CN110004120A - 一种重组醛酮还原酶突变体及应用 - Google Patents

一种重组醛酮还原酶突变体及应用 Download PDF

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Abstract

本发明公开了一种重组醛酮还原酶突变体及在不对称还原6‑氰基‑(5R)‑羟基‑3‑羰基己酸叔丁酯制备6‑氰基‑(3R,5R)‑二羟基己酸叔丁酯中的应用，重组醛酮还原酶突变体是将SEQ ID NO.2所示氨基酸第29位、28位进行单突变或多突变获得的。本发明制备的醛酮还原酶突变体KmAKR‑Y296W/W297H/K29H/Y28A的比酶活较对照组KmAKR‑Y296W/W297提高了1.15倍，最大底物6‑氰基‑(5R)‑羟基‑3‑羰基己酸叔丁酯投料量达到200g/L，底物转化率大于99％，产物dep值始终保持在99.5％以上。产物的浓度为549mM，时空产率达到670.5g/L d。

Description

一种重组醛酮还原酶突变体及应用
技术领域
本发明涉及醛酮还原酶KmAKR突变体构建，开发醛酮还原酶重组菌和酶在阿托伐他汀侧链6-氰基-(3R,5R)-二羟基己酸叔丁酯手性生物合成方面的应用。
背景技术
阿托伐他汀钙(7-[2-(4-氟苯基)-3-苯基-4-(苯胺基甲酰基)-5-(2-丙基)吡咯-1-基]-3,5-二羟基庚酸钙)属于第三代合成他汀类药物，钙盐的商品名具有高效的降脂功效，安全和长期临床益处，可降低心脑血管疾病的发病率和死亡率。到目前为止，阿托伐他汀钙的累计销售额超过1000亿美元，是制药工业史上最成功的单一药物品种。
6-氰基-(3R,5R)-二羟基己酸叔丁酯是阿托伐他汀钙的关键手性二醇中间体，具有两个手性中心，因此，研究光学纯6-氰基-(3R,5R)-二羟基己酸叔丁酯的手性合成方法学和合成技术具有重要意义。已有的文献报道6-氰基-(3R,5R)-二羟基己酸叔丁酯合成方法主要包括化学催化6-氰基-(5R)-羟基-3-羰基己酸叔丁酯不对称还原和氧化还原酶差向选择性还原6-氰基-(5R)-羟基-3-羰基己酸叔丁酯。化学催化剂硼烷催化还原存在能耗高，转化率低，生产成本高等缺陷。与化学催化剂相比，酶具有更高效率的催化性能，生物还原具有立体选择性高，副产物少，反应条件温和，环境友好等优点。
由于蛋白质工程的发展，生物催化已广泛应用于工业化生产。半合理设计是一种成熟的蛋白质工程策略，利用蛋白质序列、结构和功能的信息，以及计算预测算法来预选有可能性的突变位点。在无法建立高通量筛选方法的情况下，半合理设计可以减少筛选工作量。因此，在本发明工作中，我们选择半理性设计进行KmAKR改造。
我们从一株耐热马克斯克鲁维酵母Kluyveromyces marxianus ZJB14056基因组中克隆出一种新的醛酮还原酶(KmAKR)编码基因kmakr。通过定点突变技术获得了一株优势突变株KmAKR-W297H/Y296W已在专利申请(201710282633.X)中公开，能够在不添加外源型辅酶NADPH的情况下，4.5h内完全转化75g/L的底物，但发现该酶的活力和底物投料量还有提升空间突变体。因此，本发明借鉴已报道的醛酮还原酶晶体结构信息，运用同源建模和分子对接技术手段，确定KmAKR-W297H/Y296W的空间结构、酶活性中心附近的氨基酸位点，通过半理性设计提高醛酮还原酶对6-氰基-(5R)-羟基-3-羰基己酸叔丁酯的催化活力及底物投料量，构建具有工业应用价值的突变酶及催化工艺。
发明内容
本发明目的是针对现有醛酮还原酶对6-氰基-(5R)-羟基-3-羰基己酸叔丁酯不对称还原活性不高及底物投料量低的问题，提供一种立体选择性醛酮还原酶突变体及利用该醛酮还原酶突变体基因重组菌及其粗酶液作为生物催化剂，用于6-氰基-(3R,5R)-二羟基己酸叔丁酯手性生物合成，催化剂活性提高1.15倍，底物投料量提高至200g/L。
本发明采用的技术方案是：
