CN109329628A - 一种猪饲料添加剂及其制备方法和应用 - Google Patents

一种猪饲料添加剂及其制备方法和应用 Download PDF

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姜国均
王萍
周帮会
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Abstract

本发明适用于养殖领域,提供了一种猪饲料添加剂及其制备方法和应用,按照重量份数计,由下列组分组成:新肠泰20~50份,寡糖600~800份、黄芪多糖50~100份和辅料50~330份。本发明提供的猪饲料添加剂,采用新肠泰、寡糖、黄芪多糖进行复配,各种组分具有协同增效作用,能够调节动物的肠道菌群种类,提升动物肠道中益生菌的数量,增强肠道健康,促进小肠黏膜和肠绒毛的发育,有效地降低了动物的腹泻率,增强动物的抗病能力;并且适口性好,可增进动物的食欲,促进动物的生长发育,提高动物的生产性能,缩短养殖周期;同时,该添加剂不会使动物机体产生耐药性,安全性高,具有良好的经济效益和市场前景。

Description

一种猪饲料添加剂及其制备方法和应用
技术领域
本发明属于养殖领域,尤其涉及一种猪饲料添加剂及其制备方法和应用。
背景技术
自上世纪40年代人们发现抗生素对畜禽生长具有促进作用以来,抗生素便被用来作饲料添加剂,这期间对动物生长和疾病预防起到了非常好的效果。
虽然抗生素为全球的发展做出了不可替代的贡献,但随着时代的发展人们对健康和环境的认识,特别是近年来人们对动物食品安全性的关注程度日益提高,对禁止在饲料中添加抗生素、激素的要求日益强烈,在这种大环境的影响下绿色健康添加剂的关注度不断被提高。而且,随着抗生素的长期广泛应用,它的弊端也越来越明显,例如引发动物肠道菌群失调,使得机体产生耐药性,抗病力降低和药物残留等问题,从而降低了目标经济动物的生产性能。同时,若含有抗生素残留的肉蛋奶等食品供给人们食用,长期以来也容易在人体内富集并影响人体的健康。
由此可见,传统的在饲料中添加抗生素容易引发动物肠道菌群失调、使动物机体产生耐药性,抗病力降低和药物残留等问题,安全性不高。
发明内容
本发明实施例提供一种猪饲料添加剂,旨在解决现有技术中在饲料中添加抗生素容易引发动物肠道菌群失调、使动物机体产生耐药性,抗病力降低和药物残留等问题,安全性不高的问题。
本发明实施例是这样实现的,一种猪饲料添加剂,按照重量份数计,由下列组分组成:新肠泰20~50份,寡糖600~800份、黄芪多糖50~100份和辅料50~330份。
优选的,按照重量份数计,由下列组分组成:新肠泰30~50份,寡糖650~800份、黄芪多糖65~100份和辅料50~250份。
优选的,按照重量份数计,由下列组分组成:新肠泰45份,寡糖780份、黄芪多糖100份和辅料75份。
优选的,所述新肠泰为一种包被有乳酸粪肠球菌的药物。
优选的,所述寡糖为麦芽低聚糖、异麦芽低聚糖、偶联糖、果糖低聚糖、海藻糖或者蔗糖低聚糖中的其中一种。
更优选的,所述寡糖为果糖低聚糖。
优选的,所述辅料为麸皮。
本发明实施例还提供了一种猪饲料添加剂的制备方法,该方法包括如下步骤:
步骤一、按照上述的饲料添加剂配方称取各组分,备用;
步骤二、将所述新肠泰溶于30~45℃的温水中活化30~60min,形成活化液,再将活化液进行烘干粉碎,得到新肠泰颗粒;
步骤三、将所述辅料研磨粉碎至其粒度为10~20目的颗粒;
步骤四、将所述新肠泰颗粒、研磨后的辅料颗粒以及所述酸化剂和酶制剂放入混合搅拌装置中搅拌15~25min,得到所述猪饲料添加剂。
本发明实施例提供的猪饲料添加剂,采用新肠泰、寡糖、黄芪多糖进行复配,各种组分具有协同增效作用,能够调节动物的肠道菌群种类,提升动物肠道中益生菌的数量,增强肠道健康,促进小肠黏膜和肠绒毛的发育,有效地降低了动物的腹泻率,增强动物的抗病能力;并且适口性好,可增进动物的食欲,促进动物的生长发育,提高动物的生产性能,缩短养殖周期;同时,该添加剂不会使动物机体产生耐药性,安全性高,具有良好的经济效益和市场前景。
