CN114990009B

CN114990009B - 植物根际促生菌株f13在制备抗病促生增产微生物菌剂中的应用

Info

Publication number: CN114990009B
Application number: CN202210555191.2A
Authority: CN
Inventors: 梁卫驱; 胡珊; 黄皓; 莫坚强; 罗华建; 吴代应; 陈彦; 俞孟君; 陈仕丽
Original assignee: DONGGUAN RESEARCH CENTER OF AGRICULTURAL SCIENCE
Current assignee: DONGGUAN RESEARCH CENTER OF AGRICULTURAL SCIENCE
Priority date: 2022-05-19
Filing date: 2022-05-19
Publication date: 2023-07-21
Anticipated expiration: 2042-05-19
Also published as: CN114990009A

Abstract

本发明公开了植物根际促生菌株F13在制备抗病促生增产微生物菌剂中的应用，其分类命名为铜绿假单胞菌（Pseudomonas aeruginosa），已保藏于广东省微生物菌种保藏中心，其保藏编号为GDMCC No:61146，保藏日期为2020年8月14日，保藏地址为：中国广东省广州市先烈中路100号大院59号5楼。本发明筛选得到的植物根际促生菌株F13对植物病原菌具有拮抗作用、对抗生素具有药敏作用、能作为产铁载体、能生产申嗪霉素、能用于夏黑葡萄白粉病或豆角白粉病的大田防治、对豆角具有促生增产作用，能用于制备抗病促生增产的微生物菌剂。

Description

植物根际促生菌株F13在制备抗病促生增产微生物菌剂中的应用

技术领域

本发明涉及微生物技术领域，具体地说，涉及植物根际促生菌株F13在制备抗病促生增产微生物菌剂中的应用。

背景技术

植物根际促生菌(Plant Growth-promoting Rhizobacteria,PGPR)是指存在于植物根际表面及根系周围土壤微环境中，能通过直接或间接的方式显著促进植物生长的微生物。PGPR不仅能促进植物生长，还能防治植物病害。PGPR的作用机理大致可归为直接和间接作用两大类，直接作用的机理是PGPR可以合成一些促进植物生长的激素(如生长素、吲哚乙酸等)，使土壤中某些无效元素的形态转化成有用的而利于植物吸收(如固氮、解磷、解钾等)直接作用于植物本身，促进植物的生长发育；间接作用的机理是PGPR通过产铁载体和抗生素等代谢产物抑制病原体或减缓植物病害对植物生长不利的影响。

目前的研究表明，基于PGPR的制剂不仅通过作为生物控制剂可以保护植物免受多种病原体的侵害，而且在各种植物上的试验表明均对其生长有促进作用。在大米，豌豆，大豆，小麦，番茄等经济重要作物中，大多数PGPR提高了植物生长特性，包括植株高度，幼苗活力，种子萌发，叶面积，鲜重和干重以及产量和营养成分。用生物农药替代化学农药更加绿色有效，是未来肥料的主要发展方向。因此，分离筛选出具有药肥双效且稳定性好的PGPR菌株，并能大范围的推广应用对于现代农业的发展至关重要。

发明内容

本发明的目的在于克服现有技术的不足，提供新筛选的植物根际促生菌株F13在制备抗病促生增产微生物菌剂中的应用。

为了实现上述目的，本发明采用如下技术方案：

本发明采用5点采样法在广东东莞葡萄园取葡萄根际土壤，在无菌条件下，称取土壤溶于无菌水制成10^-3、10^-4、10^-5和10^-6倍的悬液，分别均匀涂布于溶磷和解钾固体培养基上，挑取效果好的菌株于LB培养基上进一步纯化，将各菌株重复平板溶磷解钾试验，筛选得到一株高效溶磷解钾的植物根际促生菌株F13，其分类命名为铜绿假单胞菌(Pseudomonasaeruginosa)，菌株号F13，已保藏于广东省微生物菌种保藏中心，其保藏编号为GDMCC No:61146，保藏日期为2020年8月14日，保藏地址为：中国广东省广州市先烈中路100号大院59号5楼。

