CN104120134B - GsHSFB2b蛋白在培育耐逆性转基因植物中的应用 - Google Patents

Abstract

本发明公开了一种GsHSFB2b蛋白在培育耐逆性转基因植物中的应用。本发明提供了如下1）‑3）中任一种物质在调控植物耐逆性或培养耐逆性植物中的应用：1）蛋白GsHSFB2b；2）编码蛋白GsHSFB2b的DNA分子；3）含有编码蛋白GsHSFB2b的DNA分子的重组载体、表达盒、转基因细胞系或重组菌；所述蛋白GsHSFB2b的氨基酸序列为序列表中的序列2。本发明的实验证明，本发明从野生大豆中克隆了一个HSF家族的转录因子基因GsHSFB2b，该基因对培育耐逆植物品种，特别是培育耐非生物胁迫作物、林草等新品种具有重要的理论及实际意义。

Description

GsHSFB2b蛋白在培育耐逆性转基因植物中的应用

技术领域

本发明涉及生物技术领域，尤其涉及一种GsHSFB2b蛋白在培育耐逆性转基因植物中的应用。

背景技术

环境中物理化学因素的变化,例如干旱、盐碱、低温等对植物的生长发育有重要影响，严重时会造成农作物大规模减产，培育耐逆性作物是种植业的主要目标之一。目前，基因工程育种已经成为增强作物耐逆性的重要方法之一。高等植物细胞有多种途径应答环境中的各种逆境胁迫，其涉及一批与植物的耐逆性相关蛋白。这些蛋白主要可分为两类，一类是调控蛋白，例如蛋白激酶、转录因子等；一类是效应蛋白，例如渗透调节剂：甜菜碱、脯氨酸、甘油等及转运蛋白、水孔蛋白等。

1962年Rittossa在研究果蝇唾液腺在热环境下的蛋白质时发现了热激蛋白。之后发现热激蛋白家族广泛存在于微生物、植物和动物中，其成员，例如，HSP60、HSP70及HSP90作为分子伴侣，帮助其它蛋白正确折叠及胞内分布等，以维持该蛋白的正常功能。热激蛋白参与多种生物学过程。自1982年在冷泉港召开了第一次热激蛋白研讨会之后，对于热激蛋白的研究越来越受到关注。热激蛋白的表达受热激转录因子的调控，热激转录因子是一个保守的家族，可以和热激蛋白基因中的特异热激元件结合，调控其转录。

根据基本结构的差异，热激因子可分为三类，HSFA、HSFB和HSFC。热激因子在拟南芥中研究的较详尽。拟南芥热激因子所参与的调控网络是多变而复杂的，已经初步阐明了21个热激因子所参与的调控网络。早先的研究表明编码热激蛋白和热激因子的基因均受高温诱导，与耐高温相关。随着大豆基因组测序的完成,在栽培大豆基因组中聚类了25个热激因子,已经鉴定了与耐非生物胁迫相关和与抗生物胁迫相关的成员。大豆起源于我国。我国有最丰富的野生大豆资源。已从黑龙江野生大豆资源中筛选到2个耐2.5%盐的材料，编号为Y20和Y55。从耐盐材料中发掘耐盐相关基因，可为培育耐盐大豆提供基因资源。

发明内容

本发明的一个目的是提供如下1）-3）中任一种物质的新用途。

本发明提供了如下1）-3）中任一种物质在调控植物耐逆性或培育耐逆性植物中的应用：1）蛋白GsHSFB2b；2）编码蛋白GsHSFB2b的DNA分子；3）含有编码蛋白GsHSFB2b的DNA分子的重组载体、表达盒、转基因细胞系或重组菌；

所述蛋白GsHSFB2b的氨基酸序列为序列表中的序列2。

上述应用中，所述编码蛋白GsHSFB2b的DNA分子的核苷酸序列为序列表中的序列1；

所述含有编码蛋白GsHSFB2b的DNA分子的重组载体为将所述编码蛋白GsHSFB2b的DNA分子插入表达载体中，得到表达蛋白GsHSFB2b的重组载体。

在本发明的实施例中，表达载体为pBin438，重组载体为将序列表中的序列1所示的核苷酸插入pBin438的BamH I和KpnI酶切位点之间得到的载体。

上述应用中，调控植物耐逆性为提高植物耐逆性。

上述应用中，所述耐逆性为耐盐性、耐干旱和/或耐低温。

上述应用中，所述低温为4℃；所述植物为双子叶植物或单子叶植物；所述双子叶植物具体为大豆。

上述提高植物耐逆性具体体现为将编码蛋白GsHSFB2b的DNA分子通过含有编码蛋白GsHSFB2b的DNA分子的重组载体导入植物中，得到转基因毛状根，在盐胁迫、低温胁迫或干旱胁迫下，所述转基因毛状根的增长率大于与转空载体毛状根；其中，转空载体毛状根为将pBin438转入植物得到的转空载体毛状根。