具体实施方式
为了使本发明的目的、技术方案及优点更加清楚明白,以下结合具体实施例,对本发明进行进一步详细说明。应当理解,此处所描述的具体实施例仅仅用以解释本发明,并不用于限定本发明。
本发明实施例提供的猪饲料添加剂,采用新肠泰、寡糖、黄芪多糖进行复配,各种组分具有协同增效作用,能够调节动物的肠道菌群种类,提升动物肠道中益生菌的数量,增强肠道健康,促进小肠黏膜和肠绒毛的发育,有效地降低了动物的腹泻率,增强动物的抗病能力;并且适口性好,可增进动物的食欲,促进动物的生长发育,提高动物的生产性能,缩短养殖周期;同时,该添加剂不会使动物机体产生耐药性,安全性高,具有良好的经济效益和市场前景。
以下通过具体的实施例对本发明的技术方案和技术效果做进一步的说明。
实施例1:
按照下述配方称取各原料,备用:新肠泰20份,寡糖(麦芽低聚糖)600份、黄芪多糖50份和辅料330份。
作为本发明的实施例,该猪饲料添加剂的制备方法如下:
步骤一、按照上述的饲料添加剂的配方称取各组分,备用;
步骤二、将新肠泰溶于35℃的温水中活化50min,形成活化液,再将活化液进行烘干粉碎,得到新肠泰颗粒;
步骤三、将辅料研磨粉碎至其粒度为15目的颗粒;
步骤四、将新肠泰颗粒、研磨后的辅料颗粒以及酸化剂和酶制剂放入混合搅拌装置中搅拌15min,得到饲料添加剂。
实施例2:
按照下述配方称取各原料,备用:新肠泰50份,寡糖(麦芽低聚糖)800份、黄芪多糖100份和辅料50份。
本实施例的饲料添加剂的制备方法与实施例一基本相同,其不同之处仅在于:步骤二、将新肠泰溶于45℃的温水中活化30min,形成活化液,再将活化液进行烘干粉碎,得到新肠泰颗粒;
步骤三、将辅料研磨粉碎至其粒度为10目的颗粒;
步骤四、将新肠泰颗粒、研磨后的辅料颗粒以及酸化剂和酶制剂放入混合搅拌装置中搅拌25min,得到饲料添加剂。
实施例3:
按照下述配方称取各原料,备用:新肠泰30份,寡糖(麦芽低聚糖)700份、黄芪多糖80份和辅料190份。
本实施例的饲料添加剂的制备方法与实施例一基本相同,其不同之处仅在于:步骤二、将新肠泰溶于30℃的温水中活化60min,形成活化液,再将活化液进行烘干粉碎,得到新肠泰颗粒;
步骤三、将辅料研磨粉碎至其粒度为20目的颗粒。
实施例4:
按照下述配方称取各原料,备用:新肠泰35份,寡糖(麦芽低聚糖)650份、黄芪多糖65份和辅料250份。
本实施例的饲料添加剂的制备方法与实施例一基本相同,其不同之处仅在于:步骤二、将新肠泰溶于37℃的温水中活化60min,形成活化液,再将活化液进行烘干粉碎,得到新肠泰颗粒。
实施例5:
按照下述配方称取各原料,备用:新肠泰45份,寡糖(麦芽低聚糖)780份、黄芪多糖100份和辅料75份。
本实施例的饲料添加剂的制备方法与实施例四相同。
为了进一步说明本发明实施例提供的猪饲料添加剂的安全性及使用效果,以下通过试验例做进一步的说明。
试验例:
1、试验样品:实验组1~6:依次为本发明实施例1~5提供的猪饲料添加剂;
实验组7~14依次为:对比例1,原料仅采用新肠泰和辅料,其余与实施例5相同的猪饲料添加剂;对比例2,原料仅采用寡糖和辅料,其余与实施例5相同的猪饲料添加剂;对比例3,原料仅采用黄芪多糖和辅料,其余与实施例5相同的猪饲料添加剂;对比例4,原料仅采用新肠泰、寡糖和辅料,其余与实施例5相同的猪饲料添加剂;对比例5,原料仅采用新肠泰、黄芪多糖和辅料,其余与实施例5相同的猪饲料添加剂;对比例6,原料仅采用寡糖、黄芪多糖和辅料,其余与实施例5相同的猪饲料添加剂;对比例7,原料中的新肠泰:寡糖:黄芪多糖:辅料的重量比例为1:60:5:5,其制备方法与实施例5相同的猪饲料添加剂;对比例8,原料中的新肠泰:寡糖:黄芪多糖:辅料的重量比例为3:45:5:17,其制备方法与实施例5相同的猪饲料添加剂;对比例9:制备方法省略步骤二,其余与实施例5相同。
对照组15:原料组成为山楂、麦芽、神曲和辅料的市售饲料添加剂。
空白对照组16:原料仅为辅料。
2、试验方法:
