CN109053756A - 苯丙素类酯型儿茶素及其制备方法和应用 - Google Patents

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Abstract

本发明公开了一种苯丙素类酯型儿茶素及其制备方法和应用,该具有生物活性的苯丙素类酯型儿茶素对过氧化氢所致人神经细胞(SH‑SY5Y)损伤有保护和促进生长作用,可以用于制备治疗神经系统退行性疾病药物,对医疗健康和农业具有重要意义,为保护大叶茶资源尤其是云南紫娟绿茶,并最大程度开发利用大叶茶尤其是云南紫娟绿茶提供了更为广阔的应用前景。

Description

苯丙素类酯型儿茶素及其制备方法和应用
技术领域
本发明涉及生物碱类化合物领域,具体地说涉及一种苯丙素类酯型儿茶素及其制备方法和应用。
背景技术
大叶茶,为云南特有的茶种,原产于云南西双版纳、普洱等地,是制作普洱茶的原材料,尤其是云南大叶种紫娟加工制成的晒青毛茶,晒青毛茶是取茶树一芽一叶或者一芽二,三叶的鲜叶加工而成,加工只有晒青工序,最大程度地保持了大叶种茶的“天然性、原始性”,“紫娟”茶干茶色泽为紫黑色,茶汤为淡紫色,香气醇正、味浓回甘,深受当地居民喜爱。
如果能从大叶茶中发现新型物质及开发出功能性活性成分,将有助加深我们对茶树在演化过程中,物质转化形成机制的认识,并且对合理开发利用大叶种茶提供重要参考,也会对农业和医药等领域作出重要贡献。
发明内容
本发明所要解决的技术问题之一是提供一种对过氧化氢所致神经细胞损伤具有保护及促进生长作用的苯丙素类酯型儿茶素,由式Ⅰ或式Ⅱ或式Ⅲ或式Ⅳ所示结构表示:
本发明所要解决的技术问题之二是提供上述苯丙素类酯型儿茶素在制备保护过氧化氢所致神经细胞损伤药物中的用途。
具体可提供一种保护过氧化氢所致神经细胞损伤药物,由如上述苯丙素类酯型儿茶素和药用辅料制成。
上述保护过氧化氢所致神经细胞损伤药物的药物剂型包括口服型、外用型和注射型。
所述口服型包括片剂、胶囊剂、颗粒剂;所述外用型包括栓剂、捈剂、洗剂、膏剂、透皮贴剂;所述注射型包括注射液、混旋液、冻干粉。具体制备方法参照制药领域的常规方法制备,所用药用辅料根据剂型不同选择制药领域通用的辅料。
本发明还提供上述苯丙素类酯型儿茶素在制备治疗神经系统退行性疾病药物中的用途。基于该应用,同样可以提供由如上述苯丙素类酯型儿茶素和药用辅料制成的治疗神经系统退行性疾病药物。
本发明所要解决的技术问题之三是提供上述苯丙素类酯型儿茶素的制备方法,包括以下步骤:
(1)原料粉碎
取大叶茶,对其粉碎处理,得到大叶茶粉末;
(2)浸提、萃取
用石油醚对大叶茶粉末进行浸提,过滤得到石油醚浸提滤渣,再用乙酸乙酯对石油醚浸提滤渣进行浸提,过滤得到乙酸乙酯浸提滤渣,再用甲醇对乙酸乙酯浸提滤渣进行浸提,过滤得到甲醇浸提滤液,甲醇浸提滤液经浓缩后溶于甲醇水溶液中,得到浸提产物甲醇水溶液,最后用二氯甲烷对浸提产物甲醇水溶液进行萃取,上层为甲醇部位水溶性成分,取甲醇部位水溶性成分,浓缩后得到甲醇部位水溶性成分膏状提取物;
(3)分离纯化
对甲醇部位水溶性成分膏状提取物进行分离纯化,得到所述苯丙素类酯型儿茶素。
进一步地,所述大叶茶选用紫娟绿茶晒青毛茶。这种茶都在民间广为流传或经报道具有很好的健康功效,并且经过研究其含有较多这一类的儿茶素衍生物。
进一步地,所述甲醇水溶液的体积浓度为10%。待分离的物质极性较大,采用这个浓度,提取效果更好。
进一步地,步骤(2)中,石油醚浸提滤渣和乙酸乙酯浸提滤渣在被浸提前均预先经过干燥处理。这样处理,能够防止在浸提时由于残留溶剂而出现乳化。
