CN115322971A - 一种鱼类圆环病毒及应用 - Google Patents

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Abstract

本发明首次提出了一种新的大菱鲆圆环病毒及其应用，菌株TCV保藏于中国典型微生物保藏中心，保藏编号CCTCC No.V202232，全基因组序列如SEQ ID TCVfull所示；本发明同时提供一种鱼类圆环病毒的应用，为TCV病毒制得的疫苗，抗体，杂交瘤细胞，抗血清，检测试剂盒中的一种或多种；可提高大菱鲆养殖业中的出血病预防，有效检测和治疗大菱鲆养殖业中的出血病。

Description

一种鱼类圆环病毒及应用
技术领域
本发明属于病毒领域，具体讲，涉及一种新的鱼类圆环病毒及其应用。
背景技术
圆环病毒属于圆环病毒科圆环病毒属，基因组为单股负链环状DNA， 全长1700bp左右，目前已知的最小DNA病毒之一。圆环病毒的宿主范围 很广，包括猪、鸟类、犬、牛、小鼠等。2011年，在匈牙利的发病鲃鱼(Barbus barbus)鱼苗中首次发现鱼类中也存在圆环病毒感染的情况，但尚不能确定 这种圆环病毒感染是否与鱼类的死亡有关。在鱼类中，由圆环病毒感染造成 的死亡情况尚无报道。
大菱鲆是我国重要的海水养殖鱼类，广泛养殖于山东、河北和辽宁沿海 地区，年产量接近7万吨，是我国北方沿海地区工厂化养殖的重要组成部分。 但近年来，大菱鲆养殖受到一系列病害的困扰。2019年，一种突发的“出血 病”对大菱鲆养殖造成了严重的影响，主要症状为鱼鳍出血、溃烂，并迅速 大量死亡。该病传染速度极快，1-2个月内可以造成整个养殖鱼棚几十万尾 大菱鲆全部死亡，给养殖户造成严重损失。目前，该病在全国各个养殖区均 有发现，已成为大菱鲆养殖产业发展的严重屏障。
发明内容
本发明目的在于首次提出了一种新的大菱鲆圆环病毒及其应用。
本发明是通过以下技术方案实现的：
为实现上述目的，本发明提供一种鱼类圆环病毒，其特征在于：菌株 TCV1保藏于中国典型培养物保藏中心，地址为中国.武汉.武汉大学，保藏编 号CCTCC No.V202232，保藏日期为2022年5月27日，由于是个全新的 病毒，仅能分辨到其隶属于Circoviridae科，Circovirus属，分类命名为 大菱鲆圆环病毒TCV1，全基因组序列如SEQ ID TCVfull所示。该病毒衣壳 蛋白与已知的圆环病毒氨基酸同源性低于30％，复制蛋白同源性低于70％，定义为圆环病毒属的新种。
本发明同时提供一种鱼类圆环病毒的应用，为TCV病毒制得的疫苗，抗 体，杂交瘤细胞，抗血清，检测试剂盒中的一种或多种。
优选的，上述疫苗为为圆环病毒减毒活疫苗、圆环病毒灭活疫苗、圆环 病毒多肽疫苗或圆环病毒基因工程疫苗。
优选的，上述圆环病毒灭活疫苗包括亚单位疫苗。
优选的，上述疫苗用于预防和/或治疗大菱鲆出血病的药物。
优选的，上述抗体，杂交瘤细胞，抗血清通过TCV菌株的裂解成份、 该病毒株的基因工程蛋白或该病毒株的多肽为免疫原进行制备。
优选的，上述检测试剂盒包括抗原检测试剂盒、抗体检测试剂盒和核酸 检测试剂盒。
优选的，上述抗原检测试剂盒中的抗原选自TCV病毒株的裂解成份、病 毒株的基因工程蛋白或病毒株的多肽中的至少一种；抗体检测试剂盒中的抗 体选自TCV病毒株的裂解成份、病毒株的基因工程蛋白或病毒株的多肽制备 的单抗或多抗中的至少一种；核酸检测试剂盒包括普通PCR、实时荧光PCR 中的至少一种。
优选的，上述核酸检测试剂盒采用的检测序列为如SEQ ID No:3所示。
与现有技术相比，本发明的有益效果在于：
(1)本发明首次提出了此种圆环病毒。
(2)通过制备此种圆环病毒的疫苗，可大大提高大菱鲆养殖业中的出 血病预防。
(3)通过TCV病毒制备的抗体，杂交瘤细胞，抗血清，可有效治疗大 菱鲆养殖业中的出血病。
(4)通过TCV病毒制备的核酸检测试剂盒，可以有效检测大菱鲆的病 症。
附图说明
图1为本发明所述的圆环病毒基因组结构；
图2为本发明所述的圆环病毒基因组系统发育进化树；