本发明提供一种醛酮还原酶突变体，所述醛酮还原酶突变体是将SEQ ID NO.2所示氨基酸序列第29位、28位进行单突变或多突变获得的，优选突变体为下列之一：(1)第29位赖氨酸突变为组氨酸或精氨酸；(2)第28位酪氨酸突变为丙氨酸或组氨酸；(3)第29位赖氨酸替换成组氨酸且第28位酪氨酸替换成丙氨酸。
本发明还提供一种所述醛酮还原酶突变体在不对称还原6-氰基-(5R)-羟基-3-羰基己酸叔丁酯制备6-氰基-(3R,5R)-二羟基己酸叔丁酯中的应用，具体所述的应用方法为：将含醛酮还原酶突变体基因的工程菌经诱导培养获得的湿菌体和含葡萄糖脱氢酶基因的工程菌经诱导培养获得的湿菌体混合后的混合菌体为催化剂(优选先用pH 7.0、100mM的PBS缓冲液重悬)，以6-氰基-(5R)-羟基-3-羰基己酸叔丁酯为底物，以葡萄糖为辅底物，以pH 7.0、100mM的PBS缓冲液为反应介质构成转化体系，在30℃、400-600rpm条件下进行反应，反应结束，反应液分离纯化，获得6-氰基-(3R,5R)-二羟基己酸叔丁酯。
进一步，所述转化体系中，底物终浓度100-200g/L，葡萄糖终浓度150-300g/L，催化剂用量以混合菌体总量干重计为20-30g DCW/L(DCW：dry cellweight)，所述混合菌体中含醛酮还原酶突变体基因的工程菌经诱导培养获得的湿菌体与含葡萄糖脱氢酶基因的工程菌经诱导培养获得的湿菌体以干重比1.0-5.0:1(w/w)，优选3.5:1混合。所述葡萄糖脱氢酶基因(GenBank NO.KM817194.1)来自Exiguobacterium sibiriumDSM 17290。
进一步，所述湿菌体按如下方法制备：将含醛酮还原酶突变体基因的工程菌接种到含终浓度50μg/mL卡那霉素的LB液体培养基中，37℃培养10h，以体积浓度1.5％的接种量接种到新鲜的含终浓度50μg/mL卡那霉素的LB液体培养基中，37℃、180rpm培养2h，再向培养液中加入终浓度为0.15mM异丙基硫代半乳糖苷(Isopropylβ-D-thiogalactoside，IPTG)，28℃培养12h后，4℃、8000rpm离心10min，获得含醛酮还原酶突变体的湿菌体；所述含葡萄糖脱氢酶基因的工程菌经诱导培养获得的湿菌体制备方法同含醛酮还原酶基因的湿菌体。
本发明醛酮还原酶KmAKR及醛酮还原酶突变体碱基序列全长均为933bp，从第一个碱基起至第933个碱基止，起始密码子为ATG，终止密码子为TGA。
本发明所述醛酮还原酶突变体的获取是采用定点饱和突变技术，使用该技术对KmAKR-W297H/Y296W醛酮还原酶基因(SEQ ID NO.1)进行突变，将获得的突变质粒以热击方式转入E.coli BL21(DE3)感受态细胞，对获得菌株进行接种、转接、诱导、菌体回收，利用重悬菌液催化6-氰基-(5R)-羟基-3-羰基己酸叔丁酯不对称还原，制备光学纯6-氰基-(3R,5R)-二羟基己酸叔丁酯，具体方法如下：第一步将对照菌活化，获得了对照菌E.coli BL21(DE3)/pET28a(+)-kmakr-W297H/Y296W，提取质粒pET28a(+)-kmakr-W297H/Y296W，并保存于-20℃。第二步通过SWISS-MODEL与KmAKR-W297H/Y296W比较，获得同源建模的模板蛋白晶体结构，利用Modeller 9.19同源建模，并进行分子对接，选择合适的突变位点，选择的位点主要是位于活性中心附近的氨基酸残基，设计突变的引物，以pET28a(+)-kmakr-W297H/Y296W为模板质粒，进行定点饱和突变，获得突变质粒，并转化，进行优势突变菌的筛选，将优势突变体送样测序并保存。
本发明醛酮还原酶突变体和葡萄糖脱氢酶基因工程菌的接种、转接、诱导、菌体回收，培养基可为本领域任何可使菌体生长并产生本发明的培养基，优选LB培养基：胰蛋白胨10g/L，酵母提取物5g/L，NaCl 10g/L，蒸馏水溶解，调节pH 7.0。培养方法和培养条件没有特殊的限制，培养方法和条件可以根据宿主类型和培养方法等因素的不同按本领域普通知识进行适当的选择。