进一步地,分离纯化处理包括将甲醇部位水溶性成分膏状提取物溶解后依次经过Sephadex LH-20凝胶柱层析、MCI柱层析、硅胶柱层析、Toyopearl柱层析、Sephadex LH-20凝胶柱层析、Toyopearl柱层析和高效液相色谱柱洗脱。
进一步地,分离纯化的具体过程为:将甲醇部位水溶性成分膏状提取物溶解后,先利用Sephadex LH-20凝胶柱层析,以MeOH-H2O体积比0:100到100:0作为梯度洗脱,收集其中MeOH-H2O体积比30:70到80:20间的洗脱组分;将Sephadex LH-20凝胶柱层析所得组分经MCI柱层析,以MeOH-H2O体积比0:100到100:0作为梯度洗脱,收集其中MeOH-H2O体积比50:50到80:20间的洗脱组分;将MCI柱层析所得组分经硅胶柱层析,以CH2Cl2-MeOH体积比50:1到1:1作为梯度洗脱,收集其中CH2Cl2-MeOH体积比20:1到10:1的洗脱组分;然后将硅胶柱层析所得组分经Toyopearl柱层析,以MeOH-H2O体积比20:80到100:0作为梯度洗脱,收集其中MeOH-H2O体积比60:40到100:0的洗脱组分;将Toyopearl柱层析所得组分再经SephadexLH-20凝胶柱层析,以纯甲醇洗脱,每20毫升一馏分,将收集到的馏分点板合并、蒸干后收集相应组分;Sephadex LH-20凝胶柱层析收集的组分再经Toyopearl柱层析,以纯甲醇洗脱,每10毫升一馏分,将收集到的馏分点板合并、蒸干后收集相应组分;Toyopearl柱层析收集的组分经液相分离色谱柱制备纯化,得到所述苯丙素类酯型儿茶素;
液相分离色谱柱为Prep C18(10×250mm i.d.,5μm,Waters,Ireland)柱,流速2毫升/分钟,洗脱剂为乙腈水,洗脱条件为30分钟:28%乙腈水等度洗脱,21.7分钟洗脱液经浓缩干燥后得到式Ⅰ所示的苯丙素类酯型儿茶素,12.5分钟洗脱液经浓缩干燥后得到式Ⅱ所示的苯丙素类酯型儿茶素;洗脱条件为35分钟,梯度洗脱,24.1分钟洗脱液经浓缩干燥后得到式Ⅲ所示的苯丙素类酯型儿茶素,20.7分钟洗脱液经浓缩干燥后得到式Ⅳ所示的苯丙素类酯型儿茶素。
本发明所要解决的技术问题之四是提供上述苯丙素类酯型儿茶素的检测方法,利用LC-MS检测方法,流速0.3毫升/分钟;流动相:A相0.1%甲酸水,B相含0.1%甲酸的乙腈;洗脱条件:0-6分钟,6%乙腈水;4-16分钟,6%乙腈水-14%乙腈水;16-22分钟,14%乙腈水-15%乙腈水;22-32分钟,15%乙腈水-18%乙腈水;32-37分钟,18%乙腈水-29%乙腈水;37-45分钟,29%乙腈水-45%乙腈水;45-50分钟,45%乙腈水;50-51分钟,45%-100%乙腈水;51-65分钟,100%乙腈水;65-66分钟,100%-6%乙腈水;66-70分钟,6%乙腈水。
式Ⅰ所示的苯丙素类酯型儿茶素的去质子化离子分子量为633.1224,保留时间为51.3470分钟;式Ⅱ所示的苯丙素类酯型儿茶素的去质子化离子分子量为633.1242,保留时间为50.9906分钟;式Ⅲ所示的苯丙素类酯型儿茶素的去质子化离子分子量为587.1163,保留时间为52.1547分钟;式Ⅳ所示的苯丙素类酯型儿茶素的去质子化离子分子量为587.1236,保留时间为51.2155分钟。
本发明的有益效果体现在:
1.本发明提供的具有生物活性的苯丙素类酯型儿茶素对过氧化氢所致人神经细胞(SH-SY5Y)损伤有保护和促进生长作用,可以用于制备治疗神经系统退行性疾病药物,对医疗健康和农业具有重要意义,为保护大叶茶资源尤其是云南紫娟绿茶,并最大程度开发利用大叶茶尤其是云南紫娟绿茶提供了更为广阔的应用前景。
2.本发明苯丙素类酯型儿茶素的制备流程简单,容易实施,性价比高。