随机从某养猪场选取320头平均日龄为21天、平均体重为(6.98±0.45)kg的杜长大三元杂交断奶仔猪,按体重、性别和胎次基本一致原则分为10组,每组20头猪,在相同的环境下饲养7天适应期后,依次按0.1%在猪饲料中拌料添加上述试验样品进行喂养。
28日龄对猪群用猪瘟疫苗常规免疫。并分别于开始与实验结束时对各组猪只称重,计算料重比;并在免疫前(28日龄)、免后2周(42日龄)、4周(56日龄)、6周(70日龄)各组随机选取5头进行前腔静脉采血4ml,采血前停食12小时,停水3小时,将血样分为2份各2ml,一份用于血常规检测,一份置离心机10000rpm离心5min后,提取血清,-20°保存,待试验结束时集中检测。试验结束时各组随机选取4头猪屠宰并收集肠道及内容物。
对于试验猪的管理:试验猪于哺乳期(14d)进行公猪去势,平均日龄21d时断奶,转栏(由产仔房转入保育舍),分组,平均日龄70d时称重结束试验。整个试验期猪只在保育舍饲养,保育舍采用高床全漏粪网床养殖模式,每栏养殖20头。试验猪饲养在同一单元,同一饲养员管理,饲喂相同饲料(见表1,各种饲养管理条件和环境相同。各种操作按照常规进行:上午和下午各清圈1次,保持猪舍卫生干燥、空气流通、环境温湿度适宜。
保证试验猪自由采食,自由饮水,于每天上午7:00、下午13:00、晚上19:00各加料1次。试验组与对照组的饲料配方相同,40d时更换保育猪后期料。
表1日粮组成及营养水平
注:预混料中每千克日粮含:维生素A20000IU、维生素D2000IU、维生素E60IU、维生素K2mg、核黄素10mg、烟酸40mg、维生素B65mg、泛酸20mg、叶酸1.5mg、维生素C200mg、氯化胆碱600mg、锰75mg、锌120mg、铁140mg、铜8mg、硼0.4mg。
各检测指标及检测方法如下:
1)仔猪生长性能的测定:试验全程以栏为单位记录采食量,分别于试验开始前(28日龄)和结束时(70日龄)当天对空腹断奶仔猪称重,计算每头断奶仔猪的平均日增重(Average daily gain,ADG)、平均日采食量(Average daily intake,ADFI)和料重比(Material weight ratio,F/G),具体计算方法如下:
平均日增重(ADG)=栏总增重/(栏仔猪数x试验天数);
平均日采食量(ADFI)=栏饲粮总消耗量/(栏仔猪数x试验天数);
料重比(F/G)=ADFI/ADG。
2)仔猪腹泻率的测定:试验期间每天早上9:30观察仔猪粪便情况,并做好记录。
腹泻率(%)={(每栏仔猪腹泻头数x腹泻天数)/(每栏仔猪总数x试验天数)}x100%。
3)猪瘟抗体效价的测定:
采用猪瘟ELISA检测试剂盒测定猪瘟抗体效价,操作方法如下:
1、从密封袋中取出包被的反应板,在记录纸上记录样品的相应的位置。
2、在A1和B1孔中加入100ul的阴性对照,在C1和D1上加入100ul的阳性对照。
3、加入100ul稀释好的样品到相应的板孔中,盖好反应板,在室温下静止60min。
4、倒出孔中内容物,用洗涤液洗涤4次,在吸水纸上拍干。
5、各孔加入100ul酶标二抗,用盖子盖好反应板,在室温下静止30min。
6、倒出孔中内容物,用洗涤液洗涤4次,在吸水纸上拍干。
7、各孔加入100ul底物试剂,用盖子盖好反应板,在室温下静止15min。
8、各孔加入100ul终止液,终止反应。
9、反应板置酶标仪上,空气调零,测定各孔吸光度,读取OD值。
10、按公式计算抗体效价。
4)仔猪血清中免疫细胞因子含量的测定:
A、仔猪血清中白细胞介素2含量的测定:采用IL-2(Interleukin-2,IL-2)ELISA试剂盒测定,测试方法参考上述3)。
B、仔猪血清中白细胞介素10含量的测定:采用IL-10(Interleukin-10,IL-10)ELISA试剂盒测定,测试方法参考上述3)。
C、仔猪血清中肿瘤坏死因子α含量的测定:采用TNF-α(Tumor necrosis factor-α,IFN-γ)ELISA试剂盒测定,测试方法参考上述3)。