所得植物根际促生菌株F13能用于制备抗病促生增产微生物菌剂；所述抗病促生增产包括对植物病原菌的拮抗作用、对抗生素的药敏作用、能作为产铁载体、能生产申嗪霉素、对夏黑葡萄白粉病或豆角白粉病有防治效果、对豆角促生增产。所述植物病原菌优先为水稻纹枯病菌、辣椒炭疽病菌、香蕉枯萎病菌、花生褐斑病菌、玉米小斑病菌、甘蔗赤腐病菌、小麦赤霉病菌或冬瓜根腐病菌。所述药敏作用是指菌株F13对诺氟沙星、卡那霉素、庆大霉素、恩诺沙星高度敏感、萘啶酸或链霉素敏感，对氨苄西林、利福平、阿莫西林、氯霉素、亚胺培南、丁胺卡那霉素或万古霉素耐药。

与现有技术相比，本发明具有如下有益效果：本发明筛选得到的植物根际促生菌株F13能够高效溶磷解钾，在作为生物有机肥中应用广阔。同时，该植物根际促生菌株F13对植物病原菌具有拮抗作用、对抗生素具有药敏作用、能作为产铁载体、能生产申嗪霉素、能用于夏黑葡萄白粉病或豆角白粉病的大田防治、对豆角具有促生增产作用，能用于制备抗病促生增产的微生物菌剂。

附图说明

图1为菌株F13的溶磷圈图：

图2为菌株F13在解钾平板上的菌落形态图；

图3菌株F13培养基上的菌落图；

图4为菌株F13菌落镜检图片(10×100)；

图5为F13 16S rDNA的PCR产物电泳结果图；注：M是DNA标记，1、2是PCR产物；

图6为基于16S rDNA序列的F13系统发育进化树图；

图7为菌株F13的拮抗作用图；

图8为菌株F13产铁载体的试验结果图；

图9为菌株F13在不同培养基中PCA的产量图；

图10为菌株F13对夏黑葡萄白粉病的防治效果图；

图11为菌株F13对豆角白粉病的防治效果图；

图12为菌株F13对豆角植株吸收磷元素、钾元素的影响图。

具体实施方式

1、实验材料

1.1培养基：有机磷细菌培养基(含琼脂)、硅酸盐培养基、CAS检测培养基：青岛高科技公园海博生物技术有限公司；LB培养基，马铃薯琼脂培养基：广东环凯微生物科技有限公司；蒙吉娜卵磷脂培养基：蔗糖(葡萄糖)10.0g，(NH₄)₂SO₄ 0.5g，NaCl 0.3g，MgSO₄·7H₂O0.3g，FeSO₄·7H₂O 0.03g，NaCl 0.3g，MnSO₄·7H₂O 0.03g，CaCO₃ 5.0g，卵磷脂1.0g(卵磷脂用时先溶于75％乙醇中)，去离子水1L，pH 7.2-7.4；KB培养基：蛋白胨10g，甘油10mL，K₂HPO₄1.5g，MgSO₄·7H₂O 1.5g,离子水1L，pH 7.0。

1.2供试植物病原菌：由华南农业大学植物病理系提供。水稻纹枯病菌(Rhizoctonia solani)、辣椒炭疽病菌(Colletotrichum capsici)、香蕉枯萎病菌(Fusarium oxysporum f.sp.)、花生褐斑病菌(Cercospora arachidicola Hori)、玉米小斑病菌(Bipolaris maydis)、甘蔗赤腐病菌(Colletotrichum falcatum Went.)、小麦赤霉病菌(Fusarium graminearum)和冬瓜根腐病菌(Fusarium solani)。

1.3主要实验设备：主要设备电子天平：赛多利斯科学仪器(北京)有限公司；YXQ-LS-75G立式压力蒸汽灭菌锅：上海博讯实业有限公司医疗设备厂；ZHWY-211B恒温培养振荡器：上海智城分析仪器制造有限公司；SW-CJ-1F洁净工作台：苏州安泰空气技术有限公司；正置荧光显微镜：奥林巴斯Olympus；LRH-250生化培养箱：上海一恒科学仪器有限公司；UV-1800全波长扫描分光光度计：日本岛津公司；TSQ Quantum Ultra&Access MAX液相色谱质谱联用仪：赛默飞世尔科技(中国)有限公司。

