CN114959089A - 一种转基因大豆mon89788品系的实时荧光pcr检测引物探针、试剂盒及方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种转基因大豆MON89788品系的实时荧光PCR检测引物探针、试剂盒及方法。本发明的实时荧光PCR检测引物包括正向引物和反向引物,正向引物的核苷酸序列如SEQ IDNo.1所示,反向引物的核苷酸序列如SEQ ID No.2所示;本发明的实时荧光PCR检测探针为:MON89788‑P1,其核苷酸序列如SEQ ID No.3所示。本发明针对大豆MON89788品系的特点设计了效果优异的引物探针、优化了检测方法,检测效率非常高,本发明的实时荧光PCR检测方法经验证具有较高的特异性、灵敏性以及可重复性,能够满足口岸对于转基因大豆检得快、检得准的要求。
Description
技术领域
本发明涉及一种转基因大豆MON89788品系的实时荧光PCR检测引物探 针、试剂盒及方法,属于生物检测技术领域。
背景技术
大豆不仅含有丰富的植物蛋白和食用油脂,还含有异黄酮、卵磷脂等有益营 养物质,是重要的食用、饲用和油料作物。转基因大豆MON89788品系是美国 孟山都公司研发的具有草甘膦除草剂耐受性的转基因大豆品系。
为了满足口岸检得快、检得准的要求,需开发针对转基因大豆MON89788 品系的高效率检测方法。
发明内容
本发明所要解决的技术问题是:如何实现对转基因大豆MON89788品系的 高效率检测。
为了解决上述技术问题,本发明提供了一种转基因大豆MON89788品系的 实时荧光PCR检测引物探针,包括正向引物MON89788-F1、反向引物 MON89788-R1和探针MON89788-P1;
所述正向引物MON89788-F1的核苷酸序列如SEQ IDNo.1所示,所述反向 引物MON89788-R1的核苷酸序列如SEQ ID No.2所示;所述探针MON89788-P1 的核苷酸序列如SEQ ID No.3所示;所述探针MON89788-P1的5’端标记有荧 光基团,3’端标记有与荧光基团对应的淬灭基团。
优选地,所述荧光基团为FAM、TET、JOE、HEX、CY3、TAMRA、ROX、 Texas Red、VIC、HEX或ROX;所述淬灭基团为BHQ-0、BHQ-1、BHQ-2、Dabcyl、 Eclipse或TAMRA。
更优选地,所述荧光基团为FAM,所述淬灭基团为BHQ-1。
本发明还提供了一种转基因大豆MON89788品系的实时荧光PCR检测试剂 盒,包括HR qPCR Master Mix预混液、DNA提取试剂以及上述的转基因大豆 MON89788品系的实时荧光PCR检测引物探针。
本发明还提供了一种转基因大豆MON89788品系的实时荧光PCR检测方 法,包括如下步骤:
步骤1:DNA模板制备:提取待检测大豆样品的DNA;
步骤2:DNA浓度及纯度测定:采样紫外分光光度计测定所提取的DNA浓 度及纯度;
步骤3:待测样品实时荧光PCR反应:以提取的大豆样品的DNA为模板, 利用上述的转基因大豆MON89788品系的实时荧光PCR检测引物探针配置反应 体系,并进行实时荧光PCR扩增;
步骤4:对照实时荧光PCR反应:在待测样品进行实时荧光PCR反应的同 时,应设置空白对照、阴性对照和阳性对照,以水作为空白对照:以非转基因大 豆材料中提取的DNA作为阴性对照:以转基因大豆MON89788作为阳性对照;
步骤5:实时荧光PCR扩增分析:若待测样品发生特异性扩增,则表明待 测样品中包含转基因大豆MON89788品系的成分;若待测样品不发生特异性扩 增,则表明待测样品不包含转基因大豆MON89788品系的成分。
优选地,所述步骤3中的反应体系包括:2×HR qPCR Master MixⅠ12.5μL、 10μmol/L正向引物1μL、10μmol/L反向引物1μL,10μmol/L探针0.5μL、DNA 模板2μL,双蒸水8μL,总体系为25μL。
优选地,所述步骤3中实时荧光PCR反应的程序为:50℃预变性2min,95℃ 预变性10min;95℃变性15s,59℃退火延伸1min,所述变性和退火延伸过程 共进行45个循环。
与现有技术相比,本发明的有益效果在于:
