CN111638365A - Gdf15快速定量检测装置及其制备方法 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及一种GDF15快速定量检测装置及其制备方法,属于医疗检测设备领域。由固相有高特异性生长分化因子15抗体和羊抗鼠IgG多克隆抗体的硝酸纤维素膜、吸附有胶体金标记生长分化因子15抗体的玻璃纤维膜、样品垫、吸水纸等其它辅料粘贴制成。采用聚乙二醇丙三醇处理液对硝酸纤维素膜进行预处理,将生长分化因子15抗体先与油酸修饰的硫化锌纳米颗粒结合再吸附到硝酸纤维素膜上,并配制合适的喷金缓冲液和样品垫处理液,在保证免疫胶体金释放完全的基础上,有效的提高了反应的灵敏度,同样的阈值下,还可降低免疫胶体金的用量,节约成本,又没有增加生产操作的复杂度;检测试纸灵敏度高、特异性强、实用性强。
Description
技术领域
本发明涉及医疗检测设备领域,特别涉及一种GDF15快速定量检测装置及其制备方法,利用胶体金免疫层析技术以及双抗体夹心法原理定量检测全血、血清、血浆或者相关液体标本中人GDF15的检测装置及其制备方法,可实现GDF15标志物的灵敏、特异、快速检测。
背景技术
在医学领域,对机体发生的异常情况进行精准预警和评估,一直是医学工作者研究和攻克的主要课题之一;比如正常生理情况下,人体会发生什么风险;比如病理情况下,如何及早精准预警、如何精准评估疾病转归或者发展等;因此通过一个有效的标志物检测,进而实现上述目标,是非常必要的。
生长分化因子15(GDF15)是转化生长因子β家族一个类型,由于广泛存在各类细胞,导致其专业命名的多样性,又称前列腺衍生因子(PDF)、胎盘转化生长因子β(PTGFβ)、胎盘骨形态发生蛋白(PLAB)、非甾体抗炎药激活基因-1(NAG-1)、巨噬细胞抑制因子-1(MIC-1)。GDF15在血液和相关液体中很容易检测到,在生理状态下,有些情况下GDF15会出现升高,及时监测便于对发生异常情况风险进行有效、及时预警;此外,GDF15浓度在很多病理条件下也会升高,例如:心肌梗塞和心衰等心脏损伤性疾病、肿瘤、炎症、急慢性疾病、青光眼等。
在生理条件下,胎盘是唯一能大量表达GDF15的组织;GDF15位于胎盘和胎膜上,这表明其在母-胎界面起作用;它可能通过抑制子宫中的促炎细胞因子和提高、或者提高半同种异体胎儿免疫耐受来支持胎儿存活。也有研究证明GDF15通过抑制外周血单核细胞增殖起免疫抑制的作用并诱导在CD4+、CD25+细胞forkhead box protein3的表达;妊娠特征性的高GDF15水平从一个正常水平逐步升高,在妊娠第九个月增加到峰值,因此在妊娠6和13周时GDF15检测浓度降低时会出现流产,因此在次期间及时检测GDF15水平非常关键和具有极大价值。
GDF15能在不同的细胞压力信号下出现增多,如低氧或缺氧、炎症、急性组织损伤和肿瘤等;在病理条件下进行监测GDF15,并为临床应用做预测性支持;在病理上,GDF15是一个综合信号;在癌症领域,GDF15在前列腺癌、结肠癌、胃癌、胰腺癌、口腔鳞状细胞癌、黑色素瘤、胶质瘤等疾病中表达和分泌显著增强;在心血管领域,GDF15是一个预测疾病的独立因子,其直接参与心肌纤维化和心肌重构的病理生理过程,是继髓过氧化物酶(MPO)之后的一个新型心血管炎症标志物,GDF15是一种跨膜蛋白,能够作为细胞损伤和炎症反应的标志物,其可诊断动脉粥样硬化性疾病,其可预警和评估心肌梗塞、心衰等严重心血管事件发生风险程度。在所有慢病领域,比如风湿性关节炎、终末期肾功能衰竭、糖尿病,和在癌症、心血管疾病领域一样,GDF15的浓度变化对疾病的进展同样是一个独立的预测因素。GDF15也是评估青光眼严重程度的一个重要生物标志物,研究发现青光眼患者GDF15浓度显著高于正常人,且其浓度越高眼功能越差,呈正相关性;因此检测其浓度可以评估青光眼的严重程度,且可以预测视网膜细胞等死亡风险程度。
