CN110585298A - 具有抗急性痛风性关节炎的药物、制备方法及其应用 - Google Patents

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Abstract

本发明涉及一种具有抗急性痛风性关节炎的药物、制备方法及应用，该药物的有效成分为短穗兔耳草总提取物浸膏以及短穗兔耳草极性部位浸膏；其中该药物为玄参科植物短穗兔耳草（Lagotis brachystachys Maxim）的干燥全草；短穗兔耳草极性部位浸膏的制备流程如下：由短穗兔耳草经乙醇加热回流提取、减压浓缩得到所述短穗兔耳草总提取物浸膏；将短穗兔耳草总提取物浸膏经大孔吸附树脂柱D101色谱进行吸附，再经蒸馏水以及各不同体积分数的乙醇进行梯度洗脱，收集得到对应的洗脱液，经减压回收得到所述短穗兔耳草极性部位浸膏。本发明提出的具有抗急性痛风性关节炎的药物，能很好地治疗痛风性关节炎，具有广阔的应用前景。

Description

具有抗急性痛风性关节炎的药物、制备方法及其应用
技术领域
本发明涉及药物制备技术领域，特别涉及一种具有抗急性痛风性关节炎的药物、制备方法及其应用。
背景技术
藏医药作为我国医药学中仅次于中医药学的一门民族医药，历史悠久，是传统医学的重要组成部分。藏医药理论体系完整、健全，药物来源纯净且疗效显著，在结合现代医学的基础上发挥了自己的独特优势。
痛风性关节炎是一种极为常见的疾病。具体的，急性痛风性关节炎是由于体内嘌呤代谢增加，尿酸产生过多或排泄不良而致血中尿酸升高，尿酸盐结晶沉积在关节滑膜、关节囊或其他组织中而引起的炎性疾病。临床表现为关节红肿热痛，活动受限；严重者可引起关节畸形，甚至影响患者的日常生活。目前临床上用于治疗急性痛风性关节炎的药物主要包括秋水仙碱、非甾体抗炎类药物以及糖皮质激素等。然而由于其在使用过程中出现的消化系统损害和肝肾毒等不良反应限制了其在临床上的应用。短穗兔耳草，藏药名“直打洒曾”，为玄参科植物短穗兔耳草的干燥全草，主要分布于甘肃、四川、青海和西藏等地。《晶珠本草》记载短穗兔耳草味苦、平，能清肺胃瘀血、排脓，疗肺痈咳逆、胸满吐脓血等症，具有清热去火、消炎解毒的功效。《中华本草》记载短穗兔耳草具有清肺止咳、降压调经的功效，主治肺热咳嗽，高血压和月经不调等。
然而，现有的药物中，仍未有以短穗兔耳草用于治疗急性痛风性关节炎的报道。
发明内容
基于此，本发明的目的是为了提供一种以短穗兔耳草为原料制成的药物，以满足急性痛风性关节炎的治疗需求。
本发明提出一种具有抗急性痛风性关节炎的药物，其中，其有效成分为短穗兔耳草总提取物浸膏以及短穗兔耳草极性部位浸膏，所述短穗兔耳草极性部位浸膏的制备流程如下：
由短穗兔耳草经乙醇加热回流提取、减压浓缩得到所述短穗兔耳草总提取物浸膏；
将所述短穗兔耳草总提取物浸膏经大孔吸附树脂柱D101色谱进行吸附，再经蒸馏水以及各不同体积分数的乙醇进行梯度洗脱，收集得到对应的洗脱液，经减压回收得到所述短穗兔耳草极性部位浸膏。
本发明提出的具有抗急性痛风性关节炎的药物，以短穗兔耳草为原料，经乙醇加热回流提取、减压浓缩得到短穗兔耳草总提取物浸膏，然后将得到的短穗兔耳草总提取物浸膏经大孔吸附树脂柱D101色谱进行吸附，并进行洗脱后对洗脱液进行减压回收得到短穗兔耳草极性部位浸膏。经测试，上述的短穗兔耳草总提取物浸膏以及短穗兔耳草极性部位浸膏，可对动物的急性痛风性关节炎进行有效治疗，满足了实际治疗应用需求。
