CN115554206B - 一种增强细胞活力的复合发酵物及其制备方法与应用 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种增强细胞活力的复合发酵物及其制备方法与应用。该复合发酵物的制备方法包括以下步骤:S1、将无患子、魔芋、复合酶混合后进行酶解,得酶解产物;所述复合酶包括半纤维素酶和β‑葡萄糖苷酶;S2、将所述酶解产物、发酵菌种和培养基混合后进行发酵,即得复合发酵物;所述发酵菌种包括乳酸菌和双歧杆菌中的至少一种。本发明通过将特定生物酶酶解和微生物发酵技术进行有机结合,使得到的复合发酵物具有显著的增强细胞活力的功效。
Description
技术领域
本发明涉及一种增强细胞活力的复合发酵物及其制备方法与应用。
背景技术
无患子属于无患子科,又名木患子、洗手果,是一种中型落叶树。无患子果皮中含有三萜皂苷、倍半萜、多糖及鞣质等成分。魔芋是一种常见的食品,含有丰富的碳水化合物、维生素和微量元素,具有减肥、降血压、降血糖、排毒通便的效用。
发明内容
本发明旨在至少解决现有技术中存在的技术问题之一。为此,本发明提出一种复合发酵物的制备方法,通过特定生物酶酶解和微生物发酵技术进行有机结合,使制得的复合发酵物具有显著的增强细胞活力的功效。
本发明还提供一种复合发酵物。
本发明还提供上述制备方法或复合发酵物的应用。
本发明还提供一种产品。
根据本发明的第一方面实施例的一种复合发酵物的制备方法,包括以下步骤:
S1、将无患子、魔芋、复合酶混合后进行酶解,得酶解产物;
所述复合酶包括半纤维素酶和β-葡萄糖苷酶;
S2、将所述酶解产物、发酵菌种和培养基混合后进行发酵,即得复合发酵物;
所述发酵菌种包括乳酸菌和双歧杆菌中的至少一种。
根据本发明实施例的制备方法,至少具有如下有益效果:
实施例的制备方法将酶解反应与发酵反应相结合,对无患子果皮和魔芋粉进行酶解,获得富含多种活性物质的酶解产物,后续发酵过程中的发酵菌种能够以活性物质为底物合成多种次级代谢产物,增加活性物质的种类,从而制备能够显著增强细胞活力、抗氧化的复合发酵物。
根据本发明的一些实施例,所述乳酸菌包括植物乳杆菌。
根据本发明的一些实施例,所述双歧杆菌包括长双歧杆菌和短双歧杆菌中的至少一种。
根据本发明的一些实施例,所述步骤S2中,所述发酵菌种的活菌数高于103CFU/g酶解产物。优选高于105CFU/g酶解产物。
根据本发明的一些实施例,所述步骤S2中,所述发酵菌种的活菌数为103CFU~107CFU/g酶解产物。优选为104CFU~106CFU/g。
根据本发明的一些实施例,所述无患子包括无患子果皮。
根据本发明的一些实施例,所述魔芋包括魔芋粉。
根据本发明的一些实施例,所述步骤S1中,所述酶解的原料还包括水。
根据本发明的一些实施例,所述步骤S1中,所述无患子和所述魔芋的总质量与所述水的质量的比为1:2~10。
根据本发明的一些实施例,所述步骤S1中,所述无患子和所述魔芋的总质量与所述水的质量的比为1:4~8。
根据本发明的一些实施例,所述步骤S1中,所述无患子和所述魔芋的总质量与所述水的质量的比为1:5~7。
根据本发明的一些实施例,所述无患子、所述魔芋、所述复合酶的质量酶活力比为1g:0.1g~2g:1000U~10000U。
根据本发明的一些实施例,所述无患子、所述魔芋、所述复合酶的质量酶活力比为1g:0.15g~1.8g:2000U~9000U。
根据本发明的一些实施例,所述无患子、所述魔芋、所述复合酶的质量酶活力比为1g:0.2g~1.5g:2500U~8000U。
