CN110016518A - 一种黄秋葵内参基因EF-1α及其应用 - Google Patents

一种黄秋葵内参基因EF-1α及其应用 Download PDF

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Abstract

本发明属于分子生物学技术领域,具体涉及一种黄秋葵内参基因EF‑1α及其应用。本发明公开了一个用于黄秋葵内参基因的转录延伸因子基因(EF‑1α)序列,在此基础上设计定量特异引物,转录延伸因子基因(EF‑1α)基因在黄秋葵果实发育阶段及高温胁迫下均能稳定表达,适合在黄秋葵基因在果实发育阶段及高温胁迫下表达研究中作为内参基因。本发明首次将转录延伸因子基因(EF‑1α)作为内参基因用于黄秋葵基因在果实发育阶段及高温胁迫下表达分析,有利于提高黄秋葵基因在果实发育阶段及高温胁迫下表达分析研究的稳定性、可靠性和重复性;本发明提出的检测引物具有特异性,大大的提高了检测效率,提高了检测结果的可信度。

Description

一种黄秋葵内参基因EF-1α及其应用
技术领域
本发明属于分子生物学技术领域,具体涉及一种黄秋葵内参基因EF-1α及其应用,具体地,利用该黄秋葵内参基因的核苷酸序列为基础设计一对荧光定量特异引物。
背景技术
黄秋葵(Hibiscus esculentus L.),秋葵属,原产于非洲东北部,世界栽培广泛,近年来,国内引进推广较快,栽培面积逐年增长。黄秋葵以食嫩果为主,含丰富蛋白质、维生素及矿物盐、糖聚合体等营养成分,是一种具有较高营养价值、保健功能的健康蔬菜。随着其分子生物学研究的不断深入和发展,基因表达分析正逐渐应用于揭示黄秋葵基因调控机理的研究中。在基因表达分析时,为了消除不同组织细胞间初始模板量、RNA质量、酶促反应效率等的偏差,往往需要引入内参基因对其进行校正。理想的内参基因应该在不同组织类型、生长阶段及不同实验条件下表达水平均保持一致,实际研究中常选择稳定表达的看家基因,如肌动蛋白基因(actin)、18S、转录延伸因子基因(EF-1α)、α微管和β微管蛋白基因((TUA、TUB))、18S核糖体RNA(18S rRNA)等作为内参基因。
真核生物延伸生长因子基因(EF-1α)在蛋白质翻译过程中起着重要的作用,其序列具有高度的保守性,是一种管家基因。在高等植物体内,延伸生长因子基因(EF-1α)参与生物体的基本生化代谢过程。但目前关于黄秋葵延伸生长因子基因(EF-1α)基因的克隆和作为黄秋葵内参基因的研究还未见报道。
发明内容
本发明所要解决的技术问题在于提供一种黄秋葵内参基因(转录延伸因子基因EF-1α),并揭露了利用该黄秋葵内参基因为基础设计的实时荧光定量PCR引物。
本发明通过以下技术方案解决上述技术问题:
一种黄秋葵内参基因 EF-1α,所述内参基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示;且该内参基因是以黄秋葵DNA为模板、并以如下引物对进行PCR扩增反应所得的;
其中引物对为:
正向引物5'- TTCCGAGTTCTATAATGGGTAA -3',
反向引物5'- ACGCCACAGCTTATTTCTTC -3'。
进一步地,以所述内参基因的核苷酸序列为基础,利用Primer Premier5.0 软件、并遵循实时荧光定量PCR引物设计的原则设计出一对荧光定量特异引物,该对荧光定量特异引物即为所述实时荧光定量PCR引物;
且该实时荧光定量PCR引物为:
正向引物5'- GCTGCCAAGAAGAAATAAGC -3',
反向引物5'- ATGAAGCAAACCTCGACACT -3'。
本发明的有益效果在于:
本发明提供了一种黄秋葵内参基因(转录延伸因子基因),同时揭露了利用该黄秋葵内参基因为基础设计的实时荧光定量PCR引物,所设计的实时荧光定量PCR引物用于黄秋葵基因表达分析时,能够提高中黄秋葵基因表达分析研究的稳定性、可靠性和重复性;此外,所设计的实时荧光定量PCR引物特异性强,从而能够大大的提高采用实时荧光定量检测黄秋葵的检测效率,并提高了检测结果的可信度。
附图说明
下面参照附图结合实施例对本发明作进一步的描述。
图1 是本发明中实施例1的1%琼脂糖凝胶电泳图。
图2 是本发明中实施例2的1%琼脂糖凝胶电泳图。
图3 是本发明中实施例3的PCR扩增曲线图。
图4 是本发明中实施例3的溶解曲线图。
图5是本发明中实施例4的1% 的琼脂糖凝胶电泳图。
具体实施方式
本发明列举了以下几个代表性实施例,这些实施例仅是示例性的,且不用于限制本发明的范围,这些实施例仅用于对本发明进行说明。且各实施例中所采用的仪器与试剂如下:美国ABI7500 实时定量PCR 仪,美国ABI Veriti 96-well热循环仪,美国ABI PowerSYBR® Green PCR Master Mix, pMD18-T-vector、cDNA第一链合成试剂盒(PrimeScriptTM 1st Strand cDNA Synthesis Kit)、Marker DL 2000、Taq DNAPolymerase、dNTP均为宝生物工程(大连)有限公司产品,胶回收试剂盒、质粒提取试剂盒为Omega公司产品,引物合成和克隆测序由铂尚生物技术(上海)有限公司完成,其余生化试剂均为国产分析纯。