所述具有抗急性痛风性关节炎的药物，其中，所述短穗兔耳草极性部位浸膏的制备方法包括如下步骤：
将短穗兔耳草剪碎后用75%的乙醇进行加热回流提取，并进行减压浓缩得到所述短穗兔耳草总提取物浸膏；
将所述短穗兔耳草总提取物浸膏经大孔吸附树脂柱D101色谱进行吸附，然后依次经蒸馏水、30%的乙醇、50%的乙醇、95%的乙醇进行梯度洗脱，分别收集得到洗脱液，并分别进行减压回收得到所述短穗兔耳草极性部位浸膏。
本发明还提出一种具有抗急性痛风性关节炎的药物的制备方法，其中，所述具有抗急性痛风性关节炎的药物的有效成分为短穗兔耳草总提取物浸膏以及短穗兔耳草极性部位浸膏，所述短穗兔耳草极性部位浸膏的制备方法包括如下步骤：
将短穗兔耳草的干燥药材剪碎，以重量比为10倍的75%乙醇进行加热回流提取3次，每次加热回流提取时长为2h，合并减压浓缩得到短穗兔耳草总提取物浸膏；
将所述短穗兔耳草总提取物浸膏经大孔吸附树脂柱D101色谱进行吸附，依次经蒸馏水、30%的乙醇、50%的乙醇、95%的乙醇进行梯度洗脱，收集得到洗脱液，控制在第一压强、第一预设温度的水浴条件下，经旋转蒸发仪减压浓缩得到所述短穗兔耳草极性部位浸膏。
所述具有抗急性痛风性关节炎的药物的制备方法，其中，所述控制在第一压强、第一预设温度的水浴条件下，经旋转蒸发仪减压浓缩得到所述短穗兔耳草极性部位浸膏的方法包括如下步骤：
控制在压强为40mbar、温度为55℃的水浴条件下，经旋转蒸发仪减压浓缩得到所述短穗兔耳草极性部位浸膏。
所述具有抗急性痛风性关节炎的药物的制备方法，其中，所述短穗兔耳草总提取物浸膏的制备方法包括如下步骤：
取117g短穗兔耳草的干燥药材进行粉碎，以重量比10倍的75%乙醇进行加热回流提取3次，每次加热回流提取时长为2h，合并减压浓缩得到所述短穗兔耳草总提取物浸膏。
所述具有抗急性痛风性关节炎的药物的制备方法，其中，所述短穗兔耳草极性部位浸膏的制备方法包括如下步骤：
取4.7kg的短穗兔耳草的干燥药材进行粉碎，以重量比10倍的75%乙醇进行加热回流提取3次，每次加热回流提取时长为2h，合并滤液减压浓缩得到所述短穗兔耳草总提取物浸膏；
将所述短穗兔耳草总提取物浸膏加入重量比为0.5倍的水中进行溶解后，经大孔吸附树脂柱D101色谱进行吸附，依次用蒸馏水、30%的乙醇、50%的乙醇、95%的乙醇进行梯度洗脱，收集洗脱液，经减压浓缩干燥后得到不同极性部位的短穗兔耳草浸膏。
所述具有抗急性痛风性关节炎的药物的制备方法，其中，经蒸馏水进行梯度洗脱得到的所述短穗兔耳草极性部位浸膏的重量为1443g，对应的提取率为30.7%；经30%的乙醇进行梯度洗脱得到的所述短穗兔耳草极性部位浸膏的重量为218.4g，对应的提取率为4.64%；经50%的乙醇进行梯度洗脱得到的所述短穗兔耳草极性部位浸膏的重量为164.8g，对应的提取率3.50%；经95%的乙醇进行梯度洗脱得到的所述短穗兔耳草极性部位浸膏的重量为43.86g，对应的提取率为0.93%。