根据本发明的一些实施例,所述无患子与所述魔芋的质量比为0.6~5:1。
根据本发明的一些实施例,所述无患子与所述魔芋的质量比为4~6:1或0.4~0.8:1。
根据本发明的一些实施例,所述复合酶中,所述半纤维素酶与所述β-葡萄糖苷酶的酶活力比为1:50~200。
根据本发明的一些实施例,所述复合酶中,所述半纤维素酶与所述β-葡萄糖苷酶的酶活力比为1:80~150。
根据本发明的一些实施例,所述无患子和所述魔芋的总质量与所述复合酶的质量的比为30~150:1。
根据本发明的一些实施例,所述无患子和所述魔芋的总质量与所述复合酶的质量的比为60~100:1。
根据本发明的一些实施例,所述步骤S1中,所述酶解的条件包括:pH为4.5~7。
根据本发明的一些实施例,所述步骤S1中,所述酶解的条件包括:pH为5~6.5。
根据本发明的一些实施例,所述步骤S1中,所述酶解的条件包括:pH为5.5~6。
根据本发明的一些实施例,所述酶解的条件包括:酶解时间为0.2h~4h。
根据本发明的一些实施例,所述酶解的条件包括:酶解时间为1h~3h。优选为2h。
根据本发明的一些实施例,所述酶解的条件包括:酶解温度为25℃~70℃
根据本发明的一些实施例,所述酶解的条件包括:酶解温度为40℃~60℃。优选为50℃。
根据本发明的一些实施例,所述酶解还包括搅拌,所述搅拌的速度为30rpm~250rpm。
根据本发明的一些实施例,所述搅拌的速度为30rpm~100rpm。
根据本发明的一些实施例,所述搅拌的速度为40rpm~60rpm。优选为50rpm。
根据本发明的一些实施例,所述步骤S1还包括酶解后处理。所述酶解后处理包括在110℃~130℃下处理10min~30min。
根据本发明的一些实施例,所述步骤S2中,所述发酵的温度为25℃~45℃。
根据本发明的一些实施例,所述步骤S2中,所述发酵的温度为25℃~35℃。优选为30℃。
根据本发明的一些实施例,所述发酵的时间为1h~120h。
根据本发明的一些实施例,所述发酵的时间为48h~96h。
根据本发明的一些实施例,所述发酵的时间为60h~84h。优选为72h。
根据本发明的一些实施例,所述步骤S2中,所述培养基为细菌发酵培养基。
根据本发明的一些实施例,所述培养基与所述酶解产物的用量比为1:1~200。
根据本发明的一些实施例,所述培养基与所述酶解产物的质量比为1:10~150。
根据本发明的一些实施例,所述培养基与所述酶解产物的质量比为1:25~130。
根据本发明的一些实施例,所述培养基包括MRS培养基。
根据本发明的一些实施例,所述发酵的原料还包括水,所述酶解产物与所述水的质量比为1:0.1~10。
根据本发明的一些实施例,所述酶解产物与所述水的质量比为1:1~3。
根据本发明的一些实施例,所述步骤S2还包括发酵后处理。所述发酵后处理包括离心,以去除所述发酵菌种。
根据本发明的一些实施例,所述离心的转速为3000rpm~20000rpm。优选为8000rpm。
根据本发明的一些实施例,所述离心的时间为20min~40min。优选为25min。
根据本发明的第二方面实施例的一种复合发酵物,由本发明第一方面的制备方法制备得到。
根据本发明实施例的复合发酵物,至少具有如下有益效果:
实施例的复合发酵物能够有效的提升细胞迁移运动与修复能力,具有很好的抗氧化效果,同时还能够降低UV照射后HaCat细胞产生的炎症因子IL-6和TNF-α的含量,提高兜甲蛋白和丝聚蛋白的含量,具有显著增强细胞活力的功效。
