CN111979178B - 一种动物肺芽类器官培养基及培养方法 - Google Patents

一种动物肺芽类器官培养基及培养方法 Download PDF

Info

Publication number
CN111979178B
CN111979178B CN202010843695.5A CN202010843695A CN111979178B CN 111979178 B CN111979178 B CN 111979178B CN 202010843695 A CN202010843695 A CN 202010843695A CN 111979178 B CN111979178 B CN 111979178B
Authority
CN
China
Prior art keywords
culture medium
culture
lung
organoid
medium
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
CN202010843695.5A
Other languages
English (en)
Other versions
CN111979178A (zh
Inventor
李刚
陈泽新
于言
王哲君
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Accurate International Biotechnology Guangzhou Co ltd
Original Assignee
Accurate International Biotechnology Guangzhou Co ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Accurate International Biotechnology Guangzhou Co ltd filed Critical Accurate International Biotechnology Guangzhou Co ltd
Priority to CN202010843695.5A priority Critical patent/CN111979178B/zh
Publication of CN111979178A publication Critical patent/CN111979178A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN111979178B publication Critical patent/CN111979178B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602—Vertebrate cells
    • C12N5/0688—Cells from the lungs or the respiratory tract
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00—Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/05—Inorganic components
    • C12N2500/10—Metals; Metal chelators
    • C12N2500/20—Transition metals
    • C12N2500/24—Iron; Fe chelators; Transferrin
    • C12N2500/25—Insulin-transferrin; Insulin-transferrin-selenium
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00—Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/30—Organic components
    • C12N2500/38—Vitamins
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00—Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/60—Buffer, e.g. pH regulation, osmotic pressure
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/10—Growth factors
    • C12N2501/11—Epidermal growth factor [EGF]
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/10—Growth factors
    • C12N2501/117—Keratinocyte growth factors (KGF-1, i.e. FGF-7; KGF-2, i.e. FGF-12)
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/10—Growth factors
    • C12N2501/119—Other fibroblast growth factors, e.g. FGF-4, FGF-8, FGF-10
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/10—Growth factors
    • C12N2501/12—Hepatocyte growth factor [HGF]
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/10—Growth factors
    • C12N2501/155—Bone morphogenic proteins [BMP]; Osteogenins; Osteogenic factor; Bone inducing factor
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/30—Hormones
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/40—Regulators of development
    • C12N2501/415—Wnt; Frizzeled
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/70—Enzymes
    • C12N2501/72—Transferases (EC 2.)
    • C12N2501/727—Kinases (EC 2.7.)

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Pulmonology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

本发明提供一种动物肺芽类器官培养基及培养方法，该培养基包括基础培养基SAGM、无菌水和功能组分，所述功能组分在该类器官培养基中的终浓度组成包括：B27，0.5‑2X；HGF，10‑50ng/ml；BMP7，2‑20ng/ml；EGF，20‑200ng/ml；KGF，2‑20ng/ml；FGF4，100‑400ng/ml；SB216763，1‑20μM；tretinoin，10‑100nM；Wnt‑3A，20‑200ng/ml；Prostaglandin E2，0.1‑1μM；Insulin‑Transferrin‑Se，0.5‑2X；HEPES，5‑20mM；青霉素，100U/ml；链霉素，0.1mg/ml。本发明的培养基有利于肺芽类器官生长与功能的维持，能够培养包括来源于小鼠、大鼠的肺组织。