D、仔猪血清中干扰素γ含量的测定:采用IFN-γ(Interferon-γ,IFN-γ)ELISA试剂盒测定,测试方法参考上述3)。
5)仔猪血液常规指标检测:对28、42、56和70日龄采集的抗凝血,用全自动血液分析仪进行检测,测定血液中的红细胞(Red blood cell,RBC)、白细胞(White blood cell,WBC)和血小板(Platelet,PLT)的数目,测定血红蛋白(Hemoglobin,HGB)含量和红细胞比容(Hematocrit,HCT)。
6)仔猪血液生化指标检测:对28、42、56和70日龄采集血液分离的血清,用全自动血液生化分析仪进行检测,测定血清中谷草转氨酶(Aspartate transaminase,AST)、谷丙转氨酶(Alanine aminotransferase,ALT)、血清总蛋白(Serum total protein,TP)、血清白蛋白(Serum albumin,ALB)、血清总胆红素(Serum total bilirubin,TB)、血清肌酐(Serum creatinine,CREA)、血清尿素氮(Serum urinary nitrogen,BUN)和血糖(Bloodglucose,GLU)的含量。
7)仔猪大肠中肠道菌群的测定:试验最后一天,每组选4头体重适中的健康仔猪进行屠宰,随后立即剖腹并结扎结肠、盲肠和直肠的两头,用酒精棉球将每个结扎口消毒后,放入己灭菌的塑料袋中,将样品运回实验室,立即在超净工作台上称取1.0g左右肠内容物放到无菌试管中,用9ml的稀释液稀释(稀释液配方见下表2),在试管中加入玻璃珠振荡30秒钟,这时稀释倍数为1/10,静置一段时间后,吸取1m上清液放入有9ml稀释液的试管中进行1/102倍稀释,振摇3-4秒钟,并依次进行1/103至1/106倍稀释。各成分配好后加热至溶化,然后置于高压锅内20分钟灭菌备用。
表2稀释液配方
A、大肠杆菌的检测:用微量取液器分别取结肠、盲肠和直肠内容物按105-107进行稀释,将稀释液0.1ml涂布接种于麦康凯NO.3培养基平皿上〔各稀释度设3个重复,并编号),置37℃培养箱中有氧培养24小时后,选取粉红色或红色,表面光滑、凸起,边缘整齐不透明,质地软、粘、直径1.0-3.0mm的菌落进行计数,并进一步作生化鉴定。
B、乳酸粪肠球菌的检测:使用微量取液器分别移取盲肠、结肠和直肠中的内容物按105-107进行稀释,取0.1ml混合液体接种于Rogosa琼脂培养基平皿上(每个稀释度分别设3个重复,并编号),放置于37℃培养箱中有氧培养48小时后,选取稍偏黄,乳白色,表面凸起、光滑,质地软,边缘整齐不透明,直径在0.6-2.6mm的菌落进行计数,并进一步作生化鉴定。
表3琼脂培养基的配制表
将以上药品称好混合后,加热溶化,待冷至45℃,加1.32ml冰醋酸,混匀,倾注无菌平皿,冷凝后便可接种。
C、使用微量取液器分别取盲肠、结肠和直肠中的内容物按105-107进行稀释,取0.1ml混合液体接种于双歧杆菌分离选择性培养基平皿上(每个稀释度分别设3个重复,并编号),放置于37℃培养箱中厌氧培养48小时后,选取表面光滑,乳白色,凸起,质地软,边缘整齐不透明,直径0.7-2.6mm的菌落进行计数,并进一步作生化鉴定。
表4培养基成分配比表
配好后加热溶化,然后0.1Mpa灭菌30分钟,待冷至60℃左右时,倾注平皿。
8)仔猪小肠绒毛形态结构的测定:在小肠中间部分(空肠)切取一段呈1cm2大小的肠壁,立即放到含3.8%甲醛的福尔马林液中固定,经脱水、浸蜡、包埋、切片等处理,再经苏木精-伊红染色,显微镜下测量小肠绒毛高度和隐窝深度。
肠绒毛高度:绒毛顶端至绒毛与腺窝生发细胞的交汇处,通常形成锐角。
隐窝深度:锐角处与腺窝开口中间至腺窝底层的距离。
3、试验数据结果与分析:采用SPSS19.0软件对数据进行统计和分析。
一、仔猪生长性能及腹泻率的测定结果(详见下表5),注:同列内不同小写字母表示差异显著(P<0.05);不同大写字母表示差异极显著(P<0.01);无角标或相同字母角标表示差异不显著,下同。
表5