与现有技术相比，本发明主要的有益效果主要体现在：本发明制备的醛酮还原酶突变体KmAKR-Y296W/W297H/K29H/Y28A的比酶活较对照组醛酮还原酶提高了1.15倍，最大底物6-氰基-(5R)-羟基-3-羰基己酸叔丁酯投料量达到200g/L，产物浓度随时间的推移而逐渐升高，4.5h内反应完成，底物转化率大于99％，产物dep值始终保持在99.5％以上。产物的浓度为549mM，时空产率达到670.5g/L d。而利用对照组KmAKR-W297H/Y296W催化6-氰基-(5R)-羟基-3-羰基己酸叔丁酯时最大底物投料量可达到75g/L，因此醛酮还原酶突变体KmAKR-W297H/Y296W/K29H/Y28A更具工业应用前景。
附图说明
图1是醛酮还原酶与葡萄糖脱氢酶EsGDH偶联催化6-氰基-(5R)-羟基-3-羰基己酸叔丁酯不对称还原制备6-氰基-(3R,5R)-二羟基己酸叔丁酯的反应示意图。
图2为核酸电泳图，其中A是醛酮还原酶KmAKR-W297H/Y296W定点饱和突变Lys29位点和Tyr28位点的核酸电泳图，M：标准核酸分子量；泳道1-4：pET28a(+)-kmakr-W297H/Y296W/K29，泳道5-8：pET28a(+)-kmakr-W297H/Y296W/Y28；B是醛酮还原酶KmAKR-W297H/Y296W/K29H定点饱和突变Tyr28位点的核酸电泳图，M：标准核酸分子量；泳道1-4：pET28a(+)-kmakr-W297H/Y296W/K29H/Y28。
图3醛酮还原酶突变体上清液胞和纯酶的SDS-PAGE电泳图。泳道1：对照KmAKR-W297H/Y296W上清液；泳道2：对照KmAKR-W297H/Y296W纯酶；泳道3：KmAKR-W297H/Y296W/K29H上清液；泳道4：KmAKR-W297H/Y296W/K29H纯酶；泳道5：KmAKR-W297H/Y296W/Y28A上清液；泳道6：KmAKR-W297H/Y296W/Y28A纯酶；泳道7：KmAKR-W297H/Y296W/K29H/Y28A上清液；泳道8：KmAKR-W297H/Y296W/K29H/Y28A纯酶；M：标准蛋白分子。
图4是利用醛酮还原酶突变体KmAKR-W297H/Y296W/K29H偶联EsGDH不对称还原6-氰基-(5R)-羟基-3-羰基己酸叔丁酯制备6-氰基-(3R,5R)-二羟基己酸叔丁酯时间进程图。
图5是利用醛酮还原酶突变体KmAKR-W297H/Y296W/K29H/Y28A偶联EsGDH不对称还原6-氰基-(5R)-羟基-3-羰基己酸叔丁酯制备6-氰基-(3R,5R)-二羟基己酸叔丁酯时间进程图。
具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明进行进一步描述。
实施例1：醛酮还原酶突变体文库的构建及筛选
醛酮还原酶突变体文库的制备通过3轮定点饱和突变来实现，引物设计如表1，第一轮，以E.coli BL21(DE3)/pET28a(+)-kmakr-W297H/Y296W(构建参见专利申请201710282633.X)中载体pET28a(+)-kmakr-W297H/Y296W为模板，以表1中Lys29-F和Lys29-R为引物，经饱和突变PCR，将SEQ ID NO.2所示醛酮还原酶KmAKR-W297H/Y296W氨基酸序列的第29位赖氨酸突变为其余19种氨基酸，并转化，涂平板，通过优势菌株筛选获得醛酮还原酶突变体KmAKR-W297H/Y296W/K29H(即SEQ ID NO.2所示氨基酸第29位赖氨酸突变为组氨酸)和KmAKR-W297H/Y296W/K29R(即SEQ ID NO.2所示氨基酸第29位赖氨酸突变为精氨酸)，电泳图见图2中A所示。第二轮以pET28a(+)-kmakr-W297H/Y296W为模板，以表1中Tyr28-F和Tyr28-R为引物，经饱和突变PCR，转化，涂平板，通过优势菌株筛选获得醛酮还原酶突变体KmAKR-W297H/Y296W/Y28A(即SEQ ID NO.2所示氨基酸第28位酪氨酸突变为丙氨酸)和KmAKR-W297H/Y296W/Y28H(即SEQ ID NO.2所示氨基酸第28位酪氨酸突变为组氨酸)。第三轮以突变体KmAKR-W297H/Y296W/K29H为模板，以表1中Lys29His/Tyr28-F和Lys29His/Tyr28-R为引物，经饱和突变PCR，转化，涂平板，通过优势菌株筛选获得醛酮还原酶突变体KmAKR-W297H/Y296W/K29H/Y28A(将SEQ ID NO.2所示氨基酸序列中第29位赖氨酸突变为组氨酸，同时将第28位酪氨酸突变为丙氨酸)，电泳图见图2中B所示。
