CN114107369A - 一种myc标签融合表达载体的制备方法及其应用 - Google Patents

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Abstract

本发明提供了一种MYC标签融合表达载体的制备方法，该方法为：用KpnI/XhoI双酶切pGL3 Basic载体，得到KpnI/XhoI双酶切pGL3 Basic载体的回收产物，以pRGEB32Bar‑Cas9质粒为模板，得到2×35S启动子PCR回收产物，连接反应得到中间载体pGL‑35S，双酶切后连接MCS退火引物，得到中间载体pGL‑35S‑MCS，双酶切后连接Nos Ter序列，得到中间载体pGL‑35S‑MCS‑Nos，双酶切后连接变性退火的连接肽Linker引物，得到中间载体pGL‑35S‑MCS‑Linker‑Nos，双酶切后连接MYC标签退火引物，得到MYC标签融合表达载体。本发明制备的MYC标签融合表达载体框架较小，全长4052bp，适用于植物原生质体转化。

Description

一种MYC标签融合表达载体的制备方法及其应用
技术领域
本发明属于分子生物学技术领域，具体涉及一种MYC标签融合表达载体的制备方法及其应用。
背景技术
MYC标签是一种来源于原癌基因c-Myc的表位标签。MYC标签含有10个氨基酸，序列为EQKLISEEDL，分子量约为1.2KDa。在蛋白质表达、蛋白质互作等研究中,可以通过基因工程技术手段将所要研究的目的基因和MYC标签序列连接起来，MYC标签可融合到目的蛋白的N端或C端，然后将“目的基因-MYC”融合后的表达载体转入细菌、酵母、动物或者植物细胞中。一方面，因为MYC标签的分子量很小，所以不会遮盖住融合蛋白中的蛋白表位和结构域，也不容易改变融合蛋白的功能、定位、分泌和运输等。另一方面，目前MYC标签蛋白的抗体已经商业化大规模生产，很多品牌如国外品牌Sigma、Abcam和国产品牌Abmart、翌圣等的MYC标签抗体已广泛用于“目的基因-MYC”融合蛋白的定量、定位或者蛋白互作研究，检测手段有免疫荧光,免疫印记等。
目前植物中MYC标签融合表达载体应用较广泛的多为pCambia1300框架，该载体框架较大，达10Kb以上。该框架多用于农杆菌介导的烟草植株的转化。尽管应用这种方法可以得到大量表达的“目的基因-MYC”融合蛋白，但是烟草育苗周期长，农杆菌介导的转化步骤繁杂。另外，烟草系统无法模拟不同植物本身环境，而对蛋白功能和蛋白互作的研究，特别是利用“目的基因-MYC”融合蛋白载体系统寻找目的基因在植物体内的互作蛋白时，要求“目的基因-MYC”融合载体要在所研究的目标植物中表达，此时农杆菌介导的转化方法在其它植物如拟南芥、水稻、玉米中的应用受到阻碍。
PEG介导的植物原生质体转化是目前应用较多的融合载体表达系统，但是pCambia1300框架太大，转化效率低，且pCambia1300框架拷贝数低，无法满足原生质体转化系统的大量质粒要求。因此，在实际分子生物学研究中急需一种能用于植物原生质体高效转化和表达的MYC标签融合表达载体。
发明内容
本发明所要解决的技术问题在于针对上述现有技术的不足，提供一种MYC标签融合表达载体的制备方法及其应用，该方法制备的MYC标签融合表达载体pProto-MYC框架较小，全长4052bp，适用于植物原生质体转化。
为解决上述技术问题，本发明采用的技术方案是：一种MYC标签融合表达载体的制备方法，该方法为：
S1、用KpnI/XhoI双酶切pGL3 Basic载体，在温度为37℃的条件下反应6h后，将酶切产物用1％琼脂糖凝胶分离后，切下4.8Kb大小的条带，用DNA凝胶回收试剂盒回收产物，得到KpnI/XhoI双酶切pGL3 Basic载体的回收产物；
S2、以pRGEB32Bar-Cas9质粒为模板，以特异性引物F1和特异性引物R1为引物进行PCR反应克隆2×35S启动子，PCR扩增后，将PCR扩增产物用1％琼脂糖凝胶分离，切下677bp大小的条带，用DNA凝胶回收试剂盒回收PCR产物，得到2×35S启动子PCR回收产物；PCR反应体系为：2×Pfu Master Mix 10μL，特异性引物F11μL、特异性引物R11μL、pRGEB32Bar-Cas9质粒1μL、灭菌超纯水补至20μL；PCR扩增的反应条件为：98℃预变性10min；98℃变性10s，55℃退火10s，68℃延伸40s，扩增40个循环；68℃延伸10min；所述特异性引物F1的核苷酸序列如SEQ ID NO:1所示；所述特异性引物R1核苷酸序列如SEQ ID NO:2所示；
S3、利用同源重组方法将S2中得到的2×35S启动子PCR回收产物中的2×35S启动子连接至S1中得到的KpnI/XhoI双酶切pGL3 Basic载体的回收产物中pGL3 Basic载体的KpnI/XhoI位点之间，在温度为50℃的条件下连接反应25min，得到pGL-35S连接产物，将所述pGL-35S连接产物转化到大肠杆菌中，扩增繁殖，用质粒提取试剂盒提取后，得到中间载体pGL-35S；
S4、将S3中得到的中间载体pGL-35S用XhoI/SalI双酶切，在温度为37℃的条件下酶切反应6h后，将酶切产物用1％琼脂糖凝胶分离后，切下3.67Kb大小的条带，用DNA凝胶回收试剂盒回收产物，得到XhoI/SalI双酶切中间载体pGL-35S的回收产物；
S5、人工合成多克隆位点MCS正向引物和多克隆位点MCS反向引物，将所述多克隆位点MCS正向引物和所述多克隆位点MCS反向引物在95℃的条件下退火5min，得到MCS退火引物；所述多克隆位点MCS正向引物的核苷酸序列如SEQ ID NO:3所示；所述多克隆位点MCS反向引物的核苷酸序列如SEQ ID NO:4所示；
S6、将S5中得到的MCS退火引物T4连接至S4中得到的XhoI/SalI双酶切中间载体pGL-35S的回收产物中pGL-35S的XhoI/SalI位点之间，在温度为22℃的条件下连接反应1h，得到pGL-35S-MCS连接产物；将所述pGL-35S-MCS连接产物转化到大肠杆菌中，扩增繁殖，用质粒提取试剂盒提取后，得到中间载体pGL-35S-MCS；
S7、克隆Nos Ter序列：以pCambia1302质粒为模板，以特异性引物F2和特异性引物R2为引物进行PCR反应克隆Nos Ter序列，PCR扩增后，将PCR扩增产物用1.5％琼脂糖凝胶分离，切下251bp大小的条带，用DNA凝胶回收试剂盒回收PCR产物，得到Nos Ter序列PCR回收产物；PCR反应体系为：2×Pfu Master Mix 10μL，特异性引物F21μL、特异性引物R21μL、pCambia1302质粒1μL、灭菌超纯水补至20μL；PCR扩增的反应条件为：98℃预变性10min；98℃变性10s，55℃退火10s，68℃延伸20s，扩增40个循环；68℃延伸10min；所述特异性引物F2的核苷酸序列如SEQ ID NO:5所示；所述特异性引物R2核苷酸序列如SEQ ID NO:6所示；
S8、将S6中得到的中间载体pGL-35S-MCS用EcoRI/SalI双酶切，在温度为37℃的条件下酶切反应6h后，将酶切产物用1％琼脂糖凝胶分离后，切下3.72Kb大小的条带，用DNA凝胶回收试剂盒回收产物，得到EcoRI/SalI双酶切中间载体pGL-35S-MCS的回收产物；