根据本发明的一些实施例,所述复合发酵物中的总多糖含量高于67mg/mL。
根据本发明的一些实施例,所述复合发酵物中的总多糖含量为67mg/mL~150mg/mL。
根据本发明的一些实施例,所述复合发酵物中的总多糖含量为67mg/mL~100mg/mL。
根据本发明的一些实施例,所述复合发酵物中的总皂苷含量高于80mg/mL。
根据本发明的一些实施例,所述复合发酵物中的总皂苷含量为80mg/mL~200mg/mL。
根据本发明的一些实施例,所述复合发酵物中的总皂苷含量为80mg/mL~150mg/mL。
根据本发明的第三方面实施例的本发明第一方面的制备方法或本发明第二方面的复合发酵物在制备产品中的应用,所述产品具有增强细胞活力、抗氧化中的至少一种功效。
根据本发明的第四方面实施例的一种产品,包括本发明第二方面的复合发酵物。由于采用了上述实施例的复合发酵物的全部技术方案,因此至少具有上述实施例的技术方案所带来的所有有益效果。
根据本发明的一些实施例,以质量百分比计,所述产品中的所述复合发酵物的用量为0.01%~10%。
根据本发明的一些实施例,以质量百分比计,所述产品中的所述复合发酵物的用量为0.1%~3%。
根据本发明的一些实施例,以质量百分比计,所述产品中的所述复合发酵物的用量为0.1%~1%。
本发明的其它特征和优点将在随后的说明书中阐述,并且,部分地从说明书中变得显而易见,或者通过实施本发明而了解。
具体实施方式
以下将结合实施例对本发明的构思及产生的技术效果进行清楚、完整地描述,以充分地理解本发明的目的、特征和效果。显然,所描述的实施例只是本发明的一部分实施例,而不是全部实施例,基于本发明的实施例,本领域的技术人员在不付出创造性劳动的前提下所获得的其他实施例,均属于本发明保护的范围。
实施例中未注明具体条件者,按照常规条件或制造商建议的条件进行。所用试剂或仪器未注明生产厂商者,均为可以通过市售购买获得的常规产品。
在本发明的描述中,术语“包括”和“具有”以及他们的任何变形,意图在于覆盖不排他的包含,例如,包含了一系列步骤或单元的过程、方法、系统、产品或设备不必限于清楚地列出的那些步骤或单元,而是可包括没有清楚地列出的或对于这些过程、方法、产品或设备固有的其它步骤或单元。
若无特殊说明,本发明中“约”表示允许误差在±2%之内。
若无特殊说明,本发明中“室温”指25℃±5℃。
若无特殊说明,下述实施例中的培养基指MRS培养基(由广东环凯生物技术有限公司提供)。
下述实施例中的植物乳杆菌(GDMCC1.140)、长双歧杆菌(GDMCC 1.207)、酿酒酵母(GDMCC2.74)由广东省微生物菌种保藏中心提供。短双歧杆菌(CICC6185)由中国工业微生物菌种保藏管理中心提供。无患子果皮由国药(广州)国际医药卫生有限公司提供。魔芋粉由广州诺葳生物科技有限公司提供。魔芋葡甘聚糖由西安拉维亚生物科技有限公司提供。半纤维素酶(酶活力6000U/g)由山西莱克生物科技有限公司提供。β-葡萄糖苷酶(酶活力50000U/g)由重庆九箭之州生物科技有限公司提供。淀粉酶(酶活力100000U/g)由重庆九箭之州生物科技有限公司提供。
实施例1
本实施例提供一种复合发酵物,其制备方法包括如下步骤:
S1、将50g无患子果皮、10g魔芋粉、4g半纤维素酶,4gβ-葡萄糖苷酶和400g水混合,pH调节为6.0,在50℃、50rpm条件下酶解2h,随后在120℃下灭酶20min,得到酶解料液;