实施例1 内参基因EF-1α的获得
(1)、根据GenBank上陆地棉(Gossypium raimondii)、亚洲棉(Gossypium arboreumL.)的EF-1α基因设计一对引物,并利用clustalx软件对所设计的该引物对进行序列比对,且由铂尚生物技术(上海)有限公司合成该引物对,具体地,该引物对(如SEQ ID NO.1、2所示):
正向引物5'- TTCCGAGTTCTATAATGGGTAA -3',
反向引物5'- ACGCCACAGCTTATTTCTTC -3'。
(2)、DNA提取:称取黄秋葵叶片0.1 g左右,加液氮快速充分研磨至粉末状(加入0.1克PVP),将粉末移至1.5mL离心管中;每管加入600 μL预热至65℃的2× CTAB提取缓冲液,同时加入7 μL 2-琉基乙醇,充分混匀,65℃水浴30 min,其间颠倒几次; 取出离心管,冷却至室温,加等体积的氯仿/异戊醇(氯仿/异戊醇中氯仿、异戊醇二者的体积比为24:1),轻缓颠倒混匀,静置10 min,室温下12000 rpm离心10 min;取上清液至另一离心管,加2/3体积异丙醇,轻缓颠倒混匀,室温放置15 min,于4℃条件下12000 rpm离10min;用体积分数70%乙醇洗涤DNA 2-3次,风干,将DNA溶于500 μL TE溶液,加入终浓度50 mg/mL的RNase A,并于37℃保温30 min,之后用1%的琼脂糖凝胶进行电泳检测DNA质量;最后将DNA稀释至50 ng/μL,并于-20℃冰箱中保存备用。
(3)、PCR扩增:以经步骤(2)处理所得的DNA为模板,并以步骤(1)中获得的引物对进行PCR扩增反应,得到PCR扩增产物。
PCR反应体系:反应体系的总体积为25μL,含50 ng/μL DNA 0.5 μL、10 μmol/L正向和反向引物各1 μL、10 mmol/L dNTP 0.5 μL、5 U /μL Taq DNA聚合酶0.25 μL、1.5mmol/L MgCl2的10×PCR缓冲液2.5 μL、其余成分为灭菌的超纯水。
PCR反应程序为:94℃预变性5 min;94℃变性30 s,55℃退火30 s,72℃ 延伸90s,35个循环;最后72℃下延伸10 min;于4℃下保存。
(4)、取步骤(3)所得PCR扩增产物经1%琼脂糖凝胶电泳检测后,得到如图1所示大小的片段,回收该片段并进行纯化后连接到pMD18-T载体上转化,挑取阳性克隆子,PCR检测后送至测序,所测得的序列即为内参基因的核苷酸序列,其如SEQ ID NO:3所示。
实施例2 实时荧光定量PCR 设计和常规PCR检测
以实施例1获得的内参基因的核苷酸序列为基础,利用Primer Premier5.0 软件,并遵循实时荧光定量PCR引物设计的原则设计出一对荧光定量特异引物,其扩增片段为196 bp,该对荧光定量特异引物即为所述实时荧光定量PCR引物(如SEQ ID NO:4、5所示):
正向引物5'- GCTGCCAAGAAGAAATAAGC -3',
反向引物5'- ATGAAGCAAACCTCGACACT -3'。
提取黄秋葵总RNA,并按照PrimeScriptTM 1st Strand cDNA Synthesis Kit试剂盒的方法合成cDNA第一链,即将RNA反转录为cDNA;之后以所得cDNA为模板、以实时荧光定量PCR引物为引物对进行PCR扩增,且PCR扩增的反应体系与反应程序如下:
PCR反应体系:反应体系的总体积为25μL,含50 ng/μL cDNA 0.5 μL、10 μmol/L正向和反向引物各1 μL、10 mmol/L dNTP 0.5 μL、5 U /μL Taq DNA聚合酶0.25 μL、1.5 mmol/LMgCl2的10×PCR缓冲液2.5 μL、其余成分为灭菌的超纯水。
PCR反应程序为:94℃预变性5 min;94℃变性30 s,58℃退火30 s,72℃ 延伸30s,35个循环;最后72℃下延伸10 min;于4℃下保存。
将PCR扩增产物进行1%琼脂糖凝胶电泳检测,检测结果如图2所示;由图2可知,PCR扩增得到一条单一条带,没有出现非特异性扩增条带(图2),经测序大小为196 bp,符合预期大小;则可继续下游的实时荧光定量PCR 引物验证。
实施例3 实时荧光定量PCR 引物验证
提取黄秋葵总RNA,并按照PrimeScriptTM 1st Strand cDNA Synthesis Kit试剂盒的方法合成cDNA第一链,即将RNA反转录为cDNA;之后以所得cDNA为模板、按照Power SYBR®Green PCR Master Mix说明书在ABI7500 实时定量PCR 仪上进行PCR 反应,PCR 反应的反应体系与反应程序如下:
反应体系为:反应体系的总体积为25μL,12.5 μL Power SYBR® Green PCR MasterMix,1 μL 模板,实施例2中实时荧光定量PCR引物的正向引物0.5 μL(浓度为10 μmol/ L),实施例2中实时荧光定量PCR引物的反向引物0.5 μL(浓度为10 μmol/ L),补蒸馏水至总体积25 μL。
反应程序为:95 ℃预变性10 min;95 ℃变性15 s,60 ℃退火1 min,共 40个循环;4℃保存;每个反应做3个重复。
反应的结果如图3(其中,ΔRn指荧光强度、cycle指循环数)所示,从图3可以看出,3次重复的荧光定量PCR 扩增曲线均很好。且为检验反应的特异性,申请人在PCR 后进行融解曲线分析,分析结果如图4所示,从图4可显示出,3次重复的Tm(溶解温度)分别为83.80℃、83.80℃、83.61℃,且均只有一个特异峰,表明无引物二聚体,扩增条带单一,特异性强,没有非特异性扩增出现,从而表明所述实时荧光定量PCR引物特异性强,扩增效率高,能够用于黄秋葵荧光定量PCR的内参引物实验。
实验例4 黄秋葵EF-1α基因表达稳定性分析
分别提取黄秋葵果实发育过程(花后2天、4天、6天、8天、10天的果实)和高温胁迫(42℃处理0、1、6、12、24h的真叶)的总RNA,之后分别按照PrimeScriptTM 1st Strand cDNASynthesis Kit试剂盒的方法合成cDNA第一链,以获得各自的cDNA;利用实施例2中的实时荧光定量特异引物为引物对,以获得的10种的cDNA 为模板,分别进行PCR扩增,PCR扩增体系与扩增程序如下:
PCR扩增体系:反应体系的总体积为25μL,含50 ng/μL cDNA 0.5 μL、10 μmol/L正向和反向引物各1 μL、10 mmol/L dNTP 0.5 μL、5 U /μL Taq DNA聚合酶0.25 μL、1.5 mmol/LMgCl2的10×PCR缓冲液2.5 μL、其余成分为灭菌的超纯水。
PCR扩增程序为:94℃预变性5 min;94℃变性30 s,58℃退火30 s,72℃ 延伸30s,28个循环;最后72℃下延伸10 min;于4℃下保存。
将PCR扩增产物进行1%琼脂糖凝胶电泳检测,检测结果如图5所示,且图5中标识1至10分别为花后2天果实、花后4天果实、花后6天果实、花后8天果实、花后10天果实、高温0h真叶、高温1h真叶、高温6h真叶、高温12h真叶、高温24h真叶的PCR扩增反应结果;由图5显示,采用实施例2中的实时荧光定量特异引物为引物对时,扩增所得的10个条带亮度基本一致,从而表明在黄秋葵基因在果实发育过程及高温胁迫下均能稳定表达,即说明了实时荧光定量特异引物在黄秋葵基因在果实发育过程及高温胁迫下表达中的稳定性,从而适用于黄秋葵基因在果实发育过程及高温胁迫下表达的研究。
综上,本发明提供了一种黄秋葵内参基因,并揭露了利用该黄秋葵内参基因为基础设计的实时荧光定量PCR引物,所设计的实时荧光定量PCR引物用于黄秋葵基因表达分析时,能够提高黄秋葵基因在果实发育过程及高温胁迫下分析研究表达的稳定性、可靠性和重复性;此外,所设计的实时荧光定量PCR引物特异性强,从而能够大大的提高了采用实时荧光定量检测黄秋葵时的检测效率,并提高了检测结果的可信度。
以上所述仅为本发明的较佳实施例,凡依本发明申请专利范围所做的均等变化与修饰,皆应属本发明的涵盖范围。
SEQUENCE LISTING
<110> 福建省农业科学院作物研究所
<120> 一种黄秋葵内参基因EF-1α及其应用
<130> 5
<160> 5
<170> PatentIn version 3.3
<210> 1
<211> 22
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 1
ttccgagttc tataatgggt aa 22
<210> 2
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 2
acgccacagc ttatttcttc 20
<210> 3
<211> 1548
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 3
tagactcggt acgcgcggat cttccagaga ttttccgagt tctataatgg gtaaagagaa 60
gattcacatc aacattgtgg tcattggcca tgtcgattct ggcaagtcta ccaccactgg 120
tcacttaatc tacaagcttg gtggtattga caagcgtgtg attgagaggt tcgagaagga 180
agctgctgag atgaacaaaa ggtcattcaa gtatgcctgg gtgcttgaca agcttaaggc 240