Description

一种动物肺芽类器官培养基及培养方法
技术领域
本发明属于生物医药技术领域，具体涉及培养基及其应用，更具体涉及一种动物肺芽类器官培养基及培养方法。
背景技术
肺是生物体的呼吸器官，实现机体与外界环境之间的气体交换，以维持生命体的生命活动。肺芽是胚胎期肺的原始结构。在胚胎期喉气管憩室末端膨大发育为左右肺的萌芽组织。肺芽在胚胎发育时期由原肠发育形成，初期是索条状组织，在多种因子多个通路调控下，早期肺芽逐渐演变成管状，不断分支，形成肺支气管树和肺泡。
肺芽类器官具有正在发育的气道支气管和肺泡的细胞类型和分支结构，具有体外多谱系分化潜能，能够在体外重现动物体肺功能。研究肺芽类器官的结构与功能有助于我们了解呼吸道病毒感染的发病机制，从而为疾病的预防、控制和诊疗奠定坚实的基础。肺组织因为其特殊的结构，在以往经典的体外培养模型中培养成功率低，原有结构、功能破坏或者丧失。
类器官(Organoids)是衍生于干细胞或前体细胞的器官特异性细胞集合。体外培养的类器官在细胞成分和组织架构上与对应器官高度相似，并具备相应的功能学特征。与常规细胞培养在二维环境中培养单一细胞类群不同，类器官培养是在三维环境中培养出特定组织器官包含的多种细胞类群，其培养体系与体内微环境更为相似，具有在体外培养环境下构建人体器官疾病模型的潜力，目前已被公认为生物研究的重要工具，并在各种器官生理病理的基础研究、精准医疗、药物筛选和开发、再生医学等方面，显示出巨大的应用前景。
现有技术中对于肺组织细胞的培养主要是单层细胞二维(2D)环境下的培养，在二维培养过程中肺组织细胞难以或不能充分的模拟体内肺组织的立体环境及多种类型细胞间的相互作用，使得培养的肺组织细胞和活体的肺组织细胞有所差异，不利于研究的进行。而在3D培养中，缺少必要的适宜的培养基的情况下，肺组织细胞的培养分化同样不利，难以充分模拟出体内的肺组织结构的生理特性。虽然多种不同的培养条件可在体外培养多能干细胞或胚胎干细胞来源的肺芽类器官，但目前暂无关于来源于成体干细胞的肺芽类器官培养方法的研究及报道，尤其是具体的试验流程、操作步骤、培养条件及培养基配方尚无太多报道。因此，有必要开发一种动物肺芽类器官通用的培养基，既能满足二维环境下的培养，又能满足三维环境下的培养。
发明内容
有鉴于此，有必要针对现有技术存在的问题，提供一种动物肺芽类器官培养基及培养方法，该培养基适用于小鼠、大鼠肺组织类器官的二维或三维培养。在肺芽类器官培养过程，采用不同培养条件人为分化诱导，能够模拟体内肺部发育的部分过程，最终形成由Ⅰ型肺泡细胞和Ⅱ型肺泡细胞共同组成的囊泡状结构。是发育生物学和呼吸系统疾病研究的理想模型。
本发明的技术方案为：
第一个方面，本发明提供一种动物肺芽类器官培养基，包括基础培养基SAGM、无菌水和功能组分，所述功能组分在该类器官培养基中的终浓度组成包括：B27，0.5-2X；HGF，10-50ng/ml；BMP7，2-20ng/ml；EGF，20-200ng/ml；KGF，2-20ng/ml；FGF4，100-400ng/ml；SB216763，1-20μM；tretinoin，10-100nM；Wnt-3A，20-200ng/ml；Prostaglandin E2，0.1-1μM；Insulin-Transferrin-Se，0.5-2X；HEPES，5-20mM；青霉素，100U/ml；链霉素，0.1mg/ml。
优选的，所述功能组分在该类器官培养基中的终浓度组成包括：B27，0.8-1.2X；HGF，30-50ng/ml；BMP7，2-10ng/ml；EGF，100-200ng/ml；KGF，2-10ng/ml；FGF4，200-400ng/ml；SB216763，10-20μM；tretinoin，10-50nM；Wnt-3A，100-200ng/ml；Prostaglandin E2，0.1-0.5μM；Insulin-Transferrin-Se，0.8-1.2X；HEPES，5-10mM；青霉素，100U/ml；链霉素，0.1mg/ml。
进一步的，所述培养基的制备方法为：将各组分先用无菌水配制成混合母液，然后加入SAGM培养液。
