CN113862395A - 用于鉴别FAdV-4和FAdV-8的三重PCR检测引物、试剂盒及检测方法 - Google Patents
用于鉴别FAdV-4和FAdV-8的三重PCR检测引物、试剂盒及检测方法 Download PDFInfo
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Abstract
本发明提供了一种用于鉴别FAdV‑4/FAdV‑10和FAdV‑8的三重PCR检测引物,检测引物序列如下:FAdVF:AACGGCTATCGGTTCTGGCC;FAdVR:GCGAAAGGCGTACGGAAGTA;FAdV4F:GACTGGGAACTGGCCGTAAA;FAdV4R:CGGATCCCTATGTTTCCCGG;FAdV8F:CGTTGAGCATTATCAGGGATCCG;FAdV8R:ACGGAAGACGCGTCGTAGAT。本发明建立方法可同时对FAdV‑4/FAdV‑10和FAdV‑8进行检测,简化操作程序、节约成本;通过电泳条带大小和数目判定结果;2h内即可完成扩增和检测,检测时间短。
Description
技术领域
本发明属于动物传染病学检测领域,具体地涉及用于鉴别FAdV-4/FAdV-10和FAdV-8的三重PCR检测引物、试剂盒及检测方法。
背景技术
I亚群禽腺病毒(Fowl adenovirus,FAdV)包括五个种,12种血清型。FAdV五个种包括:禽腺病毒A(FAdV-1)、禽腺病毒B(FAdV-5)、禽腺病毒C(FAdV-4、FAdV-10)、禽腺病毒D(FAdV-2、FAdV-3、FAdV-9、FAdV-11)、禽腺病毒E(FAdV-6、FAdV-7、FAdV-8a、FAdV-8b)。其中,FAdV-4、FAdV-8(FAdV-8a和FAdV-8b)被认为与家禽包涵体肝炎(IBH)、心包积液综合征(HPS)相关。2015年初,我国多个省份家禽出现以FAdV-4感染为主的肝病问题;2020年底,我国北方地区家禽爆发肝破裂,病原以FAdV-4、FAdV-8为主。FAdV-4主要引起鸡群HPS,FAdV-8则主要引起IBH。流行病学调查显示,FAdV-4和FAdV-8在鸡群中经常共同感染,这给FAdV分型鉴别诊断带来现实需求。
多重PCR方法是在一个反应体系中,同时加入两对以上引物进行的核酸扩增反应,可以实现对两种以上病原的同时检测。目前,国内对FAdV分型鉴定多采用通用引物测序方法,周期长、成本高,不适于FAdV快速鉴定。
发明内容
本发明的目的是为了解决现有技术中存在的缺点,建立一种同时检测FAdV-4/FAdV-10和FAdV-8的三重PCR方法,可实现对FAdV快速鉴定和分型。
本发明采用的技术方案为:一种用于鉴别FAdV-4/FAdV-10和FAdV-8的三重PCR检测引物,所述检测引物序列如下:
FAdVF:AACGGCTATCGGTTCTGGCC;
FAdVR:GCGAAAGGCGTACGGAAGTA;
FAdV4F:GACTGGGAACTGGCCGTAAA;
FAdV4R:CGGATCCCTATGTTTCCCGG;
FAdV8F:CGTTGAGCATTATCAGGGATCCG;
FAdV8R:ACGGAAGACGCGTCGTAGAT;
其中FAdVF和FAdVR是I群FAdV通用引物,PCR扩增片段560bp;FAdV4F和FAdV4R是FAdV-4/FAdV-10特异性引物,PCR扩增片段884bp;FAdV8F和FAdV8R是FAdV-8特异性引物,PCR扩增片段388bp。
一种用于鉴别FAdV-4/FAdV-10和FAdV-8的三重PCR检测试剂盒,所述试剂盒包含权利要求1所述的检测引物。