本发明的另一个目的是提供沉默或抑制植物中蛋白GsHSFB2b表达的物质的新用途。

本发明提供的沉默或抑制植物中蛋白GsHSFB2b表达的物质在降低植物耐逆性中的应用。

上述应用中，所述沉默或抑制植物中蛋白GsHSFB2b表达的物质为重组载体，

所述重组载体为将DNA分子1和DNA分子2均插入表达载体中，得到沉默或抑制植物中蛋白GsHSFB2b表达的重组载体；所述DNA分子1的核苷酸序列（编码序列）为序列1的自5’末端第441-800位核苷酸；所述DNA分子2的核苷酸序列（编码序列）为所述DNA分子1的反向互补序列。

在本发明的实施例中，表达载体为pZH01，重组载体为将序列1的自5’末端第441-800位核苷酸插入pZH01载体的SacI和KpnI酶切位点，且将序列1的自5’末端第441-800位核苷酸的反向互补序列插入pZH01载体的SalI和XbaI位点间，得到的载体。

上述应用中，所述耐逆性为耐盐性、耐干旱和/或耐低温。

上述应用中，所述低温为4℃；所述植物为单子叶植物或双子叶植物。所述双子叶植物具体为大豆。

上述降低植物耐逆性具体体现为将重组载体导入植物中，得到转基因毛状根，在盐胁迫、低温胁迫或干旱胁迫下，所述转基因毛状根的增长率小于转空载体毛状根；其中，转空载体毛状根为将pZH01转入植物得到的转空载体毛状根。

本发明的第三个目的是提供重组载体。

本发明提供的重组载体，为将编码蛋白GsHSFB2b的DNA分子插入表达载体中，得到表达蛋白GsHSFB2b的重组载体；所述蛋白GsHSFB2b的氨基酸序列为序列表中的序列2；所述编码蛋白GsHSFB2b的DNA分子的核苷酸序列具体为序列表中的序列1。

在本发明的实施例中，表达载体为pBin438，含有编码蛋白GsHSFB2b的DNA分子的重组载体为将序列表中的序列1所示的核苷酸插入pBin438的BamH I和KpnI酶切位点之间得到的载体。

本发明的第四个目的是提供重组载体。

本发明提供的重组载体，为将DNA分子1和DNA分子2均插入表达载体中，得到沉默或抑制植物中蛋白GsHSFB2b表达的重组载体；所述DNA分子1的核苷酸序列为序列1的自5’末端第441-800位核苷酸；所述DNA分子2的核苷酸序列为所述DNA分子1的反向互补序列。

在本发明的实施例中，表达载体为pZH01，重组载体为将序列1的自5’末端第441-800位核苷酸插入pZH01载体的SacI和KpnI酶切位点，且将序列1的自5’末端第441-800位核苷酸的反向互补序列插入pZH01载体的SalI和XbaI位点间，得到的载体。

可用现有的植物表达载体构建含有GsHSFB2b基因的重组载体。

上述植物表达载体包括双元农杆菌载体和可用于植物微弹轰击的载体等。所述植物表达载体还可包含外源基因的3’端非翻译区域，即包含聚腺苷酸信号和任何其它参与mRNA加工或基因表达的DNA片段。所述聚腺苷酸信号可引导聚腺苷酸加入到mRNA前体的3’端，如农杆菌冠瘿瘤诱导(Ti)质粒基因(如胭脂合成酶Nos基因)、植物基因（如大豆贮存蛋白基因）3’端转录的非翻译区均具有类似功能。

使用GsHSFB2b构建重组植物表达载体时，在其转录起始核苷酸前可加上任何一种增强型启动子或组成型启动子（如花椰菜花叶病毒（CAMV）35S启动子、玉米的泛素启动子（Ubiquitin）），或组织特异表达启动子（如种子特异表达的启动子），它们可单独使用或与其它植物启动子结合使用。此外，使用本发明的基因构建植物表达载体时，还可使用增强子，包括翻译增强子或转录增强子，这些增强子区域可以是ATG起始密码子或邻接区域起始密码子等，但必需与编码序列的阅读框相同，以保证整个序列的正确翻译。所述翻译控制信号和起始密码子的来源是广泛的，可以是天然的，也可以是合成的。翻译起始区域可以来自转录起始区域或结构基因。

为了便于对转基因植物细胞或植物进行鉴定及筛选，可对所用植物表达载体进行加工，如加入可在植物中表达的编码可产生颜色变化的酶或发光化合物的基因（GUS基因、萤光素酶基因等）、具有抗性的抗生素标记物（庆大霉素标记物、卡那霉素标记物等）或是抗化学试剂标记基因（如抗除莠剂基因）等。