1.4供试豆角品种：靓翡12号豆角，河北慕兰多种子有限公司；供试葡萄品种：夏黑葡萄

2、实验方法

2.1植物根际促生菌株F13的分离筛选

采用5点采样法在广东东莞葡萄园取葡萄根际土壤，将样品混匀，放入无菌的自封袋里，于4℃冰箱保存并尽快分离。在无菌条件下，称取10g土壤溶于90mL的无菌水在120r/min的振动筛上摇动1h，并梯度稀释成10^-3、10^-4、10^-5和10^-6倍的悬液，每个稀释度各取100μL分别均匀涂布于溶磷和解钾固体培养基上，于36℃培养箱培养，观察解磷平板上有无溶磷圈、在解钾平板上有无光滑透明油滴状菌落的菌株。挑取效果好的菌株于LB培养基上进一步纯化，将各菌株重复平板溶磷解钾试验。最后将各纯培养菌株转入终浓度为30％甘油管并保存于-20℃冰箱中。

2.2菌株F13对植物真菌病害的拮抗作用

菌株的发酵液制备：将细菌单菌落接种至LB培养基中，36℃、130r/min振荡培养18h，调整菌液OD₆₀₀至1.0作为种子液。将种子液按1.5％(体积比)的接种量转接至LB培养基中，28℃、150r/min振荡培养6d后即得发酵液。

发酵液抑菌谱测定采用平板对峙法测定细菌与病原真菌的拮抗作用。将真菌与细菌同时接种在PDA平板上，平板中心接种直径为6mm的真菌菌饼，距中心2cm处等距离三点接种F13发酵液(用移液枪将20μL菌液垂直滴在培养基上)，以不接种细菌的真菌平板为对照，每种组合3个重复。28℃培养，观察生长情况，在对照菌落长满平板时，测量真菌距细菌远端和近端的半径，计算细菌对病原真菌的抑制率。抑制率越高，细菌对真菌的抑制作用越强。

菌丝生长抑制率(％)＝[(对照组平均菌落直径(mm)-处理组平均菌落直径(mm)]对照平均菌落直径(mm)]×100％。

2.3菌株F13药敏实验

采用K-B纸片扩散法对菌株F13进行药敏实验。将筛选细菌接种于20mL高温灭菌的LB培养基中于36℃，130r/min下活化培养24h，均匀涂布于牛肉膏蛋白胨琼脂培养基上。将浸有各种抗生素溶液的药敏纸片均匀分布粘贴在培养基上，36℃培养24h后，测定抑菌圈直径。根据NCCLS提供的标准判断菌株对药物的敏感程度。

2.4菌株鉴定

2.2.1形态学观察参照《伯杰氏细菌鉴定手册》(第八版)观察解磷细菌在LB培养基表面生长菌落的形态、颜色等；挑取幼龄培养物，涂片、革兰氏染色，显微镜下观察菌体形态、大小、革兰氏染色反应，以及芽孢的有无、形态和着生位置等。

2.2.2 API系统鉴定使用法国梅里埃公司生产的API 20NE和API 20E系统对菌株进行生理生化鉴定。

2.2.3 16S rDNA分子鉴定提取细菌的基因组DNA后，采用细菌16S rDNA的通用引物(27F：5′-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3′，1492R：5′-TACGGCTACCTTGTTACGACTT-3′)进行PCR扩增。PCR产物经凝胶电泳检测后送至上海美吉生物医药科技有限公司测序。将测序结果提交GenBank进行BLAST比对，并选取同属内近缘种的16S rDNA基因序列进行同源性分析，利用MEGA11.0构建系统发育进化树，如图6所示。

2.5菌株F13产嗜铁素能力的检测

将菌株点接于CAS检测培养基平板上，置于36℃培养7d，观察菌落周围是否会出现明显的橙色或者深黄色铁载体晕圈，若产生晕圈，则表明细菌能分泌铁载体

2.6菌株F13产申嗪霉素的定量分析鉴定

申嗪霉素又名吩嗪-1-羧酸(phenazine-1-carboxylic acid，PCA)是假单胞菌属重要的拮抗次生代谢物，同时具有广谱抑制植物病原菌并促进植物生长作用的双重功能的杀菌剂。

菌株发酵条件：从LB平板上挑取细菌单菌落接种至20mL LB液体培养基36℃，130r/min中振荡培养18h，调整菌液OD600至1.0作为种子液。按1.5％的接种量将种子液分别接种至KB培养基和黄豆浸粉培养基中，分别在36和28℃，130rpm恒温摇床中培养120h。将发酵液于4℃，9 000rpm离心15min，取上清液。