S9、利用同源重组方法将S7中得到的Nos Ter序列PCR回收产物中的Nos Ter序列连接至S8中得到EcoRI/SalI双酶切中间载体pGL-35S-MCS的回收产物中的pGL-35S-MCS的EcoRI/SalI位点之间，在温度为50℃的条件下连接反应25min，得到pGL-35S-MCS-Nos连接产物，将所述pGL-35S-MCS-Nos连接产物转化到大肠杆菌中，扩增繁殖，用质粒提取试剂盒提取后，得到中间载体pGL-35S-MCS-Nos；
S10、将S9中得到的中间载体pGL-35S-MCS-Nos用BglII/BamHI双酶切，温度为37℃的条件下酶切反应6h后，将酶切产物用1％琼脂糖凝胶分离后，切下3.97Kb大小的条带，用DNA凝胶回收试剂盒回收产物，得到BglII/BamHI双酶切中间载体pGL-35S-MCS-Nos的回收产物；
S11、体外人工合成连接肽Linker正向引物和连接肽Linker反向引物，将所述连接肽Linker正向引物和所述连接肽Linker反向引物在温度为95℃的条件下退火5min，得到变性退火的连接肽Linker引物；所述连接肽Linker正向引物的核苷酸序列如SEQ ID NO:7所示；所述连接肽Linker反向引物的核苷酸序列如SEQ ID NO:8所示；
S12、将S11中得到的变性退火的连接肽Linker引物T4连接至S10中得到的BglII/BamHI双酶切中间载体pGL-35S-MCS-Nos的回收产物中pGL-35S-MCS-Nos的BglII/BamHI位点之间，在温度为22℃的条件下连接反应1h，得到pGL-35S-MCS-Linker-Nos连接产物；将所述pGL-35S-MCS连接产物转化到大肠杆菌中，扩增繁殖，用质粒提取试剂盒提取后，得到中间载体pGL-35S-MCS-Linker-Nos；
S13、将S12中得到的中间载体pGL-35S-MCS-Linker-Nos用BamHI/EcoRI双酶切，温度为37℃的条件下酶切反应6h后，将酶切产物用1％琼脂糖凝胶分离后，切下4.01Kb大小的条带，用DNA凝胶回收试剂盒回收产物，得到BamHI/EcoRI双酶切中间载体pGL-35S-MCS-Linker-Nos的回收产物；
S14、合成MYC标签正向引物和MYC标签反向引物，将所述MYC标签正向引物和所述MYC标签反向引物在温度为95℃的条件下退火5min，得到MYC标签退火引物；所述MYC标签正向引物的核苷酸序列如SEQ ID NO:9所示；所述MYC标签反向引物的核苷酸序列如SEQ IDNO:10所示；
S15、将S14中得到的MYC标签退火引物T4连接至S13中得到的BamHI/EcoRI双酶切中间载体pGL-35S-MCS-Linker-Nos的回收产物中pGL-35S-MCS-Linker-Nos的BamHI/EcoRI位点之间，在温度为22℃的条件下连接反应1h，得到pGL-35S-MCS-Linker-Nos连接产物；将所述pGL-35S-MCS连接产物转化到大肠杆菌中，扩增繁殖，用质粒提取试剂盒提取后，得到MYC标签融合表达载体，命名为MYC标签融合表达载体pProto-MYC；所述MYC标签融合表达载体pProto-MYC的核苷酸如SEQ ID NO:11所示。
优选地，S1中用KpnI/XhoI双酶切pGL3 Basic载体的酶切体系为：KpnI酶1μL、XhoI酶1μL、Cutsmart buffer 5μL、pGL3 Basic载体10μL、灭菌超纯水补至50μL；
S3中所述连接反应的反应体系为：2×HieffClone Enzyme Premix 5μL、S1中得到的KpnI/XhoI双酶切pGL3 Basic载体的回收产物2μL、S2中得到的2×35S启动子PCR回收产物1μL、灭菌超纯水补至10μL；
S4中所述酶切反应的体系为：酶切体系为：SalI酶1μL、XhoI酶1μL、Cutsmartbuffer 5μL、S3中得到的中间载体pGL-35S 10μL、灭菌超纯水补至50μL；
S5中所述退火的反应体系为：所述多克隆位点MCS正向引物10μL、所述多克隆位点MCS反向引物10μL、灭菌超纯水补至100μL；
S6中所述连接反应的体系为：T4连接缓冲液1μL、T4连接酶1μL、S4中所述XhoI/SalI双酶切中间载体pGL-35S的回收产物2μL、S5中所述MCS退火引物1μL、灭菌超纯水补至10μL；
S8中所述酶切反应的体系为：EcoRI酶1μL、SalI酶1μL、Cutsmart buffer 5μL、S6中得到的中间载体pGL-35S-MCS 10μL、灭菌超纯水补至50μL；
S9中所述连接反应的反应体系为：2×HieffClone Enzyme Premix 5μL、S6中得到的EcoRI/SalI双酶切中间载体pGL-35S-MCS的回收产物2μL、S7中得到的Nos Ter序列PCR回收产物1μL、灭菌超纯水补至10μL；
S10中所述酶切反应的体系为：BglII酶1μL、BamHI酶1μL、Cutsmart buffer 5μL、S9中得到的中间载体pGL-35S-MCS-Nos 10μL、灭菌超纯水补至50μL；
S11中所述退火的反应体系为：所述连接肽Linker正向引物10μL、所述连接肽Linker反向引物10μL、灭菌超纯水补至100μL；
S12中所述连接反应的体系为：所述连接反应的体系为：T4连接缓冲液1μL、T4连接酶1μL、S10中所述BglII/BamHI双酶切中间载体pGL-35S-MCS-Nos的回收产物2μL、S11中所述变性退火的连接肽Linker引物1μL、灭菌超纯水补至10μL；
S13中所述酶切反应的体系为：BamHI酶1μL、EcoRI酶1μL、Cutsmart buffer 5μL、S12中得到的中间载体pGL-35S-MCS-Linker-Nos 10μL、灭菌超纯水补至50μL；
S15所述连接反应的体系为：T4连接缓冲液1μL、T4连接酶1μL、S13中所述BamHI/EcoRI双酶切中间载体pGL-35S-MCS-Linker-Nos的回收产物2μL、S14中所述MYC标签退火引物1μL、灭菌超纯水补至10μL。
本发明还提供了上述制备的MYC标签融合表达载体的应用，所述MYC标签融合表达载体用于植物原生质体的转化。
优选地，所述MYC标签融合表达载体用于目的蛋白在植物原生质体中的表达。
优选地，所述植物原生质体包括拟南芥原生质体、玉米原生质体。
本发明与现有技术相比具有以下优点：
1、本发明的MYC标签融合表达载体pProto-MYC框架较小，全长4052bp，适用于植物原生质体转化。且载体框架上含有高拷贝数细菌的复制子(ori)，容易得到大量纯化的质粒用于原生质体转化。本发明的MYC标签融合表达载体pProto-MYC中多克隆位点前方具有2×35S启动子(CaMV 35S promoter enhanced)，相比于单一的CaMV 35S promoter,它能够更强的驱动“目的基因-MYC”在植物原生质体表达。MYC标签前方的酶切位点(包含XhoI，PstI，NheI，HindIII，MluI，BglII)均处于表达框架内，在利用DNA重组技术将目的基因连接到MYC标签前面时不用担心移码的问题。本发明的MYC标签融合表达载体pProto-MYC中MYC标签和多克隆位点前有一段连接肽Linker，富含甘氨酸的柔性单元，可有助于保持目的蛋白的蛋白表位和结构域。