一种用于鉴别FAdV-4/FAdV-10和FAdV-8的三重PCR检测方法,包括以下步骤:首先,用权利要求1所述的检测引物对样品进行PCR扩增反应获得扩增产物;然后用1.5%的琼脂糖凝胶电泳对PCR扩增产物进行鉴定,在凝胶成像系统下观察结果,确定腺病毒类型;所述三重PCR检测方法所构建的反应体系为:2×Taq PCR StarMix with Loading Dye 10μL、FAdVF 0.1μL、FAdVR 0.1μL、FAdV4F 1μL、FAdV4R 1μL、FAdV8F 1μL、FAdV8R 1μL、待检测样品核酸DNA2μL、无RNase/DNase灭菌去离子水3.8μL。
进一步地,所述PCR扩增反应的条件为:95℃预变性5min;95℃变性30s、60℃退火30s、72℃延伸1min,30个循环;72℃延伸5min;反应结束后,检测PCR产物:进行琼脂糖凝胶电泳,利用紫外成像系统检测电泳条带。
进一步地,所述确定病毒类型的质控标准为:阴性对照未出现条带,FAdV阳性标准品对照出现560bp条带,FAdV-4阳性标准品出现884bp条带,FAdV-8阳性标准品出现388bp条带;所述确定病毒类型的判定方法为:若出现560bp一条条带,判为FAdV阳性;若出现560bp和884bp两条条带,判为FAdV-4/FAdV-10阳性;若出现560bp和388bp两条条带,判为FAdV-8阳性;若出现560bp、884bp和388bp三条条带,判为FAdV-4/FAdV-10和FAdV-8共同感染。
本发明获得的有益效果为:1、同时检测:本发明建立方法可同时对FAdV-4/FAdV-10和FAdV-8进行检测,简化操作程序、节约成本,反应结束后,通过电泳条带大小和数目判定结果;2、特异性强:本发明建立方法通过hexon、fiber2两个基因共同鉴定FAdV-4/FAdV-10,通过hexon、fiber两个基因共同鉴定FAdV-8,降低单个基因非特异性扩增导致的假阳性,显著提升反应特异性;3、检测快速:本发明建立方法采用多重PCR法进行,2h内即可完成扩增和检测,检测时间短。
附图说明
图1为本发明I群FAdV通用引物设计;
图2为本发明FAdV-4/FAdV-10特异性引物设计;
图3为本发明FAdV-8特异性引物设计;
图4为本发明对不同稀释度阳性标准品的三重PCR检测图;
图5为本发明对不同病原样品的三重PCR检测图;
图6为本发明对临床样本的三重PCR检测图。
具体实施方式
下面将结合本发明实施例中的附图,对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述,显然,所描述的实施例仅仅是本发明一部分实施例,而不是全部的实施例。
实施例1:FAdV-4/FAdV-10和FAdV-8三重PCR检测方法及使用
1相关试验病原
试验用病原血清4型禽腺病毒(FAdV-4,HYSY株)、血清8型禽腺病毒(FAdV-8,HYEY株)均由华裕农业科技有限公司鉴定和保存。
2三重PCR的引物设计与分析
2.1基因分析与比较
在GenBank数据库中检索12种血清型I群禽腺病毒基因序列,经MEGA7软件分析比对发现,hexon基因存在于所有血清型禽腺病毒中,其713-2814bp(HB1510株)区域在I群禽腺病毒毒株间高度保守,可作为通用引物设计靶区;fiber2基因仅出现于FAdV-1、FAdV-4、FAdV-10中,其序列在相同基因型毒株间保守,可作为FAdV-4/FAdV-10鉴别引物设计靶区;fiber基因出现于所有血清型禽腺病毒中,其序列在相同基因型毒株间保守,可作为FAdV-8鉴别引物设计靶区。
2.2引物设计
引物设计参考病毒基因序列为:FAdV-1(CELO株)、FAdV-2(SR48株)、FAdV-3(SR49株)、FAdV-4(HB1510株、JSJ13株、KR5株、ON1株、CG-D株、KC株、Kr-Yeoju株、MX-SHP95株、PB-05株、SDXT3-15株)、FAdV-5(340株)、FAdV-6(CR119株)、FAdV-7(YR36株)、FAdV-8a(TR59株)、FAdV-8b(764株、HG株、UPM04217株)、FAdV-9(A-2A株)、FAdV-10(C-2B株)、FAdV-11(380株)。
2.2.1 I群FAdV通用引物设计
