CN109234252B - 一种印迹脂肪酶及其应用 - Google Patents

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Abstract

本发明公开了一种印迹脂肪酶及其应用,所述印迹脂肪酶按如下方法制备:将印迹分子加入脂肪酶酶液中,搅拌溶解,调节pH为7.2‑7.8,搅拌印迹反应完全后,加入大孔树脂,搅拌吸附完全后,将反应液过滤,滤饼洗涤干燥,即获得印迹脂肪酶;本发明以麦芽糖或蔗糖为印迹分子,与有机酸和酯类化合物为印迹分子比较,印迹体系不需要表面活性剂与醇类助溶剂,印迹分子在水溶液中与脂肪酶分子的结合更优。麦芽糖印迹的脂肪酶,催化低聚糖酯化的应用面较广,以蔗糖为例,催化其乙酯合成,酯化率与酯化选择性均优于未印迹的脂肪酶,本发明酯化率高达86.6%,酯化选择性高达85.4%。

Description

一种印迹脂肪酶及其应用
(一)技术领域
本发明涉及一种印迹脂肪酶及在催化低聚糖酯化中的应用。
(二)背景技术
以底物或底物类似物印迹脂肪酶,提高酶的催化酯化效果,是当前脂肪酶研究的热点技术。目前,对催化糖酯化的脂肪酶进行印迹,根据已公开报道的印迹技术,均选用有机酸或酯类化合物作为印迹分子,尚未有用低聚糖类物质印迹脂肪酶的报道。低聚糖类物质作为印迹分子与有机化合物有较明显的区别,其水溶性明显优于有机化合物,可完全溶于水,无需添加表面活性剂与助溶剂,简化了酶的印迹体系。分子结构与有机酸和酯类化合物差别较大,因而在印迹溶液体系中与脂肪酶分子的结合形态有所不同,所得到的印迹酶催化性能有自身优势,在催化低聚糖酯化反应上有重要的应用价值。
(三)发明内容
本发明目的是提供一种印迹脂肪酶及其应用,该印迹脂肪酶催化低聚糖酯化效果比较突出,特别是用于催化蔗糖的酯化,有良好的酯化率与酯化选择性,较现有国内外脂肪酶的印迹技术均有优势。
本发明采用的技术方案是:
本发明提供一种印迹脂肪酶,所述印迹脂肪酶按如下方法制备:将印迹分子加入脂肪酶酶液中,搅拌溶解,调节pH为7.2-7.8,在25-50℃(优选30-40℃)、100-160转/分钟条件下搅拌印迹反应完全后(优选10-30min),加入大孔树脂,在20-40℃(优选25-35℃)、60-120转/分钟条件下搅拌吸附(优选3-6h,更优选4h),吸附完全后,将反应液过滤,滤饼洗涤(优选蒸馏水洗涤3次)干燥,即获得印迹脂肪酶;所述脂肪酶酶液为脂肪酶溶于pH7.4的缓冲液制成,溶解过程中采用超声(优选40KHz)助溶,若有不溶成分则过滤去除(脂肪酶溶解,过滤去除杂质,对脂肪酶的含量基本没有影响),得到澄清的酶液;所述印迹分子为麦芽糖或蔗糖;所述脂肪酶酶液用量以脂肪酶重量计,所述印迹分子与脂肪酶重量比为0.1-0.4:1,所述大孔树脂与脂肪酶重量比为10-60:1。
进一步,所述大孔树脂优选D4006型大孔树脂(天津浩聚树脂科技有限公司)、D3520型大孔树脂(南开大学化工厂)、D1300型大孔树脂(天津浩聚树脂科技有限公司),所述大孔树脂先进行预处理,方法:将大孔树脂以0.1g/ml的量加入体积浓度95%乙醇水溶液中,于室温(25-30℃)、150r/min的条件下震荡洗涤24小时,并于中途两次更换等量95%乙醇水溶液,震荡结束后,每次用树脂质量两倍的蒸馏水洗涤,洗五次,抽滤,即为预处理后的大孔树脂,洗涤用乙醇蒸馏回收。
进一步,所述脂肪酶的酶活10-30万单位/克,优选黑曲霉脂肪酶或假丝酵母脂肪酶;所述脂肪酶酶液中缓冲液体积用量以脂肪酶质量计为15-30ml/g,所述缓冲液优选0.05mol/L、pH7.4的磷酸钠缓冲液。
进一步,所述干燥是在0.1大气压真空度45℃的真空干燥箱中干燥12h。