下面结合附图和实施例对本发明作进一步详细说明。
附图说明
图1是本发明的实施例1的pGL3 Basic载体的物理图谱。
图2是本发明的实施例1制备的MYC标签融合表达载体pProto-MYC的物理谱图。
图3是本发明的实施例2的pProto-YFP-MYC融合表达载体转化至玉米原生质体后的YFP发光图。
图4是本发明的实施例2的pProto-YFP-MYC融合表达载体转化至玉米原生质体后的Western blotting图。
图5是本发明的实施例2的pProto-AtSIC1-MYC融合表达载体转化至拟南芥原生质体的Western blot图。
图6是本发明的实施例2的pProto-YFP-MYC融合表达载体转化至拟南芥原生质体后的YFP发光图。
具体实施方式
实施例1
本实施例的MYC标签融合表达载体的制备方法，该方法为：
S1、用KpnI/XhoI双酶切pGL3 Basic载体(pGL3 Basic载体的物理图谱为图1)，在温度为37℃的条件下反应6h后，将酶切产物用1％琼脂糖凝胶分离后，切下4.8Kb大小的条带，用DNA凝胶回收试剂盒回收产物，得到KpnI/XhoI双酶切pGL3 Basic载体的回收产物；用KpnI/XhoI双酶切pGL3 Basic载体的酶切体系为：KpnI酶1μL、XhoI酶1μL、Cutsmartbuffer5μL、pGL3 Basic载体10μL、灭菌超纯水补至50μL；
S2、以pRGEB32Bar-Cas9质粒(MK791524.1)为模板，以特异性引物F1和特异性引物R1为引物进行PCR反应克隆2×35S启动子，PCR扩增后，将PCR扩增产物用1％琼脂糖凝胶分离，切下677bp大小的条带，用DNA凝胶回收试剂盒回收PCR产物，得到2×35S启动子PCR回收产物；PCR反应体系为：2×Pfu Master Mix 10μL，特异性引物F11μL、特异性引物R11μL、pRGEB32Bar-Cas9质粒1μL、灭菌超纯水补至20μL；PCR扩增的反应条件为：98℃预变性10min；98℃变性10s，55℃退火10s，68℃延伸40s，扩增40个循环；68℃延伸10min；所述特异性引物F1的核苷酸序列如SEQ ID NO:1所示；所述特异性引物R1核苷酸序列如SEQ ID NO:2所示；
S3、利用同源重组方法将S2中得到的2×35S启动子PCR回收产物中的2×35S启动子连接至S1中得到的KpnI/XhoI双酶切pGL3 Basic载体的回收产物中pGL3 Basic载体的KpnI/XhoI位点之间，在温度为50℃的条件下连接反应25min，得到pGL-35S连接产物，将所述pGL-35S连接产物转化到大肠杆菌中，扩增繁殖，用质粒提取试剂盒提取后，得到中间载体pGL-35S；所述连接反应的反应体系为：2×Hieff Clone Enzyme Premix 5μL、S1中得到的KpnI/XhoI双酶切pGL3 Basic载体的回收产物2μL、S2中得到的2×35S启动子PCR回收产物1μL、灭菌超纯水补至10μL；
S4、将S3中得到的中间载体pGL-35S用XhoI/SalI双酶切，在温度为37℃的条件下酶切反应6h后，将酶切产物用1％琼脂糖凝胶分离后，切下3.67Kb大小的条带，用DNA凝胶回收试剂盒回收产物，得到XhoI/SalI双酶切中间载体pGL-35S的回收产物；所述酶切反应的体系为：酶切体系为：SalI酶1μL、XhoI酶1μL、Cutsmart buffer 5μL、S3中得到的中间载体pGL-35S 10μL、灭菌超纯水补至50μL；
S5、人工合成多克隆位点MCS正向引物和多克隆位点MCS反向引物，将所述多克隆位点MCS正向引物和所述多克隆位点MCS反向引物在95℃的条件下退火5min，得到MCS退火引物；所述多克隆位点MCS正向引物的核苷酸序列如SEQ ID NO:3所示；所述多克隆位点MCS反向引物的核苷酸序列如SEQ ID NO:4所示；所述退火的反应体系为：所述多克隆位点MCS正向引物10μL、所述多克隆位点MCS反向引物10μL、灭菌超纯水补至100μL；
S6、将S5中得到的MCS退火引物T4连接至S4中得到的XhoI/SalI双酶切中间载体pGL-35S的回收产物中pGL-35S的XhoI/SalI位点之间，在温度为22℃的条件下连接反应1h，得到pGL-35S-MCS连接产物；将所述pGL-35S-MCS连接产物转化到大肠杆菌中，扩增繁殖，用质粒提取试剂盒提取后，得到中间载体pGL-35S-MCS；所述连接反应的体系为：T4连接缓冲液1μL、T4连接酶1μL、S4中所述XhoI/SalI双酶切中间载体pGL-35S的回收产物2μL、S5中所述MCS退火引物1μL、灭菌超纯水补至10μL；
S7、克隆Nos Ter序列：以pCambia1302质粒为模板，以特异性引物F2和特异性引物R2为引物进行PCR反应克隆Nos Ter序列，PCR扩增后，将PCR扩增产物用1.5％琼脂糖凝胶分离，切下251bp大小的条带，用DNA凝胶回收试剂盒回收PCR产物，得到Nos Ter序列PCR回收产物；PCR反应体系为：2×Pfu Master Mix 10μL，特异性引物F21μL、特异性引物R21μL、pCambia1302质粒1μL、灭菌超纯水补至20μL；PCR扩增的反应条件为：98℃预变性10min；98℃变性10s，55℃退火10s，68℃延伸20s，扩增40个循环；68℃延伸10min；所述特异性引物F2的核苷酸序列如SEQ ID NO:5所示；所述特异性引物R2核苷酸序列如SEQ ID NO:6所示；
S8、将S6中得到的中间载体pGL-35S-MCS用EcoRI/SalI双酶切，在温度为37℃的条件下酶切反应6h后，将酶切产物用1％琼脂糖凝胶分离后，切下3.72Kb大小的条带，用DNA凝胶回收试剂盒回收产物，得到EcoRI/SalI双酶切中间载体pGL-35S-MCS的回收产物；所述酶切反应的体系为：EcoRI酶1μL、SalI酶1μL、Cutsmart buffer 5μL、S6中得到的中间载体pGL-35S-MCS 10μL、灭菌超纯水补至50μL；
S9、利用同源重组方法将S7中得到的Nos Ter序列PCR回收产物中的Nos Ter序列连接至S8中得到EcoRI/SalI双酶切中间载体pGL-35S-MCS的回收产物中的pGL-35S-MCS的EcoRI/SalI位点之间，在温度为50℃的条件下连接反应25min，得到pGL-35S-MCS-Nos连接产物，将所述pGL-35S-MCS-Nos连接产物转化到大肠杆菌中，扩增繁殖，用质粒提取试剂盒提取后，得到中间载体pGL-35S-MCS-Nos；所述连接反应的反应体系为：2×Hieff CloneEnzyme Premix 5μL、S6中得到的EcoRI/SalI双酶切中间载体pGL-35S-MCS的回收产物2μL、S7中得到的Nos Ter序列PCR回收产物1μL、灭菌超纯水补至10μL；