本发明还提出一种具有抗急性痛风性关节炎的药物的应用，其中，所述药物为如上所述的具有抗急性痛风性关节炎的药物，所述药物的有效成分为短穗兔耳草总提取物浸膏以及短穗兔耳草极性部位浸膏，应用所述短穗兔耳草总提取物浸膏抑制动物的急性痛风性关节炎。
所述具有抗急性痛风性关节炎的药物的应用，其中，应用所述短穗兔耳草极性部位浸膏降低动物的踝关节肿胀度。
本发明的附加方面和优点将在下面的描述中部分给出，部分将从下面的描述中变得明显，或通过本发明的实践了解到。
附图说明
图1为本发明一实施例提出的短穗兔耳草总提取物浸膏对急性痛风性关节炎大鼠TLR2、MyD88、NF-κB和NALP3蛋白表达影响图；
图2为本发明一实施例提出的短穗兔耳草极性部位浸膏对大鼠滑膜组织中TLR2、TLR4、NF-κB和NALP3蛋白表达影响图；
图3为本发明一实施例提出的短穗兔耳草极性部位浸膏对急性痛风性关节炎大鼠TLR2，TLR4，NF-κB和NALP3蛋白表达影响图。
具体实施方式
为了便于理解本发明，下面将参照相关附图对本发明进行更全面的描述。附图中给出了本发明的首选实施例。但是，本发明可以以许多不同的形式来实现，并不限于本文所描述的实施例。相反地，提供这些实施例的目的是使对本发明的公开内容更加透彻全面。
除非另有定义，本文所使用的所有的技术和科学术语与属于本发明的技术领域的技术人员通常理解的含义相同。本文中在本发明的说明书中所使用的术语只是为了描述具体的实施例的目的，不是旨在于限制本发明。本文所使用的术语“及／或”包括一个或多个相关的所列项目的任意的和所有的组合。
现有的药物中，仍未有以短穗兔耳草用于治疗急性痛风性关节炎的报道。基于此，本发明提出一种具有抗急性痛风性关节炎的药物，其有效成分为短穗兔耳草总提取物浸膏以及短穗兔耳草极性部位浸膏。
其中，短穗兔耳草极性部位浸膏的制备流程如下：
（1）将短穗兔耳草的干燥药材剪碎，以重量比为10倍的75%乙醇进行加热回流提取3次，每次加热回流提取时长为2h，合并减压浓缩得到短穗兔耳草总提取物浸膏。
（2）将短穗兔耳草总提取物浸膏经大孔吸附树脂柱D101色谱进行吸附，依次经蒸馏水、30%的乙醇、50%的乙醇、95%的乙醇进行梯度洗脱，收集得到洗脱液，控制在40mbar、55℃的水浴条件下，经旋转蒸发仪减压浓缩得到短穗兔耳草极性部位浸膏。
本发明提出的具有抗急性痛风性关节炎的药物，以短穗兔耳草为原料，经乙醇加热回流提取、减压浓缩得到短穗兔耳草总提取物浸膏，然后将得到的短穗兔耳草总提取物浸膏经大孔吸附树脂柱D101色谱进行吸附，并进行洗脱后对洗脱液进行减压回收得到短穗兔耳草极性部位浸膏。经测试，上述的短穗兔耳草总提取物浸膏以及短穗兔耳草极性部位浸膏，可对动物的急性痛风性关节炎进行有效治疗，满足了实际治疗应用需求。
下面以几个具体的实施例对本发明的技术方案进行更加详细地论述说明。
实施例一
本发明第一实施例提出了短穗兔耳草总提取物浸膏的制备方法，具体包括如下步骤：
（1）取117g短穗兔耳草的干燥药材进行粉碎，以重量比10倍的75%乙醇进行加热回流提取3次，每次加热回流提取时长为2h，合并减压浓缩得到所述短穗兔耳草总提取物浸膏。
实施例二
本发明第二实施例提出的短穗兔耳草极性部位浸膏的制备方法，具体包括如下步骤：