本发明针对大豆MON89788品系的特点设计了效果优异的引物探针、优化 了检测方法,检测效率非常高,本发明的实时荧光PCR检测方法经验证具有较 高的特异性、灵敏性以及可重复性,能够满足口岸对于转基因大豆检得快、检得 准的要求。
附图说明
图1为引物探针筛选实时荧光PCR扩增结果:①为F1/R1/P1引物探针组合 时的扩增结果;②为F2/R2/P2引物探针组合时的扩增结果;
图2为反应体系反应条件优化结果:A为退火温度57℃时的扩增结果;B 退火温度58℃时的扩增结果;C退火温度59℃时的扩增结果;D退火温度60℃ 时的扩增结果;
图3为方法特异性扩增结果。
具体实施方式
为使本发明更明显易懂,兹以优选实施例,并配合附图作详细说明如下。
本发明的实施例中采用的试验材料、试剂和试验仪器如下所示:
1、试验材料
转基因大豆MON89788品系标准样品(100%)购自欧盟联合研究中心标准物 质与测量研究所(Institute for Reference Materials and Measurements,IRMM),非 转基因大豆、特异性实验验证的12种样品为实验室储备样品。
特异性实验验证样品设计如下:
(1)阳性对照样品:转基因大豆MON89788品系标准样品,含量1%;
(2)阴性对照样品:非转基因大豆;
(3)其他转基因大豆:GTS40-3-2、MON87705、81419,A2704-12、356043、 305423、CV127、MON87701、MON87708、MON87769、FG72,11个品系混合 制成1个DNA样品,含量各1%;
(4)转基因玉米:Bt11、Bt176、MON810、TC1507、MON89034、MON8801、 759122、MIR604、3272、MON87460、MIR162、DAS40278-9,12个品系混合 制成为1个DNA样品,含量各1%
(5)非转基因玉米:由3批非转基因玉米等量混合提取1个DNA样品;
(6)转基因水稻:M12、KF-8、KF-2、G6H1、TT51-1、KF-6、KMD-1、 7个品系混合制成1个DNA样品,含量各1%;
(7)非转基因水稻:3批非转基因水稻等量混合制成1个样品;
(8)转基因油菜:MS1、MS8RF1、RF2、MON88302,4个品系混合制成 1个DNA样品,含量各1%;
(9)非转基因油菜:3批非转基因油菜等量混合提取1个DNA样品;
(10)转基因棉花:MON1445、MON531、MON15985、MON88913、GHB614, 5个品系混合制成1个DNA样品,含量各1%;
(11)非转基因棉花:3批非转基因棉花等量混合提取1个DNA样品:
(12)转基因苜蓿:J163,含量1%。
2、试剂
食品基因组DNA提取试剂盒(DNeasy mericon Food Kit)购自德国QIAGEN GmbH公司,引物探针由宝生物工程(大连)有限公司合成。
3、试验仪器
分光光度计:GE,Nano vue Plus;
离心机:Eppendorf,Centrifuge 5424;
实时荧光PCR仪:ViiA7;
其他仪器包括冷冻研磨机、超净工作台、恒温振荡孵育器、生物安全柜等。
实施例1植物基因组DNA的提取与检测
取各转基因植物品系和常规非转基因棉花品种标准物质约200mg粉末,采 用食物核酸提取试剂盒Dneasy mericon Food Kit(50),根据试剂盒中的说明书, 提取各植物材料基因组DNA。用微量分光光度计测定提取的DNA溶液的浓度, 并通过OD260/OD280比值确定提取的DNA的纯度。提取的DNA溶液置于-20℃ 保存。
实施例2检测方法的建立
(1)引物探针设计:根据抗虫转基因大豆的3’端旁侧序列,在外源插入 序列与大豆染色体连接区设计相应的实时荧光PCR引物探针。正向引物位于大 豆染色体上,反向引物和探针位于外源插入序列上,正、反向引物和探针各设计2条引物:
正向引物MON89788-F1:5’-CTTCCTTTTGGGCTTTTTTG-3’(SEQ ID No.1);
反向引物MON89788-R1:5’-GATGGGGATCAGATTGTCGT-3’(SEQ ID No.2);
探针MON89788-P1:FAM-AGCGCTTCAATCGTGGTTATCA-BHQ1(SEQ ID No.3);
