CN108998454A - 一种与菊花脑抗蚜性相关的miRNA160a及其应用 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种与菊花脑抗蚜性相关的miRNA160a及其应用,所述的miRNA160a具有序列表中SEQ ID NO.1所示的序列特征,可利用该miRNA进行抗蚜转基因植物的培育,进而提高植物的抗蚜性;通过TRV‑VbMS技术,在菊花脑中过表达含有SEQ ID NO.2所示的内源目的miR160a结合位点的STTM序列片段的TRV2e病毒沉默表达载体质粒,借助抽真空法瞬时转化菊花脑,诱导菊花脑内源目的miR160a发生沉默,从而鉴定该内源目的miR160a的功能。本发明方法提供了一种提高植物抗蚜性的miRNA160a,并提供了TRV‑VbMS沉默菊花脑内源miRNA从而鉴定miRNA功能的体系,其具有快速,高通量,易于操作等优势,为开展菊花脑miRNA功能研究提供了新途径。
Description
技术领域
本发明属于基因工程技术及应用领域,具体涉及一种与菊花脑抗蚜性相关的miRNA160a;本发明还涉及基于TRV-VbMS技术沉默菊花脑内源miRNA从而鉴定其功能的技术。
背景技术
菊花脑(Chrysanthemum nankingense)为菊科菊属二倍体野生种,原产我国(张莉俊等,2009),在功能基因组研究中占据重要的位置,然而菊花脑缺乏稳定的遗传转化体系,严重制约了基因功能研究。蚜虫是一种常见的刺吸式昆虫,主要取食植物韧皮部汁液,消耗植物养分,直接影响植物生长;其分泌的蜜露还诱发煤污病,影响光合作用,此外蚜虫还传播病毒。上述危害严重影响菊花脑观赏品质及食用价值。
miRNA是近几年来较受关注的一类调控基因表达的非编码RNA。miRNA是由大约22个核苷酸组成的小RNA分子(Berezikov et al.,2006),调控着植株生长发育的各个方面,包括叶片形态建成、花器官发育等(Chen et al.,2005)。另外,miRNA在植物响应逆境胁迫反应中也发挥着不可替代的作用。miRNA的作用机制主要表现为与靶基因mRNA近乎完美地互补结合,介导对其的剪切降解和翻译抑制,植物中大多表现为前者(Bartel et al.,2004)。
基于病毒的miRNA沉默(Virus-based MicroRNA Silencing,VbMS),是指携带一段寄主植物目的miRNA模拟靶标STTM序列的病毒载体侵染植株引发寄主内源miRNA的沉默,从而实现对该miRNA的功能鉴定(Senthil-Kumar&Mysore,2011)。STTM含有两个target-mimic序列,其间由一段48至88个核苷酸长的序列连接(Sha et al.,2014)。STTM的表达可针对性使两个miRNA降解。
近年来VbMS技术已成为一种重要的反向遗传学工具用于miRNA功能的研究,与稳定遗传相比,VbMS技术快速有效,能及时大量地搜索、查找与研究目的有关的miRNA,并能在短时间内(2-4周)产生表型(Sha et al.,2014);其次,不需要经过费时费力的植物转基因过程,特别是有助于对那些敲除后可能引起细胞死亡的miRNA功能的鉴定,以及无法进行转基因的植物种类;第三,TRV病毒(烟草脆裂病毒)能感染的植物范围相对较广(Macfarlaneet al.,1999),已成功应用于多种植物基因功能研究中,如烟草中,利用VbMS技术瞬时沉默miR165/166后,植株顶端优势丧失,而miR172瞬时沉默后引起不同程度的花发育缺陷;番茄中,VbMS介导的miR319瞬时沉默后,植株叶片变小,且叶型简化(Sha et al.,2014)。
参考文献:
张莉俊,戴思兰.菊花种质资源研究进展[J].植物学报,2009,44(5):526-535.