S2、将200g酶解料液、4mL植物乳杆菌菌液(浓度为107CFU/mL)、4g培养基和200g水混合,在30℃下发酵72h,发酵结束后将发酵液在转速为8000rpm条件下离心25min,取离心后的上清液,得到复合发酵物。
实施例2
本实施例提供一种复合发酵物,其制备方法包括如下步骤:
S1、将50g无患子果皮、10g魔芋粉、6g半纤维素酶,2gβ-葡萄糖苷酶和400g水混合,pH调节为5.5,在50℃、50rpm条件下酶解2h,随后在120℃下灭酶20min,得到酶解料液;
S2、将200g酶解料液、4mL植物乳杆菌菌液(浓度为107CFU/mL)、2g培养基和200g水混合,在30℃下发酵72h,发酵结束后将发酵液在转速为8000rpm条件下离心25min,取离心后的上清液,得到复合发酵物。
实施例3
本实施例提供一种复合发酵物,其制备方法包括如下步骤:
S1、将50g无患子果皮、10g魔芋粉、2g半纤维素酶,6gβ-葡萄糖苷酶和400g水混合,pH调节为5.5,在50℃、50rpm条件下酶解2h,随后在120℃下灭酶20min,得到酶解料液;
S2、将200g酶解料液、4mL植物乳杆菌菌液(浓度为107CFU/mL)、4g培养基和200g水混合,在30℃下发酵72h,发酵结束后将发酵液在转速为8000rpm条件下离心25min,取离心后的上清液,得到复合发酵物。
实施例4
本实施例提供一种复合发酵物,其制备方法包括如下步骤:
S1、将40g无患子果皮、40g魔芋粉、4g半纤维素酶,4gβ-葡萄糖苷酶和400g水混合,pH调节为6.0,在50℃、50rpm条件下酶解2h,随后在120℃下灭酶20min,得到酶解料液;
S2、将200g酶解料液、4mL植物乳杆菌菌液(浓度为107CFU/mL)、4g培养基和200g水混合,在30℃下发酵72h,发酵结束后将发酵液在转速为8000rpm条件下离心25min,取离心后的上清液,得到复合发酵物。
实施例5
本实施例提供一种复合发酵物,其制备方法包括如下步骤:
S1、将40g无患子果皮、40g魔芋粉、2g半纤维素酶,6gβ-葡萄糖苷酶和400g水混合,pH调节为5.5,在50℃、50rpm条件下酶解2h,随后在120℃下灭酶20min,得到酶解料液;
S2、将200g酶解料液、4mL植物乳杆菌菌液(浓度为107CFU/mL)、4g培养基和200g水混合,在30℃下发酵72h,发酵结束后将发酵液在转速为8000rpm条件下离心25min,取离心后的上清液,得到复合发酵物。
实施例6
本实施例提供一种复合发酵物,其制备方法包括如下步骤:
S1、将40g无患子果皮、40g魔芋粉、6g半纤维素酶,2gβ-葡萄糖苷酶和400g水混合,pH调节为5.5,在50℃、50rpm条件下酶解2h,随后在120℃下灭酶20min,得到酶解料液;
S2、将200g酶解料液、4mL植物乳杆菌菌液(浓度为107CFU/mL)、4g培养基和200g水混合,在30℃下发酵72h,发酵结束后将发酵液在转速为8000rpm条件下离心25min,取离心后的上清液,得到复合发酵物。
实施例7
本实施例提供一种复合发酵物,其制备方法包括如下步骤:
S1、将40g无患子果皮、60g魔芋粉、4g半纤维素酶,4gβ-葡萄糖苷酶和600g水混合,pH调节为6.0,在50℃、50rpm条件下酶解2h,随后在120℃下灭酶20min,得到酶解料液;
S2、将300g酶解料液、4mL植物乳杆菌菌液(浓度为107CFU/mL)、4g培养基和100g水混合,在30℃下发酵72h,发酵结束后将发酵液在转速为8000rpm条件下离心25min,取离心后的上清液,得到复合发酵物。