经核苷酸同源性分析,设计针对I群FAdV的通用PCR引物(图1,注:*,一致核苷酸),引物序列(参考KR5株)为:
FAdVF:AACGGCTATCGGTTCTGGCC(2236-2255bp)
FAdVR:GCGAAAGGCGTACGGAAGTA(2776-2795bp)
预期目的片段大小为560bp。
2.2.2 FAdV-4/FAdV-10特异性引物设计
经核苷酸同源性分析,设计针对FAdV-4/FAdV-10的特异性PCR引物(图2,注:*,一致核苷酸),引物序列(参考HB1510株)为:
FAdV4F:GACTGGGAACTGGCCGTAAA(400-419bp)
FAdV4R:CGGATCCCTATGTTTCCCGG(1264-1283bp)
预期片段大小为884bp。
2.2.3 FAdV-8特异性引物设计
经核苷酸同源性分析,设计针对FAdV-8的特异性PCR引物(图3,注:*,一致核苷酸),引物序列(参考HG株)为:
FAdV8F:CGTTGAGCATTATCAGGGATCCG(905-927bp)
FAdV8R:ACGGAAGACGCGTCGTAGAT(1273-1292bp)
预期片段大小为388bp。
3三重PCR检测方法的建立
3.1 FAdV阳性标准品的构建
引物序列为:FAdVF:AACGGCTATCGGTTCTGGCC和FAdVR:GCGAAAGGCGTACGGAAGTA,PCR产物大小为560bp。
用诺唯赞公司病毒核酸提取试剂盒DNA/RNAExtraction Kit提取FAdV-4(HYSY株)核酸DNA,按照康润公司2×Taq预混PCR反应体系说明书进行PCR反应,反应体系参考试剂盒说明书配制,反应体系为50μL,其中2×Taq反应液25μL、上下游引物(FAdVF 10μM和FAdVR10μM)各1μL、提取的核酸DNA 1μL,补充灭菌双蒸水至终体积50μL。反应条件为:95℃预变性5min;95℃30s,55℃30s,72℃60s,30个循环;循环结束后72℃延伸10min。
用1.0%的琼脂糖凝胶电泳对PCR产物进行鉴定。按照宝生物公司pMD19-T连接试剂盒说明书将目的基因片段PCR产物克隆到pMD19-T载体上,随机挑取5个单菌落于氨苄青霉素(含量为100μg/mL)抗性的LB液体培养基培养14h后,利用快速质粒小提试剂盒提取相应的质粒。采用PCR扩增时的引物(FAdVF和FAdVR)和条件对提取的质粒进行PCR鉴定,将筛选出的阳性重组质粒送上海桑尼生物科技有限公司进行测序。将测序结果在NCBI上进行BLAST分析验证,符合试验预期的阳性重组质粒作为FAdV阳性标准品,于-20℃保存备用。
3.2 FAdV-4阳性标准品的构建
引物序列为:FAdV4F:GACTGGGAACTGGCCGTAAA和FAdV4R:CGGATCCCTATGTTTCCCGG,PCR产物大小为884bp。
用诺唯赞公司病毒核酸提取试剂盒DNA/RNAExtraction Kit提取FAdV-4(HYSY株)核酸DNA,按照康润公司2×Taq预混PCR反应体系说明书进行PCR反应,反应体系参考试剂盒说明书配制,反应体系为50μL,其中2×Taq反应液25μL、上下游引物(FAdV4F 10μM和FAdV4R10μM)各1μL、提取的核酸DNA 1μL,补充灭菌双蒸水至终体积50μL。反应条件为:95℃预变性5min;95℃30s,55℃30s,72℃60s,30个循环;循环结束后72℃延伸10min。
用1.0%的琼脂糖凝胶电泳对PCR产物进行鉴定。按照宝生物公司pMD19-T连接试剂盒说明书将目的基因片段PCR产物克隆到pMD19-T载体上,随机挑取5个单菌落于氨苄青霉素(含量为100μg/mL)抗性的LB液体培养基培养14h后,利用快速质粒小提试剂盒提取相应的质粒。采用PCR扩增时的引物(FAdV4F和FAdV4R)和条件对提取的质粒进行PCR鉴定,将筛选出的阳性重组质粒送上海桑尼生物科技有限公司进行测序。将测序结果在NCBI上进行BLAST分析验证,符合试验预期的阳性重组质粒作为FAdV-4阳性标准品,于-20℃保存备用。