Bartel,D.P.(2004a)MicroRNAs:genomics,biogenesis,mechanism,andfunction.Cell,116,281–297.
Berezikov E.,Cuppen E.,Plasterk R.H..(2006)Approaches to microRNAdiscovery.Nature genetics,38,S2-S7.
Chen X..(2005)MicroRNA biogenesis and function in plants.FEBSletters,579,5923-5931.
Macfarlane S.A.,Vassilakos N.,Brown D.J..(1999)Similarities in thegenome organization of tobacco rattle virus and pea early-browning virusisolates that are transmitted by the same vector nematode.Journal of GeneralVirology,80(Pt 1),273-276.
Senthil-Kumar M.,Mysore K.S..(2011)New dimensions for VIGS in plantfunctional genomics.Trends in plant science,16,656-65.
Sha A.,Zhao J.,Yin K.,Tang Y.,Wang Y.,Wei X.,Hong Y.,Liu Y..(2014)Virus-based microRNA silencing in plants.Plant Physiology,164,36.
发明内容
本发明所要解决的技术问题是提供一种与植物抗蚜性相关的miR160a,并提供TRV-VbMS技术沉默菊花脑内源miRNA的方法,并利用此miRNA及TRV-VbMS技术提高菊花脑的抗蚜性。
为解决上述技术问题,本发明采用的技术方案如下:
一种与菊花脑抗蚜性相关的miR160a,具有如SEQ ID NO.1所示的序列。
上述的与菊花脑抗蚜性相关的miR160a在提高植物抗蚜性或培育抗蚜转基因植物中的应用。
STTM160a序列片段,具有如下(a)~(c)中任一所述的核苷酸序列:
(a)如SEQ ID No.2所示的核苷酸序列;
(b)如SEQ ID No.2所示的核苷酸序列的互补序列;
(c)具有SEQ ID No.2所示的核苷酸序列经取代、缺失或添加一个或多个核苷酸所获得的核苷酸序列,且与SEQ ID No.2所示的核苷酸序列功能相同或相似的核苷酸序列。
上述的STTM160a序列片段在构建基于烟草脆裂病毒诱导miRNA沉默载体中的应用。
含有上述STTM160a序列片段的重组表达载体、转基因细胞系或转基因工程菌。
上述的重组表达载体,该重组表达载体是基于烟草脆裂病毒诱导miRNA沉默的载体,为将上述的STTM160a序列片段插入到TRV2e载体的Pst I位点间通过LIC方法得到的植物表达载体TRV2e-STTM160a。
上述的转基因工程菌,该转基因工程菌通过将上述的植物表达载体TRV2e-STTM160a转化农杆菌感受态获得。
上述的STTM160a序列片段、重组表达载体和转基因工程菌在提高植物抗蚜性、培育抗蚜性转基因作物或快速鉴定菊花脑miR160a功能中的应用。
一种培育抗蚜转基因植物的方法,通过沉默植物中的miR160a增强植物对蚜虫的抗性。所述的抗蚜转基因植物为菊花脑。优选的,该方法为将含有内源目的miR160a结合位点的如SEQ ID No.2所示STTM160a序列片段的TRV2e病毒沉默表达载体质粒瞬时转化植株,诱导植株内源目的miRNA发生沉默,培育出具有抗蚜性的转基因植物。所述的内源目的miRNA为如SEQ ID NO.1所示的miR160a。
一种快速鉴定菊花脑miRNA功能的方法,将含有内源目的miRNA结合位点的STTM序列片段的TRV2e-STTM160a病毒沉默表达载体质粒瞬时转化菊花脑,诱导菊花脑内源目的miRNA发生沉默,从而鉴定该内源目的miRNA的功能。
优选的,所述的含有内源目的miRNA结合位点的STTM序列片段的TRV2e病毒沉默表达载体质粒为上述的植物表达载体TRV2e-STTM160a;通过植株抽真空法将上述的植物表达载体TRV2e-STTM160a瞬时转化菊花脑,诱导菊花脑内源目的miRNA发生沉默,从而鉴定该内源目的miRNA的功能,统计目的miRNA沉默植株虫口数目。
