CN111996282B - 一种鉴定大豆抗大豆花叶病毒sc3株系的ssr标记ch0211及其检测方法和应用 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种鉴定大豆对大豆花叶病毒(Soybean Mosaic Virus,SMV)流行株系SC3抗性鉴定的SSR标记CH0211及其检测方法和应用,通过利用新开发的与抗大豆花叶病毒SC3株系基因紧密连锁的SSR标记CH0211对大豆品种进行抗病性选择,以期获得抗SMV SC3株系的大豆新种质。本发明避免了大豆常规抗花叶病毒育种的周期长、工作量大、选择效率低、抗病表型选择易受环境影响等缺点,可大幅提高抗病育种选择效率,为对基因型的直接选择提供了可能,将极大地推动大豆抗病育种进程。
Description
技术领域
本发明属于生物检测领域,具体涉及一种鉴定大豆抗大豆花叶病毒流行株系SC3品种的SSR标记CH0211及其检测方法和应用。
背景技术
大豆花叶病毒(Soybean Mosaic Virus,SMV)病是大豆生产中最常见、危害最为严重的病毒害之一,严重危害大豆的产量与品质(图2)。传统抗SMV育种需要人工接种鉴定每个后代家系的抗病性,耗时费力、且易受到环境(尤其是温度)等条件的限制,从而影响抗性材料表型的选择。随着现代分子生物学的发展,现代生物技术的进步为作物育种提供了强有力的帮助,分子标记辅助选择育种(Molecular Marker-Assisted Selection,MAS)作为其中一项重要技术,它与传统抗SMV育种相比,MAS技术可对抗病基因直接选择,能够更加高效、精准地选择抗SMV个体,大幅提高育种效率。
微卫星序列(Simple Sequence Repeat,SSR)标记具有重复性好,多态性高,共显性等优点,广泛分布在大豆基因组中。目前SSR标记已被广泛运用于MAS中,利用与抗病相关的SSR标记检测种质抗SMV的准确率较高,且快速、简便,可直接用于大豆抗SMV育种。
国内目前已经筛选了一些与抗SMV相关的分子标记,一些专家也利用这些标记进行抗SMV的辅助筛选,但筛选的标记选择与表型选择符合率不高,且所用材料样本偏小。滕卫丽等利用与SMV1抗性相关的SSR标记Satt114、Satt362、HSP176、Satt510、Satt334、Sct033和与SMV3抗性相关的SSR标记Satt114、Satt362,分别对70份大豆种质资源接种东北株系(SMV1和SMV3)进行抗性鉴定,验证结果表明SSR标记鉴定准确率分别为70.7%和75.6%。韩英鹏等利用SSR标记Satt114对146个F2:5重组自交家系进行接种N1株系后的抗性鉴定,得出分子辅助选择的符合率为87.5%。李文福等用6个与大豆花叶病毒抗性相关的SSR标记Sat_229、Sat_317、Satt335、Satt160、Satt516和Sat_309对186份种质资源接种SMV1株系后进行检测,6个标记中Sat_317、Satt335、Satt516对抗病资源筛选的准确率70%以上。栾晓燕等利用分离群体分组分析法(Bulked Segregant Analysis,BSA)建立的F2群体DNA抗感池中鉴定出与抗性表型紧密相关的SSR标记Satt296,该标记位于D1b连锁群,推测该标记有望用于大豆抗SMV3株系的分子标记辅助选择。
发明内容
本发明目的在于提供一种鉴定大豆抗大豆花叶病毒流行株系SC3的SSR标记CH0211及其检测方法和应用,通过利用新开发的与Rsc3紧密连锁的SSR标记CH0211的专用引物对大豆抗大豆花叶病毒SC3株系进行早期子代选择鉴定,大大减少了抗病育种工作量以及育种周期,因此能够快速、精准、高效地筛选出抗SMV SC3的大豆育种材料。
本发明技术方案如下:
本发明的第一个目的是提供一种鉴定大豆抗大豆花叶病毒SC3株系的SSR标记CH0211,所述SSR标记引物序列如下:
上游引物:5’-CAGGTCGATAAGTCTATGT-3’(SEQ ID NO.1);
下游引物:5’-ATATGAACTCGGTCTGTTG-3’(SEQ ID NO.2)。
本发明还提供了一种鉴定大豆抗大豆花叶病毒SC3株系的SSR标记CH0211的引物,所述SSR标记引物序列如下:
上游引物:5’-CAGGTCGATAAGTCTATGT-3’(SEQ ID NO.1);
下游引物:5’-ATATGAACTCGGTCTGTTG-3’(SEQ ID NO.2)
本发明的第二个目的是提供一种利用前述SSR标记CH0211鉴定大豆抗大豆花叶病毒SC3株系的检测方法,所述检测方法包括以下步骤:
S1:提取待鉴定大豆的基因组DNA,以待鉴定大豆的基因组DNA为模板,用SEQ IDNO.1、SEQ ID NO.2所示的SSR标记引物进行PCR扩增;