综上,不论在相关人群生理情况下、还是病理情况下的相关群体,及时进行GDF15的检测和监测是非常必要的;纵观各方法学,胶体金免疫层析技术能够实现对GDF15的精准加测,且可实现高灵敏度、高特异性、快速检测。
胶体金免疫层析技术(gold immunochromatography assay,GICA)是一种将胶体金标记技术和蛋白质层析技术结合的以微孔滤膜为载体的固相膜免疫分析技术。胶体金免疫层析技术是一种常用的免疫层析检测方法,由于其操作简单、省时、制造成本较低、结果易判读等特点,非常适合于现场检测,广泛用于生物、医药、食品等领域。由于胶体金免疫层析技术是一步完成检测,因此检测过程的干扰因素较多,其灵敏度低是限制胶体金免疫层析应用范围的主要因素,传统的胶体金免疫层析技术的检测限高于ELISA等方法。
在胶体金免疫层析检测中,蛋白质固着于硝酸纤维素膜(NC膜)作为待测样本的捕获试剂。由于检测结果完全取决于捕获试剂在膜上达到良好的吸附效果,因此蛋白质在膜上均一、良好的吸附对胶体金检测结果非常重要。如果NC膜上结合的蛋白量不足或者蛋白结合力不够强,就会出现相当多的问题,在检测结果的检测线上非常明显。如果膜上结合的蛋白量太低,那么在结果中检测线显色较弱而且检测灵敏度降低。如果蛋白不能牢固的吸附于NC膜,那么在蛋白吸附于NC膜以前发生扩散,从而导致检测线较宽、显色较弱而不是鲜艳而清晰,使检测结果难以解释。在极端条件下,如果蛋白与NC膜的物理吸附作用太弱,流过的蛋白检测物和表面活性剂溶液可能将固着的蛋白从NC膜上洗掉,从而显示较宽或者根本不清晰的检测线,难以解释检测结果。
发明内容
本发明提供一种GDF15快速定量检测装置及其制备方法,以解决现有技术存在的NC膜吸附蛋白量不足、结合力不强的问题。本发明制备的人GDF15检测装置,可实现标志物的灵敏、特异、快速检测,提提高了对生理情况下相关群体、病理情况下相关群体进行合理综合判定能力,能够快速、准确进行风险早期预警及病情风险判断。
本发明采取的技术方案是:样品垫1、免疫胶体金玻璃纤维膜2、免疫硝酸纤维素膜3、吸收垫4分别粘贴在塑料板5,所述免疫硝酸纤维素膜3的两端分别与吸收垫4、免疫胶体金玻璃纤维膜2搭接,所述免疫胶体金玻璃纤维膜2的另一端与样品垫1搭接;所述免疫硝酸纤维素膜3上设置检测线(T)和质控线(C);所述的检测线(T)上固相有高特异性生长分化因子15(GDF15)抗体;所述的质控线(C)上喷点羊抗鼠IgG多克隆抗体。
一种GDF15快速定量检测装置的制备方法,包括下列步骤:
(a)采用柠檬酸三钠还原法制备胶体金;
(b)采用步骤(a)中制得的胶体金标记生长分化因子15(GDF15)抗体,获得免疫胶体金;
(c)采用喷金缓冲液稀释步骤(b)的免疫胶体金获得免疫胶体金溶液,用免疫胶体金溶液喷涂于玻璃纤维垫,制得免疫胶体金玻璃纤维膜;
(d)将硝酸纤维素膜用聚乙二醇丙三醇处理液预处理后,喷点与油酸修饰的硫化锌纳米颗粒结合的生长分化因子15(GDF15)抗体作为检测线,喷点羊抗鼠IgG抗体作为质控线,制得免疫硝酸纤维素膜;
(e)将预处理的样品垫、步骤(c)制备的免疫胶体金玻璃纤维膜、步骤(d)制备的免疫硝酸纤维素膜、吸水纸依次粘贴在胶板上,切裁制得检测试剂条,最后将检测试剂条装入塑料外壳。
本发明步骤(a)所述的采用柠檬酸三钠还原法制备的胶体金颗粒粒径为20~60nm。