S10、将S9中得到的中间载体pGL-35S-MCS-Nos用BglII/BamHI双酶切，温度为37℃的条件下酶切反应6h后，将酶切产物用1％琼脂糖凝胶分离后，切下3.97Kb大小的条带，用DNA凝胶回收试剂盒回收产物，得到BglII/BamHI双酶切中间载体pGL-35S-MCS-Nos的回收产物；所述酶切反应的体系为：BglII酶1μL、BamHI酶1μL、Cutsmart buffer 5μL、S9中得到的中间载体pGL-35S-MCS-Nos 10μL、灭菌超纯水补至50μL；
S11、体外人工合成连接肽Linker正向引物和连接肽Linker反向引物，将所述连接肽Linker正向引物和所述连接肽Linker反向引物在温度为95℃的条件下退火5min，得到变性退火的连接肽Linker引物；所述连接肽Linker正向引物的核苷酸序列如SEQ ID NO:7所示；所述连接肽Linker反向引物的核苷酸序列如SEQ ID NO:8所示；所述退火的反应体系为：所述连接肽Linker正向引物10μL、所述连接肽Linker反向引物10μL、灭菌超纯水补至100μL；
S12、将S11中得到的变性退火的连接肽Linker引物T4连接至S10中得到的BglII/BamHI双酶切中间载体pGL-35S-MCS-Nos的回收产物中pGL-35S-MCS-Nos的BglII/BamHI位点之间，在温度为22℃的条件下连接反应1h，得到pGL-35S-MCS-Linker-Nos连接产物；将所述pGL-35S-MCS连接产物转化到大肠杆菌中，扩增繁殖，用质粒提取试剂盒提取后，得到中间载体pGL-35S-MCS-Linker-Nos；所述连接反应的体系为：所述连接反应的体系为：T4连接缓冲液1μL、T4连接酶1μL、S10中所述BglII/BamHI双酶切中间载体pGL-35S-MCS-Nos的回收产物2μL、S11中所述变性退火的连接肽Linker引物1μL、灭菌超纯水补至10μL；
S13、将S12中得到的中间载体pGL-35S-MCS-Linker-Nos用BamHI/EcoRI双酶切，温度为37℃的条件下酶切反应6h后，将酶切产物用1％琼脂糖凝胶分离后，切下4.01Kb大小的条带，用DNA凝胶回收试剂盒回收产物，得到BamHI/EcoRI双酶切中间载体pGL-35S-MCS-Linker-Nos的回收产物；所述酶切反应的体系为：BamHI酶1μL、EcoRI酶1μL、Cutsmartbuffer 5μL、S12中得到的中间载体pGL-35S-MCS-Linker-Nos 10μL、灭菌超纯水补至50μL；
S14、合成MYC标签正向引物和MYC标签反向引物，将所述MYC标签正向引物和所述MYC标签反向引物在温度为95℃的条件下退火5min，得到MYC标签退火引物；所述MYC标签正向引物的核苷酸序列如SEQ ID NO:9所示；所述MYC标签反向引物的核苷酸序列如SEQ IDNO:10所示；
S15、将S14中得到的MYC标签退火引物T4连接至S13中得到的BamHI/EcoRI双酶切中间载体pGL-35S-MCS-Linker-Nos的回收产物中pGL-35S-MCS-Linker-Nos的BamHI/EcoRI位点之间，在温度为22℃的条件下连接反应1h，得到pGL-35S-MCS-Linker-Nos连接产物；将所述pGL-35S-MCS连接产物转化到大肠杆菌中，扩增繁殖，用质粒提取试剂盒提取后，得到MYC标签融合表达载体，命名为MYC标签融合表达载体pProto-MYC(MYC标签融合表达载体pProto-MYC的物理谱图为图2)；所述MYC标签融合表达载体pProto-MYC的核苷酸如SEQ IDNO:11所示；所述连接反应的体系为：T4连接缓冲液1μL、T4连接酶1μL、S13中所述BamHI/EcoRI双酶切中间载体pGL-35S-MCS-Linker-Nos的回收产物2μL、S14中所述MYC标签退火引物1μL、灭菌超纯水补至10μL。
实施例2
本实施例为实施例1制备的MYC标签融合表达载体pProto-MYC的应用，所述MYC标签融合表达载体pProto-MYC用于植物原生质体的转化；用于目的蛋白在植物原生质体中的表达；所述植物原生质体包括拟南芥原生质体、玉米原生质体。
(1)克隆增强型黄色荧光蛋白(YFP)，通过同源重组将YFP连接至实施例1制备的MYC标签融合表达载体pProto-MYC的XhoI/HindIII之间，得到pProto-YFP-MYC融合表达载体。
利用PEG介导的方法将pProto-YFP-MYC融合表达载体转化至玉米原生质体，大量表达YFP-MYC融合蛋白。
将转化后的玉米原生质体在激光共聚焦显微镜488nm激发光下观察发光情况，如图3，可见视野里基本所有的细胞都能发光，图3中左侧为黄色荧光蛋白YFP发光图片(YFP)，右侧为明场的细胞图片(Bright field)(左右两图共用同一标尺)。
将转化后的玉米原生质体在25℃黑暗培养16h后，150g离心3min收集原生质体，用终浓度1×loading buffer重悬原生质体，95C，5min，SDS-PAGE胶分离，Western blotting检测，使用MYC抗体为Abbkine(A02060)，YFP-MYC融合蛋白的检测结果如图4，箭头指示YFP的Western blot条带。说明实施例1制备的MYC标签融合表达载体pProto-MYC可以成功用于目的蛋白在植物原生质体中的表达和检测。
(2)克隆拟南芥AtSIC1基因的CDS(AT4G24500)，通过同源重组将AtSIC1连接至实施例1制备的MYC标签融合表达载体pProto-MYC的XhoI/HindIII之间，得到pProto-AtSIC1-MYC融合表达载体。利用PEG介导的方法将pProto-AtSIC1-MYC融合表达载体转化至拟南芥原生质体。
25℃黑暗培养16h后，150g离心3min收集原生质体，用裂解缓冲液重悬细胞后，加入MYC beads(Abbkine,A02060MGB)，4℃孵育24h，用1×TBS清洗beads 5次后，加入40μL裂解缓冲液和终浓度1×loading buffer，95℃，5min，SDS-PAGE胶分离，Western blotting检测，使用MYC抗体为Abbkine(A02060)。结果如图5，箭头指示AtSIC1-MYC融合蛋白的Input(总蛋白样)的Western blot条带(WB)和IP免疫沉淀条带(IP)。说明实施例1制备的MYC标签融合表达载体pProto-MYC可以成功用于目的蛋白在所研究的植物原生质体中表达，并可利用MYC beads进行目的蛋白的免疫沉淀。
(3)克隆增强型黄色荧光蛋白(YFP)，通过同源重组将YFP连接至实施例1制备的MYC标签融合表达载体pProto-MYC的XhoI/HindIII之间，得到pProto-YFP-MYC融合表达载体。利用PEG介导的方法将pProto-YFP-MYC融合表达载体转化至拟南芥原生质体。
将转化后的拟南原生质体在激光共聚焦显微镜488nm激发光下观察发光情况，如图6，可见视野里基本所有的细胞都能发光，图6中左侧为黄色荧光蛋白YFP发光图片(YFP)，右侧为明场的细胞图片(Bright field)(左右两图共用同一标尺)。