在进行第一轮定点饱和突变时，不仅选择了第29位的赖氨酸进行突变，还选择了第25位的苏氨酸，第213位的谷氨酰胺，第302位的苏氨酸，进行单点突变成其余19种氨基酸，但所得到的菌株的酶活与对照组(KmAKR-W297H/Y296W)相比，均没有得到提高。因此第一轮筛选出来的优势菌株只有KmAKR-W297H/Y296W/K29H和KmAKR-W297H/Y296W/K29R。
PCR反应体系(50μL)：1μL正向引物(100μM)，1μL反向引物(100μM)，25μL 2×Phanta缓冲液，1μLdNTP混合物(各10mM)，1μL质粒模板，1μLDNA聚合酶和21μL超纯水。根据Phanta Super-Fidelity DNA聚合酶手册设置的PCR程序如下：95℃预变性5min，然后29个循环(95℃变性15s，55℃退火15s，72℃延伸7s)，72℃终延伸10min，16℃保温。将得到的重组质粒转移到大肠杆菌BL21(DE3)感受态细胞中，并将克隆子在37℃培养12h。然后挑出克隆并转接到10mL含50μg/mL卡那霉素的LB液体培养基中，并在37℃，180rpm培养10h。对获得的突变体进行优势突变体的筛选，筛选条件如下：以干重25g/L(醛酮还原酶突变体和葡萄糖脱氢酶菌体干重比3.5:1(w/w))的量加入pH 7.0的PBS(100mM)重悬细胞，再加入终浓度20g/L 6-氰基-(5R)-羟基-3-羰基己酸叔丁酯，30g/L的葡萄糖构成转化体系50mL，在35℃、600rpm条件下进行反应，反应结束，取样检测6-氰基-(3R,5R)-二羟基己酸叔丁酯浓度，筛选获得优势菌株。将获得优势菌株送杭州擎科生物技术有限公司测序，并保存在-80℃冰箱。
表1醛酮还原酶定点饱和突变引物设计
实施例2：对照组醛酮还原酶、突变体和葡萄糖脱氢酶的诱导表达
葡萄糖脱氢酶湿菌体的制备：所述E.coli BL21(DE3)/pET28b(+)-esgdh由来自Exiguobacterium sibiriumDSM 17290葡萄糖脱氢酶基因(GenBank NO.KM817194.1)插入到pET28b(+)构建重组表达载体，并将此表达载体转入E.coli BL21(DE3)制得E coli BL21(DE3)/pET28b(+)-esgdh。
将实施例1出发菌株E.coli BL21(DE3)/pET28a(+)-kmakr-W297H/Y296W和实施例1筛选的醛酮还原酶突变菌株以及E coli BL21(DE3)/pET28b(+)-esgdh分别接种到含有终浓度50μg/mL卡那霉素的LB液体培养基中，37℃培养10h，以体积浓度1.5％(v/v)的接种量接种到新鲜的含有终浓度50μg/mL卡那霉素的LB液体培养基中，37℃、180rpm培养2h，再向培养液中加入终浓度为0.15mMIPTG，28℃培养12h后，4℃、8000rpm离心10min，获得相应的湿菌体细胞。以上获得的细胞产有相应的蛋白，可用于蛋白纯酶液的制备，也可用于粗酶液催化不对称还原6-氰基-(5R)-羟基-3-羰基己酸叔丁酯制备6-氰基-(3R,5R)-二羟基己酸叔丁酯。
实施例3：突变文库筛选
将实施例2诱导表达的突变株湿菌体及葡萄糖脱氢酶湿菌体以干重比3.5:1(w/w)混合成混合菌体，加入pH 7.0、100mM PBS缓冲液中重悬，获得突变株混合菌液。同样条件下，用对照菌株E.coli BL21(DE3)/pET28a(+)-kmakr-W297H/Y296W替换突变体菌株湿菌体制备混合菌液。