本发明步骤(c)所述的喷金缓冲液由Tris-HCL液、蔗糖、海藻糖、牛血清白蛋白BSA组成,pH值8.5,其中Tris-Hcl浓度为0.02mol/L,蔗糖浓度为5~20%,海藻糖浓度为1~5%,牛血清白蛋白BSA浓度为0.5~1%。
本发明步骤(d)所述的将硝酸纤维素膜用聚乙二醇丙三醇处理液预处理是:用聚乙二醇丙三醇处理液浸泡硝酸纤维素膜1h,并慢速振荡摇晃,取出后用蒸馏水清洗3遍,最后在真空干燥箱中干燥;
步骤(d)所述的硫化锌纳米颗粒分别结合生长分化因子15(GDF15)抗体是:以油酸修饰的ZnS作为载体,取1mL生长分化因子15(GDF15)抗体溶液,搅拌1小时后,分别以12000rpm,8500rpm和7000rpm离心10分钟收集,去离子水各洗2遍。
本发明步骤(d)所述的聚乙二醇丙三醇处理液由聚乙二醇丙三醇稀释到浓度为0.5%组成,经0.22μm滤膜过滤,备用。
本发明步骤(d)所述的聚乙二醇丙三醇处理液由聚乙二醇丙三醇和多聚赖氨酸(SIGMA,150KD~300KD)混合组成,其中聚乙二醇丙三醇浓度为0.5%,多聚赖氨酸浓度为0.5%组成,经0.22μm滤膜过滤,备用。
本发明步骤(d)所述的聚乙二醇丙三醇处理液由聚乙二醇丙三醇、多聚赖氨酸(SIGMA,150KD~300KD)、PEG20000混合组成,其中聚乙二醇丙三醇浓度为0.5%,多聚赖氨酸浓度为0.5%组成,PEG20000浓度为0.1%,经0.22μm滤膜过滤,备用。
本发明步骤(d)所述的油酸修饰的硫化锌纳米颗粒制备方法:取油酸无水乙醇溶液15ml加入到15ml浓度为0.3mol/L的醋酸锌水溶液中,40℃水浴搅拌,用氨水调节pH值,再加入15ml浓度为0.3mol/L的硫化钠水溶液,反应5min后,加入5ml SDS水溶液,待混合均匀后,将该反应液倒入90ml水热釜中。水热釜密闭后放入恒温干燥箱内,在一定温度下恒温反应一定时间。待反应结束,降温至50℃,取出产物。用丙酮,去离子水,乙醇洗涤,离心分离,在50℃下真空干燥2h得到粉体ZnS,存放待用。
本发明步骤(e)所述的预处理的样品垫采用的样品垫处理液由Tris-HCL液、牛血清白蛋白BSA、酪蛋白、表面活性剂(烷基酚聚氧乙烯醚)组成,其中Tris-HCL液浓度为0.1mol/L,牛血清白蛋白BSA浓度为0.5~1%,酪蛋白浓度为0.1~0.2%、表面活性剂浓度为0.5~1%。
乙二醇与环氧氯丙烷用碱催化其反应,产物用稀盐酸中和,四氯化碳萃取,减压蒸馏,得到聚乙二醇丙三醇(PEGG),为淡黄色粘稠物。PEGG能与水以任意比例混溶,也能溶于一般的有机溶剂如乙醇、丙酮、四氢呋喃、氯仿,有一定的表面活性。聚乙二醇丙三醇的结构中含有多个羟基可供偶联,活化过程简单,方便NC膜表面固定蛋白。常规条件下,单位面积的NC膜上结合抗体的数量是有限的,采用聚乙二醇丙三醇处理之后,可以让单位面积的NC膜上结合抗体数量增加,进而可以实现更高的检测灵敏度。
在改善NC膜对蛋白吸附基础上,探讨蛋白对NC膜吸附效果也是提高胶体金灵敏度的另一途径。油酸/十二烷基硫酸钠修饰的ZnS不仅具有纳米级的粒径尺寸、且具有良好的水溶性与生物相容性,利用其外表面的功能性基团,在水介质中均匀分散,可与生物大分子相结合。硫化锌纳米颗粒具有较好的稳定性、易于制备、生物相容性较好及较低的免疫原性等优势,在生物医学领域研究较为广泛。但在胶体金免疫层析技术中尚未有报道应用。本研究探讨了硫化锌纳米颗粒对NC膜包被抗体的影响,先将划膜用的抗体先与硫化锌纳米颗粒结合,封闭,离心纯化,去掉未结合的抗体,然后复溶到一定比例,然后划膜,这样一个硫化锌粒子可以结合多个抗体,从而增加了包被抗体效率,灵敏度也会大大提高。