3.本发明苯丙素类酯型儿茶素的制备产率高,可以推广大规模工厂化制备。
4.本发明苯丙素类酯型儿茶素的检测方法准确、简单、高效,适用于寻找含有本发明苯丙素类酯型儿茶素的生物资源,增加本发明苯丙素类酯型儿茶素获取路径,提高其利用度。
附图说明
图1是苯丙素酯型儿茶素对过氧化氢所致人神经细胞(SH-SY5Y)损伤的保护和促进生长作用图。
图2A紫娟素1的ECD;2B紫娟素2的ECD;2C紫娟素3和4的实测CD谱。
图3A紫娟素1的质谱图;3B紫娟素2的质谱图;3C紫娟素3的质谱图;3D紫娟素4的质谱图。
图4A紫娟素1和2的HPLC制备;4B紫娟素3和4的HPLC制备。
图5A紫娟素1的UV;5B紫娟素2的UV;5C紫娟素3的UV;5D紫娟素4的UV。
具体实施方式
下面结合实施例对本发明作进一步描述:
本部分对本发明实验中所使用到的材料以及实验方法进行一般性的描述。虽然为实现本发明目的所使用的许多材料和操作方法是本领域公知的,但是本发明在此作尽可能详细描述。本领域技术人员清楚,在下文中,如果未特别说明,本发明所用材料、设备和操作方法是本领域公知的。
本发明首次从大叶茶中提取出苯丙素类酯型儿茶素,由式Ⅰ或式Ⅱ或式Ⅲ或式Ⅳ所示结构表示:
下面介绍一种以云南紫娟茶为原料制备苯丙素类酯型儿茶素的实施例。
实施例1
紫娟茶晒青毛茶中苯丙素类酯型儿茶素的制备
(1)取4.5公斤干燥的紫娟茶晒青毛茶,对其粉碎处理,得到紫娟茶晒青毛茶粉末;
(2)用20L石油醚对紫娟茶晒青毛茶粉末进行浸提,浸提先在常温下浸提48小时,然后在70HZ下超声浸提3小时,之后通过过滤得到滤液;按上述步骤浸提3次,合并滤液并减压浓缩得到紫娟茶晒青毛茶石油醚部位,并对剩下的石油醚浸提滤渣进行干燥处理待下一步浸提;
然后再用20L乙酸乙酯对上述剩下的干燥后的石油醚浸提滤渣进行浸提,浸提先在常温浸提48小时,然后在70HZ下超声浸提3小时,之后通过过滤得到滤液;按上述步骤浸提3次,合并滤液并减压浓缩得到紫娟茶晒青毛茶乙酸乙酯部位,并对剩下的乙酸乙酯浸提滤渣进行干燥处理待下一步浸提。
之后用20L甲醇对上述剩下的干燥后的乙酸乙酯浸提滤渣进行浸提,浸提先在常温浸提48小时,然后在70HZ下超声浸提3小时,之后通过过滤得到滤液;按上述步骤浸提3次,合并滤液并减压浓缩得到紫娟茶晒青毛茶甲醇部位膏体;
随后将上述紫娟茶晒青毛茶甲醇部位膏体溶于体积浓度为10%的甲醇水至体积3L;
最后用9L二氯甲烷对上述用10%甲醇水溶解的紫娟茶晒青毛茶甲醇部位膏体进行常温萃取,震荡摇匀静置后,上层为紫娟茶晒青毛茶甲醇部位水溶性成分,按上述步骤萃取5次,合并上层紫娟茶晒青毛茶甲醇部位水溶性成分,并减压浓缩得到甲醇部位水溶性成分膏状提取物800g,并保留这一目标提取物;
(3)取500g上述甲醇部位水溶性成分膏状提取物,用<10%的甲醇水溶液溶解后过Sephadex LH-20凝胶柱层析,以MeOH-H2O体积比0:100到100:0作为梯度洗脱,收集其中MeOH-H2O体积比30:70到80:20间的洗脱组分;将所得组分经MCI柱层析,以MeOH-H2O体积比0:100到100:0作为梯度洗脱,收集其中MeOH-H2O体积比50:50到80:20间的洗脱组分;所得组分经硅胶柱层析以CH2Cl2-MeOH体积比50:1到1:1作为梯度洗脱,收集CH2Cl2-MeOH体积比20:1到10:1的洗脱组分;然后所得组分经Toyopearl柱层析,以MeOH-H2O体积比20:80到100:0作为梯度洗脱,收集其中MeOH-H2O体积比60:40到100:0的洗脱组分;所得组分再经Sephadex LH-20凝胶柱层析,以纯甲醇洗脱,每20毫升一馏分,将收集到的馏分点板合并、蒸干后收集相应组分;Sephadex