本发明还提供一种所述印迹脂肪酶在催化低聚糖酯化中的应用,优选所述应用为催化蔗糖制备蔗糖-6-乙酯,具体所述的应用为:将蔗糖、乙酸乙烯酯、印迹脂肪酶、4A分子筛、叔戊醇和二甲基亚砜混匀,40℃和180r/min条件下振荡反应16h后,反应液分离纯化后,获得蔗糖-6-乙酯;所述4A分子筛180℃干燥6小时后使用;所述蔗糖与乙酸乙烯酯物质的量之比为1:10,所述蔗糖与印迹脂肪酶重量比为1:9-15,所述蔗糖与4A分子筛重量比为1:9-10,所述叔戊醇和二甲基亚砜体积用量以蔗糖重量计分别为70-80ml/g和15-20ml/g。
与现有技术相比,本发明有益效果主要体现在:
本发明以麦芽糖或蔗糖为印迹分子,与有机酸和酯类化合物为印迹分子比较,印迹体系不需要表面活性剂与醇类助溶剂,印迹分子在水溶液中与脂肪酶分子的结合更优。麦芽糖印迹的脂肪酶,催化低聚糖酯化的应用面较广,以蔗糖为例,催化其乙酯合成,酯化率与酯化选择性均优于未印迹的脂肪酶,本发明酯化率高达86.6%,酯化选择性高达85.4%。
(四)附图说明
图1牛血清蛋白的标准曲线。
(五)具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明进行进一步描述,但本发明的保护范围并不仅限于此:本发明室温是指25-30℃。
实施例1:
1、印迹脂肪酶
(1)酶液:将黑曲霉脂肪酶(Aspergillus niger lipase,深圳绿微康生物工程有限公司生产,30万单位/克)1.0克溶解在30ml磷酸钠缓冲液(0.05mol/L、pH7.4)中,超声(40KHz)助溶,使脂肪酶充分溶解,有不溶成分则过滤去除(酶溶解,过滤是为了除去杂质,不影响酶的浓度),得到澄清的脂肪酶磷酸钠缓冲液溶液,即酶液30ml。
(2)大孔树脂预处理:称取D4006型大孔树脂(天津浩聚树脂科技有限公司)150g置于2500mL的烧杯中,加入1500ml体积浓度95%乙醇水溶液,于室温(25-30℃)、150r/min的条件下震荡洗涤24小时,并于中途两次更换等量95%乙醇水溶液。震荡结束后,每次用300ml蒸馏水洗涤,共洗涤五次,抽滤,即为预处理后的D4006型大孔树脂,质量含水量控制为40%,备用。洗涤用乙醇蒸馏回收。
(3)印迹脂肪酶:称取0.3克印迹分子麦芽糖加入步骤(1)30ml酶液中,搅拌使麦芽糖完全溶解,用0.5M的NaOH水溶液调节酶液的pH为7.5,保持40℃,以160转/分钟搅拌下印迹10分钟。印迹完毕立刻加入步骤(2)预处理后的D4006型大孔树脂40克,在30℃保温,90转/分钟搅拌下吸附固定化酶,吸附4h,过滤,滤液检测残余的酶量,滤饼用树脂质量六倍的蒸馏水分三次洗涤后,在0.1大气压真空度45℃的真空干燥箱中干燥12h,干燥完毕,即得印迹脂肪酶27.6g。
(4)脂肪酶的固定化率:脂肪酶含量的测定采用考马斯亮兰分光光度法,以考马斯亮兰试剂与酶蛋白溶液显色,在595nm处测定吸光值,具体为:以牛血清白蛋白为标准品作标准曲线(参见表1),检测滤液在595nm处吸光值,根据标准曲线,得到滤液中酶蛋白含量,根据公式1,获得脂肪酶的固定化率,固定化率为94.6%。
固定化率%=(1-滤液中酶蛋白量/印迹酶液中酶蛋白量)×100%公式1
标准曲线制备方法:准确称取100mg考马斯亮蓝G-250,溶于50mL体积浓度95%乙醇水溶液中,加入100mL体积浓度85%磷酸水溶液,用蒸馏水稀释至1000mL,配制得到考马斯亮蓝试剂。用蒸馏水配制100μg/mL牛血清蛋白(BSA)标准溶液,在595nm处测定吸光度,并制作标准曲线,结果见图1。
表1牛血清蛋白标准曲线制作
Figure BDA0001856018380000031