（1）取4.7kg的短穗兔耳草的干燥药材进行粉碎，以重量比10倍的75%乙醇进行加热回流提取3次，每次加热回流提取时长为2h，合并滤液减压浓缩得到短穗兔耳草总提取物浸膏；
（2）将短穗兔耳草总提取物浸膏加入重量比为0.5倍的水中进行溶解后，经大孔吸附树脂柱D101色谱进行吸附，依次用蒸馏水、30%的乙醇、50%的乙醇、95%的乙醇进行梯度洗脱，收集洗脱液，经减压浓缩干燥后得到不同极性部位的短穗兔耳草浸膏。
在此需要说明的是，在本实施例中，填充大孔树脂D101的重量为短穗兔耳草总提物浸膏的3倍。与此同时，经蒸馏水进行梯度洗脱得到的短穗兔耳草极性部位浸膏的重量为1443g，对应的提取率为30.7%；经30%的乙醇进行梯度洗脱得到的短穗兔耳草极性部位浸膏的重量为218.4g，对应的提取率为4.64%；经50%的乙醇进行梯度洗脱得到的短穗兔耳草极性部位浸膏的重量为164.8g，对应的提取率3.50%；经95%的乙醇进行梯度洗脱得到的短穗兔耳草极性部位浸膏的重量为43.86g，对应的提取率为0.93%。其中提取率为不同极性部位得到的浸膏量与生药材总量的比值。
实施例三
在本实施例中，将上述实施例一制备得到的短穗兔耳草总提取物浸膏进行抗急性痛风性关节炎的药效学实验，具体的实验方法如下：
实验方法：将60只SD大鼠，雄性，随机均匀分成6组（n=10代表每组的数量为10只），分为正常组（大鼠右后踝关节注射0.1ml的氯化钠溶液+10ml·kg-1蒸馏水灌胃）、模型组（大鼠右后踝关节注射0.1ml的50mg.ml-1的尿酸钠溶液+10ml·kg-1的蒸馏水灌胃）、阳性药组（大鼠右后踝关节注射0.1ml的50mg.ml-1的尿酸钠溶液+0.3 mg·kg-1的秋水仙碱灌胃）、短穗兔耳草低剂量组（大鼠右后踝关节注射0.1ml的50mg.ml-1的尿酸钠溶液+ 0.8g·kg-1的短穗兔耳草总提取物浸膏灌胃）、短穗兔耳草中剂量组（大鼠右后踝关节注射0.1ml的50mg.ml-1的尿酸钠溶液+1.6g·kg-1的短穗兔耳草总提取物浸膏灌胃）以及短穗兔耳草高剂量组（大鼠右后踝关节注射0.1ml的50mg.ml-1的尿酸钠溶液+3.2g·kg-1的短穗兔耳草总提取物浸膏灌胃）。其中，尿酸钠的造模剂量通过中国知网查文献所得，短穗兔耳草的给药剂量按照《新华本草纲要》记载的用药剂量10~15g计算，取记载的最大用药量15g根据体表面积换算法（人的体重按60kg计算）得到大鼠短穗兔耳草灌胃的中剂量，再根据1:2:4的比例设置低中高剂量。
具体的，每日上午各给药组按10ml·kg-1给予相应的药物灌胃，正常组给予等量的蒸馏水灌胃，连续给药7天，根据参考文献于第5天给药后1小时向各组（正常组除外）大鼠右后踝关节注射0.1ml的50mg.ml-1尿酸钠溶液建立急性痛风性关节炎模型，正常组注射等体积的无菌氯化钠溶液。末次给药后通过0.35ml·kg-1的水合氯醛麻醉大鼠，腹主动脉取血，检测血清肿瘤坏死因子α(TNF-α）的含量；并取大鼠踝关节滑膜组织，测Toll样受体2（TLR2）、Toll样受体4（TLR4）、髓样分化因子88（MyD88）、核转录因子κB（NF-κB）以及NOD样受体蛋白3（NALP3）蛋白表达。
需要指出的是，造模前（0h）用足趾容积测量仪测量大鼠右后踝关节肿胀度，造模后于各时间点（2h、4h、6h、8h、12h、16h、24h以及48h）检测大鼠右后踝关节容积，根据如下公式计算大鼠踝关节肿胀度：
