CN110468124A - 一种维氏气单胞菌总rna提取方法 - Google Patents

一种维氏气单胞菌总rna提取方法 Download PDF

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Abstract

本发明涉及一种维氏气单胞菌总RNA提取方法,包括如下步骤:取处于对数生长期的维氏气单胞菌,离心,弃掉培养基,加溶菌酶,振荡均匀,其中,溶菌酶的添加量为300μL,溶菌酶的浓度介于3‑12mg/mL;加入900μL的Bμffer Rlysis‑B溶液,室温放置3分钟;加入200μL的氯仿,充分混匀,12000rpm、4摄氏度离心5分钟,取上清液;加入上清液体积1/3的无水乙醇,充分混匀,室温静置3分钟或在‑20摄氏度下放置30min后,12000rpm、4摄氏度离心5分钟,小心倒掉上清液;以为700μL、浓度为75%的乙醇溶液洗涤沉淀,离心,小心倒掉上清液;室温倒置离心管,尽可能使残存的乙醇彻底挥发,加入30‑50μL DEPC水溶解沉淀,立即使用或‑70摄氏度长期保存。

Description

一种维氏气单胞菌总RNA提取方法
技术领域
本发明涉及基因工程分子提取技术领域,具体涉及一种维氏气单胞菌总RNA提取方法。
背景技术
维氏气单胞菌(Aeromonas veronii)属革兰氏阴性菌,对环境具有较强的适应性,广泛存在于淡水及河口等环境中;维氏气单胞菌是一种重要的、兽及水生生物共患病原菌,可引起人类胃肠炎、腹膜炎、败血症和外伤感染等,严重威胁着人类健康,而且给水产养殖业造成了巨大经济损失。
因此,针对该菌中引起的相关疾病的防治工作中,及早诊断是控制疫情的关键环节,除了对症状的观察外,直接针对病原微生物的分离检测显得尤为重要。
已有许多提取革兰氏阴性菌总RNA的试剂盒,然而,利用这些试剂盒提取维氏气单胞菌时,其最终获得总RNA浓度很低,平均浓度只有20ng/μL左右,完全不能满足反转录实验体系的要求。
发明内容
为解决现有技术存在的不足,本发明提供了一种维氏气单胞菌总RNA提取方法,包括如下步骤:
步骤S1:取处于对数生长期的维氏气单胞菌,8000rpm、4摄氏度离心1分钟,弃掉培养基,加预定量溶菌酶,振荡均匀,其中,针对LB培养基培养的维氏气单胞菌,获取菌液500μL,针对M9培养基培养的维氏气单胞菌,获取菌液1-1.5mL;溶菌酶的添加量介于250-350μL,溶菌酶的浓度介于3-12mg/mL;
步骤S2:向步骤S1所得溶液中加入800-1000μL的Bμffer Rlysis-B溶液振荡均匀,室温放置3分钟;
步骤S3:向步骤S2所获得的裂解液中加入150-250μL的氯仿,充分混匀,12000rpm、4摄氏度离心5分钟,取上清液;
步骤S4:向上清液中加入其1/3体积的无水乙醇,充分混匀,室温静置3分钟或在-20摄氏度下放置30min后,12000rpm、4摄氏度离心5分钟,小心倒掉上清液;
步骤S5:以体积介于600-800μL、浓度介于70-80%的乙醇溶液洗涤沉淀,12000rpm、4摄氏度离心3分钟,小心倒掉上清液,重复此步骤1-2次;
步骤S6:室温倒置离心管,尽可能使残存的乙醇彻底挥发,加入30-50μL DEPC水溶解沉淀,立即使用或-70摄氏度长期保存。
其中,所述步骤S1还包括,在添加溶菌酶溶解后,另外加入10-20μL乙酸钠及30-60μL 10%SDS溶液。
其中,针对LB培养基培养的维氏气单胞菌,在添加溶菌酶溶解后,另外加入10μL乙酸钠及30μL 10%SDS溶液;针对M9培养基培养的维氏气单胞菌,在添加溶菌酶溶解后,另外加入20μL乙酸钠及60μL 10%SDS溶液。
其中,在添加溶解酶溶解后,所添加的乙酸钠的摩尔浓度为3M。
其中,所述步骤S1中,溶菌酶的添加量为300μL;针对LB培养基培养的维氏气单胞菌,所添加的溶菌酶的浓度介于3-6mg/mL;针对M9培养基培养的维氏气单胞菌,所添加的溶菌酶的浓度介于9-12mg/mL。
其中,所述步骤S1中,针对LB培养基培养的维氏气单胞菌,所添加的溶菌酶的浓度为5mg/mL;针对M9培养基培养的维氏气单胞菌,所添加的溶菌酶的浓度为10mg/mL。
其中,所述步骤S2中,添加的Bμffer Rlysis-B溶液体积为900μL;