转化的细胞、组织或植物理解为不仅包含转化过程的最终产物，也包含其转基因子代。

本发明中所述的“多核苷酸”、“多核苷酸分子”、“多核苷酸序列”、“编码序列”、“开放阅读框(ORF)”等包括单链或双链的DNA和RNA分子，可包含一个或多个原核序列，cDNA序列，包含外显子和内含子的基因组DNA序列，化学合成的DNA和RNA序列，以及有义和相应的反义链。

本发明基因可通过如下方式导入宿主中：将本发明基因插入表达盒中，再将表达盒通过植物表达载体、非致病自我复制的病毒或农杆菌导入宿主。携带本发明基因的表达载体可通过使用Ti质粒、Ri质粒、植物病毒载体、直接DNA转化、显微注射、电导、农杆菌介导等常规生物学方法转化植物细胞或组织。

转入本发明基因的植物，可以在该物种中繁殖该基因，也可用常规育种技术将该基因转移进入相同物种的其它品种，特别包括商业品种中。

本发明的基因可以在序列1的基础上进行以下修饰，再导入宿主中，以达到更好的表达效果：

1）为了在转基因植物中表达本发明核苷酸序列，本发明核苷酸序列可根据实际需要进行修饰和优化。如可根据受体植物所偏爱的密码子，在保持本发明所述核苷酸序列编码的氨基酸的同时改变其密码子以符合植物偏爱性。而且，优化过程中，最好能使优化后的编码序列中保持一定的GC含量，以最好地实现植物中导入基因的高水平表达，其中GC含量可为35％，优选为多于45％，更优选为多于50％，最优选多于约60％。

2）为了翻译的有效起始，可以修饰邻近起始甲硫氨酸的基因序列。例如，利用在植物中已知的有效的序列进行修饰。

3）将本发明基因与各种植物表达的启动子连接，以利于其在植物中的表达。所述启动子可包括组成型、诱导型、时序调节、发育调节、化学调节、组织优选和组织特异性启动子。启动子的选择将随着表达时间和空间需要而变化，而且也取决于靶物种。例如组织或器官的特异性表达启动子，根据需要受体在发育的什么时期而定。尽管证明了来源于双子叶植物的许多启动子在单子叶植物中是可起作用的，反之亦然，但是理想地，选择双子叶植物启动子用于双子叶植物中的表达，单子叶植物的启动子用于单子叶植物中的表达。

优选的组成型启动子包括CaMV35S和19S启动子。所述启动子还可为来源于在大多数细胞类型中表达的几种肌动蛋白基因中的启动子。另一个优选的组成型启动子为泛素启动子。上述启动子还可为在根、木髓、叶或花粉中引导表达的启动子，即组织特异性启动子。棉花核酮糖二磷酸羧化酶-加氧酶启动子（美国专利US6,040,504）、水稻蔗糖合酶启动子（美国专利US5,604,121）、夜香树黄化叶卷曲病毒启动子（WO01/73087）。

化学诱导型启动子可为Rab29A启动子（美国专利US5,614,395）。

4）将本发明基因与适合的转录终止子连接，也可以提高本发明基因的表达效率。例如来源于CaMV的tml，来源于rbcS的E9。任何已知在植物中起作用的可得到的终止子都可以与本发明基因进行连接。

5）可向本发明基因中引入增强子序列，如内含子序列（例如来源于Adhl和bronzel）和病毒前导序列（例如来源于TMV,MCMV和AMV）。

在实际操作中，也可以将本发明基因进行细胞靶向定位。可利用本领域现有的技术实现。例如，将来源于靶向细胞器的靶基因序列与本发明基因序列融合，再导入植物细胞中，就可定位了。

上述重组载体中的出发载体可根据所使用的转化技术及靶植物物种的特性进行选择。上述选择可体现在载体中的抗性标记的选择上。对于一些靶物种，可以优选不同的抗生素或除草剂选择性标记。通常用在转化中的选择性标记包括赋予对卡那霉素和相关抗生素抗性的nptII基因，赋予对除草剂膦丝菌素抗性的bar基因,，赋予对抗生素潮霉素抗性的hph基因，和赋予对methatrexate抗性的dhfr基因，赋予对草甘磷抗性的EPSPS基因，和提供代谢甘露糖能力的甘露糖-6-磷酸异构酶基因。

在优选的实施方式中，将本发明的核苷酸序列直接转化到质体基因组中。质体转化的主要优点是质体通常不需要实质修饰就能表达细菌基因，并且质体能表达单启动子控制下的多个开放读框。通过同源重组将基因插入每个植物细胞中存在的所有几千个环形质体基因组拷贝中的质体表达利用了拷贝数大大高于核表达基因的优势，使得表达水平可以容易地超过总可溶植物蛋白质的10％。将本发明基因插入到质体靶向载体中，并且转化进入期望的植物宿主质体基因组中。获得了对于含有本发明核苷酸序列的质体基因组而言属同质的植物，该植物具有高水平地表达核苷酸序列的能力。