为了提高胶体金免疫层析技术的灵敏度,我们通过对硝酸纤维素膜用聚乙二醇丙三醇处理液进行了预处理,将包被NC的抗体与硫化锌纳米颗粒结合,达到了提高试纸灵敏度的目的。
本发明的有益效果在于:
1、本发明的检测装置结构简单,构思新颖,将生长分化因子15(GDF15)抗体包被于硝酸纤维膜膜上,特异性强,既能同时检测标本中生长分化因子15(GDF15),又没有增加生产操作的复杂度。
2、免疫胶体金制备步骤中,通过配合合适的喷金缓冲液和样品垫处理液,可保证免疫胶体金释放完全的基础上,有效的提高了反应的灵敏度,同样的阈值下,还可降低免疫胶体金的用量,节约成本。
3、本发明对硝酸纤维素膜进行预处理,对包被硝酸纤维素膜的抗体进行了修饰,提高了检测试纸灵敏度、特异性。
4、本发明的检测装置不需要任何特殊仪器设备,检测成本低。
5、本发明的检测装置操作简便,不需要专业人员操作。实用性强。
附图说明
图1是本发明的结构示意图;
图2是图1的A-A剖视图。
具体实施方式
实施例1
参见图1、2所示,包括样品垫1、免疫胶体金玻璃纤维膜2、免疫硝酸纤维素膜3、吸收垫4、塑料板5,其中,所述样品垫1、免疫胶体金玻璃纤维膜2、免疫硝酸纤维素膜3、吸收垫4分别粘贴在塑料板5,所述免疫硝酸纤维素膜3的两端分别与吸收垫4、免疫胶体金玻璃纤维膜2搭接,所述免疫胶体金玻璃纤维膜2的另一端与样品垫1搭接;所述免疫硝酸纤维素膜3上设置检测线T和质控线C;所述的检测线T上固相有高特异性生长分化因子15(GDF15)抗体;所述的质控线C上喷点羊抗鼠IgG多克隆抗体;
制备方法:
(a)采用柠檬酸三钠还原法制备胶体金
在加热的100ml纯化水中快速加入氯化金,待溶液再次沸腾后,迅速加入柠檬酸三钠,氯化金:柠檬酸三钠1:0.5,继续煮沸,观察溶液颜色由黄色变黑再变紫,最后变成稳定的酒红色后,计时继续加热10分钟即可,胶体金颗粒为20nm;
(b)免疫胶体金制备
1)分别取100毫升20nm胶体金溶液,加入pH调节剂140μl,混匀;静置5min;
2)在20nm胶体金溶液中,按照每毫升胶体金溶液14μg的比例加入生长分化因子15(GDF15)抗体,共1.4mg,混匀;静置5min;
3)分别按照0.4%的比例加入胶体金稳定剂0.4毫升,混匀,静置5分钟;
4)10000、12000、14000rpm离心10min,分别收集沉淀,合并三次收集的沉淀;
(c)采用优化的喷金缓冲液稀释免疫胶体金获得免疫胶体金溶液,用免疫胶体金溶液喷涂于玻璃纤维垫,制得免疫胶体玻璃纤维膜;所述的喷金缓冲液包括:浓度为20mMTris-HCL液、蔗糖浓度为5%、海藻糖浓度为1%、BSA浓度为0.5%,pH为8.5;
(d)固相硝酸纤维素膜
1)聚乙二醇丙三醇处理液预处理硝酸纤维素膜
配制聚乙二醇丙三醇处理液:聚乙二醇丙三醇浓度为0.5%,经0.22μm滤膜过滤,备用;
聚乙二醇丙三醇处理液预处理硝酸纤维素膜:将硝酸纤维素膜放入聚乙二醇丙三醇处理液中浸泡1h,并慢速振荡摇晃,取出后用蒸馏水清洗3遍,最后在真空干燥箱中干燥;
2)硫化锌纳米颗粒修饰生长分化因子15(GDF15)抗体
油酸修饰的硫化锌纳米颗粒制备:取油酸无水乙醇溶液15ml加入到15ml浓度为0.3mol/L的醋酸锌水溶液中,40℃水浴搅拌,用氨水调节pH值,再加入15ml浓度为0.3mol/L的硫化钠水溶液,反应5min后,加入5ml SDS水溶液,待混合均匀后,将该反应液倒入90ml水热釜中。水热釜密闭后放入恒温干燥箱内,在一定温度下恒温反应一定时间。待反应结束,降温至50℃,取出产物。用丙酮,去离子水,乙醇洗涤,离心分离,在50℃下真空干燥2h得到粉体ZnS,存放待用。
硫化锌纳米颗粒修饰生长分化因子15(GDF15)抗体:
以油酸修饰的ZnS作为载体,取1mL生长分化因子15(GDF15)抗体溶液,搅拌1小时后,分别以12000rpm,8500rpm和7000rpm离心10分钟收集,去离子水各洗2遍。
3)硝酸纤维素膜检测线与质控线抗体的包被
当喷膜量为1.4μl/cm,将硫化锌纳米颗粒-生长分化因子15(GDF15)抗体稀释至1.5mg/ml,质控线羊抗鼠IgG抗体稀释至1mg/ml,分别包被硝酸纤维素膜的检测线与质控线,室温干燥过夜,储存备用;
(e)样品垫预处理、组装
将玻璃纤维用样品垫处理液浸泡10min,其种样品垫处理液包括:Tris-HCL液浓度为0.1M、牛血清白蛋白BSA浓度为0.5%、酪蛋白浓度为0.1%、表面活性剂浓度为0.5%,37℃烘干备用,经处理后样品垫可提高反应灵敏度;
将预处理的样品垫、免疫胶体金玻璃纤维膜、免疫硝酸纤维素膜、吸水纸依次粘贴在胶板上,切裁制得检测试剂条,最后将检测试剂条装入塑料外壳。
定量检测:通过胶体金检测仪检测,本检测装置检测人生长分化因子15(GDF15)最低检测浓度为0.5ng/ml。
实施例2
胶体金颗粒为40nm;
所述的喷金缓冲液包括:浓度为20mM Tris-HCL液、蔗糖浓度为12%、海藻糖浓度为3%、BSA浓度为0.7%,pH为8.5;
配制聚乙二醇丙三醇处理液:由聚乙二醇丙三醇和多聚赖氨酸(SIGMA,150KD)混合组成,其中聚乙二醇丙三醇浓度为0.5%,多聚赖氨酸浓度为0.5%,经0.22μm滤膜过滤,备用;
Tris-HCL液浓度为0.1M、牛血清白蛋白BSA浓度为0.7%、酪蛋白浓度为0.15%、表面活性剂浓度为0.7%;
其余同实施例1。
实施例3:
胶体金颗粒为60nm;
所述的喷金缓冲液包括:浓度为20mM Tris-HCL液、蔗糖浓度为20%、海藻糖浓度为5%、BSA浓度为1%,pH为8.5;
配制聚乙二醇丙三醇处理液:由聚乙二醇丙三醇、多聚赖氨酸(SIGMA,150KD)与PEG2000混合组成,其中聚乙二醇丙三醇浓度为0.5%,多聚赖氨酸浓度为0.5%,PEG20000浓度为0.1%,经0.22μm滤膜过滤,备用;
Tris-HCL液浓度为0.1M、牛血清白蛋白BSA浓度为1%、酪蛋白浓度为0.2%、表面活性剂浓度为1%;
其余同实施例1。
下边通过实验来进一步说明本发明的效果。
实验例1:
1、聚乙二醇丙三醇处理液对硝酸纤维素膜蛋白吸附能力的比较
1.1材料与方法
1.1材料:硝酸纤维素膜,孔径4.5um,购自美国通用电气公司
1.2硝酸纤维素膜处理方法
1.2.1配制聚乙二醇丙三醇处理液
配制三种聚乙二醇丙三醇处理液:聚乙二醇丙三醇组,聚乙二醇丙三醇浓度为0.5%组成;聚乙二醇丙三醇处理液多聚赖氨酸组,聚乙二醇丙三醇浓度为0.5%,多聚赖氨酸浓度为0.5%;聚乙二醇丙三醇、多聚赖氨酸和PEG20000组,,其中聚乙二醇丙三醇浓度为0.5%,多聚赖氨酸浓度为0.5%,PEG20000浓度为0.1%,三组处理液均经0.22μm滤膜过滤,备用。
1.2.2硝酸纤维素膜处理方法
将硝酸纤维素膜放入聚乙二醇丙三醇处理液中浸泡1h,并慢速振荡摇晃,取出后用蒸馏水清洗3遍,最后在真空干燥箱中干燥。
1.3实验方法
分别将未处理和已处理过的硝酸纤维素膜按照上述实施例工艺流程制备生长分化因子15(GDF15)检测试纸,测试流程参照试纸说明书,比较硝酸纤维素膜未处理和处理后吸附力和稳定性指标差异。
1.4结果
1.4.1蛋白吸附力比较
取3组处理组和未处理组试纸,分别加入待检样品,通过观察显色情况判断处理后膜对蛋白吸附能力,结果见表1。结果显示,处理后的硝酸纤维素膜在溶液浸润性方面要明显优于未处理膜,处理后膜阳性条带颜色略深,尤其在浓度较低时,提高了反应的灵敏度,表明蛋白吸附能力明显增强,提高了反应灵敏度。聚乙二醇丙三醇-多聚赖氨酸-PEG20000处理组吸附效果明显优于聚乙二醇丙三醇组和聚乙二醇丙三醇-多聚赖氨酸组。