第二个方面，本发明提供一种动物肺芽类器官的培养方法，包括以下步骤：
1)将清洗后的肺组织于低温下剪碎；
2)加入胶原酶重悬剪碎的肺组织进行消化，之后离心去除上清；
3)用HBSS重悬沉淀，40μm细胞筛网过滤消化后的组织悬液，离心；
4)用SAGM培养液重悬细胞沉淀，并用等体积的matrigel胶混合，接种，于37℃、5％CO2条件下放置30～50min，待胶凝固后，加入上述培养基，培养7～14天，得到肺芽类器官。
本发明的有益效果是：
①本发明的培养基含有肺芽类器官培养所需的最少组分，适用范围广，能够培养包括来源于小鼠、大鼠的肺组织。
②只需一套培养基即可培养出分支气道和肺泡结构的肺芽类器官，模拟肺发育的不同阶段，并可部分重现人体肺功能。
③本发明选用的SAGM培养基特别适合肺组织上皮细胞的生长，且不需要添加细胞培养中最常见的组分牛血清白蛋白(FBS)，使得组织细胞的生长、培养效果、肺泡组织的分化与细胞纤毛的生长速度显著提高。
④本发明的培养基成分适宜，添加的细胞因子有利于肺芽类器官生长与功能的维持。同时可采用本发明的培养基完成肺芽类器官的传代培养，达到大规模复制培养的需求，控制培养得到的类器官具有高度的一致性。
附图说明
图1为本发明实施例3培养14天得到的单个小鼠肺芽类器官光学显微图，其中，
图1-1和图1-2分别代表2种不同形态的小鼠肺芽类器官的光学显微图。
图2为本发明实施例3的小鼠肺芽类器官14天的生长直径变化曲线图。
图3为本发明实施例4培养7天得到的大鼠肺芽类器官光学显微图。
图4为本发明实施例3中小鼠肺芽类器官的组织形态结构图，其中，图4-2为图4-1中a处放大图，图4-4为图4-3中b处放大图。
图5为采用实施例3的培养方法和采用对比例1的培养基及培养方法培养12天获得的小鼠肺芽类器官光学显微对比图，其中，图5-1为采用实施例3的培养方法，图5-2为采用对比例1的培养基及培养方法。
图6为采用实施例3的培养方法和采用对比例2的培养基及培养方法培养7天获得的小鼠肺芽类器官光学显微对比图，其中，图6-1为采用实施例3的培养方法，图6-2为采用对比例2的培养基及培养方法。
图7为采用实施例3的培养方法和采用对比例3的培养基及培养方法培养7天获得的小鼠肺芽类器官光学显微对比图，其中，图7-1为采用实施例3的培养方法，图7-2为采用对比例3的培养基及培养方法。
图8为采用实施例3的培养方法和采用对比例4的培养基及培养方法培养15天获得的小鼠肺芽类器官光学显微对比图，其中，图8-1为采用实施例3的培养方法，图8-2为采用对比例4的培养基及培养方法。
具体实施方式
本发明实施例采用的B27购自GIBCO公司，即B27补充剂，可维持原代大鼠、小鼠和人PSC来源及胚胎来源的神经元，使人PSC来源和胚胎来源的神经干细胞(NSC)分化成神经元。
本发明实施例采用的BMP7购自R&D公司。
本发明实施例采用的EGF购自R&D公司，表皮生长因子。
本发明实施例采用的KGF购自R&D公司。
本发明实施例采用的SB216763购自Selleckchem公司。
本发明实施例采用的tretinoin购自R&D公司。
本发明实施例采用的Wnt-3A购自PeproTech公司。
本发明实施例采用的Prostaglandin E2购自Sigma公司，前列腺素E2。。
本发明实施例采用的Insulin-Transferrin-Se购自Gibco。
本发明实施例采用的HEPES购自Sigma。
本发明实施例采用的青霉素购自生工生物工程(上海)股份有限公司。
本发明实施例采用的链霉素购自生工生物工程(上海)股份有限公司。
在本发明的描述中，需要说明的是，实施例中未注明具体条件者，按照常规条件或制造商建议的条件进行。所用试剂或仪器未注明生产厂商者，均为可以通过市售购买获得的常规产品。
下面结合附图和具体的实施例对本发明做进一步详细说明，所述是对本发明的解释而不是限定。
实施例1