实施例8
本实施例提供一种复合发酵物,与实施例1相比,区别仅在于:将植物乳杆菌替换为长双歧杆菌。
实施例9
本实施例提供一种复合发酵物,与实施例2相比,区别仅在于:将植物乳杆菌替换为长双歧杆菌。
实施例10
本实施例提供一种复合发酵物,与实施例3相比,区别仅在于:将植物乳杆菌替换为长双歧杆菌。
实施例11
本实施例提供一种复合发酵物,与实施例4相比,区别仅在于:将植物乳杆菌替换为长双歧杆菌。
实施例12
本实施例提供一种复合发酵物,与实施例5相比,区别仅在于:将植物乳杆菌替换为长双歧杆菌。
实施例13
本实施例提供一种复合发酵物,与实施例6相比,区别仅在于:将植物乳杆菌替换为长双歧杆菌。
实施例14
本实施例提供一种复合发酵物,与实施例7相比,区别仅在于:将植物乳杆菌替换为长双歧杆菌。
实施例15
本实施例提供一种复合发酵物,与实施例1相比,区别仅在于:将植物乳杆菌替换为短双歧杆菌。
实施例16
本实施例提供一种复合发酵物,与实施例2相比,区别仅在于:将植物乳杆菌替换为短双歧杆菌。
实施例17
本实施例提供一种复合发酵物,与实施例3相比,区别仅在于:将植物乳杆菌替换为短双歧杆菌。
实施例18
本实施例提供一种复合发酵物,与实施例4相比,区别仅在于:将植物乳杆菌替换为短双歧杆菌。
实施例19
本实施例提供一种复合发酵物,与实施例5相比,区别仅在于:将植物乳杆菌替换为短双歧杆菌。
实施例20
本实施例提供一种复合发酵物,与实施例6相比,区别仅在于:将植物乳杆菌替换为短双歧杆菌。
实施例21
本实施例提供一种复合发酵物,与实施例7相比,区别仅在于:将植物乳杆菌替换为短双歧杆菌。
对比例1
本对比例提供一种复合提取物,其制备方法包括如下步骤:
将50g无患子果皮、10g魔芋粉和水400g混合后,在100℃下加热提取2h,过滤,收集滤液,得到植物提取物。
对比例2
本对比例提供一种复合提取物,其制备方法包括如下步骤:
将50g无患子果皮、10g魔芋粉和75%乙醇(V/V)400g混合后,在80℃下回流提取2h,过滤,收集滤液,得到植物提取物。
对比例3
本对比例提供一种复合发酵物,与实施例1相比,区别仅在于:缺省4g半纤维素酶。
对比例4
本对比例提供一种复合发酵物,与实施例1相比,区别仅在于:缺省4gβ-葡萄糖苷酶。
对比例5
本对比例提供一种复合发酵物,与实施例4相比,区别仅在于:缺省40g魔芋粉。
对比例6
本对比例提供一种复合发酵物,与实施例4相比,区别仅在于:缺省40g无患子果皮。
对比例7
本对比例提供一种复合发酵物,与实施例1相比,区别仅在于:缺省4mL植物乳杆菌菌液(浓度为107CFU/mL)。
对比例8
本对比例提供一种复合发酵物,与实施例1相比,区别仅在于:将植物乳杆菌替换为酿酒酵母。
对比例9
本对比例提供一种复合发酵物,与实施例1相比,区别仅在于:将魔芋粉替换为魔芋葡甘聚糖。
对比例10
本对比例提供一种复合发酵物,与实施例1相比,区别仅在于:将4g半纤维素酶和4gβ-葡萄糖苷酶替换为4g淀粉酶。
对比例11
本对比例提供一种复合发酵物,与实施例1相比,区别仅在于:缺省无患子果皮和魔芋粉。
对比例12
本对比例提供一种复合发酵物,与实施例8相比,区别仅在于:缺省无患子果皮和魔芋粉。
对比例13
本对比例提供一种复合发酵物,与实施例15相比,区别仅在于:缺省无患子果皮和魔芋粉。
测试例1