由上表5的试验数据可以得出,实验仔猪的末重和平均日增重,组1~5高于其他组,组6~15均高于组16,差异极显著(P<0.01);实验仔猪的料重比,组1~5和组14低于其他各组,差异显著(P<0.05),组6~13和组15均高于组16,差异显著(P<0.05);实验仔猪的腹泻率,组1~5低于其他各组,组6~15均低于组16,差异显著(P<0.05)。试验结果表明,在日粮中添加本发明实施例1~5提供的猪饲料添加剂能显著促进仔猪的生长发育和提高饲料的利用率,显著降低仔猪的腹泻发生率。
从组1~5与组6~11的比对结果可以发现,本发明的猪饲料添加剂中各组分新肠泰、寡糖、黄芪多糖具协同作用,能够能显著促进仔猪的生长发育和提高饲料的利用率,显著降低仔猪的腹泻发生率。
从组1~5与组12~13的比对结果可以发现,本发明的猪饲料添加剂各组分的配比科学合理,能显著促进仔猪的生长发育和提高饲料的利用率。
从组1~5与组14的比对结果可以发现,本发明的猪饲料添加剂制备方法中的对新肠泰进行活化处理后可使得新肠泰与其他组分更好地发挥协同作用,能够明显提高仔猪的生长发育和提高饲料的利用率。
二、仔猪猪瘟抗体效价的测定结果,详见下表6。
表6
由上表6的试验结果可以得出,8日龄,各组仔猪的猪瘟抗体效价相近,差异不显著(P>0.05);42日龄,组1~组5的猪瘟抗体效价其他各组,组6~组15均高于组16,差异显著(P<0.05);56日龄和70日龄,组1~5高于其余各组,组6~组15均高于组16,差异显著(P<0.05)。试验结果表明,添加本发明实施例提供的猪饲料添加剂具有增强仔猪猪瘟疫苗功免疫效果的作用,并且本发明的猪饲料添加剂各组分新肠泰、寡糖和黄芪多糖具有协同作用,可协同增强猪猪瘟疫苗功免疫效果的作用。
三、仔猪血液中免疫细胞因子的测定结果
1、血清中IL-2含量的测定结果,详见下表7,单位:pg/mL。
表7
从上表7的试验结果中可以得出,42日龄、56日龄和70日龄时,组1~5、组12~组13和组14高于其他各组,差异显著(P<0.05)。试验结果表明,添加本发明的猪饲料添加剂具有提高血清中IL-2含量的作用。从组1~组5与组6~11的比对结果中可以发现,本发明的猪饲料添加剂中的各组分新肠泰、寡糖和黄芪多糖具有协同作用,可以提高血清中IL-2含量,尤其是添加有黄芪多糖的实验组,其效果更明显。
2、血清中IL-10含量的测定结果,详见下表8,单位:pg/mL。
表8
由上表8的试验结果可以得出,28日龄时各组间差异不显著,42日龄、56日龄和70日龄时,组1~5和组14均高于其他各组,差异显著(P<0.05)。试验结果表明,添加本发明的猪饲料添加剂可显著提高仔猪血清中IL-10含量。并且,从组1~5与组6~11和组12~13的比对结果中可以发现,本发明的猪饲料添加剂中的各组分及其配比之间具有协同作用,可显著提高仔猪血清中IL-10含量。
3、血清中IFN-γ含量的测定结果,详见下表9,单位:pg/mL。
表9
由上表9的试验结果可以得出,28日龄时各组间差异不显著(P>0.05);饲喂两周以后即42日龄、56日龄、70日龄时,组1~5和组14血清中IFN-γ含量始终高于其他各组,差异显著(P<0.05);且组1~5均高于组14,差异不显著(P>0.05)。试验结果表明,添加本发明的猪饲料添加剂具有显著提高血清中IFN-γ含量的作用。此外,从组1~5与组6~13的比对结果中可以发现,本发明的各组分及配比具有协同增效作用,可明显提高血清中IFN-γ含量。
4、血清中TNF-α含量的测定结果,详见下表10,单位:pg/mL。
表10
由上表10的试验结果中可以得出,28日龄时各组的试验结果差异不显著(P>0.05);饲喂两周以后即42日龄、56日龄、70日龄时,组1~5和组14血清中IFN-γ含量始终高于其他各组,差异显著(P<0.05);且组1~5均高于组14,差异不显著(P>0.05)。试验结果表明,添加本发明的猪饲料添加剂具有显著提高血清中TNF-α含量的作用。此外,从组1~5与组6~13的比对结果中可以发现,本发明的各组分及配比具有协同增效作用,可明显提高血清中TNF-α含量。