以上所述，仅是本发明的较佳实施例，并非对本发明作任何限制。凡是根据发明技术实质对以上实施例所作的任何简单修改、变更以及等效变化，均仍属于本发明技术方案的保护范围内。
序列表
<110> 河南农业大学
<120> 一种MYC标签融合表达载体的制备方法及其应用
<130> 2021.10.10
<160> 11
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 41
<212> DNA
<213> 人工合成(Artificial synthesis)
<400> 1
gaacatttct ctatcgatag gtaccgagct ctcgtgccag c 41
<210> 2
<211> 42
<212> DNA
<213> 人工合成(Artificial synthesis)
<400> 2
cttacttaga tcgcagatct cgagagagat agatttgtag ag 42
<210> 3
<211> 54
<212> DNA
<213> 人工合成(Artificial synthesis)
<400> 3
tcgagctgca ggctagcaag cttgagctca cgcgtagatc tggatccgaa ttcg 54
<210> 4
<211> 54
<212> DNA
<213> 人工合成(Artificial synthesis)
<400> 4
tcgacgaatt cggatccaga tctacgcgtg agctcaagct tgctagcctg cagc 54
<210> 5
<211> 40
<212> DNA
<213> 人工合成(Artificial synthesis)
<400> 5
cgcgtagatc tggatccgaa ttccgttcaa acatttggca 40
<210> 6
<211> 39
<212> DNA
<213> 人工合成(Artificial synthesis)
<400> 6
ctctcaaggg catcggtcga ccccgatcta gtaacatag 39
<210> 7
<211> 39
<212> DNA
<213> 人工合成(Artificial synthesis)
<400> 7
gatctatggg aggatctgga ggaggaggat ctggaggag 39
<210> 8
<211> 39
<212> DNA
<213> 人工合成(Artificial synthesis)
<400> 8
gatcctcctc cagatcctcc tcctccagat cctcccata 39
<210> 9
<211> 39
<212> DNA
<213> 人工合成(Artificial synthesis)
<400> 9
gatccgagca gaaactcatc tctgaagagg atctgtagg 39
<210> 10
<211> 39
<212> DNA
<213> 人工合成(Artificial synthesis)
<400> 10
aattcctaca gatcctcttc agagatgagt ttctgctcg 39
<210> 11
<211> 4052
<212> DNA
<213> 人工合成(Artificial synthesis)
<400> 11
ggtaccgagc tctcgtgcca gctgcattaa tgaatcgggc caacgcgcgg ggagaggcgg 60
tttgcgtatt ggctagagca gcttgccaac atggtggagc acgacactct cgtctactcc 120
aagaatatca aagatacagt ctcagaagac caaagggcta ttgagacttt tcaacaaagg 180
gtaatatcgg gaaacctcct cggattccat tgcccagcta tctgtcactt catcaaaagg 240
acagtagaaa aggaaggtgg cacctacaaa tgccatcatt gcgataaagg aaaggctatc 300
gttcaagatg cctctgccga cagtggtccc aaagatggac ccccacccac gaggagcatc 360
gtggaaaaag aagacgttcc aaccacgtct tcaaagcaag tggattgatg tgaacatggt 420
ggagcacgac actctcgtct actccaagaa tatcaaagat acagtctcag aagaccaaag 480
ggctattgag acttttcaac aaagggtaat atcgggaaac ctcctcggat tccattgccc 540
agctatctgt cacttcatca aaaggacggt agaaaaggaa ggtggcacct acaaatgcca 600
tcattgcgat aaaggaaagg ctatcgttca agatgcctct gccgacagtg gtcccaaaga 660
tggaccccca cccacgagga gcatcgtgga aaaagaagac gttccaacca cgtcttcaaa 720
gcaagtggat tgatgtgata tctccactga cgtaagggat gacgcacaat cccactatcc 780
ttcgcaagac ccttcctcta tataaggaag ttcatttcat ttggagagga cacgctgaaa 840
tcaccagtct ctctctacaa atctatctct ctcgagctgc aggctagcaa gcttgagctc 900
acgcgtagat ctatgggagg atctggagga ggaggatctg gaggaggatc cgagcagaaa 960
ctcatctctg aagaggatct gtaggaattc cgttcaaaca tttggcaata aagtttctta 1020
agattgaatc ctgttgccgg tcttgcgatg attatcatat aatttctgtt gaattacgtt 1080
aagcatgtaa taattaacat gtaatgcatg acgttattta tgagatgggt ttttatgatt 1140
agagtcccgc aattatacat ttaatacgcg atagaaaaca aaatatagcg cgcaaactag 1200
gataaattat cgcgcgcggt gtcatctatg ttactagatc ggggtcgacc gatgcccttg 1260
agagccttca acccagtcag ctccttccgg tgggcgcggg gcatgactat cgtcgccgca 1320
cttatgactg tcttctttat catgcaactc gtaggacagg tgccggcagc gctcttccgc 1380