分别将突变株混合菌液和对照株混合菌液作为催化剂，以6-氰基-(5R)-羟基-3-羰基己酸叔丁酯为底物，以葡萄糖为辅助底物，不添加外源性NADPH或NADP+，运用菌体内源型NADPH，建立起辅酶循环系统。反应体系选择为10mL，催化剂用量以混合菌体总干重计25g/L，底物终浓度20g/L，葡萄糖终浓度30g/L，pH 7.0、100mM PBS缓冲液为反应介质构建转化体系，30℃、600rpm反应30min取样，取反应液200μL，800μL无水乙醇沉淀蛋白，即反应液稀释5倍，-20℃过夜，12000rpm离心3min，取上清，过0.22μm微滤膜，作为液相样品，HPLC检测6-氰基-(5R)-羟基-3-羰基己酸叔丁酯、6-氰基-(3R,5R)-二羟基己酸叔丁酯、6-氰基-(3S,5R)-二羟基己酸叔丁酯及dep值。以产物6-氰基-(3R,5R)-二羟基己酸叔丁酯和dep为指标，筛选优势突变体，实验结果示于表2。
液相检测条件：色谱柱C18(4.6×250mm，Acchrom,China)柱，流动相乙腈:水体积比为1:3，流速1.0mL/min，检测波长210nm，进样量10μL，柱温40℃。6-氰基-(5R)-羟基-3-羰基己酸叔丁酯、6-氰基-(3R,5R)-二羟基己酸叔丁酯保留时间分别为：16.0min，10.8min。
表2KmAKR-W297H/Y296W及其突变体的催化性能和立体选择性
实施例4：醛酮还原酶母本及其突变体的纯化
将实施例3获得的优势突变体(表2中KmAKR-W297H/Y296W/K29H，KmAKR-W297H/Y296W/Y28A，KmAKR-W297H/Y296W/K29H/Y28A)，根据实施例2所述方法获得醛酮还原酶突变体湿菌体，分别在8000rpm，4℃下离心10min收集菌体，并用0.9％(w/v)盐水洗涤两次。按照菌体总量25g/L的量加入pH 7.0、100mM PBS缓冲液中重悬，在冰水混合物上超声破碎6min，超声破碎条件：功率为400W，破碎1s、暂停1s，获得突变株粗酶液。通过在8000rpm，4℃下离心10min收集上清液(电泳图见图3所示)，将其通过0.45μm膜微过滤后，采用Ni亲和柱纯化突变体蛋白。
使用Ni亲和柱(1.6×10cm，Bio-Rad公司，美国)纯化突变体蛋白，具体操作如下：①用缓冲液A(含0.3M NaCl、20mM咪唑的pH 8.0、20mM PBS缓冲液)进行预平衡。②用缓冲液A以1.0mL/min的流速洗去未结合的杂质，直至电导率稳定。③然后用缓冲液B(含0.3MNaCl、500mM咪唑的pH 8.0、20mM PBS缓冲液)洗脱目的蛋白。将收集的洗脱液用20mM PBS缓冲液(pH7.0)透析过夜。所有纯化步骤均在4℃下进行。用十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)鉴定蛋白质大小。对照菌株E.coli BL21(DE3)/pET28a(+)-kmakr-W297H/Y296W的醛酮还原酶纯酶采用相同条件收集，电泳图见图3所示。
实施例5：母本醛酮还原酶及其突变体酶比酶活的测定
酶活单位(U)定义为：在35℃、pH 7.0条件下，每分钟每生成1μmol的6-氰基-(3R,5R)-二羟基己酸叔丁酯所需的酶量定义为一个酶活单位，U。比酶活定义为每毫克酶蛋白所具有的活力单位数，U/mg。
酶活检测标准条件：5mM6-氰基-(5R)-羟基-3-羰基己酸叔丁酯，0.25mM NADPH，适量酶液，35℃、pH 7.0，500rpm条件下反应3min，样品处理并进行HPLC检测分析。
蛋白浓度用二喹啉甲酸蛋白测定试剂盒(南京凯基生物科技发展有限公司，南京)测定。
表3醛酮还原酶及其突变体的相对酶活和差向对应异构体选择性(dep)值
实施例6：醛酮还原酶对照组KmAKR-W297H/Y296W不对称还原6-氰基-(5R)-羟基-3-羰基己酸叔丁酯