上述的快速鉴定菊花脑miRNA功能的方法,具体包括如下步骤:
(1)构建植物表达载体TRV2e-STTM160a:以人工合成的一段由48个核苷酸组成的link序列SEQ ID NO.3为模板,以STTM序列引物STTM160a-F:SEQ ID NO.4和STTM160a-R:SEQ ID NO.5为引物进行PCR扩增反应,得到目的片段,将纯化产物和TRV2e载体分别进行PstI(Fermentas,USA)单酶切,然后在T4DNA(TaKaRa,Japan)聚合酶作用下,分别对酶切后的TRV2e载体和STTM160a进行dTTP和dATP加尾处理,回收目的片段之后进行LIC法连接,将连接产物转化DH5α感受态,提取阳性质粒,测序验证,植物表达载体TRV2e-STTM160a构建成功,将TRV2e-STTM160a通过电转化转入农杆菌GV3101;
(2)制备侵染液:从添加了100mg/L Rif和50mg/L Kan的LB平板上挑取含有植物表达载体TRV2e-STTM160a、TRV2e-GFP对照载体、TRV1载体的阳性农杆菌GV3101单克隆,分别在添加了100mg/L Rif,10mM MES,20μM acetosyringone(乙酰丁香酮)和50mg/L Kan的LB液体培养基中进行培养至OD600为1.5,然后离心去上清收集各菌体,采用等体积侵染缓冲液重悬各菌体并调节OD600至1.5,黑暗静置后将TRV1与TRV2e-GFP或TRV2e-STTM160a悬浮菌液等体积混合,用作菊花脑幼苗侵染液;所述侵染缓冲液的配方为10mMMES,200μMacetosyringone,10mM MgCl2水溶液,pH=5.6;
(3)将步骤(2)制备的侵染液利用抽真空方式侵染菊花脑播种苗,直至植株被农杆菌菌液完全浸润;
(4)转化后培养:将侵染的植株用自来水冲洗后定植,并用保鲜膜保湿,置于黑暗中培养1d后,于光照培养箱中正常管理(16h/8h光周期、23℃/18℃昼夜温度、相对湿度70%);
(5)转化株表型观察:侵染后1周,在Tanon UV-100手提式紫外灯(CatalogNo.200-1300(365/365nm))照射下进行真叶中GFP荧光信号检测,筛选阳性苗,并拍照记录。筛选出的阳性植株用于进一步实验;
(6)内源目的片段CP(编码病毒外壳蛋白)和STTM160a序列的RT-PCR检测:取在紫外灯照射下有绿色荧光信号的菊花脑植株真叶提取RNA,并消化基因组DNA,用TRV特异反转录引物(TRV-RT):SEQ ID NO.6进行反转录得到cDNA,然后以CP-F:SEQ ID NO.7和CP-R:SEQID NO.8为CP引物检测CP基因的表达;以sttm160a-F:SEQ ID NO.9和sttm160a-R:SEQ IDNO.10为STTM qRT-PCR检测引物检测STTM160a序列的表达,取样植株用于下一步实验。
(7)内源miRNA表达的qRT-PCR检测:将步骤(6)提取的RNA用反转录引物oligo(dT)18:SEQ ID NO.11和目标miRNA特异反转录引物miR160a-RT:SEQ ID NO.12进行反转录,以miR160a-F:SEQ ID NO.13和miR160a-R:SEQ ID NO.14为miR160a qRT-PCR检测引物检测目标miRNA的表达量,以CnEF1α-F:SEQ ID NO.15和CnEF1α-R:SEQ ID NO.16为CnEF1α引物检测内参基因CnEF1α的表达量。
上述的快速鉴定菊花脑miRNA在提高抗蚜性应用的鉴定方法,优选为选取长势一致的3~4片叶龄的TRV2e-STTM160a阳性植株和TRV2e-GFP对照植株进行蚜虫接种,每株接种5头菊姬长管蚜2龄若虫,两周后统计植株上蚜虫的数目。
本发明的实验证明,在蚜虫敏感植株菊花脑中,蚜虫取食前期(3h、6h和12h),miR160a表达量上升,说明miR160a的表达响应蚜虫取食,在抗蚜性提高的TRV2e-STTM160a阳性植株中miR160a表达水平显著低于TRV2e-GFP对照阳性植株,说明miR160a在菊花脑的抗蚜性中担任重要作用。