图3为本发明所述的圆环病毒PCR检测结果；其中1.DNA Marker，2-4. 山东地区因出血病死亡的大菱鲆组织DNA，5-6.山东地区发病养殖场其他养 殖池中的大菱鲆组织DNA，7.空孔，8-9.辽宁地区因出血病死亡的大菱鲆 组织DNA，10-12.健康大菱鲆组织DNA；
图4为本发明病毒拷贝数与Ct值之间的线性关系；
图5为本发明荧光定量PCR扩增曲线；
图6为本发明荧光定量PCR熔解曲线；
图7为本发明人工感染后大菱鲆肾脏中TCV的拷贝数变化；
图8为本发明实验室人工感染大菱鲆，其中箭头示鱼鳍出血；
图9为本发明发病大菱鲆肾脏电镜照片，其中箭头示病毒颗粒；
图10为本发明免疫后大菱鲆死亡率；
图11为本发明注射抗体后大菱鲆死亡率。
具体实施方式
下面结合实施例，更具体地说明本发明的内容。应当理解，本发明的实 施并不局限于下面的实施例，对本发明所做的任何形式上的变通或改变都落 入本发明保护范围；且下述实施例中的方法，如无特别说明，均为本领域的 常规方法。
实施例1：
TCV病毒病毒株的分离和纯化
1.取2g带毒大菱鲆的肾脏加入到离心管中，10ml PBS在震荡器上强力 震荡20分钟。
2.4℃、8000RPM离心20分钟，取上清作为粗纯化病毒悬液。
3.采用荧光定量PCR(探针法)检测病毒中圆环病毒的DNA载量
4.蔗糖梯度离心
利用蔗糖/甘油密度离心，38000rpm，离心6小时，收集甘油和30％蔗 糖密度的样品，脱糖后作为纯化后抗原。
5.病毒序列的全基因组扩增：
利用PCR技术将病毒的Rep基因扩增后测序，经Genbank比对结果表 明(图2)，该病毒为圆环病毒的一个新种，TCV全基因组长1774bp，其序 列如SEQ ID TCVfull所示；在此基础上设计引物对全基因组进行长片段的验 证，保证序列的准确性。
经检验，其全基因序列如SEQ ID TCVfull所示(图1)。
分析TCV全基因序列，获得其Cap基因序列(SEQ ID TCVcap)和其 Rep基因序列(SEQ ID TCVrep)，留待后用。
实施例2：
圆环病毒TCV的PCR检测
根据大菱鲆圆环病毒的cap基因序列(SEQ ID TCVcap)，利用Gene Bank 网站，设计特异性引物capF(CCATGTCAAAGTTGACCTG)和capR (AGCAGAAGGGCGTGGATTG)。扩增病毒capsid基因序列如SEQ ID NO:3 所示。
从养殖场挑选临床出血症明显的大菱鲆，按照海洋动物组织DNA提取 步骤，提取大菱鲆肾脏DNA，以大菱鲆肾脏DNA作为模板，capF和capR 作为引物，建立大菱鲆圆环病毒的普通PCR检测方法。PCR反应体系为Taq Mix 12.5μL，模板DNA 1μL，0.2μM的capF和capR引物各0.5μL， 无菌双蒸水10.5μL。PCR反应条件为95℃预变性5min，95℃30s、 55℃30s、72℃30s共计40个循环，72℃延伸5min。PCR检测结果如 图3所示，所有发病样品均可检测到目的条带，健康样品中检测不到目的条 带。将PCR产物克隆至T载体，构建大菱鲆圆环病毒绝对定量PCR检测质 粒载体。
以capF和capR作为引物，以大菱鲆组织DNA作为模板，建立大菱鲆 圆环病毒的荧光定量检测方法。PCR反应体系为SYBR Green Real-Time PCR Master Mixes 10μL，模板DNA 1μL，0.2μM的capF和capR引物各1μ L，无菌双蒸水8μL。PCR反应条件为98℃预变性1min，95℃15s、 58℃15s、72℃30s共计40个循环，升温检测溶解曲线。以质粒载体为 模板，建立病毒拷贝数与Ct值之间的线性关系(图4)。荧光定量PCR扩增 曲线和熔解曲线如图所示，各个阳性样品均可检测到荧光信号(图5)，熔解 温度在85℃左右(图6)，阴性对照没有检测到荧光信号。检测灵敏度超过 普通PCR检测方法，并且可以进行病毒的定量检测，并可以根据公式确定组 织内病毒的拷贝数：y＝-4.5714x+40.478；R2＝0.9972。
因此，通过TCV病毒制备的核酸检测试剂盒，采用特异性引物capF(CCATGTCAAAGTTGACCTG)和capR(AGCAGAAGGGCGTGGATTG)，根 据荧光信号可知样品是否阳性，并可以Ct值，获得病毒拷贝数，据此可以 有效检测大菱鲆的病症。