本发明的实验证明，本发明从野生大豆中克隆了一个HSF家族的转录因子基因GsHSFB2b（Glyma11g02800.1），研究发现，GsHSFB2b基因的过量表达提高了转基因植株的耐逆性，干扰该基因表达，降低转基因植株的耐逆性，因此该基因对培育耐逆植物品种，特别是培育耐非生物胁迫（耐盐/耐低温/耐旱）作物、林草等新品种具有重要的理论及实际意义，可用于农牧业和生态环境治理所需的耐逆性植物品种的培育和鉴定。

下面结合附图及具体实施例对本发明做进一步说明。

附图说明

图1为GsHSFB2b在耐盐野生大豆Y20和Y55中的表达

图2为GsHSFB2b在耐盐野生大豆中受盐胁迫诱导

图3为过表达重组表达载体和RNA干扰重组表达载体的部分结构示意图

图4为转pBin438-GsHSFB2b毛状根和转GsHSFB2b-RNAi毛状根的分子鉴定

图5为转pBin438-GsHSFB2b毛状根和转GsHSFB2b-RNAi毛状根在NaCl、PEG和4°C处理时的生长

图6为转pBin438-GsHSFB2b毛状根和转GsHSFB2b-RNAi毛状根在正常、盐、旱和4°C胁迫下的相对增长率

具体实施方式

下述实施例中所使用的实验方法如无特殊说明，均为常规方法。

下述实施例中所用的材料、试剂等，如无特殊说明，均可从商业途径得到。

下述实施例中的%，如无特殊说明，均为质量百分含量。以下实施例中的定量试验，均设置三次重复实验，数据为三次重复实验的平均值或平均值±标准差。

所有植物材料均生长于25°C每天的光照为16h/8h(光照/黑暗)。

大豆科丰1号（Glycine max L.Merr.Kefeng1）记载在W.K.Zhang,Y.J.Wang,G.Z.Luo,J.S.Zhang,C.Y.He,X.L.Wu,J.Y.Gai,S.Y.Chen,QTL mapping of tenagronomic traits on the soybean(Glycine max L.Merr.)genetic map and theirassociation with EST markers,Theor.Appl.Genet,2004,108:1131-1139中，公众可以从中国科学院遗传与发育生物学研究所和黑龙江省农业科学院耕作栽培研究所获得；

植物双元表达载体pBin438记载在李太元,田颖川,秦晓峰,等.高效抗虫转基因烟草的研究[J].中国科学(B辑),1994,24(3):276-282中，有中科院微生物研究所方荣祥院士提供。公众可从中国科学院遗传与发育生物学研究所和黑龙江省农业科学院耕作栽培研究所获得。

发根农杆菌K599记载在Attila Kereszt,et al.,Agrobacteriumrhizogenes-mediaded transformation of soybean to study of root biology,NatureProtocols,2007,2(4),549-552）中，公众可从Peter M Gressnon教授，The Universityof Queensland,St Lucia,Queensland4072,Australia,获得，或经Peter M Gressnon教授同意（书面同意书）后由中科院遗传与发育生物学研究所和黑龙江省农业科学院耕作栽培研究所获得。

载体pZH01记载在Han Xiao,et al.Functional analysis of the rice AP3homologue OsMADS16by RNA interference,Plant Molecular Biology,2003,52,957-966，公众可从中国科学院遗传与发育生物学研究所和黑龙江省农业科学院耕作栽培研究所获得。

实施例1、大豆转录因子GsHSFB2b基因的发现及其表达受非生物胁迫诱导

一、大豆转录因子GsHSFB2b基因的发现

将耐盐野生大豆（Glycine soja Sieb.Et Zucc.）Y20和Y55种子播种于装满蛭石的盆中，生长于25±2℃，连续光照，两周后取出大豆苗，操作时注意避免伤根，进行盐处理。处理过程为：盐处理，将根浸入200mM NaCl水溶液中，分别在0、1、3、12小时收集新鲜叶片和根各1g。将收集的叶片和根分别混合，在液氮中研碎，悬于4mol/L硫氢酸胍中，混合物用酸性苯酚、氯仿抽提，上清液中加入无水乙醇沉淀得到叶片和根的总RNA。进行转录组分析。

通过未经盐处理和盐处理的转录组分析，获得一批盐胁迫诱导的基因，筛选20个，鉴定他们在野生大豆叶片和根中的表达水平。结果表明,其中一个基因的表达在野生大豆Y20和Y55的根中表达量均比叶中高(图1)，将该基因命名为GsHSFB2b，其核苷酸序列为序列表中的序列1，该基因编码的蛋白命名为GsHSFB2b，该蛋白的氨基酸序列为序列表中的序列2。