本发明的优点在于,将含有内源目的miRNA结合位点的STTM序列片段通过TRV-VbMS技术法沉默菊花脑内源miRNA,采用播种苗抽真空法将上述的植物表达载体TRV2e-STTM瞬时转化菊花脑,其具有快速,高通量,低成本,易于操作与实现等优势,为规模化开展菊花脑miRNA功能研究提供依据,避免了因缺乏稳定的遗传转化体系而严重制约的基因功能研究。本发明miR160a的表达受到蚜虫取食的调节,说明其在菊花脑的抗蚜性中担任重要作用,基于此,可利用该miRNA进行抗蚜转基因作物的培育,进而对于提高作物的抗蚜性。
附图说明
图1:蚜虫取食下菊花脑中miR160a的表达模式。
图2:植物重组表达质粒TRV2e-STTM160a片段图谱。
图3:qRT-PCR检测TRV2e-GFP对照和TRV2e-STTM160a阳性植物中miR160a表达水平。
TRV2e-GFP:空载对照阳性株系;TRV2e-STTM160a:miR160a沉默阳性株系
图4:miR160a沉默植株抗蚜性鉴定。
TRV2e-GFP:空载对照阳性株系;TRV2e-STTM160a:miR160a沉默阳性株系
具体实施方式
下面对发明的具体实施例进行详细的说明:本实施例在以本发明技术方案为前提下进行实施,给出了详细的实施方式和具体的操作过程,其具体实施方式如下:
在以下实施例中,除非特殊说明,所涉及的载体和实验材料均为本领域技术人员所公知的。
实施例1:菊花脑在蚜虫取食下miR160a表达模式分析
(1)蚜虫处理:取长势一致的菊花脑6~8叶龄播种苗,在每株植株从上往下数第二片全展叶上接种20头菊姬长管蚜2龄若虫,接种蚜虫前预先饥饿处理3h,接种后叶片罩上高2cm,直径5cm的微虫笼,以防蚜虫逃逸,取样时间点为接种后0h、3h、6h、12h、24h。每个时间点每个生物学重复取3株植物的叶片,3次生物学重复。取样后叶片用液氮速冻,并于-80℃保存,分别提取叶片的RNA。
(2)荧光定量PCR检测:将步骤(1)提取的RNA用oligo(dT)18:SEQ ID NO.11和目标miRNA特异反转录引物miR160a-RT:SEQ ID NO.12进行反转录,以miR160a-F:SEQ ID NO.13和miR160a-R:SEQ ID NO.14为引物检测目标miR160a的表达量(经测序miR160a的序列如SEQ ID NO.1所示),以CnEF1α-F:SEQ ID NO.15和CnEF1α-R:SEQ ID NO.16为引物检测内参基因CnEF1α的表达量。
实施例2:菊花脑miR160a瞬时沉默转化
(1)构建植物表达载体TRV2e-STTM160a:以人工合成的一段由48个核苷酸组成的link序列SEQ ID NO.3为模板,以STTM160a-F:SEQ ID NO.4和STTM160a-R:SEQ ID NO.5为引物进行PCR扩增反应,得到目的片段STTM160a序列片段(如SEQ ID NO.2所示),将纯化产物和TRV2e载体分别进行Pst I(Fermentas,USA)单酶切,然后在T4DNA(TaKaRa,Japan)聚合酶作用下,分别对酶切后的TRV2e载体和STTM160a进行dTTP和dATP加尾处理,回收目的片段之后进行LIC法连接,将连接产物转化DH5α感受态,提取阳性质粒,测序验证,植物表达载体TRV2e-STTM160a构建成功,将TRV2e-STTM160a通过电转化转入农杆菌GV3101;
(2)制备侵染液:从添加了100mg/L Rif和50mg/L Kan的LB平板上挑取含有植物表达载体TRV2e-STTM160a、TRV2e-GFP对照载体、TRV1载体的阳性农杆菌GV3101单克隆分别在添加了100mg/L Rif,10mM MES,20μM acetosyringone(乙酰丁香酮)和50mg/L Kan的LB液体培养基中进行培养至OD600为1.5,然后离心去上清收集各菌体,采用等体积侵染缓冲液重悬各菌体并调节OD600至1.5,黑暗静置后将TRV1与TRV2e-GFP或TRV2e-STTM160a悬浮菌液等体积混合,用作菊花脑幼苗侵染液。侵染液为两组混合液:对照组为TRV2e-GFP+TRV1的混合液;处理组为TRV2e-STTM160a+TRV1的混合液。所述侵染缓冲液的配方为10mM MES,200μMacetosyringone,10mM MgCl2水溶液,pH=5.6;
(3)将步骤(2)制备的侵染液利用抽真空方式侵染菊花脑播种苗(只含两片子叶),直至植株被农杆菌菌液完全浸润;
