CN114381500A - 一种基于双链特异性核酸酶和链置换反应的点突变检测方法 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及分子生物学领域,具体为一种点突变检测方法。本发明提供的检测方法结合了双链特异性核酸酶(DSN)和链置换反应的单碱基识别能力,在不对称PCR的产物中加入检测体系,实现对扩增产物的鉴定。该检测体系包括两条10‑15nt的寡核苷酸探针,其中一条核苷酸的5’端标记发光基团,3’端标记淬灭基团;待稳定后加入DSN,产生荧光信号。其中标记荧光探针与野生型基因完全互补,未标记荧光探针与突变型基因完全互补,两条探针部分重叠。本发明适用于单碱基突变检测,整个流程均可在实时荧光PCR仪上完成,特异性好,结果判定简单,具有潜在的应用价值。
Description
技术领域
本发明涉及一种点突变检测方法,特别涉及一种不对称PCR结合双链特异性核酸酶及链置换反应的点突变检测方法。
背景技术
单核苷酸突变(SNV)是由单个核苷酸改变引起的DNA突变,是人类基因组最常见、最稳定的一种突变形式。SNV影响着人类对疾病的易感性以及对病原体、药品、疫苗等的反应,影响着细菌对抗生素的耐药性等。因此对SNV的准确检测在疾病的风险性评估、诊断、治疗、实现精准医疗等方面具有重要价值。
目前,国内外用于检测SNV的技术基于不同的原理主要可划分为三类:核酸杂交,包括比较基因组杂交、荧光原位杂交和寡核苷酸微阵列分析等;聚合酶链式反应(PCR)包括实时定量PCR、等位基因特异性PCR、以及数字PCR等;以及新一代核酸测序技术。上述方法在基因检测上各具优点。但从临床诊断的角度来看,由于临床标本中通常同时存在野生型和突变型核酸,特别是在疾病的早期,大量野生型核酸的存在,使得突变型核酸所占比例常常很低,为低丰度突变核酸(<1%),受测序技术和聚合酶本身属性的限制,很难直接从临床样本中检测出低丰度SNV。因此发展一种准确检测低丰度SNV的技术,可以为推广SNV检测在疾病的研究及临床诊断、治疗,推进精准医疗等方面提供强有力的技术手段。
本发明结合了双链特异性核酸酶(DSN)和链置换反应的单碱基识别能力,在不对称PCR的产物中加入检测体系,实现对扩增产物的鉴定。该检测体系包括两条10-15nt的寡核苷酸探针,其中一条核苷酸的5’端标记发光基团,3’端标记淬灭基团;待稳定后加入DSN,产生荧光信号。其中标记荧光探针与野生型基因完全互补,未标记荧光探针与突变型基因完全互补,两条探针部分重叠。本发明适用于单碱基突变检测,整个流程均可在实时荧光PCR仪上完成,特异性好,结果判定简单,具有潜在的应用价值。
发明内容
本发明的目的是开发出一种简单、特异、灵敏检测点突变的方法。
具体技术方案如下:
一种不对称PCR结合双链特异性核酸酶及链置换反应的点突变检测方法,其制备方法包括以下步骤:
(1)全血基因组DNA模板的提取
用全血基因组DNA提取试剂盒(天根)对全血进行基因组DNA的提取,将提取的DNA置于-20℃保存备用。
(2)不对称PCR扩增
用2×Taq Master Mix(Vazyme,南京)试剂盒进行扩增,反应总体系为50μL,具体为25μL的2×Taq Master Mix,1μL的模板DNA,前引物浓度为10μM,加入体积为2μL,后引物浓度为1μM,加入体积为1μL。反应循环参数为95℃ 3min;95℃ 15s,60℃ 15s,72℃60s,30个循环;72℃5min。
(3)点突变的检测
反应体系总体积为100μL,其中包括10μL PCR产物,10μL 10×DSN masterbuffer,10μL protector(1μM),10μL invader(1μM),0.2U DSN,最后ddH2O补充至100μL。反应条件为避光50℃孵育30min,最后用荧光分光光度计测量荧光信号。
所述步骤(2)中反应总体系为50μL,具体为25μL的2×Taq Master Mix,1μL的模板DNA,前引物浓度为10μM,加入体积为2μL,后引物浓度为1μM,加入体积为1μL。反应循环参数为95℃ 3min;95℃ 15s,60℃ 15s,72℃ 60s,30个循环;72℃5min。
所述步骤(3)中反应体系总体积为100μL,其中包括10μL PCR产物,10μL 10×DSNmaster buffer,10μL protector(1μM),10μL invader(1μM),0.2U DSN,最后ddH2O补充至100μL。反应条件为避光50℃孵育30min,最后用荧光分光光度计测量荧光信号。
本发明建立了一种不对称PCR结合双链特异性核酸酶及链置换反应的点突变检测方法。其检测原理为利用双链特异性核酸酶(DSN)和链置换反应的单碱基识别能力,在不对称PCR的产物中加入检测体系,实现对扩增产物的鉴定。该检测体系包括两条10-15nt的寡核苷酸探针,其中一条核苷酸的5’端标记发光基团,3’端标记淬灭基团;待稳定后加入DSN,产生荧光信号。其中标记荧光探针与野生型基因完全互补,未标记荧光探针与突变型基因完全互补,两条探针部分重叠。本发明适用于单碱基突变检测,整个流程均可在实时荧光PCR仪上完成,特异性好,结果判定简单,具有潜在的应用价值。
