CN113186141A - 一种一锅法高效合成莱鲍迪苷m的方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开一种一锅法高效合成莱鲍迪苷M的方法,属于生物工程技术领域。本发明在不添加UDPG的条件下,利用廉价底物ST在体外先经UGT76G1催化为RA,再经EUGT11催化产生RD,最终被UGT76G1转化为RM,旨在用较简单的生产方法,更廉价的底物,得到高品质的甜味剂RM。当三重启动子启动转录时,限速酶EUGT11酶活是单启动子控制转录时的2.13倍,且在酶活力配比为SUS1:UGT76G1:EUGT11/3copies of T7=1:2:6.39的条件下,该体系将10mM ST转化为3.79±0.31mM莱鲍迪苷M,较之前提升了2.35倍,为低成本高效酶法合成RM提供技术支持。
Description
技术领域
本发明属于生物工程技术领域,特别涉及一种一锅法高效合成莱鲍迪苷M(RM)的方法。
背景技术
甜叶菊原产于巴拉圭和巴西,其叶片中可提取出一类甜度高且热量低的糖苷类化合物,几个世纪以来,一直被南美洲的人们用作为天然甜味剂,包括甜菊苷(Stevioside,ST),莱鲍迪苷A(Rebaudioside A,RA),莱鲍迪苷D(Rebaudioside D,RD)和莱鲍迪苷M(Rebaudioside M,RM)。其中ST和RA含量较为丰富(约占叶片干重的7%和3%),但与RD和RM相比,它们的甜度不及后者,且随添加量不断增加,苦涩味逐渐显现,故在应用于食品生产时会影响产品风味[1]。而RD和RM作为高品质甜味剂,甜度为蔗糖的400倍,口感更加纯净,但是含量十分稀少,仅占叶片干重的0.3%[2]。利用传统物理方法从叶片中提纯莱鲍迪苷D和莱鲍迪苷M的产量远远不能满足市场需求,且生产量少,工艺繁琐,成本较高[3][4]。
甜叶菊来源的糖基转移酶UGT76G1可以在糖基供体UDPG存在的条件下,催化两种糖基转移反应:由ST生成RA[5],或由RD产生RM[6]。而水稻来源的糖基转移酶EUGT11则可以利用糖基供体UDPG,以RA为底物催化生成RD[7]。在以上三个糖基转移反应中,均需要UDPG作为糖基供体,但UDPG价格昂贵,使甜味剂的生产成本大幅增加。而蔗糖合成酶可利用廉价原料UDP,在蔗糖存在的情况下,将葡萄糖基转移至UDP,生成UDPG和果糖(图1b),且该过程可逆,可以实现UDP-UDPG的循环反应[8][9][10][11]。当糖基转移反应与SUS1介导的UDP-UDPG循环反应偶联,不直接添加昂贵底物UDPG时,各糖基转移反应也能正常进行。
目前多数生产方法仅利用单个酶与蔗糖合成酶偶联产生单一种类的糖苷,且产物大多为RA或RD[12][13],在合成莱鲍迪苷M时也常以昂贵原料莱鲍迪苷D作为底物,使得生产成本较高,且产量不高。
参考文献:
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发明内容
为了克服现有技术中用于合成莱鲍迪苷M的方法合成效率较低且底物莱鲍迪苷D价格昂贵的缺点与不足,本发明的目的在于提供一种一锅法高效合成莱鲍迪苷M的方法。
本发明将廉价底物ST先经UGT76G1催化为RA,再经EUGT11催化产生RD,最终被UGT76G1转化为RM(图1a,b),将终产物RM产量提升2.35倍,且该方法避免直接用昂贵的RD作为合成RM的底物,为低成本高效酶法合成RM提供技术支持。
本发明的目的通过下述技术方案实现:
本发明提供一种高效表达EUGT11的重组菌,所述重组菌以pET-22b(+)质粒为出发载体,以大肠杆菌作为宿主菌,在多重启动子操控下高效表达EUGT11。
优选的,所述的多重启动子为至少三重启动子;进一步为三重启动子或四重启动子。
优选的,所述的启动子为T7启动子。
优选的,所述的大肠杆菌为E.coli Rosetta(DE3)。
一种一锅法高效合成莱鲍迪苷M的方法,包括如下步骤:
分别构建异源表达的UGT76G1,SUS1的重组菌,以及构建上述高效表达EUGT11的重组菌,分别经诱导发酵产酶后以细胞粗酶液进行催化反应,无需添加UDPG,利用蔗糖、甜菊苷(ST)和二磷酸尿苷(UDP),将SUS1介导的UDP-UDPG循环反应与三步糖基转移反应偶联形成级联反应,将三个单级联反应串联,在体外形成通路,建立一锅法多酶级联反应体系,催化甜菊苷高效合成莱鲍迪苷M。
UGT76G1(甜叶菊来源糖基转移酶)的氨基酸序列如SEQ ID NO:1所示,其基因的核苷酸序列如SEQ ID NO:2所示。
EUGT11(水稻来源糖基转移酶)的氨基酸序列如SEQ ID NO:3所示,其基因的核苷酸序列如SEQ ID NO:4所示。
SUS1(拟南芥来源蔗糖合成酶)的氨基酸序列如SEQ ID NO:5所示,其基因的核苷酸序列如SEQ ID NO:6所示。
优选的,诱导发酵中诱导剂为异丙基-β-D-硫代半乳糖苷(IPTG),IPTG在发酵体系中的浓度为0.5~1mM;进一步为0.5mM。
优选的,一锅法多酶级联反应体系中蛋白质量比例为SUS1:UGT76G1:多重启动子操控下表达的EUGT11=1:(2~4):(12.3~36.9);进一步为1:(2~4):(24.6~36.9);更进一步为1:4:36.9。
进一步,一锅法多酶级联反应体系中酶活力比例为SUS1:UGT76G1:EUGT11/3copies of T7=1:(1~2):(2.13~6.39);进一步为1:(1~2):(4.26~6.39);更进一步为1:2:6.39。EUGT11/3copies of T7表示三重启动子操控下表达的EUGT11。
进一步,一锅法多酶级联反应体系中酶活力比例为SUS1:UGT76G1:EUGT11/4copies of T7=1:(1~2):(1.81~5.43);进一步为1:(1~2):(3.62~5.43);更进一步为1:2:5.43。EUGT11/4copies of T7表示四重启动子操控下表达的EUGT11。
优选的,一锅法多酶级联反应体系中SUS1的酶活力用量为50mU/mL,换算成蛋白质量用量为0.8mg/mL。
所述的细胞粗酶液为发酵得到的菌体经超声破碎所获得的含酶的粗酶液。
所述的一锅法多酶级联反应体系为:蔗糖和UDP经SUS1催化生成UDPG;UDPG和ST经UGT76G1催化生成莱鲍迪苷A(RA);UDPG和RA经EUGT11催化生成莱鲍迪苷D(RD);UDPG和RD经UGT76G1催化生成莱鲍迪苷M(RM)。
所述的一锅法多酶级联反应体系中,蔗糖的起始反应浓度为100~700mM;甜菊苷(ST)的起始反应浓度为1~10mM;二磷酸尿苷(UDP)的起始反应浓度为2~20mM;
进一步,所述的一锅法多酶级联反应体系中,蔗糖的起始反应浓度为700mM;甜菊苷(ST)的起始反应浓度为10mM;二磷酸尿苷(UDP)的起始反应浓度为20mM。
优选的,所述的催化反应的条件为35~40℃,180~220r/min催化反应24~48h;进一步为37℃,220r/min催化反应24~48h。
本发明中,为提升该体系中限速酶EUGT11的酶活,从而提升整个体外多酶级联反应体系的RM产量,将限速酶EUGT11表达质粒的T7启动子核心区域串联,并比较一重,二重,三重和四重启动子启动转录时该酶活性,当三重启动子启动转录时,重组酶EUGT11的酶活最高。
本发明相对于现有技术具有如下的优点及效果:
(1)本发明在不添加UDPG的条件下,利用廉价底物ST经体外多酶级联反应体系转化为RM,旨在用较简单的生产方法,更廉价的底物,得到高品质的甜味剂RM。
(2)当三重启动子启动转录时,限速酶EUGT11酶活是单启动子控制转录时的2.13倍,且在酶活力配比为SUS1:UGT76G1:EUGT11/3copies of T7=1:2:6.39的条件下,该体系将10mM ST转化为3.79±0.31mM莱鲍迪苷M,较之前提升了2.35倍。
附图说明
图1是体外多酶级联反应通路由ST合成RM示意图;其中,a为体外多酶级联反应体系线路图;b为UDP-UDPG循环再生原理图。
图2是各转化子酶活测定体系中UDP/UDPG产量分析示意图;其中,a为UDP,UDPG标品HPLC曲线,UDPG出峰时间为10.46min,UDP出峰时间为11.75min;b为Rosetta-SUS1粗酶液酶活测定的HPLC曲线;c为Rosetta-UGT76G1(ST)粗酶液酶活测定的HPLC曲线;d为Rosetta-UGT76G1(RD)粗酶液酶活测定的HPLC曲线;e为Rosetta-EUGT11粗酶液酶活测定的HPLC曲线。
图3是各体外单级联反应中酶活力配比对底物转化率的影响示意图;其中,a为SUS1:EUGT11;b为SUS1:EUGT11(3copies of T7);c为SUS1:UGT76G1(ST);d为SUS1:UGT76G1(RD);UGT76G1(RD)和UGT76G1(ST)表示UGT76G1分别以RD和以ST为底物进行催化,EUGT11表示单启动子启动转录的EUGT11,EUGT11(3copies of T7)表示三重启动子启动转录的EUGT11。