本测试例对上述实施例1-21和对比例1-10的复合发酵物或复合提取物(以下简称“样品”)进行总多糖和总皂苷含量分析。样品处理和测试方法如下:
样品处理:取20mL样品到大孔树脂AB-8层析柱,分别用2个柱体积的去离子水、2个柱体积的95%乙醇进行洗脱。收集水洗脱液和醇洗脱液,分别减压浓缩后进行真空冷冻干燥,分别得到水溶冻干粉和醇溶冻干粉。
总多糖含量测定:称取0.5g水溶冻干粉至10mL容量瓶中,加水至刻度,摇匀。精确吸取该溶液100μL置于干燥洁净试管中在每支试管中立即加入蒽酮试剂6mL,振荡混匀,各管加完后一起置于沸水浴中加热15min。取出,迅速浸于冰水浴中冷却15min。在625nm波长下迅速测定各管吸光值。根据葡萄糖含量的标准曲线,由样品溶液吸光值计算各样品的总多糖含量。
总皂苷含量测定:称取0.5g醇溶冻干粉至10mL容量瓶中,加95%乙醇至刻度,摇匀。精确吸取该溶液100μL样品溶液于比色管中,70℃水浴挥发溶剂。溶剂挥发完后,每管加入0.4mL的5%香草醛-冰醋酸溶液和0.7mL高氯酸溶液为显色剂,摇匀后在70℃水浴加热20min,冰水中冷却3min,加入5mL冰醋酸,摇匀。在分光光度计546nm波长下测吸光值。根据齐墩果酸含量的标准曲线,由样品溶液吸光值计算各样品的总皂苷含量。
测试结果如表1所示。
表1
由表1可知,对比例1和对比例2制备的样品,不进行酶解和发酵,其总多糖和总皂苷含量均最低。实施例1-21制备的复合发酵物含有的总多糖和总皂苷,都高于对比例3-10制备的复合发酵物。这表明,采用半纤维素酶和β-葡萄糖苷酶联合应用可以高效从植物组织中提取无患子果皮和魔芋中的多糖,并使其水解,为下一步的微生物发酵提供合适的发酵条件;同时无患子果皮中的皂苷类成分也从植物组织中被高效提取。实施例1-21采用两种酶酶解和生物转化,可以提升总多糖和总皂苷的获取量。
测试例2
本测试例对上述实施例1-21和对比例1-10的复合发酵物或复合提取物(以下简称“样品”)进行红细胞溶血性评价。红细胞溶血实验基本原理是通过测定血红蛋白溶出量及变性程度来评价化学品对眼组织细胞的损伤。本实验依照欧洲替代方法验证中心的实验测试方法及分级标准。其中HD50为50%红细胞发生溶血时的样品浓度,DI为蛋白质变性指数,L/D为HD50与DI的比值。评价标准见表2。
评价结果见表3。
表2
L/D | 分级 |
L/D>100 | 无刺激性 |
10<L/D≤100 | 微刺激性 |
1<L/D≤10 | 轻度刺激性 |
0.1<L/D≤1 | 中毒刺激性 |
L/D≤0.1 | 重度刺激性 |
表3
由表3可知,除了对比例1和对比例2的样品有微刺激性,其余样品均无刺激性。这说明经过酶解和发酵的工艺步骤,可以有效降低无患子果皮和魔芋粉的刺激性。
测试例3
本测试例对上述实施例1-21和对比例1-10的复合发酵物或复合提取物(以下简称“样品”)进行DPPH自由基清除能力评价。具体实验方法如下:
分别向板孔中加入质量浓度为50mg/L的DPPH测试液100μL和25μL样品,用无水乙醇补充至总体积300μL,摇匀,避光反应30min后,在519nm波长处测定吸光度并记为A1;分别向板孔中加入无水乙醇200μL和25μL样品,用无水乙醇补充总体积至300μL,在519nm波长处测定吸光度并记为A2;向板孔中加入DPPH测试液200μL和无水乙醇100μL,在519nm波长处测定吸光度并记为A3。计算样品的DPPH自由基清除率(T),计算公式为:T=[1-(A1-A2)/A3]×100%。
测试结果如表4所示。
