CN110669779A - 一种基于细菌內源同源重组系统的基因组编辑方法 - Google Patents

一种基于细菌內源同源重组系统的基因组编辑方法 Download PDF

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CN110669779A CN201910921907.4A CN201910921907A CN110669779A CN 110669779 A CN110669779 A CN 110669779A CN 201910921907 A CN201910921907 A CN 201910921907A CN 110669779 A CN110669779 A CN 110669779A
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genome editing
bacterial
homologous recombination
cas9
plasmid
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黄潮勇
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    • C12N15/87Introduction of foreign genetic material using processes not otherwise provided for, e.g. co-transformation
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Abstract

细菌是代谢工程中的主要宿主,基因组编辑是细菌工程改造的主要途径,而现有的针对细菌的基因组编辑方法都需要过表达外源的同源重组系统或非同源末端连接系统。本发明公开了一种基于细菌內源同源重组系统的基因组编辑方法。本发明所提供的基因组编辑方法是按照包括以下步骤进行:构建一个双质粒基因组编辑系统,通过转化将该系统导入待编辑的菌株。将含有基因组编辑系统的菌株在液体培养基中培养使其进行繁殖,待细胞数目足够时加入诱导剂诱导CRISPR/Cas9系统表达,随后发生DNA双链切割和修复,实现基因组编辑。本发明先通过细胞繁殖增加细胞的数量和活性再启动基因组编辑,显著提高了基因组编辑效率,并成功在大肠杆菌中实现了基因敲除和大片段删除。

Description

一种基于细菌內源同源重组系统的基因组编辑方法
技术领域
本发明涉及一种基于细菌內源同源重组系统的基因组编辑方法,属于生物工程技术领域。
背景技术
合成生物学是21世纪最重要的生物技术平台,合成生物学在生物能源、生物材料、生物医药、生物修复等领域具有广泛的应用。基因组编辑技术与DNA组装技术、定向进化技术一起组成合成生物学的三大前沿技术。
细菌是合成生物学中的主要宿主生物,对微生物的代谢工程改造是合成生物学中必不可少的环节,而基因组编辑又是细菌代谢工程改造的主要手段。
CRISPR/Cas9技术已经被广泛应用于细菌的基因组编辑,多种基于CRISPR/Cas9技术的细菌基因组编辑方法已被报道。这些方法的原理可以简单概括为:Cas9-sgRNA复合体特异性识别目标DNA并切割产生DNA双链断裂,随后断裂的DNA被修复系统所修复,在修复的过程中完成基因组编辑。然而,这些针对细菌的基因组编辑方法都依赖外源的同源重组系统或非同源末端连接系统来修复被Cas9蛋白切割的基因组DNA,这个限制到目前为止尚未被打破。产生这种依赖的原因是,大部分细菌內源的同源重组系统和非同源末端连接系统在修复DNA双链断裂时活性很弱,这一点与酵母等真核生物不同。
为了打破细菌基因组编辑所受到的这种限制,本发明提出了一种新的方法。使用严谨性强的诱导型启动子控制Cas9和sgRNA的表达,这样一来,只有当加入诱导剂时,CRISPR/Cas9系统才会启动,在此之前,细胞能够正常生长,而不会因为Cas9的切割而死亡。在诱导Cas9和sgRNA表达之前,通过一段时间的液体培养让细胞增殖,在这个过程中,细胞的数量和活性增加。加入诱导剂之后,CRISPR/Cas9系统启动并产生DNA双链断裂,随后细胞內源的DNA修复系统将断裂的DNA修复,实现基因组编辑。绝大部分的细胞因为DNA修复失败而死亡,但由于细胞的基数足够大,仍有大量的修复成功的细胞存活下来。
发明内容
本发明的目的在于提供一种简单高效的细菌基因组编辑方法,解除已有方法对外源修复系统的依赖,加快细菌代谢工程改造的进程。
按照本发明提供的技术方案,一种基于细菌內源同源重组系统的基因组编辑方法,采用以下方法步骤:
1.构建一个以质粒为载体的基因组编辑系统,该系统由Cas9编码基因、sgRNA编码基因和DNA修复模板组成,Cas9编码基因和sgRNA编码基因由诱导型启动子控制。
2.将负载了基因组编辑系统的质粒转化至待编辑的宿主菌株中,得到的转化子在液体培养基中培养使细胞增殖。
3.待细胞增殖至指数期,加入诱导剂诱导Cas9蛋白和sgRNA表达。
4.诱导2–3小时后,将菌液以不同的稀释度涂在含有诱导剂的平板上。
5.从步骤4中的平板上挑取单菌落做PCR验证,获得正确的编辑菌株。