申嗪霉素检测：将上述的上清液用甲醇稀释，离心，取上清液，滤膜过滤后进样分析。用TSQ Quantum Ultra&Access MAX液相色谱质谱联用仪进行检测，分析参数如下：流动相为0.1％甲酸水(A)，甲醇(B)；流速为0.4mL/min；进样量为10μL；色谱柱为Hypersil-Gold-C18(100×2.1mm，5μm)；梯度洗脱程序为0-2min，95％A；2min-6min，95％-2％A；6min-8min，2％A；8.1min-10min，2％-95％A。用甲醇溶解申嗪霉素标准品配置标准溶液，绘制标准曲线。

2.7菌株F13对葡萄白粉病、豆角白粉病的大田防治初步研究

白粉病是一种植物常见病害，是由真菌引发感染发病的，它是作物生长过程中的一个很难防治的病害，它不仅可以侵染葡萄的叶片，还可以侵染新梢和果实，白粉病的发生造成作物不同程度的减产，严重的话甚至可以造成农民的绝产绝收。

2.7.1菌株发酵液的准备

将细菌单菌落接种至LB培养基中，36℃、130r/min振荡培养18h，调整菌液OD₆₀₀至1.0作为种子液。将种子液按1.5％(体积比)的接种量转接至LB培养基中，28℃、150r/min振荡培养6d后即得发酵液。

2.7.2大田防效试验药剂及设计

大田防效试验设置三个处理：处理1：F13发酵液稀释50倍叶面喷雾；处理2：75％百菌清可湿性粉剂稀释600倍叶面喷雾；处理3：清水对照

夏黑葡萄试验实施如下：

在东莞市农业科学研究中心设施葡萄园里选取3个爆发白粉病的小区，每个小区对应一个试验处理。试验于2021年11月3日于第一次喷施，11月7日第二次喷施，施药要求均匀细致周到，喷头朝上，喷液量以液滴在叶片正反面上保持欲滴未滴状态为宜，各试验处理均按常规管理进行田间管理。病情调查分次，第一次调查为施药前，第二次调查为第一次喷药三天后，第三次调查为第一次喷药七天后。每小区随机调查10个新梢，每梢调查5片-8片叶，每片叶按病斑面积的百分率分级，记录调查总叶片数、各级病叶数，根据以下公式计算病情指数和防治效果。

病害分级标准，以叶片白粉分布面积(病斑)的百分比分为7级：0级：叶片健康，无病斑；1级：病斑面积为10％以下；3级:病斑面积为11％-20％；5级病斑面积为21％-30％；7级:病斑面积为31％-50％；9级:病斑面积为50％以上。

豆角试验实施如下：

在东莞市农业科学研究中心简易大棚里选取3个豆角白粉病发病小区，每个小区对应一个试验处理。试验于2021年11月29日于第一次喷施，12月1日第二次喷施，施药要求均匀细致周到，喷头朝上，喷液量以液滴在叶片正反面上保持欲滴未滴状态为宜，各试验处理均按常规管理进行田间管理。病情调查分次，第一次调查为施药前，第二次调查为第一次喷药4天后，第四次调查为第一次喷药9天后。每小区随机调查10株，每株调查5片-8片叶，每片叶按病斑面积的百分率分级，记录调查总叶片数、各级病叶数，根据以下公式计算病情指数和防治效果。

2.8植物根际促生菌株F13溶磷能力测定

溶磷圈法：将待测菌株点接于有机磷固体培养基，3次重复，36℃的恒温箱中培养3d，根据透明圈直径(D)与菌落直径(d)的比值(D/d)大小初步确定菌株解有机磷能力的强弱。

磷钼蓝比色法：将筛选菌株接种于20mL高温灭菌的LB培养基中于36℃，130rpm下活化培养18h，作为种子液。将种子液按1.5％(体积比)的接种量转接至100mL高温灭菌的蒙金娜卵磷脂培养基中，以不接任何菌液的发酵培养基为空白对照组，每个处理设3重复，于36℃，150rpm下培养5d。5d后取50mL发酵液4℃，9000rpm，离心15min后取上清液，用磷钼蓝比色法测定发酵液中的有效含磷量，实验组和对照组可溶性磷含量的差值即为待测菌株解磷量。菌株F13的溶磷圈图如图1所示。