BSA标准曲线的制作见表1,各试管配制完毕,摇匀,室温下显色2min。在595nm处测定溶液的吸光度,并以吸光度A为纵坐标,蛋白含量为纵坐标作图,标准曲线如图1所示。
2、印迹脂肪酶催化蔗糖-6-乙酯的合成:
称取0.3mmol(0.103g)蔗糖(广东省化学试剂工程技术研究开发中心生产,化学纯),3mmol(0.258g)乙酸乙烯酯(江苏永华精细化学品有限公司生产,化学纯),1.0g印迹脂肪酶、1g 4A分子筛(江西凯莱化工填料有限公司生产,180℃干燥6小时后使用),再加入8ml叔戊醇(国药集团化学试剂有限公生产,化学纯)和2ml二甲基亚砜(无锡海硕生物有限公司生产,化学纯)于50mL具塞三角瓶中,混匀置于恒温摇床中,40℃和180r/min条件下振荡开始反应16h后,反应液在4000r/min的条件下离心10min,取上层清液100μL用叔戊醇稀释至1.1ml后,进液相色谱分析,每组实验三个平行样。
蔗糖-6-乙酯液相色谱分析检测方法:安捷伦1200液相色谱仪(美国安捷伦科技有限公司),色谱条件:ZORBAX SB-Aq色谱柱(5μm4.6*250mm,美国Agilent),流动相:去离子水,流速0.8mL/min,柱温30℃,进样量5μL。蒸发光检测器(美国Alltech 3300),检测条件:温度85℃,氮气流速1.5L/min。记录色谱图,根据计算式:酯化率=生成的蔗糖酯量/初始蔗糖量×100%。蔗糖6位酯化选择率=蔗糖-6-乙酯的量/蔗糖总酯的量×100%,计算酯化率与蔗糖6位酯化选择率。
印迹脂肪酶催化蔗糖-6-乙酯的结果:酯化率86.6%,蔗糖6位酯化选择率85.4%。
实施例2:
(1)酶液:将黑曲霉脂肪酶(Aspergillus niger lipase,南宁庞博生物工程有限公司生产,30万单位/克)1.0克溶解在30ml磷酸钠缓冲液(0.05mol/L、pH7.4)中,超声(40KHz)助溶,使脂肪酶充分溶解,有不溶成分则过滤去除,得到澄清的脂肪酶磷酸钠缓冲液溶液,即酶液30ml。
(2)树脂预处理:D3520型大孔树脂(南开大学化工厂)采用实施例1方法预处理。
(3)印迹脂肪酶:称取0.4克印迹分子麦芽糖(山东寿光市鲁科化工有限责任公司生产,化学纯)加入步骤(1)获得的30ml酶液中,搅拌使麦芽糖完全溶解,用0.5M的磷酸水溶液调节酶液的pH为7.2,保持35℃,以130转/分钟搅拌下印迹20分钟。印迹完毕立刻加入步骤(2)预处理后的D3520型大孔树脂60克,在25℃保温,60转/分钟搅拌下吸附固定化酶,吸附6h,过滤,滤液按实施例1方法计算固定化率为96.2%,滤饼用树脂质量六倍的蒸馏水分三次洗涤后,在0.1大气压真空度45℃的真空干燥箱中干燥12h,干燥完毕,即得印迹脂肪酶40.9g。
(4)应用:将实施例1步骤2中印迹脂肪酶替换为本实施例制备的印迹脂肪酶1.5g,其他同实施例1进行印迹脂肪酶催化蔗糖-6-乙酯的合成,结果:酯化率85.8%,蔗糖6位酯化选择率85.1%。
实施例3:
(1)酶液:将假丝酵母脂肪酶(Candida rugosa lipase,北京凯泰新世纪生物技术有限公司生产,13万单位/克)2.0克溶解在30ml磷酸钠缓冲液(0.05mol/L、pH7.4)中,超声(40KHz)助溶,使脂肪酶充分溶解,有不溶成分则过滤去除,得到澄清的脂肪酶磷酸钠缓冲液溶液,即酶液30ml。
(2)树脂预处理:采用实施例1方法预处理D1300型大孔树脂(天津浩聚树脂科技有限公司)。