(4)转化后培养:将侵染的植株用自来水冲洗后定植,并用保鲜膜保湿,置于黑暗中培养1d后,于光照培养箱中正常管理(16h/8h光周期、23℃/18℃昼夜温度、相对湿度70%);
(5)转化株表型观察:侵染后1周,在Tanon UV-100手提式紫外灯(CatalogNo.200-1300(365/365nm))照射下进行真叶中GFP荧光信号检测,筛选阳性苗,并拍照记录。筛选出的阳性植株用于进一步实验;
(6)内源目的片段CP(编码病毒外壳蛋白)和STTM160a序列的RT-PCR检测:取在紫外灯照射下有绿色荧光信号的菊花脑植株真叶提取RNA,并消化基因组DNA,用TRV特异引物(TRV-RT):SEQ ID NO.6进行反转录得到cDNA,然后以CP-F:SEQ ID NO.7和CP-R:SEQ IDNO.8为引物检测CP基因的表达;以sttm160a-F:SEQ ID NO.9和sttm160a-R:SEQ ID NO.10为引物检测STTM160a序列的表达,取样植株用于下一步实验。
(7)内源miR160a表达的qRT-PCR检测:将步骤(6)提取的RNA用oligo(dT)18:SEQ IDNO.11和目标miRNA特异反转录引物miR160a-RT:SEQ ID NO.12进行反转录,以miR160a-F:SEQ ID NO.13和miR160a-R:SEQ ID NO.14为引物检测目标miR160a的表达量,以CnEF1α-F:SEQ ID NO.15和CnEF1α-R:SEQ ID NO.16为引物检测内参基因CnEF1α的表达量。
(8)抗蚜性鉴定:选取长势一致的3~4片叶龄的沉默株系接种蚜虫,进行抗蚜性鉴定。结果显示,接种5头菊姬长管蚜2龄若虫的TRV2e-GFP对照和TRV2e-STTM160a阳性植株,两周后植株上的蚜虫数目显著差异,TRV2e-GFP对照阳性植株上蚜虫数目平均为48.1头,而TRV2e-STTM160a阳性植株上的蚜虫数目平均为24.3头,表明沉默miR160a使菊花脑对蚜虫的抗性增强。
所述miR160a的序列如SEQ ID NO.1所示;所述STTM160a序列片段如SEQ ID NO.2所示;所述的Link序列片段如SEQ ID No.3所示;所述的STTM序列引物包括上游引物STTM160a-F:SEQ ID NO.4和下游引物STTM160a-R:SEQ ID NO.5;所述的TRV反转录引物TRV-RT:SEQ ID NO.6;所述的CP引物包括上游引物CP-F:SEQ ID NO.7和下游引物CP-R:SEQID NO.8;所述的STTM qRT-PCR检测引物包括上游引物sttm160a-F:SEQ ID NO.9和下游引物sttm160a-R:SEQ ID NO.10;所述的反转录引物oligo(dT)18:SEQ IDNO.11;所述的miRNA反转录引物miR160a-RT:SEQ ID NO.12;所述的miR160a qRT-PCR检测引物包括上游引物miR160a-F:SEQ ID NO.13和下游引物miR160a-R:SEQ ID NO.14;所述的CnEF1α引物包括上游引物CnEF1α-F:SEQ ID NO.15和下游引物CnEF1α-R:SEQ ID NO.16。其中基因片段的序列如下所示:
miR160a序列(SEQ ID No.1):TGGCATACAGGGAGCCAGGCA。
STTM160a序列片段核苷酸序列为SEQ ID No.2(5’---3’):
CGACGACAAGACCCTTGGCATACAGGCTAGAGCCAGGCAGTTGTTGTTGTTATGGTCTAATTTAAATATGGTCTAAAGAAGAAGAATTGGCATACAGGCTAGAGCCAGGCAAGGGCTCTTCTCCTC。
Link序列片段核苷酸序列为SEQ ID No.3(5’---3’):
GTTGTTGTTGTTATGGTCTAATTTAAATATGGTCTAAAGAAGAAGAAT。
STTM160a-F:SEQ ID NO.4(5’---3’):
CGACGACAAGACCCTTGGCATACAGGctaGAGCCAGGCAGTTGTTGTTGTTATGG。
STTM160a-R:SEQ ID NO.5(5’---3’):