所述步骤S3中,添加的氯仿溶液体积为200μL;
所述步骤S5中,添加的乙醇溶液体积为700μL,浓度为75%。
其中,所述步骤S5中,所添加的乙醇溶液通过用DEPC水配制。
其中,所述步骤S4中,针对LB培养基培养的维氏气单胞菌,室温静置3分钟后离心,针对M9培养基培养的维氏气单胞菌,-20摄氏度下放置30min后离心。本发明提供的维氏气单胞菌总RNA提取方法,最终得到的总RNA浓度较已有技术有明显提高,且避免了已有技术存在的降解现象,完全能够满足反转录的实验要求。
附图说明
图1:本发明第一实施例提取的总RNA凝胶电泳图谱。
图2:本发明第二实施例提取的总RNA凝胶电泳图谱。
图3:本发明第三实施例提取的总RNA凝胶电泳图谱。
图4:本发明比较例提取的总RNA凝胶电泳图谱。
具体实施方式
为了对本发明的技术方案及有益效果有更进一步的了解,下面结合附图详细说明本发明的技术方案及其产生的有益效果。
本发明对已有的革兰氏阴性菌RNA提取试剂盒进行改进,提供了一种新的维氏气单胞菌总RNA提取方法,通过增加细胞破壁程度,大幅度提高了最终获取的维氏气单胞菌总RNA浓度,且避免了RNA降解的情况。
本发明的较佳实施例如下:
实施例1:
一种维氏气单胞菌总RNA提取方法,包括如下步骤:
步骤S1:以LB培养基培养维氏气单胞菌,取处于对数生长期的菌液500μL,8000rpm、4摄氏度离心1分钟,弃掉培养基,加300μL溶菌酶,浓度为5mg/mL,振荡均匀,酶解1-2分钟,快速加入10μL浓度为3M的乙酸钠及30μL浓度为10%的SDS溶液;
收集菌体后可用500μl DEPC水漂洗一次,10000rpm离心1分钟,弃上清,以进一步去除残留的培养基。
步骤S2:立即加入900μL的Bμffer Rlysis-B溶液振荡均匀,室温放置3分钟;
步骤S3:向步骤S2所获得的裂解液中加入200μL的氯仿,充分混匀,12000rpm、4摄氏度离心5分钟,取上清液;
步骤S4:向上清液中加入其1/3体积的无水乙醇,充分混匀,室温静置3分钟,12000rpm、4摄氏度离心5分钟,小心倒掉上清液;(离心后,在离心管底部,可能无肉眼可见的沉淀产生,属于正常现象,不影响下一步的操作);
步骤S5:以体积为700μL、浓度为75%的乙醇溶液(DEPC水配制)洗涤沉淀,12000rpm、4摄氏度离心3分钟,小心倒掉上清液,重复此步骤1次;
步骤S6:室温倒置离心管,尽可能使残存的乙醇彻底挥发,加入30-50μL DEPC水溶解沉淀,立即使用或-70摄氏度长期保存。
如果残留的乙醇有挂壁现象,倒掉液体后再短暂离心,将残液用移液器吸出,然后开盖室温放置5-10分钟至残留的乙醇完全挥发(吸取残液时注意避免同时将RNA沉淀取出,以避免RNA损失)。
由LB培养基培养的菌液,在总OD不超过2的情况下,使用上述方法最终获取的总RNA,提取浓度介于200-300ng/μL左右,远高于采用现有总RNA提取试剂盒所获得的20ng/μL的浓度,完全能够满足反转录实验的要求。
最终提取的总RNA的凝胶电泳谱图如图1所示,采用本发明提供的提取方法,最终获得的RNA既无基因组DNA,也无降解情况。
实施例2:
一种维氏气单胞菌总RNA提取方法,包括如下步骤:
步骤S1:以M9培养基培养维氏气单胞菌,取处于对数生长期的菌液500μL,8000rpm、4摄氏度离心1分钟,弃掉培养基,加300μL溶菌酶,浓度为5mg/mL,酶解1-2分钟,振荡均匀;快速加入10μL浓度为3M的乙酸钠及30μL浓度为10%的SDS溶液;
步骤S2:立即加入900μL的Bμffer Rlysis-B溶液振荡均匀,室温放置3分钟;
步骤S3:向步骤S2所获得的裂解液中加入200μL的氯仿,充分混匀,12000rpm、4摄氏度离心5分钟,取上清液;
步骤S4:向上清液中加入其1/3体积的无水乙醇,充分混匀,室温静置3分钟,12000rpm、4摄氏度离心5分钟,小心倒掉上清液;(离心后,在离心管底部,可能无肉眼可见的沉淀产生,属于正常现象,不影响下一步的操作);
步骤S5:以体积为700μL、浓度为75%的乙醇溶液(DEPC水配制)洗涤沉淀,12000rpm、4摄氏度离心3分钟,小心倒掉上清液,重复此步骤1次;