二、大豆转录因子GsHSFB2b基因的表达受非生物胁迫诱导

分析了盐胁迫下GsHSFB2b的表达特征。材料和处理同上，两周龄的Y20和Y55苗经200mM NaCl处理0、1、3、12小时，分别收集叶片和根各1g，提取总RNA。对GsHSFB2b基因在上述处理时的表达特征进行Real Time PCR分析，引物为Primer-F(BamHI)和Primer-R(KpnI)。大豆GmTubulin基因为内标，所用引物为Primer-TF和Primer-TR。

Primer-F(BamHI):5’-cgGGATCCATGGCGCCGTTACCGGCG-3’（序列3）

Primer-R(KpnI):5’-ggGGTACCCTATAGCTCCAACCAATGAGG-3’（序列4）

Primer-TF：5’-AACTCCATTTCGTCCATTCCTTC-3’

Primer-TR：5’-TTGAGTGGATTCCCAACAACG-3’

Q-PCR得到的值是基因相对于GmTubulin的表达量。实验重复三次，结果取平均值±标准差。

结果如图2所示，GsHSFB2b基因在200mM NaCl处理时其转录水平均有不同程度升高,在Y20和Y55叶中，处理1小时时即达到峰值，在Y20中随处理时间增加，表达量略有波动，Y55中，至3小时时有较大下降，但是仍明显高于未处理水平。而在两个野生大豆根中GsHSFB2b的表达趋势基本相同，在盐胁迫下1小时转录水平即升高，至6小时达到峰值，12小时略有下降。总体上，GsHSFB2b无论在两个耐盐野生大豆Y20和Y55的叶还是根中均受到盐胁迫的诱导表达。

实施例2、转录因子GsHSFB2b基因在调控植物耐逆性中的应用

一、转录因子GsHSFB2b基因的获得

将野生大豆Y20的总RNA，反转录成cDNA为模板（也可以以人工合成的序列1所示的DNA分子为模板），用如下带BamH I酶切位点的上游引物和带KpnI酶切位点的下游引物进行PCR扩增，得到约1068bp的PCR产物。

带BamH I酶切位点的上游引物:

Primer-F(BamHI)：F-5’-cgGGATCCATGGCGCCGTTACCGGCG-3’

带Kpn I酶切位点的下游引物:

Primer-R(KpnI)：ggGGTACCCTATAGCTCCAACCAATGAGG

经过测序，该PCR产物大小约1068bp,具有序列表中的序列1所示的核苷酸，即为GsHSFB2b,其编码的蛋白为GsHSFB2b，其氨基酸序列为序列表中的序列2。

二、过表达重组表达载体和RNA干扰重组表达载体的获得

1、过表达重组表达载体pBin438-GsHSFB2b的构建

用限制性内切酶BamHⅠ和KpnⅠ双酶切由上述一得到的1068bp的PCR产物，回收酶切产物，将该酶切产物与经过同样酶切载体pGEM-T Easy（Promega）连接，将连接产物转化大肠杆菌DH5α感受态细胞，根据pGEM-T Easy载体上的羧卞青霉素抗性标记筛选阳性克隆，得到含有回收片段的重组质粒pGEM-T Easy-GsHSFB2b。以该重组质粒上的T7和SP6启动子序列为引物对其进行核苷酸序列测定，测序结果表明该PCR产物具有序列表中序列1所示的核苷酸，为GsHSFB2b，由1068bp组成，该重组质粒pGEM-T Easy-GsHSFB2b为将序列表中序列1所示的核苷酸插入pGEM-T Easy中得到。

以上述重组质粒pGEM-T Easy-GsHSFB2b为模板，用上述一的带BamH I酶切位点的上游引物和带KpnI酶切位点的下游引物进行PCR扩增，得到的1068bp的PCR产物，回收酶切产物，将该酶切产物与经过同样酶切植物双元表达载体pBin438的12.9Kb载体骨架连接，得到重组质粒。经过测序，该重组质粒为将序列表中的序列1插入pBin438的BamH I和KpnⅠ酶切位点之间得到的载体，将该质粒命名为pBin438-GsHSFB2b，且序列表中的序列1位于CaMV35S启动子之后，即为重组表达载体。该重组表达载体pBin438-GsHSFB2b部分结构示意图如图3A。

2、RNA干扰重组表达载体GsHSFB2b-RNAi载体构建

GsHSF2b基因3’端356bp长的基因片段以正反两个方向插入双向表达载体pZH01中，从而构建RNAi载体，具体如下：

以上述重组质粒pGEM-T Easy-GsHSFB2b为模板，用下列引物RNAi-F和RNAi-R扩增出356bp PCR产物，经过测序，该PCR产物具有序列表中序列1自5’末端第441-800位核苷酸。

