CN113789406A - 可视化绿豆叶斑病病菌环介导等温扩增检测方法 - Google Patents
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Abstract
本发明提供了可视化绿豆叶斑病病菌环介导等温扩增检测方法,根据变灰尾孢菌细胞色素b的特异性DNA区域设计环介导等温扩增引物,并优化等温扩增体系和扩增反应程序,建立了一种特异、快速、灵敏度高且可视化的变灰尾孢菌分子检测方法,可用于田间快速检测监测绿豆叶斑病的发生。
Description
技术领域
本发明涉及生物检测技术领域,特别涉及可视化绿豆叶斑病病菌环介导等温扩增检测方法。
背景技术
变灰尾孢菌(Cercospora canescens)是引起绿豆叶斑病的主要真菌病原体,但目前关于这种病原菌的分子检测方法尚未发展起来。
记载在2015年《植物保护》第6期期刊上,由刘昌燕撰写的《绿豆叶斑病病原鉴定及生物学特性研究》,公开了绿豆叶斑病病原的分子鉴定方法,但该方法使用的扩增引物为真菌核糖体rDNA的通用引物,还需测定分离物的序列,其研究目的在于确定绿豆叶斑病病原,无法特异性检测变灰尾孢菌,且操作复杂费时。
本研究中,我们开发了一种基于细胞色素b(cytb)基因的可视化实时环介导等温扩增(LAMP)技术检测绿豆组织中的变灰尾孢菌的方法。
发明内容
针对上述问题,本发明提出可视化绿豆叶斑病病菌环介导等温扩增检测方法。
本发明所述可视化绿豆叶斑病病菌环介导等温扩增检测方法,根据变灰尾孢菌细胞色素b的特异性DNA区域设计4条环介导等温扩增引物,包括两条外源引物F3和B3以及两条内源引物FIP和BIP,具体包括以下步骤:
S1.提取检测样品基因组,得DNA模板;
S2.取1μLDNA模板加入到等温扩增反应体系中,设置反应程序,完成反应后,分析DNA扩增结果。
进一步的,所述F3的序列为5’—AAGCAAGAAGAAATGAAGATGA—3’。
进一步的,所述B3的序列为5’—GTATAAAGACCACGGTGTACT—3’。
进一步的,所述FIP的序列为5’—TACAAGAGCGATCGCTGGTAGAACTCAGTGTTTATGGTCAAG—3’。
进一步的,所述BIP的序列为5’—GGAAAGTGAAAAACAGGCCGTTGCAGCCTATACACGTTAA—3’。
进一步的,所述等温扩增反应体系包括:0.8μLFIP和50μM BIP,0.5μL F3和10μMB3,10×不含镁离子的Thermopol缓冲液,1.2mM dNTP,6mM MgSO4,8U Bst DNA聚合酶,0.8MBetamine,0.4μLdye(20×in water)。
进一步的,所述步骤S2中,所述反应程序为在65℃扩增60~90min后,在85℃处理2min终止反应。
进一步的,所述分析DNA扩增结果的方法包括:分析方法1、分析方法2和/或分析方法3。
进一步的,所述分析方法1为绘制实时环介导等温扩增的扩增曲线。
进一步的,所述分析方法1的结果判定方法为在等温扩增的反应时间内出现扩增曲线,则样品含有变灰尾孢菌,扩增曲线出现的时间越快,变灰尾孢菌数量越多。
进一步的,所述分析方法2为用溴化乙锭染色后进行2%琼脂糖凝胶电泳检测。
进一步的,所述分析方法2的结果判定方法为当电泳结果呈阳性时,样品含有变灰尾孢菌。
进一步的,所述分析方法3为用SYBR Green I染色后直接目视观察环介导等温扩增产物。
进一步的,所述分析方法3的结果判定方法为当扩增产物的颜色呈绿色时,样品含有变灰尾孢菌。
进一步的,所述检测方法的最低检测浓度为100pg/μL。
进一步的,所述检测方法在田间检测变灰尾孢菌引起的病害中的应用。
与现有技术相比,本发明的有益效果是:
本发明提供了可视化绿豆叶斑病病菌环介导等温扩增检测方法,根据变灰尾孢菌细胞色素b的特异性DNA区域设计环介导等温扩增引物,并优化等温扩增体系和扩增反应程序,建立了一种特异、快速、灵敏度高且可视化的变灰尾孢菌的分子检测方法,可用于田间快速检测监测绿豆叶斑病的发生。
附图说明
图1为本发明引物的序列及其在基因组中的位置示意图,图中箭头表示用于引物设计的特定序列及其在基因组中的相对位置;
图2为本发明实施例1环介导等温扩增产物的特异性检测结果,图中a为实时环介导等温扩增的扩增曲线,y轴上以毫伏(mV)为单位的荧光,x轴上以分钟为单位的时间;b为用溴化乙锭染色的2%琼脂糖凝胶电泳图;c为SYBR Green I染色后的环介导等温扩增产物;
图3为本发明实施例2灵敏度检测结果,图中a为实时环介导等温扩增的扩增曲线,y轴上以毫伏(mV)为单位的荧光,x轴上以分钟为单位的时间;b为用溴化乙锭染色的2%琼脂糖凝胶电泳图;c为SYBR Green I染色后的环介导等温扩增产物;