图4是体外多酶级联反应体系产物分析;其中,a为各甜菊醇糖苷(ST、RA、RD、RM)标品出峰时间,RD出峰时间为3.34min,RM出峰时间为3.93min,RA出峰时间为6.88min,ST出峰时间为7.86min;b为酶活力配比为SUS1:UGT76G1:EUGT11/3copies of T7=1:2:6.39下的体外多酶级联体系反应48h后HPLC结果;c为酶活力配比为SUS1:UGT76G1:EUGT11=1:2:3下的体外多酶级联体系反应48h后HPLC结果;d为用大肠杆菌Rosetta(DE3)宿主破碎后的粗酶液代替酶反应中的Rosetta-UGT76G1、Rosetta-EUGT11、Rosetta-SUS1破碎后的粗酶液进行体外多酶级联体系反应48h后HPLC结果。
具体实施方式
下面结合实施例及附图对本发明作进一步详细的描述,但本发明的实施方式不限于此。
下列实施例中未注明具体实验条件的试验方法,通常按照常规实验条件或按照制造厂所建议的实验条件。所使用的材料、试剂等,如无特殊说明,为从商业途径得到的试剂和材料。
本发明体外多酶级联反应通路由ST合成RM示意图,如图1所示;其中,a为体外多酶级联反应体系线路图;b为UDP-UDPG循环再生原理图。
实施例1:单重启动子表达载体pET22b-UGT76G1,pET22b-EUGT11及pET-22b-SUS1构建
甜叶菊来源糖基转移酶UGT76G1(基因序列如SEQ ID NO:2所示),水稻来源糖基转移酶EUGT11(基因序列如SEQ ID NO:4所示)及拟南芥来源蔗糖合成酶SUS1(基因序列如SEQID NO:6所示)的基因序列均由南京金斯瑞公司优化合成,并分别克隆至载体pUC57,得到pUC57-UGT76G1,pUC57-EUGT11和pUC57-SUS1三个质粒。以质粒pUC57-UGT76G1、pUC57-EUGT11和pUC57-SUS1为模板,采用引物(UGT76G1-F/R、EUGT11-F/R、SUS1-F/R)分别将目的片段扩增,将大小正确的PCR产物并回收备用。用XhoⅠ和NdeⅠ酶切载体pET-22b(+)并纯化,将纯化后的载体分别和目的基因片段连接。将10μL连接产物分别转化至E.coli Match1T1,涂布于含有氨苄青霉素的LB平板。挑取阳性转化子扩大培养后提质粒,经XhoⅠ和NdeⅠ酶切验证正确,送至广州天一辉远基因科技有限公司测序,得到测序正确的质粒pET22b-UGT76G1,pET22b-EUGT11及pET-22b-SUS1,并将对应菌株于甘油中低温保藏。
UGT76G1-F:5′-TTTAAGAAGGAGATATACATATGGAGAATAAGACAGAAACCACCGT-3′;(SEQID NO:7)
UGT76G1-R:5′-GCTTTGTTAGCAGCCGGATCTCAGAGGCTACTAATGTAAGAAACCA-3′;(SEQID NO:8)
EUGT11-F:5′-TTTAAGAAGGAGATATACATATGGACTCCGGTTACAGCTC-3′;(SEQ ID NO:9)
EUGT11-R:5′-GCTTTGTTAGCAGCCGGATCTCAGTCTTTGTAGCTCCGCAGTTG-3′;(SEQ IDNO:10)
SUS1-F:5′-TTTAAGAAGGAGATATACATATGGACTCCGGTTACAGCTC-3′;(SEQ ID NO:11)
SUS1-R:5′-GCTTTGTTAGCAGCCGGATCTCAATCGTCTTGGGCGAGAGGGA-3′。(SEQ ID NO:12)
实施例2:EUGT11多重启动子表达载体构建
以质粒pET22b-EUGT11为模板,引物F/R(F:5′-TGTGAGCGGATAACAATTCCATAATTTTGTTTAACTTTAAGAAGGAG-3′(SEQ ID NO:13);R:5′-AGTGAGTCGTATTAATTTCGTTCGGCGTGGGTATGGTGGC-3′(SEQ ID NO:14))扩增得到含有和目的基因EUGT11的pET22b载体骨架的大片段,命名为pET22b-scaffold-EUGT11,胶回收备用。将2 copies of T7-F和2 copies of T7-R(表1)两条寡核苷酸链在98℃条件下变性5min,自然降至室温完成退火,形成双重启动子双链片段,命名为2 copies of T7,回收该片段备用。将另外两对寡核苷酸链3 copies ofT7-F和3 copies of T7-R,4 copies of T7-F和4copies of T7-R(表1)也进行如上操作,分别退火形成三重启动子和四重启动子双链片段,分别命名为3 copies of T7和4 copiesof T7。分别将双链片段2 copies of T7,3 copies of T7和4 copies of T7与pET22b-scaffold-EUGT11连接,转化至大肠杆菌E.coli Match1T1。经带有氨苄青霉素的抗性平板初步筛选阳性转化子,将酶切鉴定正确的转化子送至广州天一辉远基因科技有限公司测序。得到含有双重,三重及四重启动子的EUGT11表达质粒,分别命名为pET22b-EUGT11/2copies of T7,pET22b-EUGT11/3 copies of T7,pET22b-EUGT11/4 copies of T7。
表1用于载体构建的寡核苷酸序列(5′-3′)
实施例3:重组大肠杆菌诱导表达
将质粒pET22b-UGT76G1,pET22b-EUGT11,pET22b-SUS1,pET22b-EUGT11/2 copiesof T7,pET22b-EUGT11/3 copies of T7,pET22b-EUGT11/4 copies of T7分别转化至E.coli Rosetta(DE3),经氨苄青霉素抗性LB平板筛选阳性转化子,分别命名为Rosetta-UGT76G1、Rosetta-EUGT11、Rosetta-SUS1、Rosetta-EUGT11/2copies of T7、Rosetta-EUGT11/3copies of T7和Rosetta-EUGT11/4copies of T7。将以上重组大肠杆菌分别于液体LB中培养8小时左右,以1%(v/v)接种量转接于100mL新鲜LB液体培养基,待菌体生长至OD600在0.7左右,向其中添加异丙基-β-D-硫代半乳糖苷(IPTG)至工作浓度为0.5mM,并在20℃,200r/min条件下低温诱导培养。诱导20h后,以4℃8000r/min离心收集菌体,30mL超纯水洗涤两次,最后用10mL 50mM pH 7的磷酸缓冲液重悬菌体,冰浴超声破碎30min,离心取上清液得到粗酶液,用于后续BCA法蛋白浓度测定及酶活测定。
实施例4:重组酶UGT76G1、EUGT11和SUS1表达活性研究
1)酶活测定体系糖基转移酶UGT76G1酶活测定体系:将Rosetta-UGT76G1破碎后得到的粗酶液与反应体系混合,总体系为200μL。其中各组份及终浓度为50mM pH 7磷酸钾缓冲液,1mM ST或1mM RD,2mM UDPG(尿苷二磷酸葡萄糖),3mM MgCl2,控制粗酶液的蛋白质量为0.5mg。在37℃,220r/min条件下反应30min后,95℃加热5min使酶失活,超纯水稀释十倍,经0.22μm滤膜过滤后用于HPLC分析UDP/UDPG。
糖基转移酶EUGT11酶活测定体系:将Rosetta-EUGT11破碎后得到的粗酶液与反应体系混合,总体系为200μL。其中各组份及终浓度为50mM pH 7磷酸钾缓冲液,1mM RA,2mMUDPG,3mM MgCl2,控制粗酶液的蛋白质量为0.5mg。在37℃,220r/min条件下反应30min后,95℃加热5min使酶失活,超纯水稀释十倍,经0.22μm滤膜过滤后用于HPLC分析UDP/UDPG。
蔗糖合成酶SUS1酶活测定体系:将Rosetta-SUS1破碎后得到的粗酶液与反应体系混合,总体系为200μL。其中各组份及终浓度为50mM pH 7磷酸钾缓冲液,700mM蔗糖,2mMUDP(二磷酸尿苷),3mM MgCl2,控制粗酶液的蛋白质量为0.5mg。在37℃,220r/min条件下反应30min后,95℃加热5min使酶失活,超纯水稀释十倍,经0.22μm滤膜过滤后用于HPLC分析UDP/UDPG。
2)表达活性研究结果
分别对重组菌Rosetta-UGT76G1、Rosetta-EUGT11、Rosetta-SUS1破碎后得到的粗酶液进行酶活测定,以探究UGT76G1、EUGT11和SUS1在大肠杆菌胞内重组表达情况。糖基转移酶UGT76G1,EUGT11催化UDPG转化为UDP,故按照反应生成UDP的量计算酶活;SUS1催化UDP转化为UDPG,按照反应生成UDPG的量计算酶活。结果如表2,Rosetta-UGT76G1(ST)酶活为31.35±0.54U/g,Rosetta-UGT76G1(RD)酶活为19.27±0.57U/g,Rosetta-EUGT11酶活为5.09±0.14U/g,Rosetta-SUS1酶活为65.34±1.67U/g,宿主Rosetta(DE3)粗酶液基本无活性,表明UGT76G1、EUGT11和SUS1均已在大肠杆菌胞内成功表达。