RNAi-F（XbaI和ScaI）：GCTCTAGAGAGCTC CAACGACTTCCGGCGACG

RNAi-R（SalI和KpnI）：ACGCGTCGACGGTACC ACCGACATGCAGGGCGTC将PCR产物与RNAi双向表达载体pZH01的链接，具体如下：第一链用Sac I和Kpn I双酶切链接，然后使用Sal I和Xba I双酶切将反链连接到第一链阳性克隆上，获得植物表达载体pZH01-GsHSFB2b-RNAi。

经过测序，pZH01-GsHSFB2b-RNAi（部分结构示意图如图3B）为将序列1的自5’末端第441-800位核苷酸（DNA分子1的编码序列）插入pZH01载体的SacI和KpnI酶切位点，且将序列1的自5’末端第441-800位核苷酸的反向互补序列（DNA分子2的编码序列）插入pZH01载体的SalI和XbaI位点间，得到的载体，为RNA干扰载体。

三、过表达GsHSFB2b毛状根和RNA干扰GsHSFB2b毛状根的获得

1、转化

1）将上述二获得的重组表达载体pBin438-GsHSFB2b和pZH01-GsHSFB2b-RNAi，分别通过电击法导入转化发根农杆菌K599，得到重组农杆菌K599/pBin438-GsHSFB2b和重组农杆菌K599/GsHSFB2b-RNAi。

提取重组农杆菌K599/pBin438-GsHSFB2b的质粒，送去测序，结果为该质粒为pBin438-GsHSFB2b，说明重组菌构建正确。

提取重组农杆菌K599/GsHSFB2b-RNAi的质粒，送去测序，结果为该质粒为pZH01-GsHSFB2b-RNAi，说明重组菌构建正确。

2）用注射器将重组农杆菌K599/pBin438-GsHSFB2b和K599/GsHSFB2b-RNAi分别接种生长6天含两片真叶的大豆科丰1号（以下也称为野生型大豆）幼苗，保湿生长：光照16小时，温度25℃，湿度50%。2周后，长出毛状根即为转化的毛状根。分别获得60个转pBin438-GsHSFB2b毛状根根系（K599/pBin438-GsHSFB2b注射获得）和60个转GsHSFB2b-RNAi毛状根根系（K599/GsHSFB2b-RNAi注射获得），分别标记为OE和RNAi,可进一步作转基因鉴定和耐逆性检测。

以相同的方法将空载体pBin438转入大豆科丰1号幼苗，得到60个转pBin438毛状根根系，以作为实验对照。

以相同的方法将空载体pZH01转入大豆科丰1号幼苗，得到60个转pZH01毛状根根系。

2、转基因毛状根分子鉴定

分别提取转pBin438-GsHSFB2b毛状根、转GsHSFB2b-RNAi毛状根、转pBin438毛状根和转pZH01毛状根的总RNA，将其反转录为cDNA。以cDNA为模板，用Primer-F和Primer-R作为引物进行GsHSFB2b基因表达量分析。Real-Time PCR反应使用TOYOBO公司的RealTime PCR Master Mix试剂盒，并按照说明进行操作。GsHSFB2b基因表达量检测所用引物为同上；大豆GmTubulin基因为内标，所用引物为Primer-TF和Primer-TR。实验重复三次，结果取平均值±标准差。

Primer-F(BamHI)：5’-cgGGATCCATGGCGCCGTTACCGGCG-3’（序列3）

Primer-R(KpnI)：5’-ggGGTACCCTATAGCTCCAACCAATGAGG-3’（序列4）

Primer-TF：5’-AACTCCATTTCGTCCATTCCTTC-3’

Primer-TR：5’-TTGAGTGGATTCCCAACAACG-3’

结果如图4所示，图4A为转GsHSFB2b-RNAi毛状根（记作GsHSFB2b-RNAi）和转pZH01毛状根（记作K599）中GsHSFB2b表达的RT-PCR检测结果，表明，在K599中检测到内源GsHSFB2b的表达，而转GsHSFB2b-RNAi毛状根中没有检测到GsHSFB2b的表达；

图4B显示了Real Time PCR检测转pBin438-GsHSFB2b毛状根（记作OE20）和转pBin438毛状根（记作K599）中GsHSFB2b表达的结果，从图中看出，以大豆GmTubulin基因为内标，转pBin438-GsHSFB2b毛状根中GsHSFB2b的相对表达量约为88%；转pBin438毛状根中检测出的GsHSFB2b的相对表达量是大豆原有的GsHSFB2b的表达，约为3%。

从上述结果可以看出，转pBin438-GsHSFB2b毛状根中，GsHSFB2b的表达量远高于转空载体根系中GsHSFB2b的表达量；而转GsHSFB2b-RNAi毛状根中，几乎检测不到GsHSFB2b的表达。