四、血常规指标检测结果
1、仔猪血液中红细胞数的测定结果,详见下表11,单位:1012·L-1
表11
由上表11试验结果可以得出,血液中的红细胞数,各组仔猪在28日龄和42日龄时相近,差异不显著(P>0.05);56日龄和70日龄时,组1~组14均高于组15和组16,差异显著(P﹤0.05)。试验结果表明,添加本发明实施例提供的猪饲料添加剂可明显提高仔猪血液中的红细胞数量。
2、仔猪血液中白细胞数、血液中血小板数的测试结果均为各组仔猪在28、42、56和42日龄时相近,差异不显著(P>0.05)。
3、仔猪血液中血红蛋白含量的测定结果,详见下表12,单位:g·L-1
表12
由上表12的试验结果可以得出,血液中的血红蛋白含量,各组仔猪在28日龄和42日龄时相近,差异不显著(P>0.05);56日龄和70日龄时,组1~组14均高于组15和组16,差异显著(P﹤0.05)。试验结果表明,添加本发明的猪饲料添加剂可明显提高仔猪血液中的血红蛋白含量。
4、仔猪血液中红细胞比容的测定结果,详见下表13,单位:%。
表13
由上表13的试验结果可以得出,仔猪血液中的红细胞比容,各组仔猪在28日龄和42日龄时相近,差异不显著(P>0.05);56日龄和70日龄时,组1~组14均高于组15和组16,差异显著(P﹤0.05)。试验结果表明,添加本发明的猪饲料添加剂可明显提高仔猪血液中的红细胞比容。
5、血清生化指标测试结果
仔猪血清中谷草转氨酶含量、谷丙转氨酶含量、总蛋白含量、白蛋白含量、总胆红素含量、肌酐含量、尿素氮含量、血糖含量,各组之间均无明显差异(P>0.05)。
血清总胆红素)是衡量肝脏功能是否正常的重要标志,血清中ALT、AST水平能反应肝细胞是否受到破坏;ALB、TP能反应肝脏制造蛋白质功能是否正常;TB能反应肝细胞排泄功能。GLU(血糖)、BUN(血尿素氮)、Crea(肌氨酸)代表肾脏排泄功能是否正常。上述血清生化指标测试结果表明,添加本发明的猪饲料添加剂喂养仔猪,对仔猪的肝、肾功能均无不良影响。
五、仔猪大肠中菌群数的测定结果
1、仔猪大肠中大肠杆菌数测定结果,详见下表14,单位:1010CFU/g。
表14
由上表14的试验结果可以得出,组1~5大肠中的大肠杆菌数量低于其他各组,差异极显著(p﹤0.01);组1~组5大肠中的大肠杆菌数量低于组6~组14,差异极显著(p﹤0.01);组6~组14大肠中的大肠杆菌数量低于组15和组16,差异极显著(p﹤0.01)。试验结果表明,本发明的猪饲料添加剂对大肠杆菌有较强的抑制作用,且各组分及配比具有协同作用,可明显提高对大肠杆菌有较强的抑制作用,同时对新肠泰进行活化处理,有助于新肠泰更好地发挥其与其他组分之间的协同效果,从而明显提高对大肠杆菌有较强的抑制作用。
2、仔猪肠道中双歧杆菌数测定结果,详见下表15,单位:1010CFU/g。
表15
由上表15的试验结果可以得出,大肠中双歧杆菌的数量,组1~组15均高于组16,差异显著(p﹤0.05)。试验结果表明,添加本发明提供的猪饲料添加剂可以显著提高仔猪大肠中的双歧杆菌的数量。
3、仔猪大肠中乳酸粪肠球菌数测定结果,详见下表16,单位:1010CFU/g。
表16
由上表16的试验结果可以得出,从各组仔猪的大肠中乳酸杆菌对比结果来看,组1~组14均高于组15和组16,差异极显著(p﹤0.01);组1~5高于组6~11,差异显著(p﹤0.05)。试验结果表明,添加本发明提供的猪饲料添加剂对乳酸粪肠球菌起到了很好的增值作用,且本发明的组分新肠泰、寡糖和黄芪多糖之间具有协同作用,可共同起到增值乳酸粪肠球菌的作用。
4、仔猪小肠黏膜形态测定结果,详见下表17,单位:μm。
表17
由上表17的试验结果可以得出,小肠绒毛的高度和隐窝深度,组1~组14均高于组15和组16,差异显著(p﹤0.05)。试验结果表明,添加本发明提供的猪饲料添加剂,有助于小肠黏膜的发育,促进肠绒毛和肠隐窝的生长,增加肠表面积,增强了小肠的吸收功能。