步骤S6:室温倒置离心管,尽可能使残存的乙醇彻底挥发,加入30-50μL DEPC水溶解沉淀,立即使用或-70摄氏度长期保存。
采用实施例1所述方法用于从M9培养基培养的菌液中提取总RNA时,RNA存在严重的降解现象,最终获取的浓度大约在20ng/μL,最高也仅在100ng/μL,图2为本发明实施例2最终提取的总RNA的凝胶电泳谱图。
故针对M9培养基培养的菌液,发明人于步骤S1中,进一步增加了菌液的体积,同时增加了溶菌酶的浓度,以及相应的SDS溶液和乙酸钠的用量,以期进一步裂解细胞。
实施例3:
一种维氏气单胞菌总RNA提取方法,包括如下步骤:
步骤S1:以M9培养基培养维氏气单胞菌,取处于对数生长期的菌液1-1.5mL,8000rpm、4摄氏度离心1分钟,弃掉培养基,加300μL溶菌酶,浓度为10mg/mL,酶解1-2分钟,振荡均匀;快速加入20μL浓度为3M的乙酸钠及60μL浓度为10%的SDS溶液;
步骤S2:立即加入900μL的Bμffer Rlysis-B溶液振荡均匀,室温放置3分钟;
步骤S3:向步骤S2所获得的裂解液中加入200μL的氯仿,充分混匀,12000rpm、4摄氏度离心5分钟,取上清液;
步骤S4:向上清液中加入其1/3体积的无水乙醇,充分混匀,-20摄氏度下静置30分钟(在低温下静置足够长的时间,一方面能够保证RNA在乙醇溶液中的充分溶解,提高后期的离心效率,另一方面,低温也能够避免RNA的降解),12000rpm、4摄氏度离心5分钟,小心倒掉上清液;
步骤S5:以体积为700μL、浓度为75%的乙醇溶液(DEPC水配制)洗涤沉淀,12000rpm、4摄氏度离心3分钟,小心倒掉上清液,重复此步骤1次;
步骤S6:室温倒置离心管,尽可能使残存的乙醇彻底挥发,加入30-50μL DEPC水溶解沉淀,立即使用或-70摄氏度长期保存。
经进一步增大细胞壁裂解幅度后,最终提取的总RNA浓度可提高至300ng/μL,且不存在RNA降解的情况,图3为本发明第三实施例所提取的总RNA的凝胶电泳图谱。
比较例1:
一种维氏气单胞菌总RNA提取方法,包括如下步骤:
步骤S1:以LB培养基或M9培养基培养维氏气单胞菌,取处于对数生长期的菌液1mL,8000rpm、4摄氏度离心1分钟,弃掉培养基,加100μL溶菌酶,浓度为400μg/mL,酶解1-2分钟,振荡均匀;
步骤S2:立即加入900μL的Bμffer Rlysis-B溶液振荡均匀,室温放置3分钟;
步骤S3:向步骤S2所获得的裂解液中加入200μL的氯仿,充分混匀,12000rpm、4摄氏度离心5分钟,取上清液;
步骤S4:向上清液中加入其1/3体积的无水乙醇,充分混匀,室温静置3分钟,12000rpm、4摄氏度离心5分钟,小心倒掉上清液;(离心后,在离心管底部,可能无肉眼可见的沉淀产生,属于正常现象,不影响下一步的操作);
步骤S5:以体积为700μL、浓度为75%的乙醇溶液(DEPC水配制)洗涤沉淀,12000rpm、4摄氏度离心3分钟,小心倒掉上清液,重复此步骤1次;
步骤S6:室温倒置离心管,尽可能使残存的乙醇彻底挥发,加入30-50μL DEPC水溶解沉淀,立即使用或-70摄氏度长期保存。
最终提取的总RNA凝胶电泳图谱如图4所示,RNA条带不明显,测定浓度介于16-40ng/μL,该浓度无法满足反转录实验体系的要求。
综上,本发明通过溶菌酶浓度、用量、菌液获取量的改进,结合细胞裂解阶段SDS溶液及乙酸钠溶液的添加以及对其浓度和添加量的探索,再结合离心沉淀步骤中静置条件的改进,使得最终提取的总RNA浓度,相对于已有技术,提高了15-20倍,提取后的总RNA避免了已有技术存在的降解现象,完全能够满足反转录实验体系的要求。
本发明中,获取菌液时所采用的“LB培养基”及“M9培养基”为已有的配方确定的培养基,其并不影响本发明的技术效果,本发明在此不多加限制。
本发明中,所使用的“Bμffer Rlysis-B溶液”、“DEPC水”、“SDS溶液”及其他溶液,均可通过从市场上直接购置的相关药品进行配制。
虽然本发明已利用上述较佳实施例进行说明,然其并非用以限定本发明的保护范围,任何本领域技术人员在不脱离本发明的精神和范围之内,相对上述实施例进行各种变动与修改仍属本发明所保护的范围,因此本发明的保护范围以权利要求书所界定的为准。

