virus 1 infection with crispr/cas9
CN111549057A (zh) * 2020-05-28 2020-08-18 潍坊兴旺生物种业有限公司 一种利用番茄雄性不育基因及可见连锁标记创制雄性不育系的方法
US20200392208A1 (en) * 2018-02-01 2020-12-17 Editas Medicine, Inc. Crispr/cas-related methods and compositions for treating herpes simplex virus (hsv) related keratitis
CN112168958A (zh) * 2020-09-21 2021-01-05 上海交通大学 基于慢病毒外壳修饰和mRNA递送的SARS-CoV-2疫苗及其制备方法
US20210363522A1 (en) * 2019-02-01 2021-11-25 Editas Medicine, Inc. Crispr/cas-related methods and compositions targeting virus genomes
CN114207120A (zh) * 2019-05-30 2022-03-18 坚固生物科技公司 重组疱疹病毒载体

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN108504689B (zh) * 2018-05-29 2021-01-29 上海本导基因技术有限公司 慢病毒载体及其递送外源rna的方法
CN115927473A (zh) * 2022-07-15 2023-04-07 上海本导基因技术有限公司 一种用于单纯疱疹病毒感染性疾病的基因治疗药物

Patent Citations (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2015153789A1 (en) * 2014-04-01 2015-10-08 Editas Medicine, Inc. Crispr/cas-related methods and compositions for treating herpes simplex virus type 1 (hsv-1)
CN104480144A (zh) * 2014-12-12 2015-04-01 武汉大学 用于艾滋病基因治疗的CRISPR/Cas9重组慢病毒载体及其慢病毒
AU2015101792A4 (en) * 2014-12-24 2016-01-28 Massachusetts Institute Of Technology Engineering of systems, methods and optimized enzyme and guide scaffolds for sequence manipulation
CN107580504A (zh) * 2015-01-14 2018-01-12 天普大学-联邦高等教育系统 Rna引导的i型单纯性疱疹病毒和其它相关疱疹病毒的根治
WO2018017925A1 (en) * 2016-07-22 2018-01-25 President And Fellows Of Harvard College Targeting lytic and latent herpes simplex virus 1 infection with crispr/cas9
CN107541527A (zh) * 2017-10-25 2018-01-05 陕西省眼科研究所 一种治疗复发性hsk的双基因靶向治疗系统
US20200392208A1 (en) * 2018-02-01 2020-12-17 Editas Medicine, Inc. Crispr/cas-related methods and compositions for treating herpes simplex virus (hsv) related keratitis
US20210363522A1 (en) * 2019-02-01 2021-11-25 Editas Medicine, Inc. Crispr/cas-related methods and compositions targeting virus genomes
CN114207120A (zh) * 2019-05-30 2022-03-18 坚固生物科技公司 重组疱疹病毒载体
CN111549057A (zh) * 2020-05-28 2020-08-18 潍坊兴旺生物种业有限公司 一种利用番茄雄性不育基因及可见连锁标记创制雄性不育系的方法
CN112168958A (zh) * 2020-09-21 2021-01-05 上海交通大学 基于慢病毒外壳修饰和mRNA递送的SARS-CoV-2疫苗及其制备方法

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
DI YIN: "Targeting herpes simplex virus with CRISPR-Cas9 cures herpetic stromal keratitis in mice", NAT BIOTECHNOL., vol. 5, no. 39, pages 567 - 577 *
DI YIN: "Targeting herpes simplex virus with CRISPR-Cas9 cures herpetic stromal keratitis in mice，Supplementary Information", NAT BIOTECHNOL., vol. 5, no. 39, pages 567 - 577 *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2024011980A1 (zh) * 2022-07-15 2024-01-18 上海本导基因技术有限公司 一种用于单纯疱疹病毒感染性疾病的基因治疗药物
CN117343153A (zh) * 2023-04-18 2024-01-05 上海本导基因技术有限公司 一种用于治疗亨廷顿疾病的慢病毒样颗粒

Also Published As

Publication number Publication date
WO2024011980A1 (zh) 2024-01-18

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN115927473A (zh) 一种用于单纯疱疹病毒感染性疾病的基因治疗药物
CN105821039B (zh) 联合免疫基因抑制HBV复制的特异性sgRNA、表达载体及其应用
CN102631666B (zh) 一种预防和控制人乳头瘤病毒感染的生物制剂的制备方法
JPH10503372A (ja) Ｈｓｖウイルスベクター
JP2022513639A (ja) 低神経毒性ｈｓｖベクター
CN112353939B (zh) Gtpbp4蛋白作为免疫抑制剂的应用及敲低或过表达gtpbp4细胞系的构建
CN111494634B (zh) 一类治疗慢性疼痛的核酸药物
WO2013189003A1 (zh) J亚群禽白血病病毒的肽核酸及其应用
CN111041001B (zh) 治疗kras突变型肿瘤的安全型柯萨奇病毒及其药物组合物
US20230192769A1 (en) Broad-Spectrum Polypeptide Against Enterovirus and Application Thereof
CN109535232B (zh) 多肽、其制备方法及抑制艾滋病病毒的用途
US8216564B2 (en) Composite oncolytic herpes virus vectors
CN101926992B (zh) 单纯疱疹病毒i型基因重组减毒活疫苗及其制备方法
CN112626031B (zh) 一种基因修饰的牙髓干细胞及其制备方法和应用
CN101338302B (zh) 一种用于肿瘤基因治疗的重组单纯疱疹病毒
EP1406668A1 (en) Composite oncolytic herpes virus vectors
EP0979093B1 (en) Arrestable therapeutic viral agent
WO2022267086A1 (zh) 一种治疗高尿酸血症、痛风或肾功能损伤的mRNA剂型的药物及其制备方法和应用
CN114480309B (zh) 抑制ALKBH1表达的shRNA慢病毒及其制备和应用
CN102657862B (zh) 单纯疱疹病毒ⅱ型基因重组减毒活疫苗及其制备方法
CN111349620A (zh) 一种重组hiv缺陷病毒及其制备方法
CN108148875B (zh) 一种基因编辑系统、表达载体、基因编辑试剂盒及其用途
CN115845030A (zh) 神经生长因子诱导蛋白或其基因的应用
CN117860761A (zh) 齐墩果酸在改善胆汁酸受体tgr5诱导的细胞凋亡中的应用
US20030017173A1 (en) Arrestable therapeutic viral agent

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination