CN111733147A - 一种t7核酸内切酶i的制备方法 - Google Patents

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李华平
张金阔
钱柳青
范名俊
朱苗苗
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本发明涉及一种核酸内切酶的制备方法。本发明所述的一种T7核酸内切酶的制备方法,包括以下步骤:(a)T7核酸内切酶的表达载体的构建;(b)将不含有终止密码子的编码序列插入到步骤a所获得的蛋白表达载体中;以及(c)采用与标签相适应的纯化方法,获得目标蛋白质即T7核酸内切酶。本发明所述方法获得的T7核酸内切酶I的切割效率与商品化的T7核酸内切酶I相当,活性良好。本发明所述方法操作更为简便、易于规模化生产,并能有效节约成本。

Description

一种T7核酸内切酶I的制备方法
本申请是中国国家申请号201410141111.4,发明名称为“一种T7核酸内切酶I的制备方法”的分案申请。
技术领域
本发明属于生物技术领域,具体涉及一种核酸内切酶的制备方法。
背景技术
T7核酸内切酶I是一种多功能核酸酶,可特异识别并拆分重组中间体(HolidayJunction,HJ)交叉结构,随机切刻双链DNA,特异识别并切割双链DNA中的切刻和单碱基错配位点。
该酶蛋白是T7噬菌体基因3编码产物,由包含149个氨基酸残基的多肽链构成,两条肽链通过结构域交换形成同源二聚体,其催化中心由来自两个亚基的氨基酸侧链共同组成,两个催化结构域可以独立作为DNA切刻酶;通过结构域之间的协同作用,表现出结构特异性催化。作为一种已知的噬菌体类解离酶,该酶可以剪切分叉DNA,随机切刻线性DNA,识别并切刻nicked-DNA位点,识别单碱基错配位点,T7核酸内切酶I对HJ的结合具有高度特异性,其结合HJ的能力是结合线性双链DNA的1000倍左右,还具备随机在双链DNA中引入切刻位点的活性,专一性识别切刻位点并在另一条DNA链上对应位置引入另一切刻位点导致DNA双链的断裂,专一性识别并切割DNA双链中的单碱基错配位点。该酶应用广泛,具有作为工具酶的重要价值。主要的商业用途包括:可用于分支DNA结构的解离,基因组测序技术和DNA-shuffling技术中DNA的前处理,SNP的检测等。
目前制备T7核酸内切酶的方法是:将蛋白分别表达合成出两段肽链,在体外融合而成。采用IMPACT-TWIN蛋白纯化系统纯化与MBP融合表达的截短型无活性T7核酸内切酶I(tT7Endo I),该融合蛋白的C-端带有硫酯键。然后体外合成一段合成肽,其中含有被前者截下来的氨基酸,将该合成肽与融合蛋白的C-端硫酯键相连接,形成全长具有活性的T7核酸内切酶I。最后,再用因子Xa将MBP融合头切去,纯化得到全长的野生型T7核酸内切酶I。
发明内容
本发明的目的在于提供一种核酸内切酶的制备方法,该方法操作简便、易于规模化生产,并能有效节约成本。
本发明所述的一种T7核酸内切酶的制备方法,包括以下步骤:
(a)T7核酸内切酶的表达载体的构建;
(b)将不含有终止密码子的编码序列插入到步骤a所获得的蛋白表达载体中;以及
(c)采用与标签相适应的纯化方法,获得目标蛋白质即T7核酸内切酶。
根据本发明所述的T7核酸内切酶的制备方法的进一步特征,所述表达载体包括:用于插入目的蛋白即T7核酸内切酶的编码序列的识别和切割位点;在所述识别和切割位点的上游具有如SEQ ID NO:1所示的gIIIs信号肽编码序列,其前面是起始密码子;在所述识别和切割位点的下游具有His6标签,其后面是终止密码子。
优选地,所述的识别和切割位点为BsaI识别及切割位点。
本发明的优点在于:构建N端带M13噬菌体蛋白III的前导序列(gIIIs)的载体,合成出来的信号肽能引导蛋白分泌出核外,在细胞周质中表达,对细胞本身的基因组无毒性,故能直接在体内表达出可溶并有生物活性的T7核酸内切酶I。这种生产方法简便易操作,易于规模化生产,并能有效节约成本。
经实验表明,本发明所述方法获得的T7核酸内切酶I能特异地识别DNA片段中不匹配的位点,并在这此位点附近进行切割。其切割效率与商品化的T7核酸内切酶I相当,活性良好。相比于现有技术,本发明所述方法操作更为简便、易于规模化生产,并能有效节约成本。
附图说明
图1是T7核酸内切酶I的NI柱层析电泳图;图中,S:层析前样品;X:穿过样品;Elution:线性洗脱收集峰。
图2是T7核酸内切酶I的Heparin柱层析电泳图;图中,S:层析前样品;X:穿过样品;Elution:线性洗脱收集峰。
图3是T7核酸内切酶I的Hitrap SPP柱层析电泳图;图中,S:层析前样品;X:穿过样品;Elution:线性洗脱收集峰。
图4是反应产物用于琼脂糖凝胶电泳图;图中,M:100-3000bp DNA Marker;1:加入NEB T7核酸内切酶I(NEB Catalog#M0302)的阳性对照;2:加入纯化后的T7核酸内切酶I;3:不加任何酶,加入ddH2O作为阴性对照;圆点:T7核酸内切酶I识别后切开所形成的条带,长度分别在480bp及330bp左右。
具体实施方式
以下合通过具体实施例结合附图的方式对本发明做进一步说明,目的在于本发明的内容而非限制发明的保护范围。下面实施例中,除非特别注明试验方法的具体条件,通常按照常规条件,如Sambrook等人著的《分子克隆:试验指南》(New York,Cold SpringHabour Laboratory Press)中所述条件,或按照制造厂商建议条件进行。实验所需菌种、质粒、试剂等均为商品化产品,均可通过生物制品厂商购买获得。
实施例1:T7核酸内切酶I的制备
制备方法:将T7基因的编码序列构建表达克隆,于大肠杆菌中表达,重组蛋白经过层析纯化后,获得目标蛋白。
具体流程如下:
(1)构建带BsaI酶切位点的pET28-gIIIs表达载体
在pET28表达载体XhoI酶切位点上游加入一个BsaI识别及切割位点(5’-GGTCTCT/AGGT-3’),并在BsaI位点的上游加上起始密码子ATG和gIIIs信号肽编码序列,信号肽氨基酸序列如SEQ ID NO:1所示。
SEQ ID NO:1KKLLFAIPLVVPFYSHS
(2)构建含基因片段的表达克隆
设计含有BsaI酶切位点的上游引物(SEQ ID NO:2)和XhoI(SEQ ID NO.3)酶切位点的下游引物,从大肠杆菌T7噬菌体基因组中进行PCR扩增,获得459bp含有T7核酸内切酶I基因编码序列的插入片段,其开放阅读框中不含有终止密码子。用BsaI和XhoI两个内切酶对片段及载体进行酶切,酶切之后的片段与载体含有相同的粘性末端。
SEQ ID NO:25’-atatatGGTCTCgTAGCatggcaggttacggcgct-3’
SEQ ID NO.35’-atatatCTCGAGtttctttcctcctttcctttttaa-3’
用T4 DNA连接酶连接插入片段和pET28载体。插入片段开放阅读框的下游包含有一个His6标签,以用于下游Ni柱纯化。His6标签后含有一个终止密码子TGA。连接产物进行转化到E.Coli 2T1感受态,在LB培养基上37℃过夜培养。通过鉴定后筛选出正确的转化子在LB液体培养基中扩大培养。
(3)收集菌液,细胞沉淀悬浮缓冲液A(20mMTris、50mM Nacl、2.5%甘油,PH7.0)和2X OTG等体积混合的溶液中,然后以大约18000psig通过高压破碎机,裂解物于12000rmp离心40min后收集上清。上清按1000∶1的比例加入Polyethylenimine充分混匀30分钟,12000rmp离心40分钟收集上清过0.22μm滤膜。
(4)将上清加到已用缓冲液A平衡好的Histrap-Ni柱上。用缓冲液A冲平基线,然后用0-500mM的Imidazole线性梯度洗脱收集。对各收集组份进行SDS-PAGE检测(图1),收集含目的蛋白的组份。
(5)含目的蛋白的组份被汇集到一起,将样品上样到已经平衡好的Heparin柱子上。用缓冲液A冲平基线,然后用0-1M的Nacl线性洗脱。对各收集组份进行SDS-PAGE检测(图2),收集含目的蛋白的组份。
(6)将上述各组份汇集到一起透析到缓冲液A后,样品上样到已用缓冲液A平衡好的Hitrap SPP柱子上。用缓冲液A冲平基线,然后用0-1M的Nacl线性洗脱。对各收集组份进行SDS-PAGE检测(图3),收集含目的蛋白的组份。
(7)将上述各组份汇集到一起透析到贮存缓冲液(200mM Nacl、20mMTris-HclPH7.5、0.01mM EDTA、1mM DTT、0.15%TritonX-100、50%Glycerin)。纯化后的酶在-20℃保存。
实施例2:T7核酸内切酶I的活性检测
设计两个含有10个碱基差异的克隆,取相同的上游和下游引物进行扩增,得到一对有10个碱基不匹配的PCR产物。序列见SEQ ID NO:4及SEQ ID NO:5。
将两种PCR产物等量混合,在含有1X缓冲液(50mM NaCl,10mM Tris-HCl,10mMMgCl21mM DTT,pH 7.9@25℃)中95℃变性5min,再退火至室温,形成具有一个重组中间体(HJ)的产物。在上述退火体系中加入1U实施例1所制备的T7核酸内切酶I,37℃孵育1小时。以NEB T7核酸内切酶I(Catalog#M0302)为阳性对照(PC),并设置不加酶的阴性对照(NC)。反应结束后加入含有SDS的上样缓冲液终止反应。反应产物用于琼脂糖凝胶电泳,结果见图4。
结果分析表明:本发明所述方法得到的T7核酸内切酶I能特异地识别DNA片段中不匹配的位点,并在这此位点附近进行切割。其切割效率与商品化的T7核酸内切酶I相当,证明其活性保持良好。
Figure IDA0002528609020000011
Figure IDA0002528609020000021

Claims (2)

1.一种T7核酸内切酶的制备方法,其特征在于,包括以下步骤:
(a)T7核酸内切酶的表达载体的构建;
(b)将T7核酸内切酶编码序列插入到步骤a所获得的蛋白表达载体中;以及
(c)采用与标签相适应的纯化方法,获得目标蛋白质即T7核酸内切酶;
所述表达载体包括:
用于插入目的蛋白即T7核酸内切酶的编码序列的识别和切割位点;
在所述识别和切割位点的上游具有如SEQ ID NO:1所示的gIIIs信号肽编码序列,其前面是起始密码子;
在所述识别和切割位点的下游具有His6标签,其后面是终止密码子。
2.根据权利要求1所述的T7核酸内切酶的制备方法,其特征在于:所述的识别和切割位点为BsaI识别及切割位点。
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* Cited by examiner, † Cited by third party
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Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6846658B1 (en) * 2000-10-12 2005-01-25 New England Biolabs, Inc. Method for cloning and producing the Msel restriction endonuclease
CN1908175A (zh) * 2006-08-22 2007-02-07 中山大学 一种原核分泌表达载体及其应用
CN1955283A (zh) * 2005-10-24 2007-05-02 西川橡胶工业株式会社 突变的核酸内切酶

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6846658B1 (en) * 2000-10-12 2005-01-25 New England Biolabs, Inc. Method for cloning and producing the Msel restriction endonuclease
CN1955283A (zh) * 2005-10-24 2007-05-02 西川橡胶工业株式会社 突变的核酸内切酶
CN1908175A (zh) * 2006-08-22 2007-02-07 中山大学 一种原核分泌表达载体及其应用

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
康立新等: "T7核酸内切酶I的基因合成、克隆与表达", 2006年度学术研讨会论文摘要汇编, pages 84 *
邵哲旭等: "大肠杆菌TOP10F’中重组质粒pBAD/gⅢ A-NTF2稳定性考察", 绵阳师范学院学报, vol. 29, no. 2, pages 79 - 83 *

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