S2:在步骤S1所得扩增产物加入溴酚蓝染色,用8%浓度的聚丙烯酰胺凝胶进行分离,银染后进行带型分析。
进一步的,S1所述PCR扩增的PCR扩增体系为10μL,包括2×Taq Plus MasterMix5μL,所述上游引物0.5μL,所述下游引物0.5μL,终浓度<0.1μg/10μL的模板DNA 1μL,ddH2O 3μL。
进一步的,S1所述PCR扩增的PCR反应条件为94℃预变性2min;94℃变性20S,50℃退火20S,72℃延伸20S,运行32个循环,然后72℃终延伸2min后于4℃保存。
进一步的,S2所述8%浓度的聚丙烯酰胺凝胶分离条件为:电压200V,电流150A条件下于5×TBE缓冲液中电泳分离45min。
进一步的,S2所述带型分析为:如扩增产物目的条带大小为123bp,则待鉴定大豆为抗大豆花叶病毒SC3株系品种。即所述引物扩增的与抗大豆花叶病毒SC3株系连锁的SSR标记CH0211特征条带为123bp。
本发明的第三个目的是提供前述的SSR标记CH0211,或前述的SEQ ID NO.1、SEQID NO.2所示的SSR标记引物,或前述的检测方法在筛选抗大豆花叶病毒SC3株系的大豆种质中的应用。
进一步的,所述应用包括以下步骤:
S1:提取待鉴定大豆的基因组DNA,以待鉴定大豆的基因组DNA为模板,用SEQ IDNO.1、SEQ ID NO.2所示的SSR标记引物进行PCR扩增;
S2:在步骤S1所得扩增产物加入溴酚蓝染色,用8%浓度的聚丙烯酰胺凝胶在电压200V,电流150A的条件下于5×TBE缓冲液中电泳分离45min,银染后进行带型分析。
进一步的,S1所述PCR扩增的PCR扩增体系为10μL,包括2×Taq Plus MasterMix5μL,所述上游引物0.5μL,所述下游引物0.5μL,终浓度<0.1μg/10μL的模板DNA 1μL,ddH2O 3μL。
进一步的,S1所述PCR扩增的PCR反应条件为94℃预变性2min;94℃变性20S,50℃退火20S,72℃延伸20S,运行32个循环,然后72℃终延伸2min后于4℃保存。
进一步的,S2所述带型分析为:如扩增产物目的条带大小为123bp,则待鉴定大豆为高抗大豆花叶病毒SC3株系品种。即所述引物扩增的与抗大豆花叶病毒SC3株系连锁的SSR标记CH0211特征条带为123bp。
本发明具有以下有益效果:
应用本发明提供的SSR标记CH0211及检测方法用来检测大豆抗大豆花叶病毒SC3株系,抗病选择符合率为80.56%,感病选择符合率为77.78%,准确率较高,能够高效、快速、精准地用于分子标记辅助选择,节省了大量人工接种鉴定的人力、物力、财力及时间成本。本发明经济效益高,对大豆品系抗大豆花叶病毒SC3株系的抗病选育效率有极大提升。
附图说明
图1为本发明实施例中含有SSR标记CH0211的聚丙烯酰胺凝胶电泳图。
图中有Marker带型和288个品种带型。
图2为不同抗性品种接种SC3表型图。
图2A为抗病品种,图2B为感病品种。
具体实施方式
为了更加清楚明白地介绍本发明的目的和优点,以下结合实例来对本发明进行详细说明。此处所描述的具体实施例仅用于解释本发明,并不用于限定本发明。
本发明所使用的实验方法如无特殊说明,均为常规方法;所使用的材料、试剂,如无特殊说明,均可通过商业途径从生物试剂公司买到。
实施例1
实验材料为:
在南京农业大学国家大豆改良中心保存的2018年国内主要育种单位新育成的品种288份。
所用SSR标记CH0211引物序列为:
上游引物:5’-CAGGTCGATAAGTCTATGT-3’(SEQ ID NO.1);
下游引物:5’-ATATGAACTCGGTCTGTTG-3’(SEQ ID NO.2)。
上述标记的引物用于检测大豆品种对大豆花叶病毒SC3株系的抗性。
S1、在南京农业大学国家大豆改良中心保存的2018年国内主要育种单位新育成的品种288份中(表1),按照植物基因组DNA提取试剂盒(康为,CW0531M)操作指南提取基因组DNA,利用所述SSR标记CH0211进行PCR扩增,PCR扩增体系为10μL,包括2×Taq PlusMasterMix5μL,所述上游引物0.5μL,所述下游引物0.5μL,终浓度<0.1μg/10μL的模板DNA1μL,ddH2O3μL;PCR反应条件为94℃预变性2min;94℃变性20S,50℃退火20S,72℃延伸20S,运行32个循环,然后72℃终延伸2min后于4℃保存。其中,扩增产物中含有一个123bp~150bp之间的DNA片段,具有123bp片段的品种为候选具有抗大豆花叶病毒SC3株系的待检大豆品种。
S2、在步骤S1所得扩增产物加入0.5μL溴酚蓝染色,用8%浓度的聚丙烯酰胺凝胶在电压200V,电流150A的条件下于5×TBE缓冲液中电泳分离45min,银染后进行带型检测分析,目的条带大小为123bp为1型,是抗大豆花叶病毒SC3株系品种所具带型,其余带型为2型,为感病品种所具带型;288份大豆品种抗性结果检验采用酶联免疫吸附法(ELISA)与肉眼表型判断相结合,结果如表1所示。