因此，转pBin438-GsHSFB2b毛状根为过表达GsHSFB2b毛状根；转GsHSFB2b-RNAi毛状根为RNA干扰GsHSFB2b毛状根。

四、过表达GsHSFB2b毛状根和RNA干扰GsHSFB2b毛状根耐逆性鉴定

实验样本为转pZH01毛状根、转pBin438毛状根、转pBin438-GsHSFB2b毛状根和转GsHSFB2b-RNAi毛状根。

1、耐盐性鉴定

转pBin438毛状根（记作K599）、转pBin438-GsHSFB2b毛状根（记作GsHSFB2b-OE）和转GsHSFB2b-RNAi毛状根（记作GsHSFB2b-RNAi）各取6个经浸入80mM NaCl水溶液中，25°C处理3天。以在水中25°C生长3天为对照。实验重复三次，结果取平均值±标准差。

拍照观察，结果如图5的前两行所示，对照组各株系物显著差异；而经80mM NaCl处理3天的转pBin438毛状根（记作K599）和转pBin438-GsHSFB2b毛状根（记作GsHSFB2b-OE）和转GsHSFB2b-RNAi毛状根（记作GsHSFB2b-RNAi）的三者表型有显著差异。毛状根相对增长率测量具体如下：

具体测量各组根系（统计毛状根长度），

在水中25°C生长3天各株系的根长如图6A所示，转pBin438毛状根（记作K599）、转pBin438-GsHSFB2b毛状根（记作GsHSFB2b-OE）和转GsHSFB2b-RNAi毛状根（记作GsHSFB2b-RNAi）的根长分别为2.5±0.1、2.4±0.2、2.4±0.2厘米；因此K599和转基因毛状根在未处理条件下的长势无明显差异。

80mM NaCl水溶液处理组毛状根长结果如下：

转pBin438毛状根（记作K599）为处理前和处理后根长平均值分别约为2.5±0.1和2.9±0.2厘米；

转pBin438-GsHSFB2b毛状根（记作GsHSFB2b-OE）处理前和处理后根长分别为平均值分别约为2.4±0.2和3.4±0.3厘米；

转GsHSFB2b-RNAi毛状根（记作GsHSFB2b-RNAi）处理前和处理后根长分别为平均值分别约为2.5±0.2和2.7±0.4厘米。

再计算每一根毛状根的增长率=（处理后根长-处理前根长）/处理前根长，然后取平均值±标准差；

将增长率作图如图6B所示，经80mM NaCl水溶液处理3天后，过量表达毛状根GsHSF2b-OE的相对增长率为61±2%，转pBin438毛状根K599的相对增长率为16±3%，GsHSF2b-RNAi毛状根的相对增长率为6±4%，三者间有显著差异。统计数据表明，GsHSF2b的过量表达显著增加了毛状根对盐胁迫的耐性，而GsHSF2b基因表达的受阻，明显降低了毛状根的耐盐性，它们的差异为极显著。

采用同样的方法处理、检测转pZH01毛状根，结果与转pBin438毛状根无显著差异。

2）耐旱性鉴定

以聚乙二醇6000（PEG）处理模拟干旱胁迫。转pBin438毛状根（记作K599）、转pBin438-GsHSFB2b毛状根（记作GsHSFB2b-OE）和转GsHSFB2b-RNAi毛状根（记作GsHSFB2b-RNAi）分别浸入4%（体积百分含量）PEG在25°C处理3天。每个根系各为6个。

实验重复三次，结果取平均值。

拍照观察，结果如图5的第三行，可以看出，经4%（体积百分含量）PEG处理3天的转pBin438毛状根（记作K599）和转pBin438-GsHSFB2b毛状根（记作GsHSFB2b-OE）和转GsHSFB2b-RNAi毛状根（记作GsHSFB2b-RNAi）的三者表型有显著差异。

毛状根测量具体如下：

转pBin438毛状根（记作K599）处理前和处理后根长分别为平均值分别约为2.5±0.2和3.0±0.4厘米；

转pBin438-GsHSFB2b毛状根（记作GsHSFB2b-OE）处理前和处理后根长分别为平均值分别约为2.3±0.1和4.5±0.5厘米；

转GsHSFB2b-RNAi毛状根（记作GsHSFB2b-RNAi）处理前和处理后根长分别为平均值分别约为2.4±0.2和2.5±0.3厘米。

计算毛状根的相对增长率。计算毛状根长度增长率的公式同上。实验重复三次，结果取平均值。

结果如图6C所示，经4%PEG处理后，转pBin438-GsHSFB2b毛状根GsHSFB2b-OE、转GsHSFB2b-RNAi毛状根GsHSFB2b-RNAi与转pBin438毛状根K599间根的相对增长率有显著差别；具体如下：转pBin438毛状根K599增长率约为20±4%，转GsHSFB2b-RNAi毛状根GsHSFB2b-RNAi的相对增长率为4±3%,而转pBin438-GsHSFB2b毛状根GsHSFB2b-OE的增长率约为95±4%,转pBin438-GsHSFB2b毛状根GsHSFB2b-OE的增长率与转pBin438毛状根的增长率有极显著差异。