tgaacgggaa cgtggtatta ccattgatat tgccttgtgg aagtttgaga ccaccaaata 300
ctactgcact gttattgatg ccccgggaca tcgcgacttt atcaagaaca tgattactgg 360
tacctcacag gctgactgtg ctgttctcat tattgattcc accactggtg gttttgaagc 420
tggtatctct aaggatggtc agacacgtga gcatgctttg cttgcattta cccttggtgt 480
caagcagatg atttgctgct gcaacaaggt gagctttaga acatgtttgt tcttattata 540
ttttgtcctt ttctaggtgg aagttgttat cataacttgt tttcgtgact gagctggact 600
gatatttcaa ttattgtttg tttcagatgg atgccacaac cccaaaatac tccaaggcaa 660
ggtatgatga aattgtgaag gaagtttctt cttatcttaa gaaggttggg tacaaccctg 720
acaagatccc atttgtcccg atccccggtt ttgagggtga caacatgatt gagaggtcta 780
ctaaccttga ctggtacaag ggtcccactc tccttgaggc tcttgatcag atcaatgagc 840
ccaagaggcc ctcggacaag ccgctccgtc tcccacttca ggatgtctac aagattggtg 900
gtattggaac tgttcctgtt ggtcgtgttg agactggtgt ccttaagcct ggtatggttg 960
tgacttttgg tcccacaggt ctgaccactg aagttaagtc tgttgagatg caccatgaat 1020
ccctcccaga ggctctccct ggtgacaatg ttgggttcaa tgtcaggaac gttgcagtta 1080
aggatctcaa gcgtggtttt gttgcttcaa actcaaagga cgatcctgcc aaggaagctg 1140
ccaacttcac ctctcaggtt atcatcatga accaccctgg ccagattgga aatggatatg 1200
ccccagtcct tgattgccac acctcccaca ttgctgtcaa gtttgccgaa ctacttacca 1260
agattgacag acgatccggt aaggagctgg agaaggagcc taagttcttg aagaacggag 1320
atgcaggaat ggtgaagatg attccaacca aacccatggt tgtggaaact ttctccgagt 1380
acccaccact tgggcgtttt gccgttaggg acatgcgaca gactgtggct gttggtgtca 1440
tcaagagtgt tgagaagaag gacccgaccg gtgccaaggt caccaagtct gctgccaaga 1500
agaaataagc tgtggcgtaa tcgtcgaacg gcaggcgtgc gaaactgg 1548
<210> 4
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 4
gctgccaaga agaaataagc 20
<210> 5
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 5
atgaagcaaa cctcgacact 20

Claims (2)

1.一种黄秋葵内参基因EF-1α,其特征在于:所述内参基因EF-1α的核苷酸序列如SEQID NO.3所示;且该内参基因是以黄秋葵DNA为模板、并以如下引物对进行PCR扩增反应所得的;其中引物对为:
正向引物5'- TTCCGAGTTCTATAATGGGTAA -3',
反向引物5'- ACGCCACAGCTTATTTCTTC -3'。
2.一种实时荧光定量PCR引物,其特征在于:以权利要求1中所述内参基因的核苷酸序列为基础,利用Primer Premier5.0 软件、并遵循实时荧光定量PCR引物设计的原则设计出一对荧光定量特异引物,该对荧光定量特异引物即为所述实时荧光定量PCR引物;
且该实时荧光定量PCR引物为:
正向引物5'- GCTGCCAAGAAGAAATAAGC -3',
反向引物5'- ATGAAGCAAACCTCGACACT -3'。
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