溶磷率(％)＝试验组有效磷的含量(mg/L)－对照组有效磷的含量(mg/L)/试验组有效磷的含量(mg/L)×100。

2.9植物根际促生菌株F13解钾能力测定

将筛选菌株接种于20mL LB中于36℃，130rpm下活化培养18h，作为种子液。将种子液按1.5％(体积比)的接种量转接至100mL高温灭菌的酸盐细菌液体培养基中，以不接任何菌液的发酵培养基为对照，每个处理设置3次重复，于36℃150rpm下培养5d。发酵液4℃，9000rpm，离心15min后取上清液，用原子吸收分光光度法测定溶液中速效钾含量。然后利用公式计算解钾率，衡量菌株的解钾能力。菌株F13在解钾平板上的菌落形态如图2所示。

解钾率(％)＝试验组速效钾的含量(mg/L)－对照组速效钾的含量(mg/L)/试验组速效钾的含量(mg/L)×100。

2.10菌株F13对豆角促生增产能力的研究

待豆角苗长至7-8叶期，将稀释50倍的发酵菌液取300mL均匀浇灌豆角根围土壤，对照浇灌稀释50倍的300mL灭菌LB培养基，每个处理50株豆角，7d后重复灌根1次。处理后15d后，每个处理随机取样8株豆角测定其株高、叶片数、茎粗，计算促生增幅；收成时，对每个处理的产量进行测定。

2.11菌株F13对豆角植株磷元素、钾元素吸收影响的研究

把收获完成的豆角植株送到广东省农业科学院农业资源与环境研究所进行磷元素、钾元素的测定，检测方法参照LY/T 1271-1999。

3、实验结果

3.1菌株F13对植物真菌病害的拮抗作用

采用平板对峙法测定F13发酵液对植物病原真菌的拮抗作用，结果如表2所示，F13发酵液对水稻纹枯病菌、辣椒炭疽病菌、香蕉枯萎病菌、花生褐斑病菌、玉米小斑病菌、甘蔗赤腐病菌、小麦赤霉病菌和冬瓜根腐病菌8种植物病原菌均有不同程度的抑制作用，抑制率在63.26％-81.41％之间，对玉米小斑病菌、花生褐斑病菌的抑制率达80％以上，对辣椒炭疽病菌抑制作用最弱，抑菌率为63.26％。菌株F13的拮抗作用如图7所示。

表1菌株F13对植物真菌病害的拮抗效果

3.2菌株F13药敏实验结果

选用15种抗生素对F13进行药敏实验，结果如表3所示，F13对诺氟沙星、卡那霉素、庆大霉素和恩诺沙星高度敏感，对萘啶酸、链霉素中度敏感，对氨苄西林、利福平和阿莫西林等7种抗生素耐药。

表2 F13的药敏实验结果

注：S(d>15mm)表示高度敏感；I(10mm≤d≤15mm)表示中度敏感；R(0mm≤d<10mm)表示低度敏感或耐药。

3.3菌株F13鉴定结果

3.3.1菌落培养特征：菌株F13在营养琼脂36℃培养24h，菌落淡黄色，扁平，表面光滑、湿润、有光泽，边缘不规则，镜检显示革兰氏阴性杆菌，菌体单个、成双或短链状排列。

3.3.2生理生化试验结果

菌株F13生理生化试验结果如表1所示，菌株能利用乳糖、半乳糖、甘油、阿拉伯糖、果糖、甘露醇、肌醇、蔗糖、鼠李糖等；不能利用麦芽糖、蜜三糖、水杨甙。明胶液化。淀粉水解强。吲哚试验阴性。接触酶酶阳性。

表3菌株F13的生理生化鉴定结果

生理生化试验	检测结果	生理生化试验	检测结果	生理生化试验	检测结果
						柠檬酸盐	+	吲哚试验	—	甲基红	+
接触酶	+	淀粉水解	+	明胶液化	+
						乳糖	+	果糖	+	木糖	+
甘露醇	+	甘油	+	阿拉伯糖	+
						蔗糖	+	肌醇	+	鼠李糖	+
半乳糖	+	阿拉伯半乳聚糖	+	麦芽糖	—
						水杨甙	—	蜜三糖	—

注:“+”为反应呈阳性或可生长、利用；“—”为反应呈阴性或不可生长、利用。

3.3.3分子鉴定结果

以菌株F13的基因组DNA为模板，利用细菌16S rDNA基因通用引物进行PCR扩增，扩增出的1.5Kb左右长度的DNA片段(图5)。将测序结果提交GenBank数据库进行NucleotideBLAST序列比对分析发现，菌株F13与Pseudomonas aeruginosa strain YW1同源性达100％。为明确菌株之间的亲缘关系及系统地位，利用MEGA 11构建系统发育进化树(图6)，同时结合菌株F13的形态特征及生理生化试验结果，鉴定F13为铜绿假单胞菌。