采用同样的方法处理、检测转pZH01毛状根，结果与转pBin438毛状根无显著差异。

结果表明，GsHSFB2b的过量表达明显提高了毛状根的耐旱能力，而该基因的失活，则降低了毛状根的耐旱性，它们间的差异均达到极显著水平。

3、耐低温鉴定

将在水中生长的转pBin438毛状根（记作K599）、转pBin438-GsHSFB2b毛状根（记作GsHSFB2b-OE）和转GsHSFB2b-RNAi毛状根（记作GsHSFB2b-RNAi）置于4°C中处理3天后。每个根系各为6个。

实验重复三次，结果取平均值。

拍照观察，结果如图5的第4行，可以看出，经4°C低温处理3天的转pBin438毛状根（记作K599）和转pBin438-GsHSFB2b毛状根（记作GsHSFB2b-OE）和转GsHSFB2b-RNAi毛状根（记作GsHSFB2b-RNAi）的三者表型有显著差异。

毛状根测量具体如下（统计主根长度）：

转pBin438毛状根（记作K599）处理前和处理后根长分别为平均值分别约为2.3±0.4和2.5±0.6厘米；

转pBin438-GsHSFB2b毛状根（记作GsHSFB2b-OE）处理前和处理后根长分别为平均值分别约为2.3±0.4和2.9±0.6厘米；

转GsHSFB2b-RNAi毛状根（记作GsHSFB2b-RNAi）处理前和处理后根长分别为平均值分别约为2.2±0.2和2.3±0.2厘米。

计算毛状根的相对增长率。计算毛状根长度增长率的公式同上。实验重复三次，结果取平均值。

结果如图6D所示，经低温处理后，转pBin438毛状根K599增长率约为7±6%，转GsHSFB2b-RNAi毛状根GsHSFB2b-RNAi的相对增长率为4±2%,而转pBin438-GsHSFB2b毛状根GsHSFB2b-OE的增长率约为24±5%,转GsHSF2b毛状根的增长率与转空载体毛状根的增长率有极显著差异。

采用同样的方法处理、检测转pZH01毛状根，结果与转pBin438毛状根无显著差异。

结果表明，GsHSF2b的过量表达明显提高了毛状根的耐低温能力，而该基因的失活，则降低了毛状根的耐低温性，它们间的差异均达到极显著水平。

上述实施例说明，野生大豆转录因子NAC家族成员GsHSFB2b与植物的耐盐、耐旱和/或耐低温性相关，其过量表达显著增加植物的耐盐、耐旱性和/或耐低温。

Claims (6)

1.如下1)-3)中任一种物质在调控植物耐逆性或培育耐逆性植物中的应用：

1)蛋白GsHSFB2b；

2)编码蛋白GsHSFB2b的DNA分子；

3)含有编码蛋白GsHSFB2b的DNA分子的重组载体、表达盒、转基因细胞系或重组菌；

所述蛋白GsHSFB2b的氨基酸序列为序列表中的序列2；

所述耐逆性为耐盐性、耐干旱和/或耐低温；

所述植物为双子叶植物。

2.根据权利要求1所述的应用，其特征在于：所述编码蛋白GsHSFB2b的DNA分子的核苷酸序列为序列表中的序列1；

所述含有编码蛋白GsHSFB2b的DNA分子的重组载体为将所述编码蛋白GsHSFB2b的DNA分子插入表达载体中，得到表达蛋白GsHSFB2b的重组载体。

3.根据权利要求1或2所述的应用，其特征在于：所述低温为4℃。

4.沉默或抑制植物中蛋白GsHSFB2b表达的物质在降低植物耐逆性中的应用；

所述耐逆性为耐盐性、耐干旱和/或耐低温；

所述蛋白GsHSFB2b的氨基酸序列为序列表中的序列2；

所述植物为双子叶植物。

5.根据权利要求4所述的应用，其特征在于：所述沉默或抑制植物中蛋白GsHSFB2b表达的物质为重组载体，

所述重组载体为将DNA分子1和DNA分子2均插入表达载体中，得到沉默或抑制植物中蛋白GsHSFB2b表达的重组载体；所述DNA分子1的核苷酸序列为序列1的自5’末端第441-800位核苷酸；所述DNA分子2的核苷酸序列为所述DNA分子1的反向互补序列。

6.根据权利要求4或5所述的应用，其特征在于：所述低温为4℃。