附图说明
图1为针对大肠杆菌构建的双质粒基因组编辑系统。(a)质粒p15A-PBAD-Cas9的图谱。该质粒用于表达Cas9蛋白。(b,c)质粒pSC101-PBAD-sgRNA-Donor的图谱。该质粒用于表达sgRNA和提供DNA修复模板,分为只表达一种sgRNA的pSC101-PBAD-sgRNA-Donor质粒(如图1b)和同时表达两种sgRNA的pSC101-PBAD-sgRNA-Donor质粒(如图1c)。
图2为pSC101-PBAD-sgRNA-Donor质粒的构建流程图
图3为在大肠杆菌中进行基因插入的流程图
图4为在大肠杆菌中进行基因组大片段删除的流程图
图5为基因插入和大片段删除的结果图。(a,b)插入紫色蛋白基因。(c,d)删除100kb基因组片段。
序列表
序列1为质粒pSC101-PBAD-sgRNA-Donor-T1
序列2为质粒pSC101-PBAD-sgRNA-Donor-T2
序列3为质粒pSC101-PBAD-sgRNA-Donor-T3
具体实施方式
下述实例中所使用的实验方法如无特殊说明,均为常规方法。
下述实例中所用的材料、试剂等,如无特殊说明,均可从商业途径获取。
以下实例是对本发明的进一步说明,并不构成对本发明实质内容的限制。
实施实例1:在大肠杆菌MG1655菌株的lacZ基因中插入紫色蛋白基因
构建质粒p15A-PBAD-Cas9,如图1a。该质粒以p15A为复制子,以卡那霉素抗性基因为筛选标记,质粒上带有PBAD启动子控制的Cas9编码基因。该质粒只需要构建一次,进行其他的基因编辑时无需重复构建。
构建表达一种sgRNA的质粒pSC101-PBAD-sgRNA-Donor,如图1b。该质粒以pSC101为复制子,以氨苄青霉素抗性基因为筛选标记,质粒上带有一个PBAD启动子控制的sgRNA编码基因和一段Donor序列(修复模板)。该质粒专门用于在lacZ中插入紫色蛋白基因,其表达的sgRNA特异性靶向lacZ基因的开放阅读框。
构建pSC101-PBAD-sgRNA-Donor质粒之前,需要先选择合适的靶向位点,靶向位点位于待lacZ基因的开放阅读框内,靶向位点的选择原则为(1)效率高(2)脱靶率低。选择靶向位点可借助专门的网站或软件等工具,这里利用的是网站https:// chopchop.cbu.uib.no/#。选择的靶向位点序列为5’-gatgaaagctggctacaggaagg-3’,由protospacer(20bp)和PAM(3bp)组成。在pSC101-PBAD-sgRNA-Donor质粒中,spacer序列为靶向位点中的protospacer序列,即gatgaaagctggctacagga。
构建pSC101-PBAD-sgRNA-Donor质粒时,如图2a所示,以质粒pSC101-PBAD-sgRNA-Donor-T1(见序列1)为出发质粒,通过两次质粒构建在其上依次插入Donor序列和spacer序列。
进行基因组编辑时,如图3所示,先将质粒p15A-PBAD-Cas9转化至MG1655感受态细胞中,在转化产物中加入1mL SOC培养基,37度复苏40分钟后转接至装有4mL LB培养基(含卡那霉素)的摇菌管中,37度培养。当培养至细胞生长指数期时(OD600为0.4–0.6),制备感受态细胞,并将质粒pSC101-PBAD-sgRNA-Donor转化至感受态细胞中,在转化产物中加入1mLSOC培养基,30度复苏40分钟后转接至装有4mL LB培养基(含卡那霉素、氨苄青霉素和葡萄糖)的摇菌管中,30度过夜培养。取1mL过夜培养物转接至装有4mL LB培养基(含卡那霉素和氨苄青霉素)的摇菌管中,30度培养1小时后加入L-阿拉伯糖诱导Cas9和sgRNA表达,继续30度培养2–3小时后取菌液以不同的稀释度涂LB平板(含卡那霉素、氨苄青霉素和L-阿拉伯糖),30度过夜培养后从平板上挑取单菌落验证。菌落PCR结果和测序结果如图5所示。
获得紫色蛋白基因插入成功的菌落后,若要进行新一轮的基因编辑,则将该菌落接种至LB培养基(含卡那霉素),42度培养8小时除去温敏型质粒pSC101-PBAD-sgRNA-Donor后再转入新的pSC101-PBAD-sgRNA-Donor质粒;若不进行新一轮的基因编辑,则将该菌落接种至LB培养基(不含抗生素),40度培养20小时除去质粒p15A-PBAD-Cas9和pSC101-PBAD-sgRNA-Donor。
以上操作过程中所用到的卡那霉素、氨苄青霉素和L-阿拉伯糖的工作浓度分为别0.05g/L、0.1g/L和3g/L。LB培养基的配方为:胰蛋白胨10g/L,酵母提取物5g/L,氯化钠10g/L(固体培养基:琼脂20g/L)。SOC培养基的配方为:胰蛋白胨20g/L,酵母提取物5g/L,氯化钠0.5g/L,氯化钾2.5mM,氯化镁10mM,硫酸镁10mM,葡萄糖20mM。
实施实例2:在大肠杆菌MG1655菌株中敲除100kb基因组片段。
构建质粒p15A-PBAD-Cas9,同[0025]。
构建表达两种sgRNA的质粒pSC101-PBAD-sgRNA-Donor,如图1c。该质粒以pSC101为复制子,以氨苄青霉素抗性基因为筛选标记,质粒上带有两个PBAD启动子控制的sgRNA编码基因和Donor序列。该质粒表达的两种sgRNA特异性靶向100kb基因组片段的两端。