图4为本发明实施例3检测变灰尾孢菌感染的绿豆组织中变灰尾孢菌的结果,图中1-8为不同变灰尾孢菌感染绿豆组织的DNA;9为正常绿豆植物组织的阴性对照;10为无菌蒸馏水的阴性对照;11为变灰尾孢菌基因组DNA的阳性对照;图中a为实时环介导等温扩增的扩增曲线,y轴上以毫伏(mV)为单位的荧光,x轴上以分钟为单位的时间;b为用溴化乙锭染色的2%琼脂糖凝胶电泳图;c为SYBR Green I染色后的环介导等温扩增产物;
具体实施方式
为了更好理解本发明技术内容,下面提供具体实施例,对本发明做进一步的说明,以下说明并不用以限制本发明。
实施例1环介导等温扩增产物的特异性检测
供试菌种:3株变灰尾孢菌,玉米灰斑病菌(Cercospora zeae-maydis)、芹菜尾孢霉(Cercospora apii)、辣椒灰斑病菌(Cercospora capsici)、新月弯孢菌(Curvularialunata)、灰葡萄孢(Botrytis cinerea)、稻瘟病菌(Pyricularia grisea)、马铃薯早疫病病原菌(Alternaria solani)、大豆疫病菌(Phytophthora megasperma)、尖孢镰刀菌(Fusarium oxysporum)和小麦全蚀病菌(Gaeumannomyces graminsis)各1株;
菌种来源:
表1病原菌种类及来源
检测方法:
S1.从BHU(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/Traces/wgs/?val=ANSM01&display=contigs&page=1)下载变灰尾孢菌的基因组数据,利用BioEdit软件构建本地核酸和蛋白质数据库,利用已知的细胞色素b蛋白(BAG12892.1)对变灰尾孢菌的蛋白质数据库进行搜索,利用ClustalX1.83软件对变灰尾孢菌(登录号:ANSM01006775.1)及其相应的细胞色素b的核酸序列进行分析,利用环介导等温扩增引物软件PrimerExplorer V4(http://primerexplorer.jp/elamp4.0.0/index.html;Eiken Chemical Co.,Japan)根据变尾灰孢菌细胞色素b的特异性DNA区域设计了F3、B3、FIP和BIP 4条引物;
F3:5’—AAGCAAGAAGAAATGAAGATGA—3’。
B3:5’—GTATAAAGACCACGGTGTACT—3’。
FIP:5’—TACAAGAGCGATCGCTGGTAGAACTCAGTGTTTATGGTCAAG—3’。
BIP:5’—GGAAAGTGAA AAACAGGCCGTTGCAGCCTATACACGTTAA—3’
S2.采用CTAB法(十六烷基三甲基溴化铵法)分别提取变灰尾孢菌、玉米灰斑病菌、芹菜尾孢霉、辣椒灰斑病菌、新月弯孢菌、灰葡萄孢、稻瘟病菌、马铃薯早疫病病原菌、大豆疫病菌、尖孢镰刀菌和小麦全蚀病菌的基因组,作为等温扩增反应的DNA模板;
S3.取各菌株1μLDNA模板分别加入到等温扩增反应体系[0.8μLFIP和50μMBIP,0.5μL F3和10μM B3,10×不含镁离子的Thermopol缓冲液,1.2mM dNTP,6mM MgSO4,8U BstDNA聚合酶,0.8M Betamine,0.4μLdye(20×in water)]中,在65℃扩增60min后,在85℃处理2min终止反应,完成反应后,采用绘制实时环介导等温扩增的扩增曲线、溴化乙锭染色的2%琼脂糖凝胶电泳和SYBR Green I染色的方法对扩增产物进行分析,分析结果见图2,使用无菌蒸馏水作为阴性对照组进行特异性检测。
绘制实时环介导等温扩增的扩增曲线的结果显示,3株变灰尾孢菌环介导等温扩增反应的荧光强度在40min后即可检测到,3株变灰尾孢菌的扩增曲线分别在46、54、56min(图2a,1-3)进入平台期,而其他菌株均未能检测到荧光信号(图2a,4-14),表明本发明设计的引物组对变灰尾孢菌具有较高的特异性。
2%琼脂糖凝胶电泳的结果表示,3株变灰尾孢菌样本扩增产物的2%琼脂糖凝胶电泳结果呈阳性,阳性样本的电泳带型呈现典型的梯状结构(图2b)。
SYBR Green I染料的结果显示,观察到变灰尾孢菌的LAMP扩增产物的颜色呈绿色,而其他真菌和阴性对照仍保持原来的橙色(图2c)。
实施例2灵敏性检测
采用10倍梯度稀释的方法稀释变灰尾孢菌DNA,控制浓度在100ng/μL到1fg/μL之间,使用无菌蒸馏水作为阴性对照组,在荧光定量PCR仪器上于65℃培养90分钟,进行灵敏度检测,实时环介导等温扩增反应按实施例1的方法完成,然后通过实时环介导等温扩增曲线、凝胶电泳和SYBR Green I染色观察对扩增产物进行检测。