综述:本发明实施例提供的饲料添加剂,组方原理结合仔猪消化特点,采用包被乳酸粪肠球菌的“新肠泰”、寡糖、黄芪多糖和辅料组合而成,拌料添加到猪饲料中能显著促进仔猪的生长发育和提高饲料利用率,显著降低仔猪的腹泻发生率,饲料中的营养物质,大约70-80%在小肠段消化吸收,20-30%进入大肠,其中大部分排出体外,形成粪便和氨气等排泄物。本发明通过在饲料中拌入上述饲料添加剂,可充分挖掘利用大肠中20-30%的营养物质,提高饲料消化率,提高仔猪生产性能。
肠道中的益生菌可以产生有机酸和抑菌成分,抑制病原菌的生长,优化肠道微生态区系,促进营养物质消化和吸收,达到促进动物生长的目的。猪大肠主要进行微生物消化,以进入大肠的未消化饲料、脱落的肠黏膜和胃肠道消化酶为底物,经过大肠消化相关的微生物发酵产生以挥发性脂肪酸为主的产物,大部分产物被动物吸收利用,为动物生长提供能量。本发明采用的新肠泰,包被有益生菌--乳酸粪肠球菌,相对于严格厌氧、培养和保存条件苛刻的双岐杆菌、乳杆菌而言,乳酸粪肠球菌兼性厌氧,适宜pH为5.0-7.5,生长温度为35-38℃,对肠道上皮细胞的粘附能力强,能迅速繁殖(19分钟繁殖一代)并产生大量乳酸和有益代谢产物,生物活性强。同时,粪肠球菌对头孢类、青霉素类、氨基糖苷类抗生素,克林霉素、多粘菌素、磺胺类药物具有天然耐药性。益生菌通过产生挥发性短链脂肪酸(如丙酸、乙酸、乳酸等)降低肠腔pH值,促进肠蠕动,从而使外源菌未能与胃肠道黏膜表面接触黏附就被排出体外;在厌氧环境下产生过氧化氢和天然抗生素类物质,减少肠道内毒性物质的产生,形成抑制或杀死有害菌的环境。该菌能耐高温、耐胃酸,能顺利地在大肠中定植、快速繁殖,维持肠道微生态平衡,促进营养物质的消化吸收,促进肠道蠕动,使动物消化道处于最佳健康状态,提高饲料消化率。前人的研究充分证实益生菌可以通过调节构建大肠高效微生态系统,促进营养物质在大肠段的消化和吸收,提高饲料利用率,显著降低料肉比。
同时,本发明的猪饲料添加剂中复配有寡糖,能提高断奶仔猪的饲料转化率和日增重,降低仔猪腹泻率,并且其效果与添加量密切相关。
并且该猪饲料添加剂中还复配有黄芪多糖能提高仔猪采食量和日增重等生产性能,但对料重比无显著影响。在仔猪饲料中添加黄芪多糖能显著提高仔猪猪瘟疫苗免疫的抗体含量,且猪瘟抗体水平随黄芪多糖应用剂量的增加而呈上升趋势。
白细胞介素是作用于白细胞和免疫细胞之间的淋巴因子,它具有免疫调节功能。IL-2是由活化的T淋巴细胞产生,能激活T细胞和促进B细胞分化和分泌抗体,诱导产生干扰素。IL-10主要由Th2细胞、巨噬细胞、活化的B细胞和单核细胞产生,它参与免疫细胞、炎症细胞、肿瘤细胞等多种细胞的生物调节,在严重感染性疾病、自身免疫性疾病和肿瘤等多种疾病中发挥重要作用。本次试验结果表明,本发明的猪饲料添加剂可显著提高仔猪血清中IL-2和IL-10含量,尤其是在组分含有黄芪多糖的实验组中,效果更为明显。
γ-干扰素是水溶性二聚体细胞因子,Younger和Salvin在1973年发现淋巴细胞培养上清中存在一种IFN,1980年命名为γ干扰素。γ-干扰素具有免疫调节、抗病毒及抗肿瘤特性,它是通过增强T淋巴细胞、巨噬细胞和NK细胞的活力来调节机体的免疫力。TNF-α肿瘤坏死因子-α又称为恶病质素,是由细菌脂多糖活化的单核细胞、巨噬细胞和T细胞产生,能够引起肿瘤细胞出血坏死而得名;炎症反应中,TNF-α主要是由自然杀伤细胞、单核巨噬细胞、中性粒细胞、淋巴细胞、肥大细胞、平滑肌细胞、成纤维细胞、表皮细胞、内皮细胞以及成骨细胞产生和释放。TNF-α在细胞因子免疫调节网络中处于中枢环节,是机体炎症反应以及免疫反应的重要调节因子。在病理状态下的机体中,TNF-α能够清除受损细胞,从而维持机体内环境的平衡。因此,TNF-α在维持机体内部稳定、抵御各种病原、细菌侵袭的过程中必不可少,可以保护机体,若TNF-α过度合成,机体将会失去平衡,造成组织损伤。
综合上述关于IL-2、IL-10、IFN-γ和TNF-α检测的结果来看,采用添加本发明的猪饲料添加剂的猪饲料喂养后,实验组1~组5的仔猪的免疫机能有较明显的提升,尤其是添加有黄芪多糖的实验组,其提升效果更加明显,这表明了黄芪多糖在免疫后各试验阶段对能反映机体免疫功能的细胞因子IL-2、IL-10、IFN-γ、TNF-α都有增强的作用。