其中,Rosetta-UGT76G1催化不同糖基转移反应时,UDPG转化率差异较大(表2,图2c,d),催化ST转化为RA的酶活为催化RD转化为RM酶活的1.63倍。EUGT11的酶活最低,反应结束只有少量UDP产生(图2e),可初步认为在体外多酶级联催化体系中,EUGT11是该体系的限速酶。SUS1的UDP转化率最高,反应结束后UDP几乎完全转化为UDPG(图2b),较高的酶活使得该酶能在体外多酶级联反应体系中为糖基转移反应提供足量糖基供体UDPG。
表2重组大肠杆菌粗酶液酶活测定
Enzyme | Specific activity(U/g) |
UGT76G1(RD) | 19.27±0.57 |
UGT76G1(ST) | 31.35±0.54 |
EUGT11 | 5.09±0.14 |
SUS1 | 65.34±1.67 |
Rosetta-control | 0.09±0.01 |
注:UGT76G1(RD)和UGT76G1(ST)表示UGT76G1分别以RD和以ST为底物进行催化。Rosetta-control为Rosetta宿主破碎得到的粗酶液在同样条件下进行催化。
实施例5:重组酶UGT76G1和EUGT11对糖苷类底物转化率研究
1)反应体系:
UGT76G1对底物转化率测定体系:将Rosetta-UGT76G1破碎后得到的粗酶液与反应体系混合,总体系为200μL。其中各组份及终浓度为50mM pH 7磷酸钾缓冲液,1mM ST或1mMRD,2mM UDPG,3mM MgCl2,控制粗酶液的用量,使反应体系中的酶活力为10mU。在37℃,220r/min条件下反应24h后,95℃加热5min使酶失活,超纯水稀释十倍,经0.22μm滤膜过滤,用于HPLC分析ST/RA或RD/RM,并计算ST或RD的转化率。
EUGT11对底物转化率测定体系:将Rosetta-EUGT11破碎后得到的粗酶液与反应体系混合,总体系为200μL。其中各组份及终浓度为50mM pH 7磷酸钾缓冲液,1mM RA,2mMUDPG,3mM MgCl2,控制粗酶液的用量,使反应体系中的酶活力为10mU。在37℃,220r/min条件下反应24h后,95℃加热5min使酶失活,超纯水稀释十倍,经0.22μm滤膜过滤,用于HPLC分析RA/RD,并计算RA的转化率。
2)转化率定结果
为了确定体外多酶级联反应体系中的限速酶,我们比较了在相同酶活力下糖基转移酶UGT76G1对ST和RD转化率以及EUGT11对RA的转化率。结果如表3,重组酶UGT76G1几乎可以将ST完全转化为RA,保证多酶级联反应第一步的催化效率。重组酶EUGT11对RA的转化率最低,导致RD产量低,不能为RM的合成提供足量的前体,故该步骤应为体外多酶级联反应体系中的限速步骤。
表3重组酶UGT76G1和EUGT11对底物的转化
Enzyme | Conversion rate of substrate(%) |
UGT76G1(ST) | 98.92±0.79 |
UGT76G1(RD) | 57.49±1.01 |
EUGT11 | 13.25±0.96 |
注:UGT76G1(RD)和UGT76G1(ST)表示UGT76G1分别以RD和以ST为底物进行催化。
实施例6:在不同串联个数启动子操控下表达的EUGT11酶活比较
为提升限速酶EUGT11活性,从而提升体外多酶级联反应整体催化效率,本发明将该酶表达质粒的T7启动子核心区域串联,分别构建含有一重,二重,三重和四重启动子的EUGT11表达质粒的重组大肠杆菌,并测定酶活,具体参照实施例4。结果如表4,在相同反应条件下,相比单启动子控制下表达的EUGT11,三重启动子将酶活提升2.13倍。四重启动子也使得酶活提升1.81倍,而二重启动子几乎使该酶失活,酶活仅为0.29±0.02U/g。
表4不同串联个数启动子操控下表达的EUGT11酶活
Enzyme | Specific activity(U/g) |
EUGT11 | 5.09±0.14 |
EUGT11/2copies of T7 | 0.29±0.02 |
EUGT11/3copies of T7 | 10.84±0.05 |
EUGT11/4copies of T7 | 9.21±0.62 |
Rosetta-control | 0.09±0.01 |
实施例7:体外各单级联反应最佳酶活力或蛋白质量配比探究
1)体外单级联体系产物转化率测定体系:
UGT76G1和SUS1参与的体外单级联体系中ST转化率测定:
破碎获得Rosetta-UGT76G1和Rosetta-SUS1的粗酶液,控制粗酶液的用量,使反应体系中SUS1酶活力为10mU,UGT76G1酶活力分别为10mU、20mU、30mU,使得反应体系中双酶酶活力比例为1:1、1:2、1:3。其中各组份及终浓度为50mM pH 7磷酸钾缓冲液,700mM蔗糖,1mMST,2mM UDP,3mM MgCl2,补加蒸馏水至200μL。在37℃,220r/min条件下反应24h后,95℃加热5min使酶失活,超纯水稀释十倍,经0.22μm滤膜过滤后用于HPLC分析ST/RA,并计算ST转化率。
EUGT11和SUS1参与的体外单级联体系中RA转化率测定:
破碎获得Rosetta-EUGT11和Rosetta-SUS1的粗酶液,控制粗酶液的用量,使反应体系中SUS1酶活力为10mU(蛋白质量为0.16mg),EUGT11酶活力分别为10mU、20mU、30mU,换算成蛋白质量分别为1.96mg、3.93mg、5.9mg,使得反应体系中双酶酶活力比例为1:1、1:2、1:3,换算成蛋白质量比为1:12.3、1:24.6、1:36.9。其中各组份及终浓度为50mM pH 7磷酸钾缓冲液,700mM蔗糖,1mM RA,2mM UDP,3mM MgCl2,补加蒸馏水至200μL。在37℃,220r/min条件下反应24h后,95℃加热5min使酶失活,超纯水稀释十倍,经0.22μm滤膜过滤后用于HPLC分析RA/RD,并计算RD转化率。破碎Rosetta-EUGT11/3copies of T7,得到的粗酶液也按照同样体系反应,其中,Rosetta-EUGT11/3copies of T7的粗酶液的用量为:反应体系中的蛋白质量与EUGT11酶活力对应的蛋白质量一致;具体为:使反应体系中SUS1酶活力为10mU,Rosetta-EUGT11/3copies of T7酶活力分别为21.3mU、42.6mU、63.9mU,使得反应体系中双酶酶活力比例为1:2.13、1:4.26、1:6.39。
UGT76G1和SUS1参与的体外单级联体系中RD转化率测定:
破碎获得Rosetta-UGT76G1和Rosetta-SUS1的粗酶液,控制粗酶液的用量,使反应体系中SUS1酶活力为10mU,UGT76G1酶活力分别为10mU、20mU、30mU,使得反应体系中双酶酶活力比例为1:1、1:2、1:3。其中各组份及终浓度为50mM pH 7磷酸钾缓冲液,700mM蔗糖,1mMRD,2mM UDP,3mM MgCl2,补加蒸馏水至200μL。在37℃,220r/min条件下反应24h后,95℃加热5min使酶失活,超纯水稀释十倍,经0.22μm滤膜过滤后用于HPLC分析RD/RM,并计算RD转化率。
2)体外各单级联反应最佳酶活力配比
为便于确定体外多酶级联反应体系的酶活力配比,先对各单级联反应的最佳酶活力配比进行探究。本发明控制单酶级联反应中SUS1与糖基转移酶UGT76G1的酶活力配比为1:1,1:2,1:3,单酶级联反应中SUS1与糖基转移酶EUGT11或EUGT11/3copies of T7的蛋白质量配比为1:12.3、1:24.6、1:36.9;比较三种酶活力或蛋白质量配比下各糖基转移酶对底物的转化率,转化率最高时的酶活力或蛋白质量配比为该单级联反应的最佳酶活力或蛋白质量配比,结果如图3。
重组酶EUGT11和EUGT11/3copies of T7催化RA转化为RD的单级联反应情况如图3a和3b,由此可知,单启动子控制下的EUGT11和三重启动子控制下的EUGT11都在蛋白质量配比为1:36.9时出现RA最高转化率,且后者最高转化率为前者的2.18倍。重组酶UGT76G1催化ST转化为RA的单级联反应结果如图3c,当酶活力配比为1:2时,ST转化率最高,再增加糖基转移酶的量,产物RA转化率略有降低。重组酶UGT76G1催化RD转化为RM的单级联反应结果如图3d,当酶活力配比为1:2时RD转化率最高,再增加UGT76G1至酶活力配比为1:3时RD转化率大幅降低。
将每个单酶级联反应体系的最佳酶活力配比综合,则体外多酶级联反应体系酶活力配比为SUS1:UGT76G1:EUGT11/3copies of T7=1:2:6.39,换算成蛋白质量比例为SUS1:UGT76G1:EUGT11/3copies of T7=1:4:36.9。