本实施例提供一种动物肺芽类器官的培养基，包括基础培养基SAGM、无菌水和功能组分，其中，无菌水适量，用于溶解功能组分，所述功能组分在该类器官培养基中的终浓度组成包括：B27，1.0X；HGF，40ng/ml；BMP7，6ng/ml；EGF，150ng/ml；KGF，6ng/ml；FGF4，300ng/ml；SB216763，15μM；tretinoin，30nM；Wnt-3A，150ng/ml；Prostaglandin E2，0.3μM；Insulin-Transferrin-Se，1.0X；HEPES，7mM；青霉素，100U/ml；链霉素，0.1mg/ml。
实施例2
本实施例提供一种动物肺芽类器官的培养基，包括基础培养基SAGM、无菌水和功能组分，其中，无菌水适量，用于溶解功能组分，所述功能组分在该类器官培养基中的终浓度组成包括：B27，0.8X；HGF，50ng/ml；BMP7，2ng/ml；EGF，100ng/ml；KGF，10ng/ml；FGF4，400ng/ml；SB216763，10μM；tretinoin，10nM；Wnt-3A，200ng/ml；Prostaglandin E2，0.1μM；Insulin-Transferrin-Se，1.2X；HEPES，5mM；青霉素，100U/ml；链霉素，0.1mg/ml。
实施例3
本实施例提供一种小鼠肺芽类器官的培养方法，包括：
1)取小鼠肺组织清洗后，置于冰上用眼科剪刀剪碎。
2)加入5ml胶原酶重悬组织，转移至37℃，220rpm摇床中消化20min，离心，去除上清。
3)用HBSS重悬沉淀，40μm细胞筛网过滤消化后的组织悬液，1200rpm，离心5min。
4)用SAGM培养液重悬细胞沉淀，并用等体积的matrigel胶混合，配制(5-8)×104cell/每30μl的细胞浓度，30μl每滴接种在培养皿中。置于37℃，5％CO2培养箱中，待胶凝固后，加入4ml实施例1配制的培养基培养14天，14天内类器官的生长直径变化曲线如图2所示，在接种后的5天内，活性良好的肺干细胞首先变为囊状的圆球体，腔体逐渐增大，且腔体壁逐渐增厚；随着培养时间的延长，腔体壁逐渐变薄；培养至14天时，如图1所示，肺泡类器官可呈现两种形态，一种是大而圆的腔体；一种是形成密集且有多个芽状突起结构；直径可从30μm生长至400μm左右。
实施例4
本实施例提供一种大鼠肺芽类器官的培养方法，包括：
1)取大鼠肺组织清洗后，置于冰上用眼科剪刀剪碎。
2)加入5ml胶原酶重悬组织，转移至37℃，220rpm摇床中消化20min，离心，去除上清。
3)用HBSS重悬沉淀，40μm细胞筛网过滤消化后的组织悬液，1200rpm，离心5min。
4)用SAGM培养液重悬细胞沉淀，并用等体积的matrigel胶混合，配制(5-8)×104cell/每30μl的细胞浓度，30μl每滴接种在培养皿中。置于37℃，5％CO2培养箱中，待胶凝固后，加入4ml实施例1配制的培养基培养7天。
实施例5
小鼠肺芽类器官形态鉴定
将实施例3获得的小鼠肺芽类器官进行石蜡包埋制备切片。将包埋好的类器官进行切片，然后进行HE染色观察，具体过程如下：
1)类器官收集与固定：投入预先配好的固定液中(4％的甲醛固定)固定2小时。完成固定后1200rpm离心5分钟，弃去福尔马林固定液。
2)梯度脱水：将固定后的类器官依次浸入85％酒精、95％酒精和100％酒精各30分钟。
3)透明浸蜡：加入二甲苯没过类器官处理20分钟，重复两次；然后加入石蜡，在60℃浸蜡1.5小时。
4)包埋切片：用包埋模具包类器官，然后切片机切成4-6μm的切片贴于防脱载玻片。
5)烤片：将载玻片放置在玻片架上，放入烘箱中，65℃，30min，将载玻片上的水分烤干、石蜡烤融即可。
6)脱蜡：使用二甲苯脱蜡三次，每次10分钟；然后用100％酒精浸洗三次，每次1分钟；最后用流水浸洗1分钟。
7)H&E染色：先用苏木素染色8min，然后水洗1min，接着用1％盐酸酒精分化1-2秒钟，然后再用流水冲洗30min，再接着用1％伊红浸染1-2min，最后用流水冲洗1min。
8)染色后固定：依次浸入95％酒精和100％酒精，每种试剂各两次，每次2分钟。
9)透明及封固：使用二甲苯透明2min，取出晾干后用中性树胶封固。
10)在普通光学显微镜下观察组织形态结构，如图4所示，表明所获得的类器官具有良好的组织形态。
实施例6
大鼠肺芽类器官形态鉴定