LH-20凝胶柱层析收集的组分再经Toyopearl柱层析,以纯甲醇洗脱,每10毫升一馏分,将收集到的馏分点板合并、蒸干后收集相应组分;Toyopearl柱层析收集的组分经HPLC制备纯化,液相分离色谱柱为Prep C18(10×250mmi.d.,5μm,Waters,Ireland)柱,流速2毫升/分钟,洗脱剂为乙腈水,洗脱条件为30分钟:28%乙腈水等度洗脱,21.7分钟洗脱液经浓缩干燥后得到1.8mg紫鹃素1(式Ⅰ所示的苯丙素类酯型儿茶素),12.5分钟洗脱液经浓缩干燥后得到1.5mg紫鹃素2(式Ⅱ所示的苯丙素类酯型儿茶素);洗脱条件为35分钟,梯度洗脱,24.1分钟洗脱液经浓缩干燥后得到4.8mg紫鹃素3(式Ⅲ所示的苯丙素类酯型儿茶素),20.7分钟洗脱液经浓缩干燥后得到2.4mg紫鹃素4(式Ⅳ所示的苯丙素类酯型儿茶素)。
实施例2
苯丙素类酯型儿茶素的性状验证
紫娟素1的特性如下:
1)、可溶于甲醇和DMSO,白色无定型粉末;
2)、nm:194.1,276.8;
3)、HR-ESI-MS(负离子模式):m/z=633.1224([M-H]-,C28H26NO11 -理论计算值为633.1244);
4)、核磁共振光谱数据见表1。
紫娟素2的特性如下:
1)、可溶于甲醇和DMSO,白色无定型粉末;
2)、nm:198.8,276.8;
3)、HR-ESI-MS(负离子模式):m/z=633.1242([M-H]-,C32H26O14 -理论计算值为633.1244);
4)、核磁共振光谱数据见表1。
紫娟素3的特性如下:
1)、可溶于甲醇和DMSO,白色无定型粉末;
2)、nm:202.3,279.2;
3)、HR-ESI-MS(负离子模式):m/z=587.1163([M-H]-,C24H19O9 -的理论计算值为587.1190);
4)、核磁共振光谱数据见表2。
紫娟素4的特性如下:
1)、可溶于甲醇和DMSO,白色无定型粉末;
2)、nm:211.7,279.2;
3)、HR-ESI-MS(负离子模式):m/z=587.1236([M-H]-,C24H19O9 -的理论计算值为587.1190);
4)、核磁共振光谱数据见表2。
表1紫娟素1和2的核磁共振光谱数据
表2紫娟素3和4的核磁共振光谱数据
注:1H NMR在600MHz,13C NMR在150MHz条件下测试,δ单位为ppm,耦合常数J单位为Hz,溶剂为氘代二甲亚砜。
另外,请参见图2至图4,可以看出,所有新化合物均通过紫外光谱UV、1H NMR、13CNMR、ESI-HR-MS、CD、1H-1H COSY,HSQC、HMBC和ROSEY等二维核磁共振谱归属,证明了所得化合物的结构。
实施例3
苯丙素类酯型儿茶素对过氧化氢所致人神经细胞(SH-SY5Y)损伤的保护及促进生长作用试验。
SH-SY5Y细胞,接种于96孔板中,每孔加入100μL培养基,在37℃,5%CO2条件培养24小时。将96孔板细胞随机分组,正常对照组:常规加入培养基;H2O2诱导模型;加入H2O2诱导细胞;保护组:同时加入H2O2和药物(1.0μM)平行重复4次,使其终浓度与分组浓度符合,作用24小时。待作用时间结束后,将96孔板每孔加入MTT溶液,避光放入孵育箱内作用4小时,4小时过后,将96孔板弃去上清液,给个实验孔加入150μL DMSO,溶解15分钟,于490nm波长处测定其光吸收值。
参见图1,实验结果表明,紫娟素1,2对过氧化氢所致神经细胞损伤有显著的保护作用(P<0.01),紫鹃素3、4作用略差。