正向引物MON89788-F2:5’-CTGCTCCACTCTTCCTTTTGGGC-3’ (SEQ ID No.4);
反向引物MON89788-R2:5’-TGTCGTTTCCCGCCTTCAGTTT-3’(SEQ ID No.5);
探针MON89788-P2:FAM-TTTTTGTTTCCCGCTCTAGCGCTTC-BHQ1 (SEQ ID No.6);
(2)引物探针筛选:采用常规检测中的实时荧光PCR体系及扩增程序进行 PCR扩增,对设计的4条引物和2条探针进行组合,如表1所示,采用试验方 法进行评价,筛选出最适合的引物,实时荧光PCR扩增结果如图1所示。
表1筛选序列信息
(3)PCR反应体系和反应程序优化:引物终度设置为0.1μmol/L、0.2 μmol/L、0.4μmol/L、0.8μmol/L4个梯度处理,探针均为引物的1/2;退火温度 设置为57℃、58℃、59℃、60℃等4个梯度处理。用二因子正交试验确定 PCR反应体系中的引物探针终浓度和PCR反应程序中的退火温度。根据正交试 验结果确定最适合的实时荧光PCR反应本系和反应程序,如图2所示。
(4)方法特异性测试:根据优化好的实时荧光PCR反应体系和反应程序, 选取特异性实验验证样品12种对方法进行特异性测试。若仅从含有转基因大豆 MON89788材料中获得预期扩增曲线,而从其他样品中未获得预期扩增曲线,表 明方法特异性符合要求。测试结果如图3所示,方法具有高度特异性。
(5)方法可重复性测定:采用优化好的实时荧光PCR反应体系与反应程 序,对5份转基因大豆MON89788品系样品进行扩增,测定Ct值,每个样品设 置4次平行重复,分别计算标准偏差(standard deviation,SD)和相对标准偏差 (relative standard deviation,RSD)来判断检测方法的可重复性。若SD和RSD 均小于25%,则说明方法可重复性良好,若SD和RSD大于25%,则说明方法 可重复性差。测试结果如表2所示,方法具有良好的重复性。
表2可重复性结果
(6)方法灵敏度测定:采用优化好的实时荧光PCR反应体系与反应程序, 对质量分数分别为1%、0.5%、0.1%、0.05%,0.01%、0%的样品进行扩增,测 定Ct值。测定结果如表3所示,方法灵敏度为0.01%。
表3灵敏度测定结果
样品含量 | 阳性扩增/测定次数 | 平均Ct值 | SD | RSD |
1% | 20/20 | 23.01 | 0.05 | 0.23% |
0.5% | 20/20 | 23.23 | 0.12 | 0.53% |
0.1% | 20/20 | 23.53 | 0.23 | 0.98% |
0.05 | 20/20 | 23.89 | 0.32 | 1.33% |
0.01% | 20/20 | 24.58 | 2.43 | 9.87% |
(7)本发明还提供了一种转基因大豆MON89788品系实时荧光PCR定性 检测试剂盒,包括:HR qPCR Master Mix预混液、大豆DNA的提取试剂以及 PCR检测引物探针;所述PCR检测引物探针包括正向引物MON89788-F1、反向引物MON89788-R1和探针MON89788-P1,所述正向引物MON89788-F1的核苷 酸序列如SEQ IDNo.1所示,所述反向引物MON89788-R1的核苷酸序列如SEQ ID No.2所示;所述探针MON89788-P1的核苷酸序列如SEQ ID No.3所示。
上述实施例仅为本发明的优选实施例,并非对本发明任何形式上和实质上的限制,应当指出,对于本技术领域的普通技术人员,在不脱离本发明的前提下,还将可以做出若干改进和补充,这些改进和补充也应视为本发明的保护范围。
序列表
<110> 上海应用技术大学
<120> 一种转基因大豆MON89788品系的实时荧光PCR检测引物探针、试剂盒及方法
<160> 6
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 1
cttccttttg ggcttttttg 20
<210> 2
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 2
gatggggatc agattgtcgt 20