3.4菌株F13产铁载体的结果

F13在CAS培养基平板上36℃培养7d，菌落周围产生橙色晕圈(图8)，说明该菌株能产铁载体。

3.5菌株F13产申嗪霉素的定量分析鉴定

菌株F13在不同温度(28和36℃)下在KB培养基和黄豆浸粉培养基中申嗪霉素的产量，结果如图9所示。无论在28℃、36℃条件下，菌株F13在两种培养基中PCA的产量差异显著，在KB培养基PCA的产量最高，为61.5mg/L，在黄豆浸粉培养基中PCA的产量最低，为4.51mg/L。由此可知，菌株F13在28℃，KB培养基中PCA的产量最高(61.5mg/L)。在两种培养基中，温度不同PCA的产量差异显著且变化趋势不一致，在KB培养基中，PCA的产量随温度升高而降低；在黄豆浸粉培养基中，PCA的产量随温度升高而升高。

3.6菌株F13对夏黑葡萄白粉病、豆角白粉病的大田初步防治效果

白粉病是一种植物常见病害，是由真菌引发感染发病的，主要危害植物的叶片和叶梢，也会危害到植物的果实与茎杆。如表4、表5所示菌株F13对葡萄、豆角白粉病都具有良好的防治效果，能够有效抑制白粉病的扩散蔓延，其相对防效分别为72.28％、和71.78％，与对照化学药剂75％百菌清可湿性粉剂防效相当，其相对防效分别为70.38％、和72.98％。

从图10、图11中可以看出，喷施50倍稀释的菌株发酵液后第7天，夏黑葡萄叶片白粉病的病害已基本消失；喷施50倍稀释的菌株发酵液后第9天，豆角叶片白粉病的病害已基本消失，说明菌株F13对夏黑葡萄白粉病、豆角白粉病有明显的防治效果。

表4菌株F13发酵液对夏黑葡萄白粉病的防治效果

表5菌株F13发酵液对豆角白粉病的防治效果

3.7菌株F13溶磷解钾能力的测定结果

菌株F13具有较强的溶磷解钾活性，溶磷指数(D/d)比值为4.25±0.20，溶磷率为82.67％；解钾率为75.67％。

3.8菌株F13对豆角促生增产的效果

从表6中可以看出，经与不施用该菌剂的对照组比较，施用菌株F13发酵液的豆角在株高、叶片数、茎粗方面分别高于对照组26.7％、24.4％、11.9％，产量高于对照组39.68％。因此，菌株F13对豆角具有较好的促生增产作用。

表6菌株F13对豆角促生增产的效果

项目	株高(cm)	叶片数(片)	茎粗(mm)	果实产量(Kg)
					F13组	128.75±15.4	24.88±1.32	8.03±0.72	44.0
对照组	101.61±16.27	20±2.12	7.17±0.66	31.5

3.9菌株F13对豆角植株吸收磷元素、钾元素的影响

从图12中可以看出，经与不施用该菌剂的对照组比较，施用菌株F13对豆角植株磷元素、钾元素的吸收分别高于对照组11.5％、46.8％。因此，施用菌株F13能促进豆角植株对营养元素的吸收。

Claims

1.植物根际促生菌株F13在制备抗病促生增产微生物菌剂中的应用，所述植物根际促生菌株F13的分类命名为铜绿假单胞菌（Pseudomonas aeruginosa），已保藏于广东省微生物菌种保藏中心，其保藏编号为GDMCC No:61146，保藏日期为2020年8月14日；

所述抗病促生增产包括对植物病原菌的拮抗作用、对抗生素的药敏作用、能作为产铁载体、能生产申嗪霉素、对夏黑葡萄白粉病或豆角白粉病的防治、对豆角促生增产；

所述植物病原菌为水稻纹枯病菌、辣椒炭疽病菌、香蕉枯萎病菌、花生褐斑病菌、玉米小斑病菌、甘蔗赤腐病菌、小麦赤霉病菌或冬瓜根腐病菌；

所述药敏作用是指菌株F13对诺氟沙星、卡那霉素、庆大霉素、恩诺沙星高度敏感、萘啶酸或链霉素敏感，对氨苄西林、利福平、阿莫西林、氯霉素、亚胺培南、丁胺卡那霉素或万古霉素耐药。