实施例8:三重启动子操控下表达的EUGT11对体外多酶级联反应体系中RM产量探究
1)体外多酶级联体系产物测定体系
破碎获得Rosetta-SUS1,Rosetta-UGT76G1和Rosetta-EUGT11的粗酶液,控制粗酶液的用量,使反应体系中SUS1酶活力为10mU,以酶活力比例SUS1:UGT76G1:EUGT11=1:2:3,或者,SUS1:UGT76G1:EUGT11/3 copies of T7=1:2:6.39加入反应体系中。其中各组份及终浓度为50mM pH 7磷酸钾缓冲液,700mM蔗糖,10mM ST,20mM UDP,3mM MgCl2,补加蒸馏水至200μL。在37℃,220r/min条件下反应48h后,95℃加热5min使酶失活,超纯水稀释十倍,经0.22μm滤膜过滤后用于HPLC分析ST/RA/RD/RM。
2)三重启动子操控下表达的EUGT11对体外多酶级联反应体系中RM产量影响
为了研究EUGT11的表达效率对体外多酶级联反应体系终产物RM产量的影响,我们将单启动子操控下表达的EUGT11参与的反应体系SUS1:UGT76G1:EUGT11=1:2:3与三重启动子操控下表达的EUGT11参与的反应体系SUS1:UGT76G1:EUGT11/3copies of T7=1:2:6.39在相同条件下反应48h后,用HPLC对反应后各体系中的ST,RA,RD,RM进行定量分析,结果如图4和表5所示。在两个体系中,ST均完全转化为RA,而在三重启动子控制下的EUGT11参与的体系中,由于RA转化率提升,使得RD和RM产量均高于单重启动子控制下的EUGT11参与的的反应体系(图4)。相比单重启动子控制下的EUGT11参与的反应体系,三重启动子控制下的EUGT11使得反应结束时RD产量提升2.52倍,RM产量也随之提升2.35倍。
表5体外多酶级联反应体系产物浓度分析
注:EUGT11指SUS1:UGT76G1:EUGT11=1:2:3反应体系;EUGT11/3 copies of T7指SUS1:UGT76G1:EUGT11/3copies of T7=1:2:6.39反应体系;Control group表示空白体系,用宿主发酵得到的粗酶液代替各重组菌粗酶液。
上述实施例为本发明较佳的实施方式,但本发明的实施方式并不受上述实施例的限制,其他的任何未背离本发明的精神实质与原理下所作的改变、修饰、替代、组合、简化,均应为等效的置换方式,都包含在本发明的保护范围之内。
序列表
<110> 华南理工大学
<120> 一种一锅法高效合成莱鲍迪苷M的方法
<160> 20
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 458
<212> PRT
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<220>
<223> UGT76G1的氨基酸序列
<400> 1
Met Glu Asn Lys Thr Glu Thr Thr Val Arg Arg Arg Arg Arg Ile Ile
1 5 10 15
Leu Phe Pro Val Pro Phe Gln Gly His Ile Asn Pro Ile Leu Gln Leu
20 25 30
Ala Asn Val Leu Tyr Ser Lys Gly Phe Ser Ile Thr Ile Phe His Thr
35 40 45
Asn Phe Asn Lys Pro Lys Thr Ser Asn Tyr Pro His Phe Thr Phe Arg
50 55 60
Phe Ile Leu Asp Asn Asp Pro Gln Asp Glu Arg Ile Ser Asn Leu Pro
65 70 75 80
Thr His Gly Pro Leu Ala Gly Met Arg Ile Pro Ile Ile Asn Glu His
85 90 95
Gly Ala Asp Glu Leu Arg Arg Glu Leu Glu Leu Leu Met Leu Ala Ser
100 105 110
Glu Glu Asp Glu Glu Val Ser Cys Leu Ile Thr Asp Ala Leu Trp Tyr
115 120 125
Phe Ala Gln Ser Val Ala Asp Ser Leu Asn Leu Arg Arg Leu Val Leu
130 135 140
Met Thr Ser Ser Leu Phe Asn Phe His Ala His Val Ser Leu Pro Gln
145 150 155 160
Phe Asp Glu Leu Gly Tyr Leu Asp Pro Asp Asp Lys Thr Arg Leu Glu
165 170 175
Glu Gln Ala Ser Gly Phe Pro Met Leu Lys Val Lys Asp Ile Lys Ser
180 185 190
Ala Tyr Ser Asn Trp Gln Ile Leu Lys Glu Ile Leu Gly Lys Met Ile
195 200 205
Lys Gln Thr Lys Ala Ser Ser Gly Val Ile Trp Asn Ser Phe Lys Glu
210 215 220
Leu Glu Glu Ser Glu Leu Glu Thr Val Ile Arg Glu Ile Pro Ala Pro
225 230 235 240
Ser Phe Leu Ile Pro Leu Pro Lys His Leu Thr Ala Ser Ser Ser Ser
245 250 255
Leu Leu Asp His Asp Arg Thr Val Phe Gln Trp Leu Asp Gln Gln Pro
260 265 270
Pro Ser Ser Val Leu Tyr Val Ser Phe Gly Ser Thr Ser Glu Val Asp
275 280 285
Glu Lys Asp Phe Leu Glu Ile Ala Arg Gly Leu Val Asp Ser Lys Gln
290 295 300
Ser Phe Leu Trp Val Val Arg Pro Gly Phe Val Lys Gly Ser Thr Trp
305 310 315 320
Val Glu Pro Leu Pro Asp Gly Phe Leu Gly Glu Arg Gly Arg Ile Val
325 330 335
Lys Trp Val Pro Gln Gln Glu Val Leu Ala His Gly Ala Ile Gly Ala
340 345 350
Phe Trp Thr His Ser Gly Trp Asn Ser Thr Leu Glu Ser Val Cys Glu
355 360 365
Gly Val Pro Met Ile Phe Ser Asp Phe Gly Leu Asp Gln Pro Leu Asn
370 375 380
Ala Arg Tyr Met Ser Asp Val Leu Lys Val Gly Val Tyr Leu Glu Asn
385 390 395 400
Gly Trp Glu Arg Gly Glu Ile Ala Asn Ala Ile Arg Arg Val Met Val
405 410 415
Asp Glu Glu Gly Glu Tyr Ile Arg Gln Asn Ala Arg Val Leu Lys Gln
420 425 430
Lys Ala Asp Val Ser Leu Met Lys Gly Gly Ser Ser Tyr Glu Ser Leu
435 440 445
Glu Ser Leu Val Ser Tyr Ile Ser Ser Leu
450 455
<210> 2
<211> 1374
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<220>
<223> UGT76G1的核苷酸序列
<400> 2
atggagaata agacagaaac caccgttcgc cgccgccgcc gcatcatttt gttccccgtg 60
ccgttccaag gtcacatcaa ccctatcctc cagctcgcca atgtccttta cagcaagggc 120
ttctccatta ccatcttcca cacgaatttc aacaagccca agacgagcaa ctacccccat 180
ttcaccttcc gcttcatcct ggacaacgac ccccaggacg aacgcatctc caatctgcct 240