3.3 FAdV-8阳性标准品的构建
引物序列为:FAdV8F:CGTTGAGCATTATCAGGGATCCG和FAdV8R:ACGGAAGACGCGTCGTAGAT,PCR产物大小为388bp。
用诺唯赞公司病毒核酸提取试剂盒DNA/RNA Extraction Kit提取FAdV-8(HYEY株)核酸DNA,按照康润公司2×Taq预混PCR反应体系说明书进行PCR反应,反应体系参考试剂盒说明书配制,反应体系为50μL,其中2×Taq反应液25μL、上下游引物(FAdV8F 10μM和FAdV8R 10μM)各1μL、提取的核酸DNA 1μL,补充灭菌双蒸水至终体积50μL。反应条件为:95℃预变性5min;95℃30s,55℃30s,72℃60s,30个循环;循环结束后72℃延伸10min。
用1.0%的琼脂糖凝胶电泳对PCR产物进行鉴定。按照宝生物公司pMD19-T连接试剂盒说明书将目的基因片段PCR产物克隆到pMD19-T载体上,随机挑取5个单菌落于氨苄青霉素(含量为100μg/mL)抗性的LB液体培养基培养14h后,利用快速质粒小提试剂盒提取相应的质粒。采用PCR扩增时的引物(FAdV8F和FAdV8R)和条件对提取的质粒进行PCR鉴定,将筛选出的阳性重组质粒送上海桑尼生物科技有限公司进行测序。将测序结果在NCBI上进行BLAST分析验证,符合试验预期的阳性重组质粒作为FAdV-8阳性标准品,于-20℃保存备用。
3.4三重PCR方法的建立
3.4.1一种用于鉴别FAdV-4/FAdV-10和FAdV-8的三重PCR检测引物,所述检测引物序列如下:FAdVF:AACGGCTATCGGTTCTGGCC;
FAdVR:GCGAAAGGCGTACGGAAGTA;
FAdV4F:GACTGGGAACTGGCCGTAAA;
FAdV4R:CGGATCCCTATGTTTCCCGG;
FAdV8F:CGTTGAGCATTATCAGGGATCCG;
FAdV8R:ACGGAAGACGCGTCGTAGAT;
其中FAdVF和FAdVR是I群FAdV通用引物,PCR扩增片段560bp;FAdV4F和FAdV4R是FAdV-4/FAdV-10特异性引物,PCR扩增片段884bp;FAdV8F和FAdV8R是FAdV-8特异性引物,PCR扩增片段388bp。
3.4.2一种用于鉴别FAdV-4/FAdV-10和FAdV-8的三重PCR检测方法,包括以下步骤:首先,用上述检测引物对样品进行PCR扩增反应获得扩增产物;然后用1.5%的琼脂糖凝胶电泳对PCR扩增产物进行鉴定,在凝胶成像系统下观察结果,确定病毒类型;琼脂糖凝胶电泳方法如下:配制1.5%琼脂糖凝胶,室温静置30min后上样,上样量为5μL/孔,琼脂糖电泳参数为120V、30min。
3.4.3三重PCR检测方法所构建的反应体系为:2×Taq PCR StarMix withLoading Dye 10μL、FAdVF 0.1μL、FAdVR 0.1μL、FAdV4F 1μL、FAdV4R 1μL、FAdV8F 1μL、FAdV8R 1μL、待检测样品核酸DNA 2μL、无RNase/DNase灭菌去离子水3.8μL。
3.4.4 PCR扩增反应的条件为:95℃预变性5min;95℃变性30s、60℃退火30s、72℃延伸1min,30个循环;72℃延伸5min;反应结束后,检测PCR产物:进行琼脂糖凝胶电泳,利用紫外成像系统检测电泳条带。确定病毒类型的质控标准为:阴性对照未出现条带,FAdV阳性标准品对照出现560bp条带,FAdV-4阳性标准品出现884bp条带,FAdV-8阳性标准品出现388bp条带;所述确定病毒类型的判定方法为:若出现560bp一条条带,判为FAdV阳性;若出现560bp和884bp两条条带,判为FAdV-4阳性;若出现560bp和388bp两条条带,判为FAdV-8阳性;若出现560bp、884bp和388bp三条条带,判为FAdV-4/FAdV-10和FAdV-8共同感染。