如上所述，取血清，检测血清中炎症因子TNF-α含量，具体如表一所示：
表1：短穗兔耳草总提取物浸膏对大鼠的急性痛风性关节炎的血清TNF-α的影响
与此同时，取滑膜组织，测Toll样受体2（TLR2）、Toll样受体4（TLR4）、髓样分化因子88（MyD88）、核转录因子κB（NF-κB）以及NOD样受体蛋白3（NALP3）蛋白表达。如图1所示，图1为短穗兔耳草总提取物浸膏对急性痛风性关节炎大鼠TLR2、MyD88、NF-κB、NALP3蛋白表达影响。在图1中，A表示正常组；B表示模型组；C表示阳性药组；D表示短穗兔耳草低剂量组；E表示短穗兔耳草中剂量组；F表示短穗兔耳草高剂量组。
需要说明的是，得出的实验结果是根据SPSS 21.0统计软件采用One-Way ANOVA分析方法得到，结果以表示，P<0.05表示结果差异显著，P<0.01表示差异极显著，如表1-3。图1-3采用image J软件对蛋白条带进行灰度值扫描，之后用Graphpad prism 7.0进行数据处理作图，采用One-Way ANOVA分析，P<0.05表示结果差异显著，P<0.01表示差异极显著。
从图1中可以看出：与正常组相比，短穗兔耳草急性痛风性关节炎的模型组的滑膜组织中TLR2、TLR4、MyD88、NF-κB和NALP3水平明显上调，差异具统计学意义（P<0.01）。与模型组比较，中剂量组、高剂量组的滑膜组织中TLR2、TLR4、MyD88、NF-κB蛋白表达水平均显著下调，差异具统计学意义（P<0.05或P<0.01），低剂量组较模型组虽无显著性差异，但也存下调趋势，说明短穗兔耳草总提取物浸膏对大鼠的急性痛风性关节炎存在一定的治疗效果。
与此同时，在本实施例中，还对短穗兔耳草总提取物浸膏对大鼠右后踝关节肿胀度（%）进行了研究。具体结果如下表二所示：
表2：短穗兔耳草总提取物浸膏对大鼠痛风性关节炎不同时间踝关节肿胀度（%）的影响
实验结果：短穗兔耳草总提取物浸膏可以降低大鼠急性痛风性关节炎的血清中炎症因子TNF-α的水平，能下调滑膜组织中TLR2、TLR4、MyD88、NF-κB和NALP3的蛋白表达；尤其中高剂量组效果较好，同时能够减缓急性痛风性关节炎的踝关节肿胀度。
实施例四
在本实施例中，将上述实施例二制备得到的短穗兔耳草极性部位浸膏对抗急性痛风性关节的有效部位进行筛选实验，具体的实验方法如下：
实验方法：
将88只SD大鼠，雄性，随机均匀分成11组（n=8代表每组的数量为8只），分为正常组、模型组、阳性药组（注射0.3 mg·kg-1的秋水仙碱）、短穗兔耳草水部位高剂量组、短穗兔耳草水部位低剂量组；30%的乙醇部位高剂量组、30%的乙醇部位低剂量组；50%的乙醇部位高剂量组、50%的乙醇部位低剂量组；95%的乙醇部位高剂量组以及95%的乙醇部位低剂量组。在此需要说明的是，例如，30%的乙醇部位高剂量组表示的为利用30%的乙醇对短穗兔耳草总提取物浸膏进行梯度洗脱，经减压浓缩干燥后得到不同极性部位的短穗兔耳草浸膏。