ttcctcgctc actgactcgc tgcgctcggt cgttcggctg cggcgagcgg tatcagctca 1440
ctcaaaggcg gtaatacggt tatccacaga atcaggggat aacgcaggaa agaacatgtg 1500
agcaaaaggc cagcaaaagg ccaggaaccg taaaaaggcc gcgttgctgg cgtttttcca 1560
taggctccgc ccccctgacg agcatcacaa aaatcgacgc tcaagtcaga ggtggcgaaa 1620
cccgacagga ctataaagat accaggcgtt tccccctgga agctccctcg tgcgctctcc 1680
tgttccgacc ctgccgctta ccggatacct gtccgccttt ctcccttcgg gaagcgtggc 1740
gctttctcat agctcacgct gtaggtatct cagttcggtg taggtcgttc gctccaagct 1800
gggctgtgtg cacgaacccc ccgttcagcc cgaccgctgc gccttatccg gtaactatcg 1860
tcttgagtcc aacccggtaa gacacgactt atcgccactg gcagcagcca ctggtaacag 1920
gattagcaga gcgaggtatg taggcggtgc tacagagttc ttgaagtggt ggcctaacta 1980
cggctacact agaagaacag tatttggtat ctgcgctctg ctgaagccag ttaccttcgg 2040
aaaaagagtt ggtagctctt gatccggcaa acaaaccacc gctggtagcg gtggtttttt 2100
tgtttgcaag cagcagatta cgcgcagaaa aaaaggatct caagaagatc ctttgatctt 2160
ttctacgggg tctgacgctc agtggaacga aaactcacgt taagggattt tggtcatgag 2220
attatcaaaa aggatcttca cctagatcct tttaaattaa aaatgaagtt ttaaatcaat 2280
ctaaagtata tatgagtaaa cttggtctga cagttaccaa tgcttaatca gtgaggcacc 2340
tatctcagcg atctgtctat ttcgttcatc catagttgcc tgactccccg tcgtgtagat 2400
aactacgata cgggagggct taccatctgg ccccagtgct gcaatgatac cgcgagaccc 2460
acgctcaccg gctccagatt tatcagcaat aaaccagcca gccggaaggg ccgagcgcag 2520
aagtggtcct gcaactttat ccgcctccat ccagtctatt aattgttgcc gggaagctag 2580
agtaagtagt tcgccagtta atagtttgcg caacgttgtt gccattgcta caggcatcgt 2640
ggtgtcacgc tcgtcgtttg gtatggcttc attcagctcc ggttcccaac gatcaaggcg 2700
agttacatga tcccccatgt tgtgcaaaaa agcggttagc tccttcggtc ctccgatcgt 2760
tgtcagaagt aagttggccg cagtgttatc actcatggtt atggcagcac tgcataattc 2820
tcttactgtc atgccatccg taagatgctt ttctgtgact ggtgagtact caaccaagtc 2880
attctgagaa tagtgtatgc ggcgaccgag ttgctcttgc ccggcgtcaa tacgggataa 2940
taccgcgcca catagcagaa ctttaaaagt gctcatcatt ggaaaacgtt cttcggggcg 3000
aaaactctca aggatcttac cgctgttgag atccagttcg atgtaaccca ctcgtgcacc 3060
caactgatct tcagcatctt ttactttcac cagcgtttct gggtgagcaa aaacaggaag 3120
gcaaaatgcc gcaaaaaagg gaataagggc gacacggaaa tgttgaatac tcatactctt 3180
cctttttcaa tattattgaa gcatttatca gggttattgt ctcatgagcg gatacatatt 3240
tgaatgtatt tagaaaaata aacaaatagg ggttccgcgc acatttcccc gaaaagtgcc 3300
acctgacgcg ccctgtagcg gcgcattaag cgcggcgggt gtggtggtta cgcgcagcgt 3360
gaccgctaca cttgccagcg ccctagcgcc cgctcctttc gctttcttcc cttcctttct 3420
cgccacgttc gccggctttc cccgtcaagc tctaaatcgg gggctccctt tagggttccg 3480
atttagtgct ttacggcacc tcgaccccaa aaaacttgat tagggtgatg gttcacgtag 3540
tgggccatcg ccctgataga cggtttttcg ccctttgacg ttggagtcca cgttctttaa 3600
tagtggactc ttgttccaaa ctggaacaac actcaaccct atctcggtct attcttttga 3660
tttataaggg attttgccga tttcggccta ttggttaaaa aatgagctga tttaacaaaa 3720
atttaacgcg aattttaaca aaatattaac gcttacaatt tgccattcgc cattcaggct 3780
gcgcaactgt tgggaagggc gatcggtgcg ggcctcttcg ctattacgcc agcccaagct 3840
accatgataa gtaagtaata ttaaggtacg ggaggtactt ggagcggccg caataaaata 3900
tctttatttt cattacatct gtgtgttggt tttttgtgtg aatcgatagt actaacatac 3960
gctctccatc aaaacaaaac gaaacaaaac aaactagcaa aataggctgt ccccagtgca 4020