不对称PCR对此点突变检测方法的构建起着至关重要的作用,本发明首先对不对称PCR引物浓度比例进行了优化。如附图1所示,引物比例分别为1:1,1:5,1:10,1:20,1:50,1:100,在引物比例为1:20时,曲线呈线性,说明不对称PCR结果较好,产生了较多的单链。随后,对点突变检测的反应温度进行了优化,如附图2所示,在52.7℃时,DF值最高,在50℃左右DF值都表现良好,因此为方便检测,后续将反应温度定为50℃。
接下来是protector链的验证,如附图3所示,单独DSN酶处理,加入protector链时,只有完全匹配的曲线a才可以看到明显的动力学曲线。而在附图4中,没有加入protector链时,完全匹配的曲线a同样可以看到明显的动力学曲线,但是错配GT的曲线b、错配TT的曲线c、错配CT的曲线d的动力学都有了明显的信号,说明protector链的加入确实可以对错配碱基的信号进行抑制。
另外,还对protector链与模板的比例的进行了优化,如附图5所示,完全互补匹配之间的动力学曲线没有明显的差异。如附图6所示,错配碱基之间的动力学曲线却有一定的影响。
最后,则是对错配碱基与tohold之间距离的影响大小的探索。附图7为链置换快速进行的反应,可以看到除了空白之外,曲线之间的动力学信号区分度较小。附图8为较慢的可逆链置换反应,可以看到,错配碱基与tohold之间距离越大,信号受到的影响越小。
综上所述,我们证明了不对称PCR结合双链特异性核酸酶及链置换反应的点突变检测方法的优越性,整个流程均可在实时荧光PCR仪上完成,特异性好,结果判定简单,具有潜在的单碱基突变检测的应用价值。
附图说明
图1是不对称PCR引物浓度比例的优化
图2是点突变检测反应温度的优化
图3是加入protector链的验证
图4是没有加入protector链的验证
图5是完全互补的protector链与模板的比例的优化
图6是错配的protector链与模板的比例的优化
图7是链置换快速进行时,错配碱基与tohold之间距离的信号差异
图8是链置换可逆进行时,错配碱基与tohold之间距离的信号差异
具体实施方式
一种不对称PCR结合双链特异性核酸酶及链置换反应的点突变检测方法,按以下步骤操作:(1)全血基因组DNA模板的提取
用全血基因组DNA提取试剂盒(天根)对全血进行基因组DNA的提取,将提取的DNA置于-20℃保存备用。
(2)不对称PCR扩增
用2×Taq Master Mix(Vazyme,南京)试剂盒进行扩增,反应总体系为50μL,具体为25μL的2×Taq Master Mix,1μL的模板DNA,前引物浓度为10μM,加入体积为2μL,后引物浓度为1μM,加入体积为1μL。反应循环参数为95℃ 3min;95℃ 15s,60℃ 15s,72℃60s,30个循环;72℃5min。
(3)点突变的检测
反应体系总体积为100μL,其中包括10μL PCR产物,10μL 10×DSN masterbuffer,10μL protector(1μM),10μL invader(1μM),0.2U DSN,最后ddH2O补充至100μL。反应条件为避光50℃孵育30min,最后用荧光分光光度计测量荧光信号。
Claims (5)
1.一种不对称PCR结合双链特异性核酸酶及链置换反应的点突变检测方法,其制备方法包括以下步骤:
(1)全血基因组DNA模板的提取
用全血基因组DNA提取试剂盒(天根)对全血进行基因组DNA的提取,将提取的DNA置于-20℃保存备用。
(2)不对称PCR扩增
用2×Taq Master Mix(Vazyme,南京)试剂盒进行扩增,反应总体系为50μL,具体为25μL的2×Taq Master Mix,1μL的模板DNA,前引物浓度为10μM,加入体积为2μL,后引物浓度为1μM,加入体积为1μL。反应循环参数为95℃ 3min;95℃ 15s,60℃ 15s,72℃60s,30个循环;72℃5min。
(3)点突变的检测
反应体系总体积为100μL,其中包括10μL PCR产物,10μL 10×DSN master buffer,10μL protector(1μM),10μL invader(1μM),0.2U DSN,最后ddH2O补充至100μL。反应条件为避光50℃孵育30min,最后用荧光分光光度计测量荧光信号。
2.如权利要求1所述的不对称PCR结合双链特异性核酸酶及链置换反应的点突变检测方法,其制备方法步骤(2)中反应总体系为50μL,具体为25μL的2×Taq Master Mix,1μL的模板DNA,前引物浓度为10μM,加入体积为2μL,后引物浓度为1μM,加入体积为1μL。
3.如权利要求1所述的不对称PCR结合双链特异性核酸酶及链置换反应的点突变检测方法,其制备方法步骤(2)中反应循环参数为95℃ 3min;95℃ 15s,60℃ 15s,72℃ 60s,30个循环;72℃5min。
4.如权利要求1所述的不对称PCR结合双链特异性核酸酶及链置换反应的点突变检测方法,其制备方法步骤(3)中反应体系总体积为100μL,其中包括10μL PCR产物,10μL 10×DSN master buffer,10μL protector(1μM),10μL invader(1μM),0.2U DSN,最后ddH2O补充至100μL。
5.如权利要求1所述的不对称PCR结合双链特异性核酸酶及链置换反应的点突变检测方法,其制备方法步骤(3)中反应条件为避光50℃孵育30min,最后用荧光分光光度计测量荧光信号。