具体的，每日上午各给药组按10ml·kg-1给予相应的药物灌胃，正常组给予等量的蒸馏水灌胃，连续给药7天，于第5天给药后1小时向各组（正常组除外）大鼠右后踝关节注射0.1ml（50mg·ml-1）尿酸钠溶液建立急性痛风性关节炎模型，正常组注射等体积的无菌氯化钠溶液。末次给药后通过0.35ml·kg-1的水合氯醛麻醉大鼠。与此同时，取大鼠踝关节滑膜组织，测TLR2、TLR4、MyD88、NF-κB以及NALP3蛋白表达。造模前（0h）用足趾容积测量仪测量大鼠右后踝关节肿胀度，造模后于各时间点（2h、4h、6h、8h、12h、16h、24h、48h）检测大鼠右后踝关节容积，根据如下公式计算大鼠踝关节肿胀度：
与此同时，取滑膜组织，测Toll样受体2（TLR2）、Toll样受体4（TLR4）、核转录因子κB（NF-κB）和NOD样受体蛋白3（NALP3）蛋白表达。具体的，从图2中可以看出，A表示正常组；B表示模型组；C表示阳性药组；D表示30%乙醇部位低剂量组；E表示30%乙醇部位高剂量组；F表示50%乙醇部位低剂量组；G表示50%乙醇部位高剂量组；H表示95%乙醇部位低剂量组；I.表示95%乙醇部位高剂量组；J表示水部位低剂量组；K表示水部位高剂量组。
与此同时，在本实施例中，还对短穗兔耳草极性部位浸膏对大鼠踝关节肿胀度（%）进行了研究。具体结果如下表三所示：
表3：短穗兔耳草极性部位浸膏对大鼠痛风性关节炎不同时间踝关节肿胀度（%）的影响
实验结果：与正常组相比，TLR2，TLR4，NF-κB以及NALP3蛋白表达明显上调（P<0.05，P<0.01）；与模型组相比，各极性部位都可以下调NALP3，TLR2的蛋白水平（P<0.01），但30%乙醇部位尤其下调明显；与此同时，30%乙醇部位能使TLR4，NF-κB蛋白表达水平下调（P<0.05，P<0.01）。
此外，表三结果显示：在36~48小时内，短穗兔耳草30%和50%乙醇部位能使大鼠踝关节肿胀率下降（P<0.05，P<0.01）。因此，可确定30%的乙醇部位为藏药短穗兔耳草抗尿酸钠所致急性痛风性关节炎的有效部位，也即通过30%的乙醇洗脱后制备得到的短穗兔耳草极性部位浸膏，对急性痛风性关节炎具有最显著的效果。
以上所述实施例仅表达了本发明的几种实施方式，其描述较为具体和详细，但并不能因此而理解为对本发明专利范围的限制。应当指出的是，对于本领域的普通技术人员来说，在不脱离本发明构思的前提下，还可以做出若干变形和改进，这些都属于本发明的保护范围。因此，本发明专利的保护范围应以所附权利要求为准。

Claims (8)

1.一种具有抗急性痛风性关节炎的药物，其特征在于，其有效成分为短穗兔耳草总提取物浸膏以及短穗兔耳草极性部位浸膏，所述短穗兔耳草极性部位浸膏的制备流程如下：
由短穗兔耳草经乙醇加热回流提取、减压浓缩得到所述短穗兔耳草总提取物浸膏；
将所述短穗兔耳草总提取物浸膏经大孔吸附树脂柱D101色谱进行吸附，再经蒸馏水以及各不同体积分数的乙醇进行梯度洗脱，收集得到对应的洗脱液，经减压回收得到所述短穗兔耳草极性部位浸膏。
2.根据权利要求1所述的具有抗急性痛风性关节炎的药物，其特征在于，所述短穗兔耳草极性部位浸膏的制备方法包括如下步骤：
将短穗兔耳草剪碎后用75%的乙醇进行加热回流提取，并进行减压浓缩得到所述短穗兔耳草总提取物浸膏；