实施例3：
大菱鲆圆环病毒的人工感染试验
挑选临床中出血症明显的大菱鲆，取发病鱼的肾脏，一部分提取组织 DNA利用荧光定量PCR确定病毒的拷贝数，另一部分研磨、0.22μM滤膜 过滤，利用PBS调整病毒浓度为1×105copies/mL，注射感染健康大菱鲆， 每尾鱼注射0.1mL，对照组注射同等剂量不含组织液的PBS。
攻毒后大菱鲆肾脏组织中病毒的拷贝数持续上升(图7)，并出现鱼鳍出 血溃烂症状(图8)，与自然发病的症状一致，感染20天内死亡90％，电镜观 察显示死亡大菱鲆组织内存在圆环病毒颗粒(图9)。对照组未发生死亡和体 表出血的情况。
由此可知，保藏的病毒种，依然带有致病能力，能起到后续治疗的材料 所用。
实施例4：
大菱鲆圆环病毒的亚单位疫苗的制备
根据大菱鲆圆环病毒cap基因序列信息(SEQ ID TCVcap)，合成cap基 因并连接至表达载体pET-32a中，原核表达大菱鲆圆环病毒蛋白rCap，表达 蛋白的氨基酸序列如SEQID TCVpro所示。利用IPTG诱导rCap的表达， 并进行浓缩纯化，采取注射和口服两种方式对大菱鲆进行免疫。注射免疫组 每尾大菱鲆腹腔注射0.1mL蛋白纯化液，包含rCap蛋白1mg；口服免疫组 每尾大菱鲆灌胃0.1mL蛋白纯化液，包含rCap蛋白5mg，2周后再重复灌 胃一次。免疫组每组20尾鱼，对照组21尾。同时，采用市面上已有成熟产 品的猪圆环病毒基因工程亚单位疫苗(易圆净)对大菱鲆进行了免疫。免疫 后大菱鲆和对照组大菱鲆采用同样养殖条件，免疫28天后，按照实施例2 的方式，对免疫组和对照组大菱鲆进行注射攻毒，攻毒后死亡情况如图10 所示。注射免疫对大菱鲆的免疫保护率为94.17％，口服免疫对大菱鲆的免疫 保护率为88.33％，易圆净对大菱鲆没有保护效果。
根据此实验结果可知，本发明的亚单位疫苗相较市售的猪圆环病毒疫苗 能对大菱鲆起到显著有效的免疫保护效果。
实施例5：
注射和口服免疫接种大菱鲆时免疫剂量的确定的应用方式
按照实施例4的方式，表达rCap。梯度稀释rCap，采取注射和口服两种 方式对大菱鲆进行免疫。注射免疫组每尾大菱鲆腹腔注射0.1mL蛋白纯化 液，分别包含rCap蛋白0.1mg、0.5mg、1mg和2mg；口服免疫组每尾大 菱鲆灌胃0.1mL蛋白纯化液，包含rCap蛋白1mg、5mg、10mg和20mg， 2周后再重复灌胃一次。免疫组每组20尾鱼，对照组21尾。免疫后大菱鲆 和对照组大菱鲆采用同样养殖条件，免疫28天后，按照实施例2的方式， 对免疫组和对照组大菱鲆进行注射攻毒，注射免疫对大菱鲆的免疫保护率为 0、41.66％、94.17％和94.17％，口服免疫对大菱鲆的免疫保护率为41.66％、 88.33％、82.50％和94.17％。因此，当注射免疫剂量≥1mg或口服免疫剂量≥5 mg时，疫苗均具有较好的免疫保护效果。
实施例6：
大菱鲆圆环病毒的抗体、杂交瘤细胞或抗血清的制备
TCV病毒制备引发针对该病毒或异源核苷酸序列的抗体，使用本领域技 术人员已知的技术(例如，免疫亲和层析、离心、沉淀等)分离的抗体。
通过将表达本发明TCV病毒颗粒与等体积的完全弗氏佐剂(Sigma)采 取注射和口服两种方式刺激大菱鲆而产生针对该TCV病毒的抗血清。每只 大菱鲆隔两周后再次接种，四周后收集大菱鲆血清；这种大菱鲆抗体可以以 下方式用于诊断目的或用作疫苗，可用作目标抗体用于检测针对该病毒的特 异性抗原。不完全弗氏佐剂(Sigma)可添加于随后免疫中。抗体效价测定方法 同灭活疫苗测定方法。
实施例7：
大菱鲆圆环病毒的抗体、杂交瘤细胞抗血清或卵黄抗体对出血症的治疗
按照实施例4的方式，表达rCap。将rCap蛋白与弗氏佐剂混合，免疫 新西兰大白兔，两周后重复免疫1次，免疫后一个月，取兔血，离心收集血 清，采用protein A/G纯化得到大菱鲆圆环病毒Cap蛋白多克隆抗体。
按照实施例4的方式，表达rCap。将rCap蛋白与弗氏佐剂混合，免疫 SPF小鼠，两周后重复免疫1次，免疫后一个月，取小鼠脾脏细胞，与小鼠 骨髓瘤细胞进行细胞融合，制备小鼠杂交瘤细胞，并采用细胞培养的方式生 产大菱鲆圆环病毒Cap蛋白单克隆抗体。