根据实施例2的描述，通过发酵获得醛酮还原酶对照组KmAKR-W297H/Y296W湿菌体和葡萄糖脱氢酶EsGDH湿菌体。在建立的的双酶偶联体系中，2.25g/L KmAKR-W297H/Y296W湿菌体和0.75g/L葡萄糖脱氢酶EsGDH湿菌体经过100mM的磷酸缓冲液重悬后并超声破碎作为生物催化剂，当底物6-氰基-(5R)-羟基-3-羰基己酸叔丁酯的投料量为75g/L，葡萄糖浓度为150g/L时，底物在4.5h能完全转化成产物6-氰基-(3R,5R)-二羟基己酸叔丁酯(参见专利申请201710282633.X)，继续增加底物，浓度增加到100g/L，6-氰基-(5R)-羟基-3-羰基己酸叔丁酯并不能完全转化成6-氰基-(3R,5R)-二羟基己酸叔丁酯，且在反应时间为7h时，产物不再累积增加，底物的转化率为77.3％。
实施例7：醛酮还原酶突变体KmAKR-W297H/Y296W/K29H不对称还原6-氰基-(5R)-羟基-3-羰基己酸叔丁酯
根据实施例2的描述，通过发酵获得醛酮还原酶突变体KmAKR-W297H/Y296W/K29H湿菌体和葡萄糖脱氢酶EsGDH湿菌体。在建立的的双酶偶联体系中，将湿菌体KmAKR-W297H/Y296W/K29H和葡萄糖脱氢酶EsGDH湿菌体以干重比3.5:1(w/w)混合成混合菌体，先将混合菌体用pH7.0、100mM的PBS缓冲液重悬，转化体系中混合菌体加入干重量为20g DCW/L，底物6-氰基-(5R)-羟基-3-羰基己酸叔丁酯的投料量为100g/L，葡萄糖浓度为150g/L，pH 7.0、100mM PBS缓冲液为反应介质构建转化体系50mL，30℃、400rpm反应，反应进程曲线如图4所示，底物在3.5h能完全转化成产物6-氰基-(3R,5R)-二羟基己酸叔丁酯，且产物的累积量达到237.4mM，时空产率达到372.78g/L d，继续增加底物浓度到120g/L时，6-氰基-(5R)-羟基-3-羰基己酸叔丁酯并不能完全转化成6-氰基-(3R,5R)-二羟基己酸叔丁酯，且在反应时间为5.5h，产物不再累积增加，底物的转化率为93.8％。
实施例8：醛酮还原酶突变体KmAKR-W297H/Y296W/K29H/Y28A不对称还原6-氰基-(5R)-羟基-3-羰基己酸叔丁酯
同样的方法通过发酵获得醛酮还原酶突变体KmAKR-W297H/Y296W/K29H/Y28A湿菌体和葡萄糖脱氢酶EsGDH湿菌体以干重比3.5:1(w/w)混合成混合菌体，在50mL反应体系中，混合菌体先用pH 7.0、100mM PBS缓冲液重悬，反应体系中混合菌体的投加总干重量为20gDCW/L，将底物6-氰基-(5R)-羟基-3-羰基己酸叔丁酯的初始投料量设定为170g/L，葡萄糖的浓度为255g/L，pH 7.0、100mM PBS缓冲液为反应介质构建转化体系，30℃、600rpm反应。反应进程曲线如图5所示，产物浓度随时间的推移而逐渐升高，3.5h反应完成，可完全转化成446.4mM的产物，时空产率可达697.2g/L d。继续增加底物的浓度，在同样的反应体系中加入终浓度200g/L的6-氰基-(5R)-羟基-3-羰基己酸叔丁酯，终浓度300g/L的葡萄糖构成反应体系，反应条件与上述方法相同，反应进程曲线如图5所示。该图显示，产物浓度随时间的推移而逐渐升高，4.5h内反应完成，底物转化率大于99％，产物dep值始终保持在99.5％以上。产物的浓度为549mM，时空产率达到670.5g/L d。
序列表
<110> 浙江工业大学
<120> 一种重组醛酮还原酶突变体及应用
<160> 2
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 933
<212> DNA
<213> 未知(Unknown)
<400> 1
atgacaaacc aaaagttctt tactttatcc aatgggaaca agattccagc tgttgctgtt 60
gttggtacag gtaccaagtg gtacaaagct gaagaaaccg atgctacttt ctctcaagaa 120