从图3a中可以看出,在100ng/μL、10ng/μL、1ng/μL、100pg/μL均可检测到变灰尾孢菌的荧光信号,而其他5个浓度均未能检测到荧光信号,表明实时环介导等温扩增技术对变灰尾孢菌基因组样品的灵敏度极限为100pg/μL。
从图3b中可以看出,在100ng/μL-100pg/μL范围内,变灰尾孢菌的电泳结果呈阳性。
从图3c中可以看出,添加SYBR Green I染料后,在100ng/μL-100pg/μL范围内可以清楚地观察到变灰尾孢菌的LAMP扩增产物的颜色呈绿色。环介导等温扩增检测结果与琼脂糖凝胶电泳凝胶电泳和荧光检测结果一致,表明本发明的环介导等温扩增技术可以更快速、准确地检测检测变灰尾孢菌。
实施例3田间样品的检测
为了进一步验证环介导等温扩增技术在大田样品中的应用效果,从中国黑龙江省大庆市田间采集了8个不同的疑似变灰尾孢菌侵染症状的绿豆样品田间和无侵染绿豆样品,并用环介导等温扩增技术对样品进行了检测,环介导等温扩增方法同实施例1,以纯化的变灰尾孢菌DNA作为阳性对照,用无菌蒸馏水作为阴性对照。
从图4中可以看出,8株患有叶斑病的绿豆中有5株被检测出荧光信号,即实时环介导等温扩增检测阳性样品率为62.5%,正常的绿豆样品没有显示任何荧光信号(图4a);琼脂糖凝胶电泳分析环介导等温扩增产物,1-5有明显条带(图4b),在添加SYBR Green I染料后观察到阳性样品中有5个由原来的橙色变为绿色(图4c)。
实时环介导等温扩增检测的结果与琼脂糖凝胶电泳和荧光检测结果一致,证明了本发明的可视化实时环介导等温扩增法适用于田间样品的检测,表示本发明的环介导等温扩增法可以有效地检测出变灰尾孢菌侵染的田间病害植物样品。
以上所述仅为本发明的较佳实施例而已,并不用以限制本发明,凡在本发明的精神和原则之内,所作的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。
Claims (10)
1.可视化绿豆叶斑病病菌环介导等温扩增检测方法,其特征在于,根据变灰尾孢菌细胞色素b的特异性DNA区域设计4条环介导等温扩增引物,包括两条外源引物F3和B3以及两条内源引物FIP和BIP,引物序列如下所示:
F3:5’—AAGCAAGAAGAAATGAAGATGA—3’;
B3:5’—GTATAAAGACCACGGTGTACT—3’;
FIP:5’—TACAAGAGCGATCGCTGGTAGAACTCAGTGTTTATGGTCAAG—3’;
BIP:5’—GGAAAGTGAA AAACAGGCCGTTGCAGCCTATACACGTTAA—3’。
2.如权利要求1所述的可视化绿豆叶斑病病菌环介导等温扩增检测方法,其特征在于,包括以下步骤:
S1.提取检测样品基因组,得DNA模板;
S2.取1μLDNA模板加入到等温扩增反应体系中,设置反应程序,完成反应后,分析DNA扩增结果。
4.如权利要求2所述的可视化绿豆叶斑病病菌环介导等温扩增检测方法,其特征在于,步骤S2中,所述反应程序为在65℃扩增60~90min后,在85℃处理2min终止反应。
5.如权利要求2所述的可视化绿豆叶斑病病菌环介导等温扩增检测方法,其特征在于,所述分析DNA扩增结果的方法包括:分析方法1、分析方法2和/或分析方法3。
6.如权利要求5所述的可视化绿豆叶斑病病菌环介导等温扩增检测方法,其特征在于,所述分析方法1为绘制实时环介导等温扩增的扩增曲线;所述分析方法1的结果判定方法为在等温扩增的反应时间内出现扩增曲线,则样品含有变灰尾孢菌,扩增曲线出现的时间越快,变灰尾孢菌数量越多。
7.如权利要求5所述的可视化绿豆叶斑病病菌环介导等温扩增检测方法,其特征在于,所述分析方法2为用溴化乙锭染色后进行2%琼脂糖凝胶电泳检测;所述分析方法2的结果判定方法为当电泳结果呈阳性时,样品含有变灰尾孢菌。
8.如权利要求5所述的可视化绿豆叶斑病病菌环介导等温扩增检测方法,其特征在于,所述分析方法3为用SYBR Green I染色后直接目视观察环介导等温扩增产物;所述分析方法3的结果判定方法为当扩增产物的颜色呈绿色时,样品含有变灰尾孢菌。
9.如权利要求1所述的可视化绿豆叶斑病病菌环介导等温扩增检测方法,其特征在于,所述检测方法的最低检测浓度为100pg/μL。
10.如权利要求1-9任一项所述的可视化绿豆叶斑病病菌环介导等温扩增检测方法的应用,其特征在于,所述检测方法在田间检测由变灰尾孢菌引起的病害中的应用。
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