按照实施例4的方式，表达rCap。将rCap蛋白与弗氏佐剂混合，免疫 SPF蛋鸡，两周后重复免疫1次，免疫后一个月，蛋黄提取卵黄抗体IgY。
按照实施例3的方式，对大菱鲆进行注射感染攻毒，攻毒后第三天，分 别采用单克隆抗体、卵黄抗体对大菱鲆进行注射治疗，对照组注射同等剂量 的PBS，大菱鲆死亡情况如图11所示：对照组大菱鲆全部死亡，单克隆抗 体注射治疗存活率为80％，多克隆抗体注射治疗存活率为65％，抗体治疗组 存活率均显著高于对照组。
根据此实验结果可知，上述抗体可以通过浸泡、口服或注射的方式，对 大菱鲆圆环病毒进行预防或治疗。
以上所述之具体实施方式为本发明的较佳实施方式，并非以此限定本发 明的具体实施范围，本发明的范围包括并不限于本具体实施方式，凡依照本 发明所作的等效变化均在本发明的保护范围内。
SEQUENCE LISTING
<110>中国水产科学研究院黄海水产研究所
<120>一种鱼类圆环病毒及应用
<130>12345678
<160>4
<170>PatentIn version 3.5
<210>1
<211>1774
<212>DNA
<213>Turbot Circovirus
<400>1
Figure BDA0003692499410000101
Figure BDA0003692499410000111
Figure BDA0003692499410000121
<210>2
<211>642
<212>DNA
<213>Turbot Circovirus
<400>2
Figure BDA0003692499410000131
Figure BDA0003692499410000141
<210>3
<211>208
<212>DNA
<213>Turbot Circovirus
<400>3
Figure BDA0003692499410000142
<210>4
<211>213
<212>PRT
<213>Turbot Circovirus
<400>4
Figure BDA0003692499410000151
Figure BDA0003692499410000161
Figure BDA0003692499410000171

Claims (10)

1.一种鱼类圆环病毒，其特征在于：菌株TCV保藏于中国典型微生物保藏中心，保藏编号CCTCC No.202232。
2.如权利要求1所述的鱼类圆环病毒，全基因组序列如SEQ ID No:1所示。
3.一种鱼类圆环病毒的应用，其特征在于，由权利要求1所述的病毒制得的疫苗，抗体，杂交瘤细胞，抗血清，检测试剂盒中的一种或多种。
4.如权利要求3所述的鱼类圆环病毒的应用，其特征在于，所述疫苗为为圆环病毒减毒活疫苗、圆环病毒灭活疫苗、圆环病毒多肽疫苗或圆环病毒基因工程疫苗。
5.如权利要求4所述的鱼类圆环病毒的应用，其特征在于，所述圆环病毒灭活疫苗包括亚单位疫苗。
6.如权利要求3所述的鱼类圆环病毒的应用，其特征在于，所述疫苗用于预防和/或治疗大菱鲆出血病的药物。
7.如权利要求3所述的鱼类圆环病毒的应用，其特征在于，所述抗体，杂交瘤细胞，抗血清通过TCV菌株的裂解成份、该病毒株的基因工程蛋白或该病毒株的多肽为免疫原进行制备。
8.如权利要求3所述的鱼类圆环病毒的应用，其特征在于，所述检测试剂盒包括抗原检测试剂盒、抗体检测试剂盒和核酸检测试剂盒。
9.如权利要求8所述的鱼类圆环病毒的应用，其特征在于，所述抗原检测试剂盒中的抗原选自TCV病毒株的裂解成份、病毒株的基因工程蛋白或病毒株的多肽中的至少一种；抗体检测试剂盒中的抗体选自TCV病毒株的裂解成份、病毒株的基因工程蛋白或病毒株的多肽制备的单抗或多抗中的至少一种；核酸检测试剂盒包括普通PCR、实时荧光PCR中的至少一种。
10.如权利要求9所述的鱼类圆环病毒的应用，其特征在于，所述核酸检测试剂盒采用的检测序列引物为capF(CCATGTCAAAGTTGACCTG)和capR(AGCAGAAGGGCGTGGATTG)。
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