(3)印迹脂肪酶:称取0.2克印迹物麦芽糖(成都万信化工有限公司生产,化学纯)加入步骤(1)30ml酶液中,搅拌使麦芽糖完全溶解,用0.5M的NaOH水溶液调节酶液的pH为7.8,保持30℃,以100转/分钟搅拌下印迹30分钟。印迹完毕立刻加入步骤(2)预处理的D1300型大孔树脂20克,在35℃保温,120转/分钟搅拌下吸附固定化酶,吸附3h,过滤,滤液按实施例1方法计算固定化率为94.5%,滤饼用树脂质量六倍的蒸馏水分三次洗涤后,在0.1大气压真空度45℃的真空干燥箱中干燥12h,干燥完毕,即得印迹脂肪酶23.1g。
(4)应用:将实施例1步骤2中印迹脂肪酶替换为本实施例制备的印迹脂肪酶1.2g,其他同实施例1,进行印迹脂肪酶催化蔗糖-6-乙酯的合成,结果:酯化率86.2%,蔗糖6位酯化选择率84.7%。
实施例4:
(1)酶液:将黑曲霉脂肪酶(Aspergillus niger lipase,南宁庞博生物工程有限公司生产,30万单位/克)1.0克溶解在30ml磷酸钠缓冲液(0.05mol/L、pH7.4)中,超声(40KHz)助溶,使脂肪酶充分溶解,有不溶成分则过滤去除,得到澄清的脂肪酶磷酸钠缓冲液溶液,即酶液30ml。
(2)树脂预处理:采用实施例1方法预处理D3520型大孔树脂(南开大学化工厂)。
(3)印迹脂肪酶:称取0.3克印迹分子蔗糖(广东省化学试剂工程技术研究开发中心生产,化学纯)加入步骤(1)获得的30ml酶液中,搅拌使蔗糖完全溶解,用0.5M的磷酸水溶液调节酶液的pH为7.2,保持35℃,以130转/分钟搅拌下印迹20分钟。印迹完毕立刻加入步骤(2)预处理后的D3520型大孔树脂50克,在30℃保温,90转/分钟搅拌下吸附固定化酶,吸附5h,过滤,滤液按实施例1方法计算固定化率为95.8%,滤饼用树脂质量六倍的蒸馏水分三次洗涤后,在0.1大气压真空度45℃的真空干燥箱中干燥12h,干燥完毕,即得印迹脂肪酶34.2g。
(4)应用:将实施例1步骤2中印迹脂肪酶替换为本实施例制备的印迹脂肪酶1.5g,其他同实施例1进行印迹脂肪酶催化蔗糖-6-乙酯的合成,结果:酯化率82.4%,蔗糖6位酯化选择率83.7%。
对比例1:
(1)酶液:将黑曲霉脂肪酶(Aspergillus niger lipase,南宁庞博生物工程有限公司生产,30万单位/克)1.0克溶解在30ml磷酸钠缓冲液(0.05mol/L、pH7.4)中,超声(40KHz)助溶,使脂肪酶充分溶解,有不溶成分则过滤去除,得到澄清的脂肪酶磷酸钠缓冲液溶液,即酶液30ml。
(2)树脂预处理:采用实施例1方法预处理D3520型大孔树脂(南开大学化工厂)。
(3)印迹脂肪酶:称取0.3克印迹分子橄榄油(国药集团化学试剂有限公司生产,化学纯)加入步骤(1)30ml酶液中,加入0.3g吐温20(国药集团化学试剂有限公司生产,化学纯)和3mL无水乙醇(杭州双林化工试剂厂生产,化学纯),搅拌使橄榄油完全溶解,用0.5M的NaOH水溶液调节酶液的pH为7.8,保持35℃,以130转/分钟搅拌下印迹20分钟。印迹完毕立刻加入步骤(2)预处理后的D3520型大孔树脂40克,在25℃保温,60转/分钟搅拌下吸附固定化酶,吸附6h,过滤,滤液按实施例1方法计算固定化率为95.7%,滤饼用树脂质量六倍的蒸馏水分三次洗涤后,在0.1大气压真空度45℃的真空干燥箱中干燥12h,干燥完毕,即得印迹脂肪酶27.8g。
(4)应用:将实施例1步骤2中印迹脂肪酶替换为本实施例制备的印迹脂肪酶1.5g,其他同实施例1进行印迹脂肪酶催化蔗糖-6-乙酯的合成,结果:酯化率63.7%,蔗糖6位酯化选择率84.6%。
对比例2:
(1)酶液:将黑曲霉脂肪酶(Aspergillus niger lipase,深圳绿微康生物工程有限公司生产,30万单位/克)1.0克溶解在30ml磷酸钠缓冲液(0.05mol/L、pH7.4)中,超声(40KHz)助溶,使脂肪酶充分溶解,有不溶成分则过滤去除,得到澄清的脂肪酶磷酸钠缓冲液溶液,即酶液30ml。