表1硝酸纤维素膜吸附能力比较
1.4.2硝酸纤维素膜稳定性比较
取3组处理组和未处理组试纸,通过37℃加速实验观察显色情况来判断处理后硝酸纤维素膜上吸附蛋白的稳定性,结果见表2。表2结果与表1结果比较发现,处理后硝酸纤维素膜颜色变化与10天前基本一致,稳定性好。
表2硝酸纤维素膜加速稳定性比较(37℃放置10天)
实验例2:
2、油酸修饰的硫化锌纳米颗粒修饰生长分化因子15(GDF15)抗体
2.1材料与方法
2.1.1材料:硝酸纤维素膜,孔径4.5um,购自美国通用电气公司
2.1.2油酸修饰的硫化锌纳米颗粒制备
取油酸无水乙醇溶液15ml加入到15ml浓度为0.3mol/L的醋酸锌水溶液中,40℃水浴搅拌,用氨水调节pH值,再加入15ml浓度为0.3mol/L的硫化钠水溶液,反应5min后,加入5ml SDS水溶液,待混合均匀后,将该反应液倒入90ml水热釜中。水热釜密闭后放入恒温干燥箱内,在一定温度下恒温反应一定时间。待反应结束,降温至50℃,取出产物。用丙酮,去离子水,乙醇洗涤,离心分离,在50℃下真空干燥2h得到粉体ZnS,存放待用。
2.1.3硫化锌纳米颗粒修饰生长分化因子15(GDF15)抗体
以油酸修饰的ZnS作为载体,取1mL生长分化因子15(GDF15)抗体溶液,搅拌1小时后,分别以12000rpm,8500rpm和7000rpm离心10分钟收集,去离子水各洗2遍。
2.2实验方法
分别将硫化锌纳米颗粒修饰的生长分化因子15(GDF15)抗体与未修饰的生长分化因子15(GDF15)抗体按照上述实施例工艺流程制备生长分化因子15(GDF15)检测试纸,测试流程参照试纸说明书,比较硫化锌纳米颗粒处理和未处理对蛋白吸附力和稳定性指标差异。
2.3结果
2.3.1蛋白吸附力比较
取硫化锌纳米颗粒处理组和未处理组试纸,分别加入待检样品,通过观察显色情况判断处理后膜对蛋白吸附能力,结果见表3。结果显示,硫化锌纳米颗粒修饰组膜阳性条带颜色略深,尤其在浓度较低时,提高了反应的灵敏度,表明蛋白吸附能力明显增强,提高了反应灵敏度。
表3硫化锌纳米颗粒修饰对蛋白吸附能力比较
2.3.2稳定性比较
取硫化锌纳米颗粒处理组和未处理组试纸,通过37℃加速实验观察显色情况来判断硫化锌修饰后硝酸纤维素膜上吸附蛋白的稳定性,结果见表4。表4结果与表3结果比较发现,处理后硝酸纤维素膜颜色变化与10天前基本一致,稳定性好。
表2加速稳定性比较(37℃放置10天)
以上所述仅为本发明的优选实例而已,并不用于限制本发明,对于本领域的技术人员来说,本发明可以有各种更改和变化。凡对本发明所作的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。
Claims (10)
1.一种GDF15快速定量检测装置,其特征在于:样品垫(1)、免疫胶体金玻璃纤维膜(2)、免疫硝酸纤维素膜(3)、吸收垫(4)分别粘贴在塑料板(5),所述免疫硝酸纤维素膜(3)的两端分别与吸收垫(4)、免疫胶体金玻璃纤维膜(2)搭接,所述免疫胶体金玻璃纤维膜(2)的另一端与样品垫(1)搭接;所述免疫硝酸纤维素膜(3)上设置检测线(T)和质控线(C);所述的检测线(T)上固相有高特异性生长分化因子15(GDF15)-抗体;所述的质控线(C)上喷点羊抗鼠IgG多克隆抗体。
2.根据权利要求1所述的GDF15快速定量检测装置的制备方法,其特征在于:包括如下步骤:
(a)采用柠檬酸三钠还原法制备胶体金;