acccatggtc cacttgcagg aatgcggatt cctatcatca acgaacatgg cgcagacgag 300
ctgcgccgcg agttggaact cctcatgctg gcatctgaag aagacgagga agtcagctgt 360
ctgatcaccg acgcactttg gtacttcgcc caaagcgtgg ccgactccct taatctgcgt 420
cggctcgtcc tgatgaccag ctccctcttc aacttccatg cgcatgtcag cctgccacaa 480
ttcgacgagc tgggttacct ggaccccgac gacaagacgc gtctggagga acaagcatcg 540
ggattcccca tgctgaaggt caaggacatc aagtcggctt acagcaactg gcaaatcctg 600
aaggagatct tgggaaagat gatcaagcag acgaaggctt cttccggcgt tatctggaat 660
tccttcaagg aattggagga atccgagctt gaaaccgtta tccgcgaaat tccggcacca 720
tccttcttga tcccattgcc taagcacctc actgcctcct ctagctcctt gcttgaccat 780
gaccgtactg tcttccagtg gcttgaccaa cagccacctt cttccgttct gtacgtctcg 840
ttcggtagca cgtctgaagt cgacgagaag gacttcttgg agatcgcccg gggacttgtg 900
gacagcaagc aatccttcct gtgggtcgtt cgtcccggtt tcgtgaaggg atctacctgg 960
gtcgagcctt tgccggacgg tttcttgggc gagcgtggac gcattgtgaa gtgggtcccc 1020
caacaggagg tcttggcgca tggagcaatt ggcgcattct ggacccattc tggttggaat 1080
agcaccctgg aatctgtctg tgagggagtt cccatgatct tcagcgactt cggtctcgac 1140
caaccgctta atgcccgcta catgagcgac gtgctgaagg ttggagtgta cctcgaaaac 1200
ggttgggagc gcggagaaat cgccaatgca atccgccgtg ttatggtgga cgaggaagga 1260
gaatacatcc gccagaatgc tcgcgtcctt aagcagaagg ctgacgtctc gctcatgaag 1320
ggtggaagct cttacgagtc tttggagtct ctggtttctt acattagtag cctc 1374
<210> 3
<211> 462
<212> PRT
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<220>
<223> EUGT11的氨基酸序列
<400> 3
Met Asp Ser Gly Tyr Ser Ser Ser Tyr Ala Ala Ala Ala Gly Met His
1 5 10 15
Val Val Ile Cys Pro Trp Leu Ala Phe Gly His Leu Leu Pro Cys Leu
20 25 30
Asp Leu Ala Gln Arg Leu Ala Ser Arg Gly His Arg Val Ser Phe Val
35 40 45
Ser Thr Pro Arg Asn Ile Ser Arg Leu Pro Pro Val Arg Pro Ala Leu
50 55 60
Ala Pro Leu Val Ala Phe Val Ala Leu Pro Leu Pro Arg Val Glu Gly
65 70 75 80
Leu Pro Asp Gly Ala Glu Ser Thr Asn Asp Val Pro His Asp Arg Pro
85 90 95
Asp Met Val Glu Leu His Arg Arg Ala Phe Asp Gly Leu Ala Ala Pro
100 105 110
Phe Ser Glu Phe Leu Gly Thr Ala Cys Ala Asp Trp Val Ile Val Asp
115 120 125
Val Phe His His Trp Ala Ala Ala Ala Ala Leu Glu His Lys Val Pro
130 135 140
Cys Ala Met Met Leu Leu Gly Ser Ala His Met Ile Ala Ser Ile Ala
145 150 155 160
Asp Arg Arg Leu Glu Arg Ala Glu Thr Glu Ser Pro Ala Ala Ala Gly
165 170 175
Gln Gly Arg Pro Ala Ala Ala Pro Thr Phe Glu Val Ala Arg Met Lys
180 185 190
Leu Ile Arg Thr Lys Gly Ser Ser Gly Met Ser Leu Ala Glu Arg Phe
195 200 205
Ser Leu Thr Leu Ser Arg Ser Ser Leu Val Val Gly Arg Ser Cys Val
210 215 220
Glu Phe Glu Pro Glu Thr Val Pro Leu Leu Ser Thr Leu Arg Gly Lys
225 230 235 240
Pro Ile Thr Phe Leu Gly Leu Met Pro Pro Leu His Glu Gly Arg Arg
245 250 255
Glu Asp Gly Glu Asp Ala Thr Val Arg Trp Leu Asp Ala Gln Pro Ala
260 265 270
Lys Ser Val Val Tyr Val Ala Leu Gly Ser Glu Val Pro Leu Gly Val
275 280 285
Glu Lys Val His Glu Leu Ala Leu Gly Leu Glu Leu Ala Gly Thr Arg
290 295 300
Phe Leu Trp Ala Leu Arg Lys Pro Thr Gly Val Ser Asp Ala Asp Leu
305 310 315 320
Leu Pro Ala Gly Phe Glu Glu Arg Thr Arg Gly Arg Gly Val Val Ala
325 330 335
Thr Arg Trp Val Pro Gln Met Ser Ile Leu Ala His Ala Ala Val Gly
340 345 350
Ala Phe Leu Thr His Cys Gly Trp Asn Ser Thr Ile Glu Gly Leu Met
355 360 365
Phe Gly His Pro Leu Ile Met Leu Pro Ile Phe Gly Asp Gln Gly Pro
370 375 380
Asn Ala Arg Leu Ile Glu Ala Lys Asn Ala Gly Leu Gln Val Ala Arg
385 390 395 400
Asn Asp Gly Asp Gly Ser Phe Asp Arg Glu Gly Val Ala Ala Ala Ile
405 410 415
Arg Ala Val Ala Val Glu Glu Glu Ser Ser Lys Val Phe Gln Ala Lys
420 425 430
Ala Lys Lys Leu Gln Glu Ile Val Ala Asp Met Ala Cys His Glu Arg
435 440 445
Tyr Ile Asp Gly Phe Ile Gln Gln Leu Arg Ser Tyr Lys Asp
450 455 460
<210> 4
<211> 1386
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<220>
<223> EUGT11的核苷酸序列
<400> 4
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ccttggctcg ctttcggtca tctgctccct tgcctggatc tcgctcagcg tctggcttcc 120