(2)树脂预处理:采用实施例1方法预处理D4006型大孔树脂(天津浩聚树脂科技有限公司)。
(3)印迹脂肪酶:称取0.3克印迹分子乙酸乙烯酯(江苏永华精细化学品有限公司生产,化学纯)加入30ml酶液中,加入0.3g吐温20(国药集团化学试剂有限公司生产,化学纯)和2mL无水乙醇(杭州双林化工试剂厂生产,化学纯),搅拌使乙酸乙烯酯完全溶解,用0.5M的NaOH水溶液调节酶液的pH为7.6,保持40℃,以160转/分钟搅拌下印迹20分钟。印迹完毕立刻加入步骤(2)预处理后的D4006型大孔树脂40克,在30℃保温,90转/分钟搅拌下吸附固定化酶,吸附4h,过滤,滤液按实施例1方法计算固定化率为95.8%,滤饼用树脂质量六倍的蒸馏水分三次洗涤后,在0.1大气压真空度45℃的真空干燥箱中干燥12h,干燥完毕,即得印迹脂肪酶27.7g。
(4)应用:将实施例1步骤2中印迹脂肪酶替换为本实施例制备的印迹脂肪酶1.5g,其他同实施例1进行印迹脂肪酶催化蔗糖-6-乙酯的合成,结果:酯化率72.3%,蔗糖6位酯化选择率81.9%。
对比例3:
(1)酶液:将黑曲霉脂肪酶(Aspergillus niger lipase,深圳绿微康生物工程有限公司生产,30万单位/克)1.0克溶解在30ml磷酸钠缓冲液(0.05mol/L、pH7.4)中,超声(40KHz)助溶,使脂肪酶充分溶解,有不溶成分则过滤去除,得到澄清的脂肪酶磷酸钠缓冲液溶液,得酶液30ml。
(2)树脂预处理:采用实施例1方法预处理D3520型大孔树脂(南开大学化工厂)。
(3)印迹脂肪酶:称取0.3克印迹分子正辛酸(上海凌峰化学试剂有限公司生产,化学纯)加入步骤(1)30ml酶液中,加入0.3g吐温20(国药集团化学试剂有限公司生产,化学纯)和3mL无水乙醇(杭州双林化工试剂厂生产,化学纯),搅拌使正辛酸完全溶解,用0.5M的磷酸水溶液调节酶液的pH为7.2,保持40℃,以150转/分钟搅拌下印迹20分钟。印迹完毕立刻加入步骤(2)预处理后的D3520型大孔树脂50克,在30℃保温,90转/分钟搅拌下吸附固定化酶,吸附5h,过滤,滤液按实施例1方法计算固定化率为95.5%,滤饼用树脂质量六倍的蒸馏水分三次洗涤后,在0.1大气压真空度45℃的真空干燥箱中干燥12h,干燥完毕,即得印迹脂肪酶35.1g。
(4)应用:将实施例1步骤2中印迹脂肪酶替换为本实施例制备的印迹脂肪酶1.5g,其他同实施例1进行印迹脂肪酶催化蔗糖-6-乙酯的合成,结果:酯化率62.6%,蔗糖6位酯化选择率83.4%。
对比例4:
(1)酶液:将黑曲霉脂肪酶(Aspergillus niger lipase,南宁庞博生物工程有限公司生产,30万单位/克)1.0克溶解在30ml磷酸钠缓冲液(0.05mol/L、pH7.4)中,超声(40KHz)助溶,使脂肪酶充分溶解,有不溶成分则过滤去除,得到澄清的脂肪酶磷酸钠缓冲液溶液,即酶液30ml。
(2)树脂预处理:采用实施例1方法预处理D3520型大孔树脂(南开大学化工厂)。
(3)无印迹的脂肪酶固定化:向步骤(1)30ml酶液中立刻加入步骤(2)预处理后的D3520型大孔树脂40克,在30℃保温,90转/分钟搅拌下吸附固定化酶,吸附5h,过滤,滤液按实施例1方法计算固定化率为96.3%,滤饼用树脂质量六倍的蒸馏水分三次洗涤后,在0.1大气压真空度45℃的真空干燥箱中干燥12h,干燥完毕,即得印迹脂肪酶27.7g。
(4)应用:将实施例1步骤2中印迹脂肪酶替换为本实施例制备的印迹脂肪酶1.5g,其他同实施例1进行印迹脂肪酶催化蔗糖-6-乙酯的合成,结果:酯化率26.5%,蔗糖6位酯化选择率84.8%。

Claims (4)