表4
样品 | DPPH清除率(%) | 样品 | DPPH清除率(%) |
实施例1 | 76.55 | 实施例17 | 71.19 |
实施例2 | 72.36 | 实施例18 | 73.66 |
实施例3 | 71.22 | 实施例19 | 80.02 |
实施例4 | 79.80 | 实施例20 | 74.46 |
实施例5 | 75.52 | 实施例21 | 76.61 |
实施例6 | 71.29 | 对比例1 | 21.33 |
实施例7 | 68.72 | 对比例2 | 29.66 |
实施例8 | 71.11 | 对比例3 | 51.16 |
实施例9 | 69.85 | 对比例4 | 55.74 |
实施例10 | 73.36 | 对比例5 | 48.80 |
实施例11 | 74.15 | 对比例6 | 51.46 |
实施例12 | 72.29 | 对比例7 | 32.29 |
实施例13 | 70.08 | 对比例8 | 54.36 |
实施例14 | 72.42 | 对比例9 | 53.48 |
实施例15 | 69.92 | 对比例10 | 46.74 |
实施例16 | 73.51 |
由表4可知,实施例1-21制备的复合发酵物对DPPH自由基的清除率明显高于对比例1-10,显示出了抗氧化作用。
测试例4
本测试例对上述实施例1-21和对比例1-7的复合发酵物或复合提取物(以下简称“样品”)进行细胞修复能力评价和对细胞迁移运动的影响测试。具体测试方法如下:
用笔在6孔板背后,均匀划横线,横线间约间隔0.5-1cm。在孔中铺满人永生化表皮细胞(HaCat),第二天,待细胞铺满孔,用枪头在孔中按照6孔板预先涂画的横线,划细胞,用PBS洗细胞3次,去除划下的细胞,加入含1%(v/v)样品的细胞培养基,在37℃,5%CO2培养箱中,培养24h,拍照,并统计24h的划痕愈合比例。以去离子水替代样品,作为空白对照组。
评价结果见表5。
表5
由表5可知,与对比例1-10相比,实施例1-21的样品能更加有效地提升细胞迁移运动与修复能力,这表明酶解和发酵之后得到的复合发酵物对表皮细胞具有很好的修护功效。无患子果皮和魔芋不经过酶解和微生物转化得到的对比例1和对比例2存在影响细胞活力的成分,缺省制备原料中的任一组份均会使得复合发酵物对表皮细胞的修护功效显著降低。
测试例5
本测试例对上述实施例1-21和对比例1-10的复合发酵物或复合提取物(以下简称“样品”)进行功效评价,具体通过样品对UV照射后人表皮角质形成原代细胞的IL-6、TNF-α、兜甲蛋白和丝聚蛋白含量的影响进行评价。
具体测试方法如下:
将人表皮角质形成原代细胞接种至6孔板中,在37℃和5%CO2的培养箱孵育过夜。待6孔板中细胞铺板率达到50%~60%时,往空白组中加入细胞培养基,不做其他处理;往模型组中加入细胞培养基,往受试样品组加入含1%(v/v)样品的细胞培养基,预处理1h后,分别进行UVB(中波紫外线)辐照40min,辐射强度为30mJ/cm2。处理后于37℃和5%CO2的培养箱中继续培养24h。培养结束后,根据Human IL-6ELISA Kit(由上海碧云天生物技术有限公司提供)、Human TNF-αELISA Kit(由上海碧云天生物技术有限公司提供)、人兜甲蛋白ELISA试剂盒(由深圳子科生物科技有限公司提供)、人丝聚蛋白ELISA试剂盒(由上海康朗生物科技有限公司提供)的说明书分别测定IL-6、TNF-α、兜甲蛋白和丝聚蛋白含量。