实施例2:灵敏度试验
1阳性标准品
阳性标准品为实施例1制备。
2试验步骤
纯化FAdV、FAdV-4、FAdV-8阳性质粒,通过NanoDrop超微量蛋白核酸分析仪测定浓度,根据阿伏伽德罗常数计算拷贝数,并将重组质粒分别稀释至1×109copies/μL、1×108copies/μL、1×107copies/μL、1×106copies/μL、1×105copies/μL、1×104copies/μL、1×103copies/μL、1×102copies/μL,对经梯度稀释的阳性标准品按照实施例1所述的三重PCR检测方法进行检测,验证所建立方法的灵敏度。
3结论
由图4(其中1-8,反应体系阳性标准品拷贝数:1×109copies、1×108copies、1×107copies、1×106copies、1×105copies、1×104copies、1×103copies、1×102copies)可见,本发明检测方法随模板核酸浓度的降低呈现条带亮度梯度下降,8个浓度质粒中(1×109copies/μL-1×102copies/μL),FAdV阳性标准品和FAdV-4阳性标准品有4个浓度出现条带,FAdV-8阳性标准品有3个浓度出现条带。本发明建立的多重PCR方法对FAdV和FAdV-4的检测灵敏度为1×106copies,对FAdV-8的检测灵敏度为1×107copies。
实施例3:特异性试验
1试验步骤
提取禽流感病毒(AIV)、马立克病毒(MDV)、网状内皮组织增生症病毒(REV)、传染性法氏囊病毒(IBDV)、戊型肝炎病毒(HEV)、传染性贫血病毒(CAV)、禽白血病病毒(ALV)、空肠弯曲杆菌(C.jejuni)、传染性喉气管炎病毒(ILTV)、传染性支气管炎病毒(IBV)、肠炎沙门菌(SE)核酸为模板,同时设阴性对照和FAdV、FAdV-4和FAdV-8阳性标准品对照,按照实施例1所述三重PCR方法进行检测,验证所建立方法的特异性。
2试验结果
由图5(其中1,AIV;2,MDV;3,REV;4,IBDV;5,HEV;6,CAV;7,ALV;8,C.jejuni;9,ILTV;10,IBV;11,SE;12,FAdV阳性标准品;14,FAdV-4阳性标准品;15,FAdV-8阳性标准品;15-16,无菌水)可见,本发明建立的多重PCR方法未从鸡群常见细菌和病毒病原核酸扩增出条带,特异性良好。
实施例4:肝肿大、肝破裂等肝病问题肝脏样品检测
1试验步骤
选取2020-2021年从河北地区收集并冻存于-20℃的19份蛋种鸡肝肿大、肝破裂等肝病问题肝脏样本,按照实施例1所述的三重PCR方法进行FAdV、FAdV-4/FAdV-10和FAdV-8检测,同时设阴性对照和阳性对照。
2试验结果
如图6(其中1-19,蛋种鸡肝脏样品;20,FAdV阳性标准品;21,FAdV-4阳性标准品;22,FAdV-8阳性标准品;23,无菌水)所示,19份肝脏样本中,3份FAdV-4/FAdV-10阳性,5份FAdV-8阳性,3份FAdV-4/FAdV-10和FAdV-8共阳性,说明本发明建立的多重PCR方法适用于临床FAdV-4/FAdV-10和FAdV-8快速分鉴定和分型。
以上所述,仅为本发明较佳的具体实施方式,但本发明的保护范围并不局限于此,任何熟悉本技术领域的技术人员在本发明揭露的技术范围内,根据本发明的技术方案及其发明构思加以等同替换或改变,都应涵盖在本发明的保护范围之内。
Claims (5)
1.一种用于鉴别FAdV-4/FAdV-10和FAdV-8的三重PCR检测引物,其特征在于:所述检测引物序列如下:
FAdVF:AACGGCTATCGGTTCTGGCC;
FAdVR:GCGAAAGGCGTACGGAAGTA;
FAdV4F:GACTGGGAACTGGCCGTAAA;
FAdV4R:CGGATCCCTATGTTTCCCGG;
FAdV8F:CGTTGAGCATTATCAGGGATCCG;
FAdV8R:ACGGAAGACGCGTCGTAGAT;