ttgactgata tcgtaaagct atctttagac actgttccag gaattgttca cattgatgca 180
gccgagacct acaagactta tccagagttg ggtgctgctt tgaaggaaac aaagaagccc 240
agggaagaga ttttcattac agacaagttt tcttccttgc acaagatttc ggaagatcct 300
aagtctgctt tagaaaccgc tttgaagaag ctaggagttg attatgttga cttatacttg 360
attcattctc catttttcga caaggacttg aatattgatc tagagaccgc ttggaagcaa 420
ttggaagaac tatataaatc cggaaaggca aagaacattg gtgtctcaaa ctttactgtt 480
gaggatttga aaaaagtttt ggccattgct gaaattaaac ctcaagtgaa tcaaatcgag 540
ttttctccat tcttgcaaaa ccagacccca ggtatcgtgg agtttagcca aaagaacgat 600
attttactag aagcctattc tccattaggt cctctccaaa agaagccagc tgatgctgac 660
caacaaccat tctatcaata tctgaaggaa ctttctgaaa agtataacaa aactgaagct 720
caagttttgt tgttgtgggt gtacaagcgc ggtatcttgc cagttaccac ttctgccaag 780
atcgagagaa tcaagcaagc ccaagacatc ttcagctttg atcttactga agaagaggta 840
aagaaaatta ccgatttggg tttacaacat gaacctgtta gattgtggca tgttgatttc 900
tacaccaagt acaactccga agcccaaaaa tga 933
<210> 2
<211> 310
<212> PRT
<213> 未知(Unknown)
<400> 2
Met Thr Asn Gln Lys Phe Phe Thr Leu Ser Asn Gly Asn Lys Ile Pro
1 5 10 15
Ala Val Ala Val Val Gly Thr Gly Thr Lys Trp Tyr Lys Ala Glu Glu
20 25 30
Thr Asp Ala Thr Phe Ser Gln Glu Leu Thr Asp Ile Val Lys Leu Ser
35 40 45
Leu Asp Thr Val Pro Gly Ile Val His Ile Asp Ala Ala Glu Thr Tyr
50 55 60
Lys Thr Tyr Pro Glu Leu Gly Ala Ala Leu Lys Glu Thr Lys Lys Pro
65 70 75 80
Arg Glu Glu Ile Phe Ile Thr Asp Lys Phe Ser Ser Leu His Lys Ile
85 90 95
Ser Glu Asp Pro Lys Ser Ala Leu Glu Thr Ala Leu Lys Lys Leu Gly
100 105 110
Val Asp Tyr Val Asp Leu Tyr Leu Ile His Ser Pro Phe Phe Asp Lys
115 120 125
Asp Leu Asn Ile Asp Leu Glu Thr Ala Trp Lys Gln Leu Glu Glu Leu
130 135 140
Tyr Lys Ser Gly Lys Ala Lys Asn Ile Gly Val Ser Asn Phe Thr Val