GAGGAGAAGAGCCCTTGCCTGGCTCtagCCTGTATGCCAATTCTTCTTCTTTAGACCATRV-RT:SEQID NO.6(5’---3’):GGGCGTAATAACGCTTACGTAGGC
CP-F:SEQ ID NO.7(5’---3’):CTGACTTGATGGACGATTCTT
CP-R:SEQ ID NO.8(5’---3’):TGTTCGCCTTGGTAGTAGTA
sttm160a-F:SEQ ID NO.9(5’---3’):GGTCTAAAGAAGAAGAATATGTCCC
sttm160a-R:SEQ ID NO.10(5’---3’):GCCTTTGTAACCATCATCACT
oligo(dT)18:SEQ ID NO.11(5’---3’):tttttttttttttttttt
miR160a-RT:SEQ ID NO.12(5’---3’):gtcgtatccagtgcagggtccgaggtattcgcactggatacgacTGGCAT
miR160a-F:SEQ ID NO.13(5’---3’):atgttTGCCTGGCTCCCTGT
miR160a-R:SEQ ID NO.14(5’---3’):agtgcagggtccgaggtat
CnEF1α-F:SEQ ID NO.15(5’---3’):TTTTGGTATCTGGTCCTGGAG
CnEF1α-R:SEQ ID NO.16(5’---3’):CCATTCAAGCGACAGACTCA
本发明的技术方案为通过蚜虫接种与荧光定量发掘抗蚜性相关miR160a,及基于TRV-VbMS技术快速鉴定菊花脑miRNA160a功能的方法,通过使用真空泵对菊花脑播种苗进行抽真空,通过植株抽真空法将含有内源目的miRNA结合位点的STTM序列的TRV病毒沉默表达载体质粒如TRV2e-STTM载体瞬时转化菊花脑,诱导菊花脑内源miRNA发生沉默,从而鉴定miRNA功能。
序列表
<110> 南京农业大学
<120> 一种与菊花脑抗蚜性相关的miRNA160a及其应用
<160> 16
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 1
tggcatacag ggagccaggc a 21
<210> 2
<211> 126
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 2
cgacgacaag acccttggca tacaggctag agccaggcag ttgttgttgt tatggtctaa 60
tttaaatatg gtctaaagaa gaagaattgg catacaggct agagccaggc aagggctctt 120
ctcctc 126
<210> 3
<211> 48
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 3
gttgttgttg ttatggtcta atttaaatat ggtctaaaga agaagaat 48
<210> 4
<211> 55
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 4
cgacgacaag acccttggca tacaggctag agccaggcag ttgttgttgt tatgg 55
<210> 5
<211> 58
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 5
gaggagaaga gcccttgcct ggctctagcc tgtatgccaa ttcttcttct ttagacca 58
<210> 6
<211> 24
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 6
gggcgtaata acgcttacgt aggc 24
<210> 7
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 7
ctgacttgat ggacgattct t 21
<210> 8
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 8
tgttcgcctt ggtagtagta 20
<210> 9
<211> 25