1.一种印迹脂肪酶,其特征在于所述印迹脂肪酶按如下方法制备:将印迹分子加入脂肪酶酶液中,搅拌溶解,调节pH为7.2-7.8,在25-50℃、100-160转/分钟条件下搅拌印迹反应完全后,加入大孔树脂,在20-40℃、60-120转/分钟条件下搅拌吸附完全后,将反应液过滤,滤饼洗涤后在0.1大气压真空度45℃的真空干燥箱中干燥12h,即获得印迹脂肪酶;所述脂肪酶酶液为脂肪酶溶于pH7.4的缓冲液制成;所述印迹分子为麦芽糖;所述大孔树脂为D4006型大孔树脂、D3520型大孔树脂或D1300型大孔树脂;所述脂肪酶为黑曲霉脂肪酶或假丝酵母脂肪酶;所述印迹分子与脂肪酶重量比为0.1-0.4:1,所述大孔树脂与脂肪酶重量比为10-60:1;所述脂肪酶酶液中缓冲液体积用量以脂肪酶质量计为15-30ml/g,所述缓冲液为0.05mol/L、pH7.4的磷酸钠缓冲液。
2.如权利要求1所述印迹脂肪酶,其特征在于所述大孔树脂先进行预处理,方法:将大孔树脂以0.1g/ml的量加入体积浓度95%乙醇水溶液中,于室温、150r/min的条件下震荡洗涤24小时,并于中途两次更换等体积95%乙醇水溶液,震荡结束后,每次用树脂质量两倍的蒸馏水洗涤,洗五次,抽滤,即为预处理后的大孔树脂,洗涤用乙醇蒸馏回收。
3.一种权利要求1所述印迹脂肪酶在催化蔗糖制备蔗糖-6-乙酯中的应用。
4.如权利要求3所述的应用,其特征在于所述的应用为:将蔗糖、乙酸乙烯酯、印迹脂肪酶、4A分子筛、叔戊醇和二甲基亚砜混匀,40℃和180r/min条件下振荡反应16h后,反应液分离纯化后,获得蔗糖-6-乙酯;所述蔗糖与乙酸乙烯酯物质的量之比为1:10,所述蔗糖与印迹脂肪酶重量比为1:9-15,所述蔗糖与4A分子筛重量比为1:9-10,所述叔戊醇和二甲基亚砜体积用量以蔗糖重量计分别为70-80ml/g和15-20ml/g。
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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN111304267A (zh) * 2020-02-25 2020-06-19 上海凌凯医药科技有限公司 一种三氯蔗糖-6-乙酯及其中间体的合成方法
CN113444706B (zh) * 2020-03-25 2023-03-03 万华化学集团股份有限公司 一种印迹脂肪酶及其应用
CN112029754B (zh) * 2020-08-13 2021-12-21 浙江工业大学 一种印迹脂肪酶及其合成蔗糖-6-乙酯的应用
CN115491365B (zh) * 2022-09-27 2024-04-09 浙江工业大学 一种用于水解磷脂的改性脂肪酶及其制备方法与应用

Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101280297A (zh) * 2008-05-28 2008-10-08 华中科技大学 一种固定化脂肪酶的制备方法
CN101736000A (zh) * 2009-12-30 2010-06-16 大连工业大学 提高固定化脂肪酶活性和稳定性的方法
CN101928738A (zh) * 2010-08-23 2010-12-29 浙江工业大学 一种脂肪酶催化合成蔗糖-6-乙酸酯的方法
CN102181494A (zh) * 2011-03-21 2011-09-14 盐城捷康三氯蔗糖制造有限公司 固定化米曲霉脂肪酶选择性催化蔗糖-6-脂肪酸酯的合成
CN103184257A (zh) * 2011-12-31 2013-07-03 浙江工业大学 一种脂肪酶催化在线合成蔗糖-6-乙酸酯的方法