cgtggtcacc gtgtgtcctt cgtcagcacc cctcgtaaca tcagccgtct ccctcctgtg 180
cgtcctgctc tggctcctct cgtggctttc gtcgctctgc ctctccctcg tgtcgagggt 240
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<210> 5
<211> 808
<212> PRT
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<220>
<223> SUS1的氨基酸序列
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Met Ala Asn Ala Glu Arg Met Ile Thr Arg Val His Ser Gln Arg Glu
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Arg Leu Asn Glu Thr Leu Val Ser Glu Arg Asn Glu Val Leu Ala Leu
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Leu Ser Arg Val Glu Ala Lys Gly Lys Gly Ile Leu Gln Gln Asn Gln
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Ile Ile Ala Glu Phe Glu Ala Leu Pro Glu Gln Thr Arg Lys Lys Leu
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Glu Gly Gly Pro Phe Phe Asp Leu Leu Lys Ser Thr Gln Glu Ala Ile
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Val Leu Pro Pro Trp Val Ala Leu Ala Val Arg Pro Arg Pro Gly Val
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Trp Glu Tyr Leu Arg Val Asn Leu His Ala Leu Val Val Glu Glu Leu
100 105 110
Gln Pro Ala Glu Phe Leu His Phe Lys Glu Glu Leu Val Asp Gly Val
115 120 125
Lys Asn Gly Asn Phe Thr Leu Glu Leu Asp Phe Glu Pro Phe Asn Ala
130 135 140
Ser Ile Pro Arg Pro Thr Leu His Lys Tyr Ile Gly Asn Gly Val Asp
145 150 155 160
Phe Leu Asn Arg His Leu Ser Ala Lys Leu Phe His Asp Lys Glu Ser
165 170 175
Leu Leu Pro Leu Leu Lys Phe Leu Arg Leu His Ser His Gln Gly Lys
180 185 190
Asn Leu Met Leu Ser Glu Lys Ile Gln Asn Leu Asn Thr Leu Gln His
195 200 205
Thr Leu Arg Lys Ala Glu Glu Tyr Leu Ala Glu Leu Lys Ser Glu Thr
210 215 220
Leu Tyr Glu Glu Phe Glu Ala Lys Phe Glu Glu Ile Gly Leu Glu Arg
225 230 235 240
Gly Trp Gly Asp Asn Ala Glu Arg Val Leu Asp Met Ile Arg Leu Leu
245 250 255
Leu Asp Leu Leu Glu Ala Pro Asp Pro Cys Thr Leu Glu Thr Phe Leu
260 265 270
Gly Arg Val Pro Met Val Phe Asn Val Val Ile Leu Ser Pro His Gly
275 280 285
Tyr Phe Ala Gln Asp Asn Val Leu Gly Tyr Pro Asp Thr Gly Gly Gln
290 295 300
Val Val Tyr Ile Leu Asp Gln Val Arg Ala Leu Glu Ile Glu Met Leu
305 310 315 320
Gln Arg Ile Lys Gln Gln Gly Leu Asn Ile Lys Pro Arg Ile Leu Ile
325 330 335
Leu Thr Arg Leu Leu Pro Asp Ala Val Gly Thr Thr Cys Gly Glu Arg
340 345 350
Leu Glu Arg Val Tyr Asp Ser Glu Tyr Cys Asp Ile Leu Arg Val Pro
355 360 365
Phe Arg Thr Glu Lys Gly Ile Val Arg Lys Trp Ile Ser Arg Phe Glu
370 375 380
Val Trp Pro Tyr Leu Glu Thr Tyr Thr Glu Asp Ala Ala Val Glu Leu
385 390 395 400
Ser Lys Glu Leu Asn Gly Lys Pro Asp Leu Ile Ile Gly Asn Tyr Ser
405 410 415
Asp Gly Asn Leu Val Ala Ser Leu Leu Ala His Lys Leu Gly Val Thr
420 425 430
Gln Cys Thr Ile Ala His Ala Leu Glu Lys Thr Lys Tyr Pro Asp Ser
435 440 445
Asp Ile Tyr Trp Lys Lys Leu Asp Asp Lys Tyr His Phe Ser Cys Gln
450 455 460
Phe Thr Ala Asp Ile Phe Ala Met Asn His Thr Asp Phe Ile Ile Thr
465 470 475 480
Ser Thr Phe Gln Glu Ile Ala Gly Ser Lys Glu Thr Val Gly Gln Tyr
485 490 495
Glu Ser His Thr Ala Phe Thr Leu Pro Gly Leu Tyr Arg Val Val His
500 505 510
Gly Ile Asp Val Phe Asp Pro Lys Phe Asn Ile Val Ser Pro Gly Ala
515 520 525
Asp Met Ser Ile Tyr Phe Pro Tyr Thr Glu Glu Lys Arg Arg Leu Thr
530 535 540
Lys Phe His Ser Glu Ile Glu Glu Leu Leu Tyr Ser Asp Val Glu Asn
545 550 555 560
Lys Glu His Leu Cys Val Leu Lys Asp Lys Lys Lys Pro Ile Leu Phe
565 570 575
Thr Met Ala Arg Leu Asp Arg Val Lys Asn Leu Ser Gly Leu Val Glu
580 585 590
Trp Tyr Gly Lys Asn Thr Arg Leu Arg Glu Leu Ala Asn Leu Val Val
595 600 605
Val Gly Gly Asp Arg Arg Lys Glu Ser Lys Asp Asn Glu Glu Lys Ala
610 615 620
Glu Met Lys Lys Met Tyr Asp Leu Ile Glu Glu Tyr Lys Leu Asn Gly
625 630 635 640
Gln Phe Arg Trp Ile Ser Ser Gln Met Asp Arg Val Arg Asn Gly Glu
645 650 655
Leu Tyr Arg Tyr Ile Cys Asp Thr Lys Gly Ala Phe Val Gln Pro Ala
660 665 670
Leu Tyr Glu Ala Phe Gly Leu Thr Val Val Glu Ala Met Thr Cys Gly