将实施例4获得的大鼠肺芽类器官进行石蜡包埋制备切片。将包埋好的类器官进行切片，然后进行HE染色观察，具体过程如下：
1)类器官收集与固定：投入预先配好的固定液中(4％的甲醛固定)固定2小时。完成固定后1200rpm离心5分钟，弃去福尔马林固定液。
2)梯度脱水：将固定后的类器官依次浸入85％酒精、95％酒精和100％酒精各30分钟。
3)透明浸蜡：加入二甲苯没过类器官处理20分钟，重复两次；然后加入石蜡，在60℃浸蜡1.5小时。
4)包埋切片：用包埋模具包类器官，然后切片机切成4-6μm的切片贴于防脱载玻片。
5)烤片：将载玻片放置在玻片架上，放入烘箱中，65℃，30min，将载玻片上的水分烤干、石蜡烤融即可。
6)脱蜡：使用二甲苯脱蜡三次，每次10分钟；然后用100％酒精浸洗三次，每次1分钟；最后用流水浸洗1分钟。
7)H&E染色：先用苏木素染色8min，然后水洗1min，接着用1％盐酸酒精分化1-2秒钟，然后再用流水冲洗30min，再接着用1％伊红浸染1-2min，最后用流水冲洗1min。
8)染色后固定：依次浸入95％酒精和100％酒精，每种试剂各两次，每次2分钟。
9)透明及封固：使用二甲苯透明2min，取出晾干后用中性树胶封固。
10)在普通光学显微镜下观察组织形态结构，如图3所示，表明所获得的类器官具有良好的组织形态。
对比例1
本对比例提供的培养基中基础培养基SAGM培养基替换成DMEM培养基，其他同实施例1。
使用上述培养基按照实施例3方法进行小鼠肺芽类器官培养，培养时间为12天，并且和采用实施例3的方法培养12天获得的类器官进行比较，如图5所示，结果为：本发明培养基下小鼠肺泡类器官生长状况良好且活细胞比例高，说明SAGM培养基更适合肺芽类器官的生长；替换成DMEM培养基，类器官生长速度缓慢，且存活时间有所缩短，易贴壁。
对比例2
本对比例提供的培养基中减去KGF，其他同实施例1。
使用上述培养基按照实施例3方法进行小鼠肺芽类器官培养，培养时间为7天，并且和采用实施例3的方法培养7天获得的类器官进行比较，如图6所示，结果为：本发明培养基下小鼠肺泡类器官生长状况良好，减去KGF因子后，形成类器官数量较少。
对比例3
本对比例提供的培养基中减去tretinoin，其他同实施例1。
使用上述培养基按照实施例3方法进行小鼠肺芽类器官培养，培养时间为7天，并且和采用实施例3的方法培养7天获得的类器官进行比较，如图7所示，结果为：本发明培养基下小鼠肺泡类器官生长状况良好，腔体较大且数量较多，减去tretinoin因子后，其尺寸显著减少。
对比例4
本对比例提供的培养基中减去Prostaglandin E2，其他同实施例1。
使用上述培养基按照实施例3方法进行小鼠肺芽类器官培养，培养时间为15天，并且和采用实施例3的方法培养15天获得的类器官进行比较，如图8所示，结果为：本发明培养基下小鼠肺泡类器官生长状况良好，腔体数量较多，减去Prostaglandin E2因子后，类器官活性较差，腔体内部脱落坏死细胞增多。
综上，本发明的培养基使用范围广，能够培养来源于小鼠和大鼠的肺组织；且组分中不需要添加细胞培养中最常见的组分牛血清白蛋白(FBS)，在一定程度上节约了成本。此外，本发明建立的小鼠肺泡类器官原代培养及长期扩增体系简单、可靠和经济：在接种后的5天内，活性良好的肺干细胞首先变为囊状的圆球体，腔体逐渐增大，且腔体壁逐渐增厚；随着培养时间的延长，腔体壁逐渐变薄；培养至14天时，肺泡类器官可呈现两种形态，一种是大而圆的腔体；一种是形成密集且有多个芽状突起结构；直径可从30μm生长至400μm左右。光镜下腔体顶端可观察到微绒毛结构，管腔区排列不规则，由鳞状上皮细胞和立方细胞两种上皮细胞组成，同时最大程度的保留了器官上皮含有的多种细胞种类。可模拟肺发育过程，体内稳定，肺再生与疾病的各个方面，为相关功能学的研究提供便利平台。
以上所述实施例仅表达了本发明的几种实施方式，其描述较为具体和详细，但并不能因此而理解为对本发明专利范围的限制。应当指出的是，对于本领域的普通技术人员来说，在不脱离本发明构思的前提下，还可以做出若干变形和改进，这些都属于本发明的保护范围。因此，本发明专利的保护范围应以所附权利要求为准。