将所述短穗兔耳草总提取物浸膏经大孔吸附树脂柱D101色谱进行吸附，然后依次经蒸馏水、30%的乙醇、50%的乙醇、95%的乙醇进行梯度洗脱，分别收集得到洗脱液，并分别进行减压回收得到所述短穗兔耳草极性部位浸膏。
3.一种具有抗急性痛风性关节炎的药物的制备方法，其特征在于，所述具有抗急性痛风性关节炎的药物的有效成分为短穗兔耳草总提取物浸膏以及短穗兔耳草极性部位浸膏，所述短穗兔耳草极性部位浸膏的制备方法包括如下步骤：
将短穗兔耳草的干燥药材剪碎，以重量比为10倍的75%乙醇进行加热回流提取3次，每次加热回流提取时长为2h，合并减压浓缩得到短穗兔耳草总提取物浸膏；
将所述短穗兔耳草总提取物浸膏经大孔吸附树脂柱D101色谱进行吸附，依次经蒸馏水、30%的乙醇、50%的乙醇、95%的乙醇进行梯度洗脱，收集得到洗脱液，控制在第一压强、第一预设温度的水浴条件下，经旋转蒸发仪减压浓缩得到所述短穗兔耳草极性部位浸膏。
4.根据权利要求3所述的具有抗急性痛风性关节炎的药物的制备方法，其特征在于，所述控制在第一压强、第一预设温度的水浴条件下，经旋转蒸发仪减压浓缩得到所述短穗兔耳草极性部位浸膏的方法包括如下步骤：
控制在压强为40mbar、温度为55℃的水浴条件下，经旋转蒸发仪减压浓缩得到所述短穗兔耳草极性部位浸膏。
5.根据权利要求3所述的具有抗急性痛风性关节炎的药物的制备方法，其特征在于，所述短穗兔耳草总提取物浸膏的制备方法包括如下步骤：
取117g短穗兔耳草的干燥药材进行粉碎，以重量比10倍的75%乙醇进行加热回流提取3次，每次加热回流提取时长为2h，合并减压浓缩得到所述短穗兔耳草总提取物浸膏。
6.根据权利要求3所述的具有抗急性痛风性关节炎的药物的制备方法，其特征在于，所述短穗兔耳草极性部位浸膏的制备方法包括如下步骤：
取4.7kg的短穗兔耳草的干燥药材进行粉碎，以重量比10倍的75%乙醇进行加热回流提取3次，每次加热回流提取时长为2h，合并滤液减压浓缩得到所述短穗兔耳草总提取物浸膏；
将所述短穗兔耳草总提取物浸膏加入重量比为0.5倍的水中进行溶解后，经大孔吸附树脂柱D101色谱进行吸附，依次用蒸馏水、30%的乙醇、50%的乙醇、95%的乙醇进行梯度洗脱，收集洗脱液，经减压浓缩干燥后得到不同极性部位的短穗兔耳草浸膏。
7.根据权利要求6所述的具有抗急性痛风性关节炎的药物的制备方法，其特征在于，经蒸馏水进行梯度洗脱得到的所述短穗兔耳草极性部位浸膏的重量为1443g，对应的提取率为30.7%；经30%的乙醇进行梯度洗脱得到的所述短穗兔耳草极性部位浸膏的重量为218.4g，对应的提取率为4.64%；经50%的乙醇进行梯度洗脱得到的所述短穗兔耳草极性部位浸膏的重量为164.8g，对应的提取率3.50%；经95%的乙醇进行梯度洗脱得到的所述短穗兔耳草极性部位浸膏的重量为43.86g，对应的提取率为0.93%。
8.一种用于制备防治急性痛风性关节炎药物的应用，其特征在于，所述药物为如权利要求1或2所述的具有抗急性痛风性关节炎的药物，所述药物的有效成分为短穗兔耳草总提取物浸膏以及短穗兔耳草极性部位浸膏，应用所述短穗兔耳草总提取物浸膏、所述短穗兔耳草极性部位浸膏中的至少一种抑制动物的急性痛风性关节炎。
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