CN103805653A (zh) * 2014-01-15 2014-05-21 盐城捷康三氯蔗糖制造有限公司 适合工业生产的超声波辅助酶催化合成蔗糖-6-酯的方法

Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101280297A (zh) * 2008-05-28 2008-10-08 华中科技大学 一种固定化脂肪酶的制备方法
CN101736000A (zh) * 2009-12-30 2010-06-16 大连工业大学 提高固定化脂肪酶活性和稳定性的方法
CN101928738A (zh) * 2010-08-23 2010-12-29 浙江工业大学 一种脂肪酶催化合成蔗糖-6-乙酸酯的方法
CN102181494A (zh) * 2011-03-21 2011-09-14 盐城捷康三氯蔗糖制造有限公司 固定化米曲霉脂肪酶选择性催化蔗糖-6-脂肪酸酯的合成
CN103184257A (zh) * 2011-12-31 2013-07-03 浙江工业大学 一种脂肪酶催化在线合成蔗糖-6-乙酸酯的方法
CN103805653A (zh) * 2014-01-15 2014-05-21 盐城捷康三氯蔗糖制造有限公司 适合工业生产的超声波辅助酶催化合成蔗糖-6-酯的方法

Non-Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Bio-imprinting of lipases with fatty acids;Ayelet Fishman等;《Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic》;20030602;第22卷(第3-4期);第193-202页,参见全文 *
Biosynthesis of sucrose-6-acetate catalyzed by surfactant-coated Candida rugosa lipase immobilized on sol–gel supports;Xiang Zhong等;《Bioprocess Biosyst Eng》;20130914;第37卷(第5期);第813-818页,参见全文 *
Combined strategy for preparation of a bioimprinted Geotrichum sp. lipase biocatalyst effective in non-aqueous media;Jin-Yong Yan等;《Process Biochemistry》;20091031;第44卷(第10期);第1128-1132页,参见全文 *
Highly efficient biosynthesis of sucrose-6-acetate with cross-linked aggregates of Lipozyme TL 100 L;Xu’e Yang等;《Journal of Biotechnology》;20120620;第161卷(第1期);第27-33页,参见全文 *
Lipozyme TL 100 L 的固定化及其催化合成蔗糖-6-乙酯;杨绪娥等;《化工进展》;20111130;第30卷(第11期);第2517-2522页,参见全文 *
固定化生物印迹假丝酵母脂肪酶的制备研究;俞明等;《高校化学工程学报》;20170831;第31卷(第4期);第991-995页,参见摘要,第991页倒数第2段至第992页第7段 *

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