其中FAdVF和FAdVR是I群FAdV通用引物,PCR扩增片段560bp;FAdV4F和FAdV4R是FAdV-4/FADV-10特异性引物,PCR扩增片段884bp;FAdV8F和FAdV8R是FAdV-8特异性引物,PCR扩增片段388bp。
2.一种用于鉴别FAdV-4/FAdV-10和FAdV-8的三重PCR检测试剂盒,其特征在于:所述试剂盒包含权利要求1所述的检测引物。
3.一种用于鉴别FAdV-4/FAdV-10和FAdV-8的三重PCR检测方法,其特征在于:包括以下步骤:首先,用权利要求1所述的检测引物对样品进行PCR扩增反应获得扩增产物;然后用1.5%的琼脂糖凝胶电泳对PCR扩增产物进行鉴定,在凝胶成像系统下观察结果,确定FADV类型;所述三重PCR检测方法所构建的反应体系为:2×Taq PCR StarMix with LoadingDye 10μL、FAdVF 0.1μL、FAdVR 0.1μL、FAdV4F 1μL、FAdV4R 1μL、FAdV8F 1μL、FAdV8R 1μL、待检测样品核酸DNA 2μL、无RNase/DNase灭菌去离子水3.8μL。
4.根据权利要求3所述一种用于鉴别FAdV-4/FAdV-10和FAdV-8的三重PCR检测方法,其特征在于:所述PCR扩增反应的条件为:95℃预变性5min;95℃变性30s、60℃退火30s、72℃延伸1min,30个循环;72℃延伸5min;反应结束后,检测PCR产物:进行琼脂糖凝胶电泳,利用紫外成像系统检测电泳条带。
5.根据权利要求3所述一种用于鉴别FAdV-4/FAdV-10和FAdV-8的三重PCR检测方法,其特征在于:所述确定病毒类型的质控标准为:阴性对照未出现条带,FAdV阳性标准品对照出现560bp条带,FAdV-4阳性标准品出现884bp条带,FAdV-8阳性标准品出现388bp条带;所述确定病毒类型的判定方法为:若出现560bp一条条带,判为FAdV阳性;若出现560bp和884bp两条条带,判为FAdV-4/FAdV-10阳性;若出现560bp和388bp两条条带,判为FAdV-8阳性;若出现560bp、884bp和388bp三条条带,判为FAdV-4/FAdV-10和FAdV-8共同感染。
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CN114196786A (zh) * | 2021-11-11 | 2022-03-18 | 佛山科学技术学院 | 禽腺病毒4型、8型双重荧光定量pcr快速检测试剂盒及方法 |
CN114990262A (zh) * | 2022-06-20 | 2022-09-02 | 云南省畜牧兽医科学院 | 一种用于血清4型禽腺病毒lamp检测的引物组及其应用 |
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2021
- 2021-09-28 CN CN202111140510.5A patent/CN113862395A/zh active Pending
Cited By (3)
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CN114196786A (zh) * | 2021-11-11 | 2022-03-18 | 佛山科学技术学院 | 禽腺病毒4型、8型双重荧光定量pcr快速检测试剂盒及方法 |
CN114990262A (zh) * | 2022-06-20 | 2022-09-02 | 云南省畜牧兽医科学院 | 一种用于血清4型禽腺病毒lamp检测的引物组及其应用 |
CN114990262B (zh) * | 2022-06-20 | 2023-05-23 | 云南省畜牧兽医科学院 | 一种用于血清4型禽腺病毒lamp检测的引物组及其应用 |
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