Claims (9)

1.一种维氏气单胞菌总RNA提取方法,其特征在于,包括如下步骤:
步骤S1:取处于对数生长期的维氏气单胞菌,8000rpm、4摄氏度离心1分钟,弃掉培养基,加预定量溶菌酶,振荡均匀,其中,针对LB培养基培养的维氏气单胞菌,获取菌液500μL,针对M9培养基培养的维氏气单胞菌,获取菌液1-1.5mL;溶菌酶的添加量介于250-350μL,溶菌酶的浓度介于3-12mg/mL;
步骤S2:向步骤S1所得溶液中加入800-1000μL的Bμffer Rlysis-B溶液振荡均匀,室温放置3分钟;
步骤S3:向步骤S2所获得的裂解液中加入150-250μL的氯仿,充分混匀,12000rpm、4摄氏度离心5分钟,取上清液;
步骤S4:向上清液中加入其1/3体积的无水乙醇,充分混匀,室温静置3分钟或在-20摄氏度下放置30min后,12000rpm、4摄氏度离心5分钟,小心倒掉上清液;
步骤S5:以体积介于600-800μL、浓度介于70-80%的乙醇溶液洗涤沉淀,12000rpm、4摄氏度离心3分钟,小心倒掉上清液,重复此步骤1-2次;
步骤S6:室温倒置离心管,尽可能使残存的乙醇彻底挥发,加入30-50μL DEPC水溶解沉淀,立即使用或-70摄氏度长期保存。
2.如权利要求1所述的维氏气单胞菌总RNA提取方法,其特征在于,所述步骤S1还包括,在添加溶菌酶溶解后,另外加入10-20μL乙酸钠及30-60μL 10%SDS溶液。
3.如权利要求2所述的维氏气单胞菌总RNA提取方法,其特征在于,针对LB培养基培养的维氏气单胞菌,在添加溶菌酶溶解后,另外加入10μL乙酸钠及30μL 10%SDS溶液;针对M9培养基培养的维氏气单胞菌,在添加溶菌酶溶解后,另外加入20μL乙酸钠及60μL 10%SDS溶液。
4.如权利要求2所述的维氏气单胞菌总RNA提取方法,其特征在于,在添加溶解酶溶解后,所添加的乙酸钠的摩尔浓度为3M。
5.如权利要求1所述的维氏气单胞菌总RNA提取方法,其特征在于,所述步骤S1中,溶菌酶的添加量为300μL;针对LB培养基培养的维氏气单胞菌,所添加的溶菌酶的浓度介于3-6mg/mL;针对M9培养基培养的维氏气单胞菌,所添加的溶菌酶的浓度介于9-12mg/mL。
6.如权利要求5所述的维氏气单胞菌总RNA提取方法,其特征在于,所述步骤S1中,针对LB培养基培养的维氏气单胞菌,所添加的溶菌酶的浓度为5mg/mL;针对M9培养基培养的维氏气单胞菌,所添加的溶菌酶的浓度为10mg/mL。
7.如权利要求1所述的维氏气单胞菌总RNA提取方法,其特征在于,
所述步骤S2中,添加的Bμffer Rlysis-B溶液体积为900μL;
所述步骤S3中,添加的氯仿溶液体积为200μL;
所述步骤S5中,添加的乙醇溶液体积为700μL,浓度为75%。
8.如权利要求7所述的维氏气单胞菌总RNA提取方法,其特征在于,所述步骤S5中,所添加的乙醇溶液通过用DEPC水配制。
9.如权利要求1所述的维氏气单胞菌总RNA提取方法,其特征在于,所述步骤S4中,针对LB培养基培养的维氏气单胞菌,室温静置3分钟后离心,针对M9培养基培养的维氏气单胞菌,-20摄氏度下放置30min后离心。
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