随着世界老龄化的不断加剧,衰老及相关退行性的疾病收到越来越多的研究者重视,神经系统退行性疾病在衰老疾病中占重要分支,如帕金森氏综合症、阿尔茨海默症(Alzheimer’s,AD)等,AD是一种以认知功能障碍、人格改变为主的临床症状的慢性中枢神经系统退行性疾病,是老年痴呆的最常见原因。与癌症和糖尿病等其他疾病相比,AD的全球研究成本占主导地位。AD的发病率每年都在急剧增加,而乳腺癌,心血管疾病等疾病的发病率由于新药的推进逐年减少。因此,防治衰老疾病,探讨退行性病变的病理机制,研发有效延缓退行性进程的药物具有重要意义。
而本发明苯丙素类酯型儿茶素可应用于抗衰老药物及食物、护肤品添加剂的制备。具体说是将本发明苯丙素类酯型儿茶素按医学上可接受的剂量和药学上所通用的辅料制成一种抗衰老药物及按食品添加物使用限量制成食物、护肤品添加剂。该药物剂型包括口服型、外用型和注射型等。所述口服型包括片剂、胶囊剂、颗粒剂、滴丸剂等;所述外用型包括栓剂、捈剂、洗剂、膏剂、透皮贴剂等;所述注射型包括注射液、混旋液、冻干粉等。具体制备方法参照制药、食品领域的常规方法制备。
实施例4
苯丙素类酯型儿茶素的检测方法
利用LC-MS检测方法,流速0.3毫升/分钟;流动相:A相0.1%甲酸水,B相含0.1%甲酸的乙腈;洗脱条件:0-6分钟,6%乙腈水;4-16分钟,6%乙腈水-14%乙腈水;16-22分钟,14%乙腈水-15%乙腈水;22-32分钟,15%乙腈水-18%乙腈水;32-37分钟,18%乙腈水-29%乙腈水;37-45分钟,29%乙腈水-45%乙腈水;45-50分钟,45%乙腈水;50-51分钟,45%-100%乙腈水;51-65分钟,100%乙腈水;65-66分钟,100%-6%乙腈水;66-70分钟,6%乙腈水。
式Ⅰ所示的苯丙素类酯型儿茶素的去质子化离子分子量为633.1224,保留时间为51.3470分钟;式Ⅱ所示的苯丙素类酯型儿茶素的去质子化离子分子量为633.1242,保留时间为50.9906分钟;式Ⅲ所示的苯丙素类酯型儿茶素的去质子化离子分子量为587.1163,保留时间为52.1547分钟;式Ⅳ所示的苯丙素类酯型儿茶素的去质子化离子分子量为587.1236,保留时间为51.2155分钟。
应当理解本文所述的例子和实施方式仅为了说明,并不用于限制本发明,本领域技术人员可根据它做出各种修改或变化,凡在本发明的精神和原则之内,所作的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。

Claims (10)

1.苯丙素类酯型儿茶素,其特征在于,由式Ⅰ或式Ⅱ或式Ⅲ或式Ⅳ所示结构表示:
2.如权利要求1所述的苯丙素类酯型儿茶素在制备保护过氧化氢所致神经细胞损伤药物中的用途。
3.保护过氧化氢所致神经细胞损伤药物,其特征在于,由如权利要求1所述的苯丙素类酯型儿茶素和药用辅料制成。
4.如权利要求3所述的保护过氧化氢所致神经细胞损伤药物,其特征在于,所述保护过氧化氢所致神经细胞损伤药物的药物剂型包括口服型、外用型和注射型。
5.如权利要求1所述的苯丙素类酯型儿茶素在制备治疗神经系统退行性疾病药物中的用途。
6.如权利要求1所述的苯丙素类酯型儿茶素的制备方法,其特征在于,包括以下步骤:
(1)原料粉碎
取大叶茶,对其粉碎处理,得到大叶茶粉末;
(2)浸提、萃取
用石油醚对大叶茶粉末进行浸提,过滤得到石油醚浸提滤渣,再用乙酸乙酯对石油醚浸提滤渣进行浸提,过滤得到乙酸乙酯浸提滤渣,再用甲醇对乙酸乙酯浸提滤渣进行浸提,过滤得到甲醇浸提滤液,甲醇浸提滤液经浓缩后溶于甲醇水溶液中,得到浸提产物甲醇水溶液,最后用二氯甲烷对浸提产物甲醇水溶液进行萃取,上层为甲醇部位水溶性成分,取甲醇部位水溶性成分,浓缩后得到甲醇部位水溶性成分膏状提取物;
(3)分离纯化
对甲醇部位水溶性成分膏状提取物进行分离纯化,得到所述苯丙素类酯型儿茶素。