Claims (4)

1.一种动物肺芽类器官培养基，其特征在于：由基础培养基SAGM、无菌水和功能组分组成，所述功能组分在该类器官培养基中的终浓度组成为：B27，0.5-2×；HGF，10-50ng/ml；BMP7，2-20ng/ml；EGF，20-200ng/ml；KGF，2-20ng/ml；FGF4，100-400ng/ml；SB216763，1-20μM；tretinoin，10-100nM；Wnt-3A，20-200ng/ml；Prostaglandin E2，0.1-1μM；Insulin-Transferrin-Se，0.5-2×；HEPES，5-20mM；青霉素，100U/ml；链霉素，0.1mg/ml。
2.根据权利要求1所述的一种通用型肺芽类器官培养基，其特征在于：所述功能组分在该类器官培养基中的终浓度组成为：B27，0.8-1.2×；HGF，30-50ng/ml； BMP7，2-10ng/ml；EGF，100-200ng/ml；KGF，2-10ng/ml；FGF4，200-400ng/ml；SB216763，10-20μM；tretinoin，10-50nM；Wnt-3A，100-200ng/ml；Prostaglandin E2，0.1-0.5μM；Insulin-Transferrin-Se，0.8-1.2×；HEPES，5-10mM；青霉素，100U/ml；链霉素，0.1mg/ml。
3.根据权利要求1所述的一种通用型肺芽类器官培养基，其特征在于：所述培养基的制备方法为：将各组分先用无菌水配制成混合母液，然后加入SAGM培养液。
4.一种动物肺芽类器官的培养方法，其特征在于：包括以下步骤：
1）将清洗后的肺组织于低温下剪碎；
2）加入胶原酶重悬剪碎的肺组织进行消化，之后离心去除上清；
3）用HBSS重悬沉淀，40μm细胞筛网过滤消化后的组织悬液，离心；
4）用SAGM培养液重悬细胞沉淀，并用等体积的matrigel胶混合，接种，于37°C、5%CO2条件下放置30~50min，待胶凝固后，加入权利要求1~3任意一项所述的培养基，培养7~14天，得到肺芽类器官。
CN202010843695.5A 2020-08-20 2020-08-20 一种动物肺芽类器官培养基及培养方法 Active CN111979178B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202010843695.5A CN111979178B (zh) 2020-08-20 2020-08-20 一种动物肺芽类器官培养基及培养方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202010843695.5A CN111979178B (zh) 2020-08-20 2020-08-20 一种动物肺芽类器官培养基及培养方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN111979178A CN111979178A (zh) 2020-11-24
CN111979178B true CN111979178B (zh) 2021-04-02

Family

ID=73444176

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN202010843695.5A Active CN111979178B (zh) 2020-08-20 2020-08-20 一种动物肺芽类器官培养基及培养方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN111979178B (zh)

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN112410282B (zh) * 2020-11-26 2023-03-24 安徽大学 一种体外高效诱导高级分支状肺类器官的方法及实验模型和化合物组合
CN112852709B (zh) * 2021-01-25 2023-01-03 南京医科大学 小鼠肺类器官培养方法