测试结果如表6所示。
表6
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由表6可知,相比于对比例1-10,实施例1-21的样品可以明显降低IL-6和TNF-α含量;实施例1-21的样品可以明显提升兜甲蛋白和丝聚蛋白的含量。缺少制备方法中的任一组份均会使得效果变差。
上面对本发明实施例作了详细说明,但本发明不限于上述实施例,在所属技术领域普通技术人员所具备的知识范围内,还可以在不脱离本发明宗旨的前提下作出各种变化。
Claims (18)
1.一种复合发酵物的制备方法,其特征在于,包括以下步骤:
S1、将无患子、魔芋、复合酶混合后进行酶解,得酶解产物;
所述复合酶包括半纤维素酶和β-葡萄糖苷酶;
所述无患子包括无患子果皮;
所述魔芋包括魔芋粉;
所述无患子、所述魔芋、所述复合酶的质量酶活力比为1g:0.1g~2g:1000U~10000U;
S2、将所述酶解产物、发酵菌种和培养基混合后进行发酵,即得复合发酵物;
所述发酵菌种包括乳酸菌和双歧杆菌中的至少一种;
所述乳酸菌包括植物乳杆菌;
所述双歧杆菌包括长双歧杆菌和短双歧杆菌中的至少一种;
所述步骤S2中,所述发酵菌种的活菌数高于103CFU/g酶解产物。
2.根据权利要求1所述的制备方法,其特征在于,所述步骤S1中,所述酶解的原料还包括水。
3.根据权利要求2所述的制备方法,其特征在于,所述无患子和所述魔芋的总质量与所述水的质量的比为1:2~10。
4.根据权利要求1所述的制备方法,其特征在于,所述复合酶中,所述半纤维素酶与所述β-葡萄糖苷酶的酶活力比为1:50~200。
5.根据权利要求1所述的制备方法,其特征在于,所述步骤S1中,所述酶解的条件包括:pH为4.5~7。
6.根据权利要求1所述的制备方法,其特征在于,所述步骤S1中,所述酶解的酶解时间为0.2h~4h。
7.根据权利要求1所述的制备方法,其特征在于,所述步骤S1中,所述酶解的酶解温度为25℃~70℃。
8.根据权利要求1所述的制备方法,其特征在于,所述步骤S1中,所述酶解还包括搅拌,所述搅拌的速度为30rpm~250rpm。
9.根据权利要求1所述的制备方法,其特征在于,所述步骤S2中,所述发酵的温度为25℃~45℃。
10.根据权利要求1所述的制备方法,其特征在于,所述步骤S2中,所述发酵的时间为1h~120h。
11.根据权利要求1所述的制备方法,其特征在于,所述步骤S2中,所述培养基为细菌发酵培养基。
12.根据权利要求1所述的制备方法,其特征在于,所述步骤S2中,所述培养基与所述酶解产物的质量比为1:1~200。
13.根据权利要求1所述的制备方法,其特征在于,所述步骤S2中,所述培养基包括MRS培养基。
14.一种复合发酵物,其特征在于,复合发酵物由权利要求1至13任一项所述的制备方法制备得到。
15.权利要求1至13任一项所述的制备方法或权利要求14所述的复合发酵物在制备产品中的应用,其特征在于,所述产品具有增强细胞活力、抗氧化中的至少一种功效。
16.一种产品,其特征在于,包括权利要求14所述的复合发酵物。
17.根据权利要求16所述的产品,其特征在于,其特征在于,以质量百分比计,所述产品中的所述复合发酵物的用量为0.01%~10%。
18.根据权利要求16所述的产品,其特征在于,以质量百分比计,所述产品中的所述复合发酵物的用量为0.1%~1%。
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