构建pSC101-PBAD-sgRNA-Donor质粒时,如图2b所示,以质粒pSC101-PBAD-sgRNA-Donor-T2(见序列2)为出发质粒,在其上插入Donor序列构成一个中间质粒;以该中间质粒为模板通过PCR扩增得到骨架,以质粒pSC101-PBAD-sgRNA-Donor-T3(见序列3)为模版通过PCR扩增得到插入插入片段;将骨架和插入片段通过DNA组装获得带有Donor序列和两种spacer序列的pSC101-PBAD-sgRNA-Donor质粒。
进行基因组编辑时,同[0029],如图4所示。菌落PCR结果和测序结果如图5所示。
序列表
<110> 北京理工大学
<120> 一种基于细菌内源同源重组系统的基因组编辑方法
<141> 2019-09-20
<160> 3
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 3893
<212> DNA
<213> Escherichia coli
<400> 1
tcagatcctt ccgtatttag ccagtatgtt ctctagtgtg gttcgttgtt tttgcgtgag 60
ccatgagaac gaaccattga gatcatactt actttgcatg tcactcaaaa attttgcctc 120
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ttggtctagg tgattttaat cactatacca attgagatgg gctagtcaat gataattact 1020
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<211> 2998
<212> DNA
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ttacctctgg cggtgataat ggttgcgttt tagagctaga aatagcaagt taaaataagg 2760
ctagtccgtt atcaacttga aaaagtggca ccgagtcggt gcttagcatc caaactcgag 2820
taaggatcat taaggatccc atggtacgcg tgctagaggc atcaaataaa acgaaaggct 2880
cagtcgaaag actgggcctt tcgttttatc tgttgtttgt cggtgaacgc tctcctgagt 2940
aggacaaatc cgccctgcat gtgtcagagg ttttcaccgt catcaccgaa acgcgcga 2998
<210> 3
<211> 3942
<212> DNA
<213> Escherichia coli
<400> 3
tcagatcctt ccgtatttag ccagtatgtt ctctagtgtg gttcgttgtt tttgcgtgag 60
ccatgagaac gaaccattga gatcatactt actttgcatg tcactcaaaa attttgcctc 120
aaaactggtg agctgaattt ttgcagttaa agcatcgtgt agtgtttttc ttagtccgtt 180
acgtaggtag gaatctgatg taatggttgt tggtattttg tcaccattca tttttatctg 240
gttgttctca agttcggtta cgagatccat ttgtctatct agttcaactt ggaaaatcaa 300
cgtatcagtc gggcggcctc gcttatcaac caccaatttc atattgctgt aagtgtttaa 360
atctttactt attggtttca aaacccattg gttaagcctt ttaaactcat ggtagttatt 420
ttcaagcatt aacatgaact taaattcatc aaggctaatc tctatatttg ccttgtgagt 480
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aaaagactta acatgttcca gattatattt tatgaatttt tttaactgga aaagataagg 600
caatatctct tcactaaaaa ctaattctaa tttttcgctt gagaacttgg catagtttgt 660
ccactggaaa atctcaaagc ctttaaccaa aggattcctg atttccacag ttctcgtcat 720
cagctctctg gttgctttag ctaatacacc ataagcattt tccctactga tgttcatcat 780
ctgagcgtat tggttataag tgaacgatac cgtccgttct ttccttgtag ggttttcaat 840