675 680 685
Leu Pro Thr Phe Ala Thr Cys Lys Gly Gly Pro Ala Glu Ile Ile Val
690 695 700
His Gly Lys Ser Gly Phe His Ile Asp Pro Tyr His Gly Asp Gln Ala
705 710 715 720
Ala Asp Thr Leu Ala Asp Phe Phe Thr Lys Cys Lys Glu Asp Pro Ser
725 730 735
His Trp Asp Glu Ile Ser Lys Gly Gly Leu Gln Arg Ile Glu Glu Lys
740 745 750
Tyr Thr Trp Gln Ile Tyr Ser Gln Arg Leu Leu Thr Leu Thr Gly Val
755 760 765
Tyr Gly Phe Trp Lys His Val Ser Asn Leu Asp Arg Leu Glu Ala Arg
770 775 780
Arg Tyr Leu Glu Met Phe Tyr Ala Leu Lys Tyr Arg Pro Leu Ala Gln
785 790 795 800
Ala Val Pro Leu Ala Gln Asp Asp
805
<210> 6
<211> 2424
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<220>
<223> SUS1的核苷酸序列
<400> 6
atggccaacg ctgagcgcat gatcacccgt gtccacagcc agcgcgagcg tctgaacgaa 60
accctcgtga gcgagcgtaa cgaagtcctg gccctgctct cccgggtgga agctaaaggc 120
aagggtatcc tccagcaaaa ccagatcatc gccgagttcg aagctctgcc cgaacaaacc 180
cgcaagaaac tcgagggcgg tcctttcttc gacctgctca aatccaccca ggaagccatc 240
gtcctgcctc cctgggtggc tctggctgtc aggcctaggc ctggcgtgtg ggagtacctg 300
cgcgtcaacc tccacgccct ggtcgtggag gaactccaac ccgctgaatt cctgcatttc 360
aaagaggaac tcgtggatgg cgtcaagaac ggtaacttca ccctcgagct ggacttcgaa 420
cctttcaacg ccagcatccc tcgtccgacc ctccacaaat acatcggcaa cggtgtggat 480
ttcctgaacc ggcacctcag cgctaaactg ttccatgaca aggagtccct gctccccctg 540
ctcaagttcc tccgtctgca cagccatcaa ggcaaaaacc tcatgctgtc cgaaaagatc 600
cagaacctca acaccctgca acataccctg cggaaagccg aggaatacct cgctgagctg 660
aagagcgaaa ccctctacga ggaattcgaa gccaagttcg aggaaatcgg cctggaacgc 720
ggctggggtg ataacgctga gcgcgtcctc gacatgatcc gtctgctcct ggatctcctg 780
gaagcccccg acccttgcac cctcgagacc ttcctgggtc gtgtgccgat ggtcttcaac 840
gtcgtgatcc tgagccccca cggctacttc gcccaggata acgtcctcgg ttaccccgac 900
accggcggtc aggtcgtgta catcctggat caagtgcgcg ctctcgagat cgaaatgctg 960
caacgtatca aacagcaagg cctcaacatc aagcctcgga tcctcatcct caccaggctc 1020
ctgcctgatg ctgtgggtac cacctgtggc gagaggctgg aacgcgtgta cgatagcgaa 1080
tactgtgaca tcctcagggt gcctttcagg accgagaaag gtatcgtccg taagtggatc 1140
agccggttcg aagtgtggcc ctacctggag acctacaccg aagacgccgc tgtcgagctc 1200
tccaaagaac tgaacggcaa gcctgatctc atcatcggca actacagcga cggtaacctg 1260
gtcgcctccc tcctggctca caaactcggt gtgacccagt gcaccatcgc ccatgctctg 1320
gagaaaacca agtacccgga cagcgatatc tactggaaga aactcgacga taagtaccac 1380
ttctcctgcc aattcaccgc cgatatcttc gctatgaacc ataccgactt catcatcacc 1440
agcaccttcc aggagatcgc cggctccaaa gaaaccgtgg gtcaatacga gtcccacacc 1500
gctttcaccc tgcctggtct gtacagggtg gtgcatggta tcgacgtgtt cgatcctaag 1560
ttcaacatcg tcagcccggg cgccgacatg tccatctact tcccctacac cgaggaaaaa 1620
cgccgtctga ccaagttcca cagcgaaatc gaggaactcc tgtactccga tgtggagaac 1680
aaagaacatc tctgcgtcct gaaggacaag aaaaagccca tcctgttcac catggctcgt 1740
ctcgatcggg tgaaaaacct cagcggcctg gtcgaatggt acggcaagaa caccaggctg 1800
agggagctgg ctaacctggt ggtggtcggc ggtgatcgtc gcaaagaatc caaggacaac 1860
gaggaaaaag ctgagatgaa aaagatgtac gacctgatcg aggaatacaa gctcaacggc 1920
cagttccgct ggatcagctc ccaaatggat cgcgtccgta acggcgagct gtaccgttac 1980
atctgcgaca ccaagggtgc cttcgtgcag cctgccctgt acgaagcttt cggcctcacc 2040
gtggtcgagg ctatgacctg cggtctcccc accttcgcca cctgcaaagg cggtcctgct 2100
gaaatcatcg tccacggcaa gagcggtttc cacatcgatc cttaccatgg tgaccaggct 2160
gctgataccc tggctgactt cttcaccaaa tgcaaggaag atccgagcca ttgggacgag 2220
atctccaaag gcggtctgca acggatcgag gaaaagtaca cctggcagat ctacagccaa 2280
cgcctcctga ccctcaccgg cgtgtacggt ttctggaaac acgtctccaa cctggaccgg 2340
ctcgaagccc gtcggtacct ggagatgttc tatgctctca agtataggcc tctggctcag 2400
gctgtccctc tcgcccaaga cgat 2424
<210> 7
<211> 46
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<220>
<223> UGT76G1-F
<400> 7
tttaagaagg agatatacat atggagaata agacagaaac caccgt 46
<210> 8
<211> 46
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<220>
<223> UGT76G1-R
<400> 8
gctttgttag cagccggatc tcagaggcta ctaatgtaag aaacca 46
<210> 9
<211> 40