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP1362095A2 (en) * 2001-02-14 2003-11-19 Anthrogenesis Corporation Post-partum mammalian placenta, its use and placental stem cells therefrom
CN102660494A (zh) * 2012-04-17 2012-09-12 安徽农业大学 山羊乳腺上皮细胞的建系方法
CN103789267A (zh) * 2014-02-21 2014-05-14 刘洛贤 一种改进的海马神经元原代培养方法
CN107475179A (zh) * 2016-06-07 2017-12-15 江苏齐氏生物科技有限公司 一种小鼠滑膜细胞的分离及培养方法
CN107574151A (zh) * 2017-11-01 2018-01-12 冯世庆 海马神经干细胞、神经元分离培养方法

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP1362095A2 (en) * 2001-02-14 2003-11-19 Anthrogenesis Corporation Post-partum mammalian placenta, its use and placental stem cells therefrom
CN102660494A (zh) * 2012-04-17 2012-09-12 安徽农业大学 山羊乳腺上皮细胞的建系方法
CN103789267A (zh) * 2014-02-21 2014-05-14 刘洛贤 一种改进的海马神经元原代培养方法
CN107475179A (zh) * 2016-06-07 2017-12-15 江苏齐氏生物科技有限公司 一种小鼠滑膜细胞的分离及培养方法
CN107574151A (zh) * 2017-11-01 2018-01-12 冯世庆 海马神经干细胞、神经元分离培养方法

Also Published As

Publication number Publication date
CN111979178A (zh) 2020-11-24

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN106421916B (zh) 组织工程皮肤及其制备方法
CN111979178B (zh) 一种动物肺芽类器官培养基及培养方法
CN101302486B (zh) 木醋杆菌及用其制备纳米纤维素皮肤组织修复材料的方法
CN111471643B (zh) 一种通用型上呼吸道粘膜类器官的培养基及培养方法
CN111961642B (zh) 一种小鼠肝脏类器官模型及其建立方法和应用
CN102311942A (zh) 一种维生素c诱导的间充质干细胞膜片及其制备方法
CN101775366A (zh) 一种含毛囊组织工程皮肤的制备方法
CN113151149B (zh) 一种诱导肺类器官的方法及实验模型的建立
WO2007037486A1 (ja) 毛包真皮毛根鞘細胞の培養法
CN114854677B (zh) 一种用于细胞培养肉生产的微流控仿生纤维及其制备方法和应用
CN113846050A (zh) 一种组织类器官的制备方法
CN104818251A (zh) 成年大鼠海马神经元体外分离培养方法
CN114917412A (zh) 一种光敏性水凝胶材料在制备促进皮肤伤口愈合和/或毛囊再生产品中的应用及产品
CN101259292A (zh) 一种组织工程血管的构建方法
Ingavle et al. Mimicking megakaryopoiesis in vitro using biomaterials: Recent advances and future opportunities
CN112852709B (zh) 小鼠肺类器官培养方法
CN108324993B (zh) 一种诱导毛发再生的干细胞复合体、其制备方法及应用
Asakawa et al. Functional hair follicle regeneration by the rearrangement of stem cells
JP4324988B2 (ja) 発毛誘導剤および発毛方法
Preminger et al. Utilization of the chick chorioallantoic membrane for in vitro growth of the embryonic murine kidney
CN112592883B (zh) 一种小鼠胰腺类器官培养基及其应用
CN112430568B (zh) 一种脐带间充质干细胞饲养上皮来源类器官的方法
CN108084466A (zh) 一种基于蛋清和甲基丙烯酸衍生化聚合物的复合膜及其在培养干细胞方面的应用
CN107988147B (zh) 基于器官芯片与诱导多能干细胞的定向分化用于3d拟表皮构建的方法
CN105087482A (zh) 一种细胞培养基质及其应用与使用方法

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant
CB03 Change of inventor or designer information
CB03 Change of inventor or designer information

Inventor after: Chen Zexin

Inventor after: Yu Yan

Inventor after: Wang Zhejun

Inventor before: Li Gang

Inventor before: Chen Zexin

Inventor before: Yu Yan

Inventor before: Wang Zhejun