7.如权利要求6所述的苯丙素类酯型儿茶素的制备方法,其特征在于,所述大叶茶选用紫娟绿茶晒青毛茶。
8.如权利要求6或7所述的苯丙素类酯型儿茶素的制备方法,其特征在于,分离纯化处理包括将甲醇部位水溶性成分膏状提取物溶解后依次经过Sephadex LH-20凝胶柱层析、MCI柱层析、硅胶柱层析、Toyopearl柱层析、Sephadex LH-20凝胶柱层析、Toyopearl柱层析和高效液相色谱柱洗脱。
9.如权利要求6或7所述的苯丙素类酯型儿茶素的制备方法,其特征在于,分离纯化的具体过程为:将甲醇部位水溶性成分膏状提取物溶解后,先利用Sephadex LH-20凝胶柱层析,以MeOH-H2O体积比0:100到100:0作为梯度洗脱,收集其中MeOH-H2O体积比30:70到80:20间的洗脱组分;将Sephadex LH-20凝胶柱层析所得组分经MCI柱层析,以MeOH-H2O体积比0:100到100:0作为梯度洗脱,收集其中MeOH-H2O体积比50:50到80:20间的洗脱组分;将MCI柱层析所得组分经硅胶柱层析,以CH2Cl2-MeOH体积比50:1到1:1作为梯度洗脱,收集其中CH2Cl2-MeOH体积比20:1到10:1的洗脱组分;然后将硅胶柱层析所得组分经Toyopearl柱层析,以MeOH-H2O体积比20:80到100:0作为梯度洗脱,收集其中MeOH-H2O体积比60:40到100:0的洗脱组分;将Toyopearl柱层析所得组分再经Sephadex LH-20凝胶柱层析,以纯甲醇洗脱,每20毫升一馏分,将收集到的馏分点板合并、蒸干后收集相应组分;Sephadex LH-20凝胶柱层析收集的组分再经Toyopearl柱层析,以纯甲醇洗脱,每10毫升一馏分,将收集到的馏分点板合并、蒸干后收集相应组分;Toyopearl柱层析收集的组分经液相分离色谱柱制备纯化;
液相分离色谱柱为Prep C18(10×250mm i.d.,5μm,Waters,Ireland)柱,流速2毫升/分钟,洗脱剂为乙腈水,洗脱条件为30分钟:28%乙腈水等度洗脱,21.7分钟洗脱液经浓缩干燥后得到式Ⅰ所示的苯丙素类酯型儿茶素,12.5分钟洗脱液经浓缩干燥后得到式Ⅱ所示的苯丙素类酯型儿茶素;洗脱条件为35分钟,梯度洗脱,24.1分钟洗脱液经浓缩干燥后得到式Ⅲ所示的苯丙素类酯型儿茶素,20.7分钟洗脱液经浓缩干燥后得到式Ⅳ所示的苯丙素类酯型儿茶素。
10.如权利要求1所述的苯丙素类酯型儿茶素的检测方法,其特征在于,利用LC-MS检测方法,流速0.3毫升/分钟;流动相:A相0.1%甲酸水,B相含0.1%甲酸的乙腈;洗脱条件:0-6分钟,6%乙腈水;4-16分钟,6%乙腈水-14%乙腈水;16-22分钟,14%乙腈水-15%乙腈水;22-32分钟,15%乙腈水-18%乙腈水;32-37分钟,18%乙腈水-29%乙腈水;37-45分钟,29%乙腈水-45%乙腈水;45-50分钟,45%乙腈水;50-51分钟,45%-100%乙腈水;51-65分钟,100%乙腈水;65-66分钟,100%-6%乙腈水;66-70分钟,6%乙腈水。
式Ⅰ所示的苯丙素类酯型儿茶素的去质子化离子分子量为633.1224,保留时间为51.3470分钟;式Ⅱ所示的苯丙素类酯型儿茶素的去质子化离子分子量为633.1242,保留时间为50.9906分钟;式Ⅲ所示的苯丙素类酯型儿茶素的去质子化离子分子量为587.1163,保留时间为52.1547分钟;式Ⅳ所示的苯丙素类酯型儿茶素的去质子化离子分子量为587.1236,保留时间为51.2155分钟。
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