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<220>
<223> EUGT11-F
<400> 9
tttaagaagg agatatacat atggactccg gttacagctc 40
<210> 10
<211> 44
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<220>
<223> EUGT11-R
<400> 10
gctttgttag cagccggatc tcagtctttg tagctccgca gttg 44
<210> 11
<211> 40
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<220>
<223> SUS1-F
<400> 11
tttaagaagg agatatacat atggactccg gttacagctc 40
<210> 12
<211> 43
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<220>
<223> SUS1-R
<400> 12
gctttgttag cagccggatc tcaatcgtct tgggcgagag gga 43
<210> 13
<211> 47
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<220>
<223> F
<400> 13
tgtgagcgga taacaattcc ataattttgt ttaactttaa gaaggag 47
<210> 14
<211> 40
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<220>
<223> R
<400> 14
agtgagtcgt attaatttcg ttcggcgtgg gtatggtggc 40
<210> 15
<211> 62
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<220>
<223> 2 copies of T7-F
<400> 15
taatacgact cactataggt aatacgactc actatagggg aattgtgagc ggataacaat 60
tc 62
<210> 16
<211> 63
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<220>
<223> 2 copies of T7-R
<400> 16
cctatagtga gtcgtattac ctatagtgag tcgtattacc tatagtgagt cgtattaatt 60
tcg 63
<210> 17
<211> 81
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<220>
<223> 3 copies of T7-F
<400> 17
taatacgact cactataggt aatacgactc actataggta atacgactca ctatagggga 60
attgtgagcg gataacaatt c 81
<210> 18
<211> 82
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<220>
<223> 3copies of T7-R
<400> 18
cctatagtga gtcgtattac ctatagtgag tcgtattacc tatagtgagt cgtattacct 60
atagtgagtc gtattaattt cg 82
<210> 19
<211> 100
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<220>
<223> 4 copies of T7-F
<400> 19
taatacgact cactataggt aatacgactc actataggta atacgactca ctataggtaa 60
tacgactcac tataggggaa ttgtgagcgg ataacaattc 100
<210> 20
<211> 101
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<220>
<223> 4 copies of T7-R
<400> 20
cctatagtga gtcgtattac ctatagtgag tcgtattacc tatagtgagt cgtattacct 60
atagtgagtc gtattaccta tagtgagtcg tattaatttc g 101
Claims (10)
1.一种高效表达EUGT11的重组菌,其特征在于:所述重组菌以pET-22b(+)质粒为出发载体,以大肠杆菌作为宿主菌,在多重启动子操控下高效表达EUGT11;
EUGT11的氨基酸序列如SEQ ID NO:3所示。
2.根据权利要求1所述的重组菌,其特征在于:所述的多重启动子为至少三重启动子;所述的启动子为T7启动子。
3.根据权利要求2所述的重组菌,其特征在于:
所述的多重启动子为三重启动子或四重启动子;
EUGT11基因的核苷酸序列如SEQ ID NO:4所示;
所述的大肠杆菌为E.coli Rosetta(DE3)。
4.一种一锅法高效合成莱鲍迪苷M的方法,其特征在于:包括如下步骤:
分别构建异源表达的UGT76G1,SUS1的重组菌,以及构建权利要求1~3任一项所述高效表达EUGT11的重组菌,分别经诱导发酵产酶后以细胞粗酶液进行催化反应,利用蔗糖、ST和UDP,将SUS1介导的UDP-UDPG循环反应与三步糖基转移反应偶联形成级联反应,将三个单级联反应串联,在体外形成通路,建立一锅法多酶级联反应体系,催化ST高效合成莱鲍迪苷M;
UGT76G1的氨基酸序列如SEQ ID NO:1所示;
SUS1的氨基酸序列如SEQ ID NO:5所示。
5.根据权利要求4所述的方法,其特征在于:
UGT76G1基因的核苷酸序列如SEQ ID NO:2所示;
SUS1基因的核苷酸序列如SEQ ID NO:6所示。
6.根据权利要求4或5所述的方法,其特征在于:
一锅法多酶级联反应体系中蛋白质量比例为SUS1:UGT76G1:多重启动子操控下表达的EUGT11=1:(2~4):(12.3~36.9);进一步为1:(2~4):(24.6~36.9);更进一步为1:4:36.9;
一锅法多酶级联反应体系中SUS1的酶活力用量为50mU/mL,换算成蛋白质量用量为0.8mg/mL。
7.根据权利要求4或5所述的方法,其特征在于:
一锅法多酶级联反应体系中酶活力比例为SUS1:UGT76G1:EUGT11/3copies of T7=1:(1~2):(2.13~6.39);进一步为1:(1~2):(4.26~6.39);更进一步为1:2:6.39;EUGT11/3copies of T7表示三重启动子操控下表达的EUGT11;
一锅法多酶级联反应体系中SUS1的酶活力用量为50mU/mL。
8.根据权利要求4或5所述的方法,其特征在于:
一锅法多酶级联反应体系中酶活力比例为SUS1:UGT76G1:EUGT11/4copies of T7=1:(1~2):(1.81~5.43);进一步为1:(1~2):(3.62~5.43);更进一步为1:2:5.43;EUGT11/4copies of T7表示四重启动子操控下表达的EUGT11;
一锅法多酶级联反应体系中SUS1的酶活力用量为50mU/mL。
9.根据权利要求4或5所述的方法,其特征在于:
所述的一锅法多酶级联反应体系中,蔗糖的起始反应浓度为100~700mM;ST的起始反应浓度为1~10mM;UDP的起始反应浓度为2~20mM;
所述的催化反应的条件为35~40℃,180~220r/min催化反应24~48h。
10.根据权利要求4或5所述的方法,其特征在于:
诱导发酵中诱导剂为IPTG,IPTG在发酵体系中的浓度为0.5~1mM;
所述的细胞粗酶液为发酵得到的菌体经超声破碎所获得的含酶的粗酶液;
所述的一锅法多酶级联反应体系为:蔗糖和UDP经SUS1催化生成UDPG;UDPG和ST经UGT76G1催化生成RA;UDPG和RA经EUGT11催化生成RD;UDPG和RD经UGT76G1催化生成莱鲍迪苷M。
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PB01 | Publication | ||
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GR01 | Patent grant | ||
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