cgtggggttg agtagtgcca cacagcataa aattagcttg gtttcatgct ccgttaagtc 900
atagcgacta atcgctagtt catttgcttt gaaaacaact aattcagaca tacatctcaa 960
ttggtctagg tgattttaat cactatacca attgagatgg gctagtcaat gataattact 1020
agtccttttc ctttgagttg tgggtatctg taaattctgc tagacctttg ctggaaaact 1080
tgtaaattct gctagaccct ctgtaaattc cgctagacct ttgtgtgttt tttttgttta 1140
tattcaagtg gttataattt atagaataaa gaaagaataa aaaaagataa aaagaataga 1200
tcccagccct gtgtataact cactacttta gtcagttccg cagtattaca aaaggatgtc 1260
gcaaacgctg tttgctcctc tacaaaacag accttaaaac cctaaaggct taagtagcac 1320
cctcgcaagc tcggttgcgg ccgcaatcgg gcaaatcgct gaatattcct tttgtctccg 1380
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ctggcagtga atgggggtaa atggcactac aggcgccttt tatggattca tgcaaggaaa 1500
ctacccataa tacaagaaaa gcccgtcacg ggcttctcag ggcgttttat ggcgggtctg 1560
ctatgtggtg ctatctgact ttttgctgtt cagcagttcc tgccctctga ttttccagtc 1620
tgaccacttc ggattatccc gtgacaggtc attcagactg gctaatgcac ccagtaaggc 1680
agcggtatca tcaacggggt ctgacgctca gtggaacgaa aactcacgtt aagggatttt 1740
ggtcatgaga ttatcaaaaa ggatcttcac ctagatcctt ttaaattaaa aatgaagttt 1800
taaatcaatc taaagtatat atgagtaaac ttggtctgac agtagggata acagggtaat 1860
acttttcata ctcccgccat tcagagaaga aaccaattgt ccatattgca tcagacattg 1920
ccgtcactgc gtcttttact ggctcttctc gctaaccaaa ccggtaaccc cgcttattaa 1980
aagcattctg taacaaagcg ggaccaaagc catgacaaaa acgcgtaaca aaagtgtcta 2040
taatcacggc agaaaagtcc acattgatta tttgcacggc gtcacacttt gctatgccat 2100
agcattttta tccataagat tagcggatcc tacctgacgc tttttatcgc aactctctac 2160
tgtttctcca tttaccaatg cttaatcagt gaggcaccta tctcagcgat ctgtctattt 2220
cgttcatcca tagttgcctg actccccgtc gtgtagataa ctacgatacg ggagggctta 2280
ccatctggcc ccagtgctgc aatgataccg cgagacccac gctcaccggc tccagattta 2340
tcagcaataa accagccagc cggaagggcc gagcgcagaa gtggtcctgc aactttatcc 2400
gcctccatcc agtctattaa ttgttgccgg gaagctagag taagtagttc gccagttaat 2460
agtttgcgca acgttgttgc cattgctaca ggcatcgtgg tgtcacgctc gtcgtttggt 2520
atggcttcat tcagctccgg ttcccaacga tcaaggcgag ttacatgatc ccccatgttg 2580
tgcaaaaaag cggttagctc cttcggtcct ccgatcgttg tcagaagtaa gttggccgca 2640
gtgttatcac tcatggttat ggcagcactg cataattctc ttactgtcat gccatccgta 2700