肝脏是机体进行营养物质转化和代谢的主要场所。ALT和AST主要存在肝细胞胞浆和线粒体中,其活性的高低直接与肝细胞或线粒体的损伤程度相关。本试验中,各组对断奶仔猪血清中ALT和AST活性没有显著的影响,说明各组添加剂对断奶仔猪的肝脏功能没有产生不良影响。此外,添加本发明实施例的猪饲料添加剂对仔猪血清中TP、ALB、BUN、GLU、TB和Crea的含量没有显著影响。
动物的血液生化指标不仅反应了动物的健康情况、饲养管理和生长发育规律,并且是动物临床上诊断疾病、防治疾病的重要手段和依据。研究表明,猪血液指标的改变是组织细胞通透性发生变化和机体新陈代谢功能发生变化的反映。血清总蛋白能维持血管胶体渗透压,运输各种营养,调节运输物质等生理功能,机体总蛋白和免疫器官有着密切的联系。血液的总蛋白水平主要反应机体本身营养状况和蛋白质消化率。血清的总蛋白活性越高,组织合成越强,加快机体器官发育。白蛋白是血清总蛋白的重要成分,在肝脏合成,也是动物血液中含量最丰富物质。白蛋白能够促进营养物质生成和提高机体能量等生理作用。白蛋白降低会影响机体代谢能力。血清球蛋白是由浆细胞分泌而成,反应机体抗病能力情况。本次试验发现:添加本发明的饲料添加剂喂养仔猪,仔猪血液中的红细胞在28日龄和42日龄时各组差异均不显著,在使用猪饲料添加剂4周以后才有效果可能是因为注射液对机体产生影响的速度更快。
血液WBC是机体特异性免疫和非特异性免疫的物质基础,用56日龄和70日龄测得WBC结果用药组比对照组略有升高、比28日龄也略有升高,可能是由于本发明的饲料添加剂能增强机体免疫导致,但差异不显著(P>0.05)。HGB、HCT等指标可显示动物造血机能是否正常,有无贫血,PLT指标能反映血凝机能是否正常。上述试验结果表明,本发明的猪饲料添加剂对血液造血、凝血等机能均无明显的影响。
以上所述仅为本发明的较佳实施例而已,并不用以限制本发明,凡在本发明的精神和原则之内所作的任何修改、等同替换和改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。

Claims (9)

1.一种猪饲料添加剂,其特征在于,按照重量份数计,由下列组分组成:
新肠泰20~50份,寡糖600~800份、黄芪多糖50~100份和辅料50~330份。
2.如权利要求1所述的猪饲料添加剂,其特征在于,按照重量份数计,由下列组分组成:
新肠泰30~50份,寡糖650~800份、黄芪多糖65~100份和辅料50~250份。
3.如权利要求1所述的猪饲料添加剂,其特征在于,按照重量份数计,由下列组分组成:
新肠泰45份,寡糖780份、黄芪多糖100份和辅料75份。
4.如权利要求1所述的猪饲料添加剂,其特征在于,所述新肠泰为一种包被有乳酸粪肠球菌的药物。
5.如权利要求1所述的猪饲料添加剂,其特征在于,所述寡糖为麦芽低聚糖、异麦芽低聚糖、偶联糖、果糖低聚糖、海藻糖或者蔗糖低聚糖中的其中一种。
6.如权利要求5所述的猪饲料添加剂,其特征在,所述寡糖为果糖低聚糖。
7.如权利要求1所述的猪饲料添加剂,其特征在于,所述辅料为麸皮。
8.如权利要求1~7任意一项所述的猪饲料添加剂的制备方法,其特征在于,包括如下步骤:
按照如权利要求1~7任意一项所述的饲料添加剂配方称取各组分,备用;
将所述新肠泰溶于30~45℃的温水中活化30~60min,形成活化液,再将活化液进行烘干粉碎,得到新肠泰颗粒;
将所述辅料研磨粉碎至其粒度为10~20目的颗粒;
将所述新肠泰颗粒、研磨后的辅料颗粒以及所述酸化剂和酶制剂放入混合搅拌装置中搅拌15~25min,得到所述猪饲料添加剂。
9.一种如权利要求1~7任一项所述的猪饲料添加剂的应用,其特征在于,将所述猪饲料添加剂添加到猪饲料中使用,其中,所述猪饲料添加剂的添加量占所述猪饲料的重量比为0.1~0.2%。
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