<210> 3
<211> 22
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 3
agcgcttcaa tcgtggttat ca 22
<210> 4
<211> 23
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 4
ctgctccact cttccttttg ggc 23
<210> 5
<211> 22
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 5
tgtcgtttcc cgccttcagt tt 22
<210> 6
<211> 25
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 6
tttttgtttc ccgctctagc gcttc 25
Claims (5)
1.一种转基因大豆MON89788品系的实时荧光PCR检测引物探针,其特征在于,包括正向引物MON89788-F1、反向引物MON89788-R1和探针MON89788-P1;
所述正向引物MON89788-F1的核苷酸序列如SEQ ID No.1所示,所述反向引物MON89788-R1的核苷酸序列如SEQ ID No.2所示;所述探针MON89788-P1的核苷酸序列如SEQID No.3所示。
2.一种转基因大豆MON89788品系的实时荧光PCR检测试剂盒,其特征在于,包括HRqPCR Master Mix预混液、DNA提取试剂以及权利要求1所述的转基因大豆MON89788品系的实时荧光PCR检测引物探针。
3.一种转基因大豆MON89788品系的实时荧光PCR检测方法,其特征在于,包括如下步骤:
步骤1:DNA模板制备:提取待检测大豆样品的DNA;
步骤2:DNA浓度及纯度测定:采样紫外分光光度计测定所提取的DNA浓度及纯度;
步骤3:待测样品实时荧光PCR反应:以提取的大豆样品的DNA为模板,利用权利要求1所述的转基因大豆MON89788品系的实时荧光PCR检测引物探针配置反应体系,并进行实时荧光PCR扩增;
步骤4:对照实时荧光PCR反应:在待测样品进行实时荧光PCR反应的同时,应设置空白对照、阴性对照和阳性对照,以水作为空白对照:以非转基因大豆材料中提取的DNA作为阴性对照:以转基因大豆MON89788作为阳性对照;
步骤5:实时荧光PCR扩增分析:若待测样品发生特异性扩增,则表明待测样品中包含转基因大豆MON89788品系的成分;若待测样品不发生特异性扩增,则表明待测样品不包含转基因大豆MON89788品系的成分。
4.根据权利要求3所述的转基因大豆MON89788品系的实时荧光PCR检测方法,其特征在于,所述步骤3中的反应体系包括:2×HR qPCR Master Mix Ⅰ 12.5μL、10μmol/L正向引物1μL、10μmol/L反向引物1μL,10μmol/L探针0.5μL、DNA模板2μL,双蒸水8μL,总体系为25μL。
5.根据权利要求3所述的转基因大豆MON89788品系的实时荧光PCR检测方法,其特征在于,所述步骤3中实时荧光PCR反应的程序为:50℃预变性2min,95℃预变性10min;95℃变性15s,59℃退火延伸1min,所述变性和退火延伸过程共进行45个循环。
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CN114807407A (zh) * | 2022-03-07 | 2022-07-29 | 江汉大学 | 一种检测大豆转基因品系的引物对组合、试剂盒及检测方法 |
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2022
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CN114807407B (zh) * | 2022-03-07 | 2023-09-08 | 江汉大学 | 一种检测大豆转基因品系的引物对组合、试剂盒及检测方法 |
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