(b)采用步骤(a)中制得的胶体金标记生长分化因子15(GDF15)抗体,获得免疫胶体金;
(c)采用喷金缓冲液稀释步骤(b)的免疫胶体金获得免疫胶体金溶液,用免疫胶体金溶液喷涂于玻璃纤维垫,制得免疫胶体金玻璃纤维膜;
(d)将硝酸纤维素膜用聚乙二醇丙三醇处理液预处理后,喷点与油酸修饰的硫化锌纳米颗粒结合的生长分化因子15(GDF15)抗体作为检测线,喷点羊抗鼠IgG抗体作为质控线,制得免疫硝酸纤维素膜;
(e)将预处理的样品垫、步骤(c)制备的免疫胶体金玻璃纤维膜、步骤(d)制备的免疫硝酸纤维素膜、吸水纸依次粘贴在胶板上,切裁制得检测试剂条,最后将检测试剂条装入塑料外壳。
3.根据权利要求2所述的GDF15快速定量检测装置的制备方法,其特征在于:步骤(a)所述的采用柠檬酸三钠还原法制备的胶体金颗粒粒径为20~60nm。
4.根据权利要求2所述的GDF15快速定量检测装置的制备方法,其特征在于:步骤(c)所述的喷金缓冲液由Tris-HCL液、蔗糖、海藻糖、牛血清白蛋白BSA组成,pH值8.5,其中Tris-Hcl浓度为0.02mol/L,蔗糖浓度为5~20%,海藻糖浓度为1~5%,牛血清白蛋白BSA浓度为0.5~1%。
5.根据权利要求2所述的GDF15快速定量检测装置的制备方法,其特征在于:步骤(d)所述的将硝酸纤维素膜用聚乙二醇丙三醇处理液预处理是:用聚乙二醇丙三醇处理液浸泡硝酸纤维素膜1h,并慢速振荡摇晃,取出后用蒸馏水清洗3遍,最后在真空干燥箱中干燥;
所述的油酸修饰的硫化锌纳米颗粒分别结合生长分化因子15(GDF15)抗体是:以油酸修饰的ZnS作为载体,取1mL生长分化因子15(GDF15)抗体溶液,搅拌1小时后,分别以12000rpm,8500rpm和7000rpm离心10分钟收集,去离子水各洗2遍。
6.根据权利要求2或5所述的GDF15快速定量检测装置的制备方法,其特征在于:步骤(d)所述的聚乙二醇丙三醇处理液由聚乙二醇丙三醇稀释到浓度为0.5%组成,经0.22μm滤膜过滤,备用。
7.根据权利要求2或5所述的GDF15快速定量检测装置的制备方法,其特征在于:步骤(d)所述的聚乙二醇丙三醇处理液由聚乙二醇丙三醇和多聚赖氨酸SIGMA,150KD~300KD混合组成,其中聚乙二醇丙三醇浓度为0.5%,多聚赖氨酸浓度为0.5%,经0.22μm滤膜过滤,备用。
8.根据权利要求2或5所述的GDF15快速定量检测装置的制备方法,其特征在于:步骤(d)所述的聚乙二醇丙三醇处理液由聚乙二醇丙三醇、多聚赖氨酸SIGMA,150KD~300KD、PEG20000混合组成,其中聚乙二醇丙三醇浓度为0.5%,多聚赖氨酸浓度为0.5%,PEG20000浓度为0.1%,经0.22μm滤膜过滤,备用。
9.根据权利要求2或5所述的GDF15快速定量检测装置的制备方法,其特征在于:步骤(d)所述的油酸修饰的硫化锌纳米颗粒制备方法:取油酸无水乙醇溶液15ml加入到15ml浓度为0.3mol/L的醋酸锌水溶液中,40℃水浴搅拌,用氨水调节pH值,再加入15ml浓度为0.3mol/L的硫化钠水溶液,反应5min后,加入5ml SDS水溶液,待混合均匀后,将该反应液倒入90ml水热釜中。水热釜密闭后放入恒温干燥箱内,在一定温度下恒温反应一定时间。待反应结束,降温至50℃,取出产物。用丙酮,去离子水,乙醇洗涤,离心分离,在50℃下真空干燥2h得到粉体ZnS,存放待用。
10.根据权利要求2所述的GDF15快速定量检测装置的制备方法,其特征在于:步骤(e)所述的预处理的样品垫采用的样品垫处理液由Tris-HCL液、牛血清白蛋白BSA、酪蛋白、表面活性剂烷基酚聚氧乙烯醚组成,其中Tris-HCL液浓度为0.1mol/L,牛血清白蛋白BSA浓度为0.5~1%,酪蛋白浓度为0.1~0.2%、表面活性剂浓度为0.5~1%。