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Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN117586988A (zh) * | 2023-11-07 | 2024-02-23 | 江苏愚公生物科技有限公司 | 一种提高稳定性的双链特异性核酸酶突变体及其制备方法和应用 |
Citations (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20080311579A1 (en) * | 2000-03-29 | 2008-12-18 | David John French | Hybridisation beacon and method of rapid sequence detection and discrimination |
US20140017685A1 (en) * | 2011-01-14 | 2014-01-16 | Guoliang Fu | Methods, compositions, and kits for determing the presence/absence of a varian nucleic acid sequence |
CN110195099A (zh) * | 2019-05-28 | 2019-09-03 | 西安交通大学 | 一种多靶标基因并行检测组合探针及其试剂盒的应用 |
CN110938673A (zh) * | 2019-11-19 | 2020-03-31 | 西南医科大学附属医院 | 一种链置换引物介导不对称pcr生成单链dna的方法 |
CN111778317A (zh) * | 2020-07-24 | 2020-10-16 | 重庆医科大学 | 一种基于凸起环链置换探针的基因突变荧光检测方法及其应用 |
-
2020
- 2020-10-21 CN CN202011135908.5A patent/CN114381500A/zh active Pending
Patent Citations (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20080311579A1 (en) * | 2000-03-29 | 2008-12-18 | David John French | Hybridisation beacon and method of rapid sequence detection and discrimination |
US20140017685A1 (en) * | 2011-01-14 | 2014-01-16 | Guoliang Fu | Methods, compositions, and kits for determing the presence/absence of a varian nucleic acid sequence |
CN110195099A (zh) * | 2019-05-28 | 2019-09-03 | 西安交通大学 | 一种多靶标基因并行检测组合探针及其试剂盒的应用 |
CN110938673A (zh) * | 2019-11-19 | 2020-03-31 | 西南医科大学附属医院 | 一种链置换引物介导不对称pcr生成单链dna的方法 |
CN111778317A (zh) * | 2020-07-24 | 2020-10-16 | 重庆医科大学 | 一种基于凸起环链置换探针的基因突变荧光检测方法及其应用 |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
YUNLONG LIU等: "Specificity improvement of Invader assay by introducing an artificially mismatched base into the probe", 《ANALYTICAL METHODS》 * |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN117586988A (zh) * | 2023-11-07 | 2024-02-23 | 江苏愚公生物科技有限公司 | 一种提高稳定性的双链特异性核酸酶突变体及其制备方法和应用 |
CN117586988B (zh) * | 2023-11-07 | 2024-05-03 | 江苏愚公生物科技有限公司 | 一种提高稳定性的双链特异性核酸酶突变体及其制备方法和应用 |
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WD01 | Invention patent application deemed withdrawn after publication |
Application publication date: 20220422 |
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WD01 | Invention patent application deemed withdrawn after publication |