CN111748646B - 一种软枣猕猴桃苗木品种鉴定的方法 - Google Patents

一种软枣猕猴桃苗木品种鉴定的方法 Download PDF

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Abstract

本方法提供了一种软枣猕猴桃苗木品种鉴定的方法,涉及品种鉴定技术领域。本发明采用SSR标记结合毛细管电泳技术,建立了基于2对SSR引物标记的软枣猕猴桃品种鉴定方法。本发明所述方法利用已有品种的扩增数据,与未知品种进行数据比对,从而为未知品种的早期品种鉴定提供了一种重复性好、位点特异性强、扩增条带数字化,并且通用、便捷、有效的方法。

Description

一种软枣猕猴桃苗木品种鉴定的方法
技术领域
本发明属于品种鉴定技术领域,具体涉及一种软枣猕猴桃苗木品种鉴定的方法。
背景技术
软枣猕猴桃(Actinida arguta)为猕猴桃科(Actinidaceae)猕猴桃属(Actinida)多年生木质藤本植物,在东北地区属于具有地方特色的林下资源,目前以其独特的风味和丰富的营养深受消费者喜爱,发展前景广阔。随着国内外引种工作的开展,栽培品种区域化格局逐渐形成,苗木市场逐渐变大,但由于目前品种繁多,存在“同名异物”、“同物异名”现象。传统品种划分主要依据其形态学特征、生物学特征和经济性状为主要依据,这种品种鉴定方法难以在早期准确地鉴定品种,生产上因伪劣品种或品种混杂造成损失的现象时有发生。因此在苗期准确鉴别品种显得较为重要和迫切,同时对新品种的审定、注册、保护和管理,建立快速、准确、可靠的品种特异性检测方法,具有较高的实践价值。
发明内容
有鉴于此,本发明的目的在于提供一种软枣猕猴桃苗木品种鉴定的方法,可数字化表征不同品种性状,从而快速鉴定软枣猕猴桃苗木品种,具有通用、便捷和有效的特点。
为了实现上述发明目的,本发明提供以下技术方案:
本发明提供了一种软枣猕猴桃苗木品种鉴定的方法,包括以下步骤:以软枣猕猴桃苗木基因组DNA为模板,利用引物对UDK-104和/或UDK-099进行扩增,将扩增产物进行毛细管电泳,依据电泳结果,判断软枣猕猴桃苗木品种;
所述引物对UDK-104包括UDK-104-F和UDK-104-R,所述UDK104-F的核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示;所述UDK-104-R的核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示;
所述引物对UDK-099包括UDK-099-F和UDK-099-R,所述UDK-099-F的核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示;所述UDK-099-R的核苷酸序列如SEQ ID NO.4所示。
优选的,所述软枣猕猴桃苗木基因组DNA提取自落叶期的软枣猕猴桃芽。
优选的,所述引物对UDK-104的扩增片段内TG重复单元数为9,CA或TG重复单元数为13,TC或AC重复单元数为11;所述引物对UDK-099的扩增片段内TG重复单元数为19。
优选的,所述扩增的PCR体系以10μL计,包括:ddH2O 3.0μL,2×Taq master mix 5μL,20ng模板DNA1.0μL,20μM正向引物和20μM反向引物各0.5μL。
优选的,所述扩增的PCR程序包括:94℃预变性5min;94℃变性30s,52℃退火30s,72℃延伸30s,共35个循环;72℃延伸10min。
本方法提供了一种软枣猕猴桃苗木品种鉴定的方法,采用SSR标记结合毛细管电泳技术,建立了基于2对SSR标记的软枣猕猴桃品种鉴定方法。本发明实施例首次建立了目前国内外的15个软枣猕猴桃品种的SSR扩增数据,为未知品种的鉴定提供了可比对的数据结果,为软枣猕猴桃的早期品种鉴定提供了一种重复性好、位点特异性强、扩增条带数字化,并且通用、便捷、有效的方法。
附图说明
图1为UDK-099在‘龙成2号’上的扩增结果;
图2为UDK-104在‘龙成2号’上的扩增结果图。
具体实施方式
本发明提供了一种软枣猕猴桃苗木品种鉴定的方法,包括以下步骤:以软枣猕猴桃苗木基因组DNA为模板,利用引物对UDK-104和/或UDK-099进行扩增,将扩增产物进行毛细管电泳,依据电泳结果,判断软枣猕猴桃苗木品种;
所述引物对UDK-104包括UDK-104-F和UDK-104-R,所述UDK-104-F的核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示;所述UDK-104-R的核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示;
所述引物对UDK-099包括UDK-099-F和UDK-099-R,所述UDK-099-F的核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示;所述UDK-099-R的核苷酸序列如SEQ ID NO.4所示。
本发明对所述基因组DNA的来源并没有特殊限定,所述软枣猕猴桃苗木基因组DNA优选提取自落叶期的软枣猕猴桃芽。本发明对所述提取的方法并没有特殊限定,优选CTAB法进行DNA提取,更优选的参照刘振盼等方法提取(刘振盼等.一种用于软枣猕猴桃ISSR分析的芽DNA提取方法.辽宁林业科技.2019年第6期)。本发明优选将提取得到的DNA利用TE进行稀释,稀释至10ng/μL,以进行后续的扩增。
本发明所述引物对UDK-104的扩增片段内TG重复单元数为9,CA或TG重复单元数为13,TC或AC重复单元数为11;所述引物对UDK-099的扩增片段内TG重复单元数为19。
本发明所述扩增的PCR体系以10μL计,优选包括:ddH2O 3.0μL,2×Taq mastermix 5μL,20ng模板DNA1.0μL,20μM正向引物和20μM反向引物各0.5μL。所述扩增的PCR程序优选包括:94℃预变性5min;94℃变性30s,52℃退火30s,72℃延伸30s,共35个循环;72℃延伸10min。
本发明优选取PCR产物0.3μL、分子量内标0.5μL和去离子甲酰胺9.5μL混合加入PCR板,95℃变性5min,4℃冷却后离心,1×Buffer缓冲液上机进行所述毛细管电泳,而后再利用分析软件Genemarker2.2.0对得到的原始数据进行分析,得到扩增片段大小按位点导出峰图、EXCEL位点信息表。本发明通过上述操作将基于SSR标记扩增出来的片段进行数字化展示,尤其是在不同的等位基因上扩增出不同长度的片段,从而作为以后对软枣猕猴桃品种鉴定的依据。
本发明以15个软枣猕猴桃品种为例进行说明,最终UDK104的特异性最高,它可将所有品种区分开;UDK-099除2号(‘龙成2号’)和10号(‘赤焰’)两个品种无法区分外,其余品种均可区分,所以在应用时,可以UDK-104为主,以UDK-099为辅,作为补充。
下面结合实施例对本发明提供的软枣猕猴桃苗木品种鉴定的方法进行详细的说明,但是不能把它们理解为对本发明保护范围的限定。
实施例1
1、实验材料
试验样品于2019年3月采自辽宁省大连市金普新区亮子屯,辽宁省经济林研究所软枣猕猴桃种质资源圃。采集的带有隐形芽的小段1年生枝条,带回实验室,-20℃保存备用。每个品种5次重复。样品的序号、名称、产地见表1。
表1国内外主要软枣猕猴桃栽培品种
序号 名称 产地 序号 名称 产地
1 桓优1号 中国 9 红哈迪 美国
2 龙成二号 中国 10 赤焰 新西兰
3 魁绿 中国 11 紫色萨瓦多 乌克兰
4 亚当 波兰 12 红色九月 波兰
5 韦迪 波兰 13 库库瓦 日本
6 伊赛 日本 14 日内瓦 美国
7 巨人 意大利 15 安娜 俄罗斯
8 罗高 波兰
2、基因组DNA提取与定量
参照改良CTAB法进行提取(刘振盼等.一种用于软枣猕猴桃ISSR分析的芽DNA提取方法.辽宁林业科技.2019年第6期)。取1个隐形芽,在有液氮的研钵快速研磨1次,加入1mL1.5%CTAB提取液(100mmol·L-1Tris-HCl,20mmol·L-1EDTA,1.4mol·L-1NaCl,2.5%CTAB,2%PVP),65℃水浴60min,取上清600μL,加600μL氯仿∶异戊醇(24∶1)混匀。10000r·min-1离心5min。取上清300μL,加入600μL无水乙醇,倒掉上清,70%乙醇洗3次,自然风干。用50μLTE溶解,置于4℃备用。用琼脂糖凝胶电泳法检测DNA提取质量,用紫外分光光度计测定纯度和浓度。用TE将其最终质量浓度调至10ng·μL-1
3、PCR扩增
PCR反应体系(10.0μL):ddH2O 3.0μL,2×Taq master mix 5μL,DNA 1.0μL,F-primer 0.5μL(20μM),R-primer 0.5μL(20μM)。在正向引物上进行荧光标记;PCR反应程序:94℃5min,94℃30s,52℃30s,72℃30s,共35个循环,最后72℃10min。扩增完成后置于4℃冰箱保存备用。试验所用引物信息如表2。
表2 SSR引物信息
Figure BDA0002641904970000051
Figure BDA0002641904970000061
4、毛细管电泳上机检测
取PCR产物0.3μL、分子量内标0.5μL和去离子甲酰胺9.5μL混合加入PCR板,95℃变性5min,4℃冷却后离心,1×Buffer缓冲液上机检测。
利用分析软件Genemarker2.2.0对得到的原始数据进行分析,得到扩增片段大小按位点导出峰图、EXCEL位点信息表。
5、以芽为试材基因组DNA扩增效果评价
20对初筛引物中除A033外,共19对引物在全部或部分样品中有扩增结果,其中9对引物在全部15个样品中均有扩增结果,另外10对引物有在部分品种有扩增结果。图1和图2分别显示UDK-099、UDK-104在2号样品(‘龙成2号’)的扩增结果。这说明以1a生苗木枝条的落叶期采集的芽为试材,可以用于后续的SSR的品种鉴别研究。
6、软枣猕猴桃品种的分子鉴定
在20对引物中UDK-104特性最高,它可将所有品种区分开;UDK-099次之,除2号(‘龙成2号’)和10号(‘赤焰’)样品不能区分外,其他品种均可区分,可以作为UDK-104的补充。表3列出了15个软枣猕猴桃品种利用UDK-104和UDK-099扩增时的筛选的重复性好的具体扩增片段大小,目标品种的鉴定可根据扩增片段的大小进行比对,该研究结果为软枣猕猴桃的品种鉴定提供了便捷、有效的方法。结果见表3和表4。
表3引物UDK-104对15个软枣猕猴桃品种的鉴定
Figure BDA0002641904970000071
Figure BDA0002641904970000081
注:表格中*表示无其他特征片段。
表4引物UDK-099对15个软枣猕猴桃品种的鉴定
Figure BDA0002641904970000082
实施例2
1、实验材料
试验样品于2020年3月采自辽宁省大连市金普新区亮子屯,辽宁省经济林研究所软枣猕猴桃种质资源繁殖圃,以‘龙成2号’次年生扦插苗和组培苗为测试样品各100株,共200株,用于验证UDK-104和UDK-099的准确性。每株采集1个芽放入1.5mL离心管内,带回实验室,-20℃保存备用。
2、基因组DNA提取与定量
采用改良CTAB法进行提取。将测试芽在有液氮的研钵快速研磨1次,加入1mL1.5%CTAB提取液(100mmol·L-1Tris-HCl,20mmol·L-1EDTA,1.4mol·L-1NaCl,2.5%CTAB,2%PVP),65℃水浴60min,取上清600μL,加600μL氯仿∶异戊醇(24∶1)混匀。10000r·min-1离心5min。取上清300μL,加入600μL无水乙醇,倒掉上清,70%乙醇洗3次,自然风干。用50μLTE溶解,置于4℃备用。用琼脂糖凝胶电泳法检测DNA提取质量,用紫外分光光度计测定纯度和浓度。用TE将其最终质量浓度调至10ng·μL-1
3、PCR扩增
PCR反应体系1(10.0μL):ddH2O 3.0μL,2×Taq master mix 5μL,DNA 1.0μL,F-primer 0.5μL(UDK-104-F,20μM),R-primer 0.5μL(UDK-104-R,20μM)。在正向引物上进行荧光标记;PCR反应程序:94℃5min,94℃30s,52℃30s,72℃30s,共35个循环,最后72℃10min。扩增完成后置于4℃冰箱保存备用。
PCR反应体系2(10.0μL):ddH2O 3.0μL,2×Taq master mix 5μL,DNA 1.0μL,F-primer 0.5μL(UDK-099-F,20μM),R-primer 0.5μL(UDK-099-R,20μM)。在正向引物上进行荧光标记;PCR反应程序:94℃5min,94℃30s,52℃30s,72℃30s,共35个循环,最后72℃10min。扩增完成后置于4℃冰箱保存备用。
4、毛细管电泳上机检测
分别取UDK-104和UDK-099两对引物的PCR产物0.3μL、分子量内标0.5μL和去离子甲酰胺9.5μL混合加入PCR板,95℃变性5min,4℃冷却后离心,1×Buffer缓冲液上机检测。利用分析软件Genemarker2.2.0对得到的原始数据进行分析,得到扩增片段大小按位点导出峰图、EXCEL位点信息表。根据测试结果与标准品种进行特征片段比对,统计目标品种符合率。目标品种符合率=目标品种数/检测数×100%。
5、‘龙成2号’SSR鉴定的准确性
利用引物UDK-104和UDK-099的扩增结果200株‘龙成2号’进行品种鉴定,结果见表5。从表5可知,将UDK-104和UDK-099用于品种的鉴定,测试样品中有3个样品无扩增结果,结果显示扦插苗和组培苗的品种符合率达到98.5%。
表5‘龙成2号’SSR品种鉴定结果
Figure BDA0002641904970000101
以上所述仅是本发明的优选实施方式,应当指出,对于本技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明原理的前提下,还可以做出若干改进和润饰,这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。
序列表
<110> 辽宁省经济林研究所
<120> 一种软枣猕猴桃苗木品种鉴定的方法
<160> 40
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 1
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<210> 32
<211> 18
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 32
acagaggctt ggtggttg 18
<210> 33
<211> 18
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 33
tcttcgttgc ctgacatt 18
<210> 34
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 34
gtccgttctc gtcaatagtt 20
<210> 35
<211> 18
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 35
aactggacgg tcacgatt 18
<210> 36
<211> 18
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 36
tcctcaacca ctggctct 18
<210> 37
<211> 18
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 37
aagtggttcc gctctggt 18
<210> 38
<211> 18
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 38
atggtcacat cgtcgtca 18
<210> 39
<211> 18
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 39
gagcatacag agggaaga 18
<210> 40
<211> 18
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 40
actggagtga aggagggt 18

Claims (5)

1.一种软枣猕猴桃苗木品种鉴定的方法,其特征在于,包括以下步骤:以软枣猕猴桃苗木基因组DNA为模板,利用引物对UDK-104和UDK-099进行扩增,将扩增产物进行毛细管电泳,依据电泳结果,判断桓优1号、龙成2号、魁绿、亚当、韦迪、伊赛、巨人、罗高、红哈迪、赤焰、紫色萨瓦多、红色九月、库库瓦、日内瓦和安娜15种软枣猕猴桃苗木品种;
所述引物对UDK-104包括UDK-104-F和UDK-104-R,所述UDK-104-F的核苷酸序列如SEQID NO.1所示;所述UDK104-R的核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示;
所述引物对UDK-099包括UDK-099-F和UDK-099-R,所述UDK-099-F的核苷酸序列如SEQID NO.3所示;所述UDK099-R的核苷酸序列如SEQ ID NO.4所示。
2.根据权利要求1所述方法,其特征在于,所述软枣猕猴桃苗木基因组DNA提取自落叶期的软枣猕猴桃芽。
3.根据权利要求2所述方法,其特征在于,所述引物对UDK-104的扩增片段内TG重复单元数为9,CA或TG重复单元数为13,TC或AC重复单元数为11;所述引物对UDK-099的扩增片段内TG重复单元数为19。
4.根据权利要求3所述方法,其特征在于,所述扩增的PCR体系以10μL计,包括:ddH2O3.0μL,2×Taqmastermix 5μL,20ng模板DNA1.0μL,20μM正向引物和20μM反向引物各0.5μL。
5.根据权利要求4所述方法,其特征在于,所述扩增的PCR程序包括:94℃预变性5min;94℃变性30s,52℃退火30s,72℃延伸30s,共35个循环;72℃延伸10min。
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CN106367496A (zh) * 2016-08-30 2017-02-01 中国科学院华南植物园 一套猕猴桃物种关联特异单核苷酸分子标记及其检测引物组和应用
CN109554503A (zh) * 2019-01-31 2019-04-02 中国农业科学院郑州果树研究所 一种软枣猕猴桃幼苗性别早期鉴定分子标记及其应用

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基于SSR 分子标记及田间农艺性状的软枣猕猴桃资源鉴别;石广丽等;《分子植物育种》;20181231;第16卷(第23期);摘要、1结果与分析、3 材料与方法、表4 *
适用于野生软枣猕猴桃遗传多样性分析的SSR 引物筛选;覃瑞等;《中南民族大学学报( 自然科学版)》;20131231;第32卷(第4期);摘要、材料与方法、表1 *

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