agtgcaggtg ccagaacatt tctctatcga ta 4052

Claims (5)

1.一种MYC标签融合表达载体的制备方法，其特征在于，该方法为：
S1、用KpnI/XhoI双酶切pGL3 Basic载体，在温度为37℃的条件下反应6h后，将酶切产物用1％琼脂糖凝胶分离后，切下4.8Kb大小的条带，用DNA凝胶回收试剂盒回收产物，得到KpnI/XhoI双酶切pGL3 Basic载体的回收产物；
S2、以pRGEB32Bar-Cas9质粒为模板，以特异性引物F1和特异性引物R1为引物进行PCR反应克隆2×35S启动子，PCR扩增后，将PCR扩增产物用1％琼脂糖凝胶分离，切下677bp大小的条带，用DNA凝胶回收试剂盒回收PCR产物，得到2×35S启动子PCR回收产物；PCR反应体系为：2×Pfu Master Mix 10μL，特异性引物F11μL、特异性引物R11μL、pRGEB32Bar-Cas9质粒1μL、灭菌超纯水补至20μL；PCR扩增的反应条件为：98℃预变性10min；98℃变性10s，55℃退火10s，68℃延伸40s，扩增40个循环；68℃延伸10min；所述特异性引物F1的核苷酸序列如SEQ ID NO:1所示；所述特异性引物R1核苷酸序列如SEQ ID NO:2所示；
S3、利用同源重组方法将S2中得到的2×35S启动子PCR回收产物中的2×35S启动子连接至S1中得到的KpnI/XhoI双酶切pGL3 Basic载体的回收产物中pGL3 Basic载体的KpnI/XhoI位点之间，在温度为50℃的条件下连接反应25min，得到pGL-35S连接产物，将所述pGL-35S连接产物转化到大肠杆菌中，扩增繁殖，用质粒提取试剂盒提取后，得到中间载体pGL-35S；
S4、将S3中得到的中间载体pGL-35S用XhoI/SalI双酶切，在温度为37℃的条件下酶切反应6h后，将酶切产物用1％琼脂糖凝胶分离后，切下3.67Kb大小的条带，用DNA凝胶回收试剂盒回收产物，得到XhoI/SalI双酶切中间载体pGL-35S的回收产物；
S5、人工合成多克隆位点MCS正向引物和多克隆位点MCS反向引物，将所述多克隆位点MCS正向引物和所述多克隆位点MCS反向引物在95℃的条件下退火5min，得到MCS退火引物；所述多克隆位点MCS正向引物的核苷酸序列如SEQ ID NO:3所示；所述多克隆位点MCS反向引物的核苷酸序列如SEQ ID NO:4所示；
S6、将S5中得到的MCS退火引物T4连接至S4中得到的XhoI/SalI双酶切中间载体pGL-35S的回收产物中pGL-35S的XhoI/SalI位点之间，在温度为22℃的条件下连接反应1h，得到pGL-35S-MCS连接产物；将所述pGL-35S-MCS连接产物转化到大肠杆菌中，扩增繁殖，用质粒提取试剂盒提取后，得到中间载体pGL-35S-MCS；
S7、克隆Nos Ter序列：以pCambia1302质粒为模板，以特异性引物F2和特异性引物R2为引物进行PCR反应克隆Nos Ter序列，PCR扩增后，将PCR扩增产物用1.5％琼脂糖凝胶分离，切下251bp大小的条带，用DNA凝胶回收试剂盒回收PCR产物，得到Nos Ter序列PCR回收产物；PCR反应体系为：2×Pfu Master Mix 10μL，特异性引物F21μL、特异性引物R21μL、pCambia1302质粒1μL、灭菌超纯水补至20μL；PCR扩增的反应条件为：98℃预变性10min；98℃变性10s，55℃退火10s，68℃延伸20s，扩增40个循环；68℃延伸10min；所述特异性引物F2的核苷酸序列如SEQ ID NO:5所示；所述特异性引物R2核苷酸序列如SEQ ID NO:6所示；
S8、将S6中得到的中间载体pGL-35S-MCS用EcoRI/SalI双酶切，在温度为37℃的条件下酶切反应6h后，将酶切产物用1％琼脂糖凝胶分离后，切下3.72Kb大小的条带，用DNA凝胶回收试剂盒回收产物，得到EcoRI/SalI双酶切中间载体pGL-35S-MCS的回收产物；
S9、利用同源重组方法将S7中得到的Nos Ter序列PCR回收产物中的Nos Ter序列连接至S8中得到EcoRI/SalI双酶切中间载体pGL-35S-MCS的回收产物中的pGL-35S-MCS的EcoRI/SalI位点之间，在温度为50℃的条件下连接反应25min，得到pGL-35S-MCS-Nos连接产物，将所述pGL-35S-MCS-Nos连接产物转化到大肠杆菌中，扩增繁殖，用质粒提取试剂盒提取后，得到中间载体pGL-35S-MCS-Nos；
S10、将S9中得到的中间载体pGL-35S-MCS-Nos用BglII/BamHI双酶切，温度为37℃的条件下酶切反应6h后，将酶切产物用1％琼脂糖凝胶分离后，切下3.97Kb大小的条带，用DNA凝胶回收试剂盒回收产物，得到BglII/BamHI双酶切中间载体pGL-35S-MCS-Nos的回收产物；
S11、体外人工合成连接肽Linker正向引物和连接肽Linker反向引物，将所述连接肽Linker正向引物和所述连接肽Linker反向引物在温度为95℃的条件下退火5min，得到变性退火的连接肽Linker引物；所述连接肽Linker正向引物的核苷酸序列如SEQ ID NO:7所示；所述连接肽Linker反向引物的核苷酸序列如SEQ ID NO:8所示；
S12、将S11中得到的变性退火的连接肽Linker引物T4连接至S10中得到的BglII/BamHI双酶切中间载体pGL-35S-MCS-Nos的回收产物中pGL-35S-MCS-Nos的BglII/BamHI位点之间，在温度为22℃的条件下连接反应1h，得到pGL-35S-MCS-Linker-Nos连接产物；将所述pGL-35S-MCS连接产物转化到大肠杆菌中，扩增繁殖，用质粒提取试剂盒提取后，得到中间载体pGL-35S-MCS-Linker-Nos；
S13、将S12中得到的中间载体pGL-35S-MCS-Linker-Nos用BamHI/EcoRI双酶切，温度为37℃的条件下酶切反应6h后，将酶切产物用1％琼脂糖凝胶分离后，切下4.01Kb大小的条带，用DNA凝胶回收试剂盒回收产物，得到BamHI/EcoRI双酶切中间载体pGL-35S-MCS-Linker-Nos的回收产物；
S14、合成MYC标签正向引物和MYC标签反向引物，将所述MYC标签正向引物和所述MYC标签反向引物在温度为95℃的条件下退火5min，得到MYC标签退火引物；所述MYC标签正向引物的核苷酸序列如SEQ ID NO:9所示；所述MYC标签反向引物的核苷酸序列如SEQ ID NO:10所示；
S15、将S14中得到的MYC标签退火引物T4连接至S13中得到的BamHI/EcoRI双酶切中间载体pGL-35S-MCS-Linker-Nos的回收产物中pGL-35S-MCS-Linker-Nos的BamHI/EcoRI位点之间，在温度为22℃的条件下连接反应1h，得到pGL-35S-MCS-Linker-Nos连接产物；将所述pGL-35S-MCS连接产物转化到大肠杆菌中，扩增繁殖，用质粒提取试剂盒提取后，得到MYC标签融合表达载体，命名为MYC标签融合表达载体pProto-MYC；所述MYC标签融合表达载体pProto-MYC的核苷酸如SEQ ID NO:11所示。