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 9
ggtctaaaga agaagaatat gtccc 25
<210> 10
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 10
gcctttgtaa ccatcatcac t 21
<210> 11
<211> 18
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 11
tttttttttt tttttttt 18
<210> 12
<211> 50
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 12
gtcgtatcca gtgcagggtc cgaggtattc gcactggata cgactggcat 50
<210> 13
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 13
atgtttgcct ggctccctgt 20
<210> 14
<211> 19
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 14
agtgcagggt ccgaggtat 19
<210> 15
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 15
ttttggtatc tggtcctgga g 21
<210> 16
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 16
ccattcaagc gacagactca 20
Claims (10)
1.一种与菊花脑抗蚜性相关的miR160a,具有如SEQ ID NO.1所示的序列。
2.权利要求1所述的与菊花脑抗蚜性相关的miR160a在提高植物抗蚜性或培育抗蚜转基因植物中的应用。
3.STTM160a序列片段,其特征在于:具有如下(a)~(c)中任一所述的核苷酸序列:
(a)如SEQ ID No.2所示的核苷酸序列;
(b)如SEQ ID No.2所示的核苷酸序列的互补序列;
(c)具有SEQ ID No.2所示的核苷酸序列经取代、缺失或添加一个或多个核苷酸所获得的核苷酸序列,且与SEQ ID No.2所示的核苷酸序列功能相同或相似的核苷酸序列。
4.权利要求3所述的STTM160a序列片段在构建基于烟草脆裂病毒诱导miRNA沉默载体中的应用。
5.含有权利要求3所述STTM160a序列片段的重组表达载体、转基因细胞系或转基因工程菌。
6.根据权利要求5所述的重组表达载体,其特征在于:所述的重组表达载体是基于烟草脆裂病毒诱导miRNA沉默的载体,为将权利要求3所述的STTM160a序列片段插入到TRV2e载体的Pst I位点间通过LIC方法得到的植物表达载体TRV2e-STTM160a。
7.根据权利要求5所述的转基因工程菌,其特征在于:该转基因工程菌通过将权利要求6所述的植物表达载体TRV2e-STTM160a转化农杆菌感受态获得。
8.权利要求3所述的STTM160a序列片段、权利要求5~7中任一所述的重组表达载体和转基因工程菌在提高植物抗蚜性、培育抗蚜性转基因作物或快速鉴定菊花脑miR160a功能中的应用。
9.一种培育抗蚜转基因植物的方法,其特征在于,通过沉默植物中的miR160a增强植物对蚜虫的抗性。
10.根据权利要求9所述的培育抗蚜转基因植物的方法,其特征在于:将含有内源目的miR160a结合位点的如SEQ ID No.2所示STTM160a序列片段的TRV2e病毒沉默表达载体质粒瞬时转化植株,诱导植株内源目的miRNA发生沉默,培育出具有抗蚜性的转基因植物。
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XIAOLONG XIA等: "MicroRNA Expression Profile during Aphid Feeding in Chrysanthemum (Chrysanthemum morifolium)", 《PLOS ONE》 * |
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