agatgctttt ctgtgactgg tgagtactca accaagtcat tctgagaata gtgtatgcgg 2760
cgaccgagtt gctcttgccc ggcgtcaata cgggataata ccgcgccaca tagcagaact 2820
ttaaaagtgc tcatcattgg aaaacgttct tcggggcgaa aactctcaag gatcttaccg 2880
ctgttgagat ccagttcgat gtaacccact cgtgcaccca actgatcttc agcatctttt 2940
actttcacca gcgtttctgg gtgagcaaaa acaggaaggc aaaatgccgc aaaaaaggga 3000
ataagggcga cacggaaatg ttgaatactc atactcttcc tttttcaata ttattgaagc 3060
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ccattcaggc tgcgcaactg ttgggaaggg cgatcggtgc gggcctcttc gctattacgc 3240
cagctggcga aagggggatg tgctgcaagg cgattaagtt gggtaacgcc agggttttcc 3300
cagtcacgac gttgtaaaac gacggccagt gccaagcttg catgcctgca ggtcgactct 3360
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aattgttatc cgctcacaat tccacacaac atacgagccg gaagcataaa gtgtaaagcc 3480
tggggtgcct aatgagtgag ctaactcaca ttaattgcgt tgcgctcact gcccgctttc 3540
cagtcgggaa acctgtcata acaccgtgcg tgttgactat tttacctctg gcggtgataa 3600
tggttgcgtt ttagagctag aaatagcaag ttaaaataag gctagtccgt tatcaacttg 3660
aaaaagtggc accgagtcgg tgcttagcat ccaaactcga gtaaggatca ttaaggatcc 3720
catggtacgc gtgctagagg catcaaataa aacgaaaggc tcagtcgaaa gactgggcct 3780
ttcgttttat ctgttgtttg tcggtgaacg ctctcctgag taggacaaat ccgccccatg 3840
ggtatggaca gttttccctt tgatatgtaa cggtgaacag ttgttctact tttgtttgtt 3900
agtcttgatg cttcactgat agatacaaga gccataagaa cc 3942

Claims (6)

1.一种基于细菌內源同源重组系统的基因组编辑方法,其特征是将负载了基因组编辑系统的质粒转化至宿主细胞之后先不启动基因组编辑系统,而是通过细胞繁殖增加细胞的数量和活性,细胞繁殖一段时间之后再启动基因组编辑系统,通过CRISPR/Cas9系统对DNA的切割和內源同源重组系统对DNA的修复实现对细菌基因组的高效编辑。
2.如权利要求1所述一种基于细菌內源同源重组系统的基因组编辑方法,其特征在于采用如下步骤:
A.构建一个以质粒为载体的基因组编辑系统,该系统由Cas9编码基因、sgRNA编码基因和DNA修复模板组成,Cas9编码基因和sgRNA编码基因由诱导型启动子控制。
B.将负载了基因组编辑系统的质粒转化至待编辑的宿主菌株中,得到的转化子在液体培养基中培养使细胞增殖。
C.待细胞增殖至指数期,加入诱导剂诱导Cas9蛋白和sgRNA表达。
D.诱导2–3小时后,将菌液以不同的稀释度涂在含有诱导剂的平板上。
E.从步骤D中的平板上挑取单菌落做PCR验证,获得正确的编辑菌株。
3.如权利要求2所述的一种基于细菌內源同源重组系统的基因组编辑方法,其特征在于步骤A中,所述的质粒载体为单质粒载体或双质粒载体,所述的诱导型启动子包括但不限于PBAD等所有严谨性强的诱导型启动子。
4.如权利要求2所述的一种基于细菌內源同源重组系统的基因组编辑方法,其特征在于步骤A中,构建基因组编辑系统时,只利用Cas9编码基因和sgRNA编码基因,而没有利用任何λ-Red等外源修复蛋白的编码基因,所利用的Cas9包括SpCas9和所有SpCas9的突变体。
5.如权利要求2所述的一种基于细菌內源同源重组系统的基因组编辑方法,其特征在于步骤B中,所述的宿主菌株包括但不限于大肠杆菌等所有可以采用CRISPR/Cas9技术的细菌菌株。
6.如权利要求2所述的一种基于细菌內源同源重组系统的基因组编辑方法,其特征在于步骤C中,诱导剂诱导发生在细胞增殖至指数期时。
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