2.根据权利要求1所述的一种MYC标签融合表达载体的制备方法，其特征在于，S1中用KpnI/XhoI双酶切pGL3 Basic载体的酶切体系为：KpnI酶1μL、XhoI酶1μL、Cutsmart buffer5μL、pGL3 Basic载体10μL、灭菌超纯水补至50μL；
S3中所述连接反应的反应体系为：2×HieffClone Enzyme Premix 5μL、S1中得到的KpnI/XhoI双酶切pGL3 Basic载体的回收产物2μL、S2中得到的2×35S启动子PCR回收产物1μL、灭菌超纯水补至10μL；
S4中所述酶切反应的体系为：酶切体系为：SalI酶1μL、XhoI酶1μL、Cutsmart buffer 5μL、S3中得到的中间载体pGL-35S 10μL、灭菌超纯水补至50μL；
S5中所述退火的反应体系为：所述多克隆位点MCS正向引物10μL、所述多克隆位点MCS反向引物10μL、灭菌超纯水补至100μL；
S6中所述连接反应的体系为：T4连接缓冲液1μL、T4连接酶1μL、S4中所述XhoI/SalI双酶切中间载体pGL-35S的回收产物2μL、S5中所述MCS退火引物1μL、灭菌超纯水补至10μL；
S8中所述酶切反应的体系为：EcoRI酶1μL、SalI酶1μL、Cutsmart buffer 5μL、S6中得到的中间载体pGL-35S-MCS 10μL、灭菌超纯水补至50μL；
S9中所述连接反应的反应体系为：2×HieffClone Enzyme Premix 5μL、S6中得到的EcoRI/SalI双酶切中间载体pGL-35S-MCS的回收产物2μL、S7中得到的Nos Ter序列PCR回收产物1μL、灭菌超纯水补至10μL；
S10中所述酶切反应的体系为：BglII酶1μL、BamHI酶1μL、Cutsmart buffer 5μL、S9中得到的中间载体pGL-35S-MCS-Nos 10μL、灭菌超纯水补至50μL；
S11中所述退火的反应体系为：所述连接肽Linker正向引物10μL、所述连接肽Linker反向引物10μL、灭菌超纯水补至100μL；
S12中所述连接反应的体系为：所述连接反应的体系为：T4连接缓冲液1μL、T4连接酶1μL、S10中所述BglII/BamHI双酶切中间载体pGL-35S-MCS-Nos的回收产物2μL、S11中所述变性退火的连接肽Linker引物1μL、灭菌超纯水补至10μL；
S13中所述酶切反应的体系为：BamHI酶1μL、EcoRI酶1μL、Cutsmart buffer 5μL、S12中得到的中间载体pGL-35S-MCS-Linker-Nos 10μL、灭菌超纯水补至50μL；
S15所述连接反应的体系为：T4连接缓冲液1μL、T4连接酶1μL、S13中所述BamHI/EcoRI双酶切中间载体pGL-35S-MCS-Linker-Nos的回收产物2μL、S14中所述MYC标签退火引物1μL、灭菌超纯水补至10μL。
3.一种如权利要求1或2制备的MYC标签融合表达载体的应用，其特征在于，所述MYC标签融合表达载体用于植物原生质体的转化。
4.根据权利要求3所述的应用，其特征在于，所述MYC标签融合表达载体用于目的蛋白在植物原生质体中的表达。
5.根据权利要求4所述的应用，其特征在于，所述植物原生质体包括拟南芥原生质体、玉米原生质体。
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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN115322997A (zh) * 2022-05-21 2022-11-11 河南中医药大学 一种pBiflu荧光标签表达载体的制备方法及其应用

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102181474A (zh) * 2011-02-28 2011-09-14 北京师范大学 一种无抗生素标记的植物表达载体及其构建方法与应用
CN103710382A (zh) * 2014-01-20 2014-04-09 江西农业大学 一种改变植物花型的双35s过表达载体及其应用
WO2018028553A1 (zh) * 2016-08-09 2018-02-15 中国科学院遗传与发育生物学研究所 水稻条纹叶枯病抗性基因Stv-bi及其应用
CN112126658A (zh) * 2020-09-30 2020-12-25 四川轻化工大学 植物过表达荧光素酶报告基因重组载体及构建方法、应用

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102181474A (zh) * 2011-02-28 2011-09-14 北京师范大学 一种无抗生素标记的植物表达载体及其构建方法与应用
CN103710382A (zh) * 2014-01-20 2014-04-09 江西农业大学 一种改变植物花型的双35s过表达载体及其应用
WO2018028553A1 (zh) * 2016-08-09 2018-02-15 中国科学院遗传与发育生物学研究所 水稻条纹叶枯病抗性基因Stv-bi及其应用
CN112126658A (zh) * 2020-09-30 2020-12-25 四川轻化工大学 植物过表达荧光素酶报告基因重组载体及构建方法、应用

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
M PIETRZAK ET AL.: "Expression in plants of two bacterial antibiotic resistance genes after protoplast transformation with a new plant expression vector.", 《NUCLEIC ACIDS RES.》, vol. 14, no. 14, pages 5857, XP002092881 *
徐旋: "柑橘原生质体瞬时 转化体系优化及利用 CRISPR/Cas9 技术定点 突变山金柑基因", 《中国知网硕士电子期刊》, no. 1, pages 35 *
梁大伟: "拟南芥叶肉原生 质体分离及瞬时表达体 系的建立", 《中国知网硕士电子期刊》, no. 12, pages 27 - 28 *
赖叶林等: "一种植物原生质体分离与瞬时转化的方法", 《植物生理学报》, vol. 56, no. 4, pages 895 - 903 *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN115322997A (zh) * 2022-05-21 2022-11-11 河南中医药大学 一种pBiflu荧光标签表达载体的制备方法及其应用

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