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Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN112698042A (zh) * | 2020-12-17 | 2021-04-23 | 北京赛诺浦生物技术有限公司 | 检测人生长分化因子-15的荧光免疫层析试纸条及其制备方法和应用 |
CN112816705A (zh) * | 2020-12-31 | 2021-05-18 | 北京赛诺浦生物技术有限公司 | 人心肌钙蛋白i、人生长分化因子15以及人d二聚体的三联检测层析试纸条及其应用 |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102652261A (zh) * | 2009-12-18 | 2012-08-29 | 霍夫曼-拉罗奇有限公司 | 用于预测心脏手术患者中的肾衰竭的gdf-15和/或肌钙蛋白t |
CN105445449A (zh) * | 2015-04-04 | 2016-03-30 | 吉林双正医疗科技有限公司 | 唾液尿酸快速半定量检测装置及其制备方法 |
CN206362809U (zh) * | 2016-08-31 | 2017-07-28 | 朱海燕 | 人生长分化因子‑15的检测试纸组件 |
KR101836929B1 (ko) * | 2016-09-23 | 2018-03-09 | 충남대학교산학협력단 | Gdf15 단백질의 발현 수준을 측정하는 제제를 포함하는 돌발성 난청 예후 분석용 키트 |
-
2020
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Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102652261A (zh) * | 2009-12-18 | 2012-08-29 | 霍夫曼-拉罗奇有限公司 | 用于预测心脏手术患者中的肾衰竭的gdf-15和/或肌钙蛋白t |
CN105445449A (zh) * | 2015-04-04 | 2016-03-30 | 吉林双正医疗科技有限公司 | 唾液尿酸快速半定量检测装置及其制备方法 |
CN206362809U (zh) * | 2016-08-31 | 2017-07-28 | 朱海燕 | 人生长分化因子‑15的检测试纸组件 |
KR101836929B1 (ko) * | 2016-09-23 | 2018-03-09 | 충남대학교산학협력단 | Gdf15 단백질의 발현 수준을 측정하는 제제를 포함하는 돌발성 난청 예후 분석용 키트 |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN112698042A (zh) * | 2020-12-17 | 2021-04-23 | 北京赛诺浦生物技术有限公司 | 检测人生长分化因子-15的荧光免疫层析试纸条及其制备方法和应用 |
CN112816705A (zh) * | 2020-12-31 | 2021-05-18 | 北京赛诺浦生物技术有限公司 | 人心肌钙蛋白i、人生长分化因子15以及人d二聚体的三联检测层析试纸条及其应用 |
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