145 150 155 160
Glu Asp Leu Lys Lys Val Leu Ala Ile Ala Glu Ile Lys Pro Gln Val
165 170 175
Asn Gln Ile Glu Phe Ser Pro Phe Leu Gln Asn Gln Thr Pro Gly Ile
180 185 190
Val Glu Phe Ser Gln Lys Asn Asp Ile Leu Leu Glu Ala Tyr Ser Pro
195 200 205
Leu Gly Pro Leu Gln Lys Lys Pro Ala Asp Ala Asp Gln Gln Pro Phe
210 215 220
Tyr Gln Tyr Leu Lys Glu Leu Ser Glu Lys Tyr Asn Lys Thr Glu Ala
225 230 235 240
Gln Val Leu Leu Leu Trp Val Tyr Lys Arg Gly Ile Leu Pro Val Thr
245 250 255
Thr Ser Ala Lys Ile Glu Arg Ile Lys Gln Ala Gln Asp Ile Phe Ser
260 265 270
Phe Asp Leu Thr Glu Glu Glu Val Lys Lys Ile Thr Asp Leu Gly Leu
275 280 285
Gln His Glu Pro Val Arg Leu Trp His Val Asp Phe Tyr Thr Lys Tyr
290 295 300
Asn Ser Glu Ala Gln Lys
305 310

Claims (6)

1.一种重组醛酮还原酶突变体，其特征在于所述重组醛酮还原酶突变体是将SEQ IDNO.2所示氨基酸序列第29位、28位进行单突变或多突变获得的。
2.根据权利要求1所述重组醛酮还原酶突变体，其特征在于所述醛酮还原酶突变体为下列之一：(1)第29位赖氨酸突变为组氨酸或精氨酸；(2)第28位酪氨酸突变为丙氨酸或组氨酸；(3)第29位赖氨酸替换成组氨酸且第28位酪氨酸替换成丙氨酸。
3.一种权利要求1所述重组醛酮还原酶突变体在不对称还原6-氰基-(5R)-羟基-3-羰基己酸叔丁酯制备6-氰基-(3R,5R)-二羟基己酸叔丁酯中的应用。
4.如权利要求3所述的应用，其特征在于所述应用的方法为：将含重组醛酮还原酶突变体基因的工程菌经诱导培养获得的湿菌体和含葡萄糖脱氢酶基因的工程菌经诱导培养获得的湿菌体混合的混合菌体为催化剂，以6-氰基-(5R)-羟基-3-羰基己酸叔丁酯为底物，以葡萄糖为辅底物，以pH 7.0、100mM PBS缓冲液为反应介质构成转化体系，在35℃、400-600rpm条件下进行反应，反应结束，反应液分离纯化，获得6-氰基-(3R,5R)-二羟基己酸叔丁酯。
5.如权利要求4所述的应用，其特征在于所述转化体系中，底物终浓度100-200g/L，葡萄糖终浓度150-300g/L，催化剂用量以混合菌体总量干重计为20-30g DCW/L，所述混合菌体中含醛酮还原酶突变体基因的工程菌经诱导培养获得的湿菌体与含葡萄糖脱氢酶基因的工程菌经诱导培养获得的湿菌体的干重比为1.0-5.0:1。
6.如权利要求4所述的应用，其特征在于所述湿菌体按如下方法制备：将含重组醛酮还原酶突变体基因的工程菌接种到含终浓度50μg/mL卡那霉素的LB液体培养基中，37℃培养10h，以体积浓度1.5％的接种量接种到新鲜的含终浓度50μg/mL卡那霉素的LB液体培养基中，37℃、180rpm培养2h，再向培养液中加入终浓度为0.15mM IPTG，28℃培养12h后，4℃、8000rpm离心10min，获得含重组醛酮还原酶突变体的湿菌体；所述含葡萄糖脱氢酶基因的工程菌经诱导培养获得的湿菌体制备方法同含醛酮还原酶突变体基因的湿菌体。
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