表1 288份大豆品种接种SC3后的抗性、OD值以及标记带型
R:抗病;S:感病;1:抗病带型;2:感病带型;血清检测阳性对照OD值:1.9148;血清检测阴性对照OD值:0.0921。R:Resistant;S:Susceptible;1:Resistant allele;2:Susceptible allele;OD value of ELISA positive control:1.9148;OD value ofELISA negative control:0.0921.
结合带型与抗性结果,带型为1且抗性鉴定为抗病则判定为标记符合抗病性;带型为2且抗性鉴定为感病则判定为标记符合感病性。本发明随机检测的288份品种抗病符合率为80.56%,感病符合率为77.78%(表2)。分子标记选择符合率计算方法如下:
表2标记CH0211对大豆品系抗SC3选择的符合率
R:抗病;S:感病;1:抗病带型;2:感病带型;R1:抗病且带型为1;S2:感病且带型为2。
R:Resistant S:Susceptible 1:Resistant allele;2:Susceptible allele R1:Resistant&Resistant allele S2:Susceptible&Susceptible allele.
以上所述尽是本发明的优选实施方式,应当指出,对于本技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明原理的前提下,还可以做出若干改进和润饰,这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。
序列表
<110> 南京农业大学
<120> 一种鉴定大豆抗大豆花叶病毒SC3株系的SSR标记CH0211及其检测方法和应用
<160> 2
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 19
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 1
caggtcgata agtctatgt 19
<210> 2
<211> 19
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 2
atatgaactc ggtctgttg 19
Claims (6)
1.鉴定大豆抗大豆花叶病毒SC3株系的SSR标记CH0211,其特征在于,所述SSR标记的引物序列如下:
上游引物SEQ ID NO.1:5’-CAGGTCGATAAGTCTATGT-3’;
下游引物SEQ ID NO.2:5’-ATATGAACTCGGTCTGTTG-3’。
2.一种利用权利要求1所述SSR标记CH0211的引物鉴定大豆抗大豆花叶病毒SC3株系的检测方法,其特征在于,包括以下步骤:
S1:提取待鉴定大豆的基因组DNA,以待鉴定大豆的基因组DNA为模板,用SEQ ID NO.1和SEQ ID NO.2所示的SSR标记引物进行PCR扩增;
S2:在步骤S1所得扩增产物加入溴酚蓝染色,用8%浓度的聚丙烯酰胺凝胶进行分离,银染后进行带型分析,所述带型分析为:如扩增产物包含大小为123bp的目的条带,则待鉴定大豆为抗大豆花叶病毒SC3株系品种。
3.根据权利要求2所述的检测方法,其特征在于,S1所述PCR扩增的PCR扩增体系为10μL,包括2×Taq Plus MasterMix5μL,所述上游引物0.5μL,所述下游引物0.5μL,终浓度<0.1μg/10μL的模板DNA 1μL,ddH2O 3μL。
4.根据权利要求2所述的检测方法,其特征在于,S1所述PCR扩增的PCR反应条件为94℃预变性2min;94℃变性20s ,50℃退火20s ,72℃延伸20s ,运行32个循环,然后72℃终延伸2min后于4℃保存。
5.根据权利要求2所述的检测方法,其特征在于,S2所述8%浓度的聚丙烯酰胺凝胶分离条件为:电压200V,电流150A条件下于5×TBE缓冲液中电泳分离45min。
6.权利要求1中所述的SSR标记的引物,或权利要求2所述的检测方法在筛选抗大豆花叶病毒SC3株系的大豆种质中的应用,其特征在于,扩增产物包含大小为123bp的目的条带,则待鉴定大豆为抗大豆花叶病毒SC3株系品种。
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GR01 | Patent grant | ||
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