CN108913725A - 一种提高结构脂质opo得率的方法 - Google Patents

一种提高结构脂质opo得率的方法 Download PDF

Info

Publication number
CN108913725A
CN108913725A CN201810808998.6A CN201810808998A CN108913725A CN 108913725 A CN108913725 A CN 108913725A CN 201810808998 A CN201810808998 A CN 201810808998A CN 108913725 A CN108913725 A CN 108913725A
Authority
CN
China
Prior art keywords
magnetic
tube
structured lipid
opo
carbon nano
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN201810808998.6A
Other languages
English (en)
Inventor
滕飞
李明达
王中江
綦玉曼
吴长玲
寻崇荣
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Northeast Agricultural University
Original Assignee
Northeast Agricultural University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Northeast Agricultural University filed Critical Northeast Agricultural University
Priority to CN201810808998.6A priority Critical patent/CN108913725A/zh
Publication of CN108913725A publication Critical patent/CN108913725A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P7/00—Preparation of oxygen-containing organic compounds
    • C12P7/64—Fats; Fatty oils; Ester-type waxes; Higher fatty acids, i.e. having at least seven carbon atoms in an unbroken chain bound to a carboxyl group; Oxidised oils or fats
    • C12P7/6436—Fatty acid esters
    • C12P7/6445—Glycerides
    • C12P7/6472—Glycerides containing polyunsaturated fatty acid [PUFA] residues, i.e. having two or more double bonds in their backbone
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N11/00—Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
    • C12N11/14—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an inorganic carrier
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14—Hydrolases (3)
    • C12N9/16—Hydrolases (3) acting on ester bonds (3.1)
    • C12N9/18—Carboxylic ester hydrolases (3.1.1)
    • C12N9/20—Triglyceride splitting, e.g. by means of lipase
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Y—ENZYMES
    • C12Y301/00—Hydrolases acting on ester bonds (3.1)
    • C12Y301/01—Carboxylic ester hydrolases (3.1.1)
    • C12Y301/01003—Triacylglycerol lipase (3.1.1.3)

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Inorganic Chemistry (AREA)
  • Oil, Petroleum & Natural Gas (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

本发明公开了一种提高结构脂质OPO得率的方法，以三棕榈酸甘油酯和油酸为原料，加入磁性碳纳米管固定化脂肪酶，将原料混合后进行电子束辐照预处理，而后通过分子蒸馏纯化得到结构脂质OPO。本发明通过将磁性纳米管固定化脂肪酶，提高了脂肪酶的重复利用性并且采用电子束辐照预处理，显著提高了结构脂质OPO的得率。

Description

一种提高结构脂质OPO得率的方法
技术领域
本发明属于油脂加工领域，主要涉及一种提高结构脂质OPO得率的方法。
背景技术
1,3-二油酸-2-棕榈酸甘油酯即结构脂质OPO是一种结构化脂肪，可以作为人乳脂肪替代物，一般是通过酶法酯交换技术制备，其中70％的棕榈酸连在sn-2位上，而不饱和脂肪酸主要连接在sn-1和sn-3位上。研究表明，脂肪在体内被脂肪酶水解通常发生在sn-1，sn-3位上，结构脂质OPO水解后，不饱和脂肪酸可以直接被小肠吸收消化进入到血液，而sn-2位的棕榈酸也很容易被肠道吸收，但是结构脂质OPO在制备过程中，由于熔点低，热稳定性差，得率很低，一般为30％左右。
固定化酶技术一般是指通过物理、化学或者二者相结合处理的方法，使原来的水溶性的酶与具有某种特性的载体相结合或被载体包埋，并能保持甚至优化酶特有的催化功能。相对于游离酶，其优点在于：1)经过固定化处理的酶，稳定性有较大提高。对温度、pH等的耐受性提高，对酶抑制剂的敏感性降低，有的酶甚至可以抗蛋白酶的降解，便于储存和操作。2) 很多固定化的酶在反应完成后可经过简单的过滤、离心或者磁分离进行回收，并且酶活力降低较少，提高了酶的重复利用率，降低了生产成本。3)固定化酶可以装成酶柱适合放大化、连续化和自动化生产，催化过程可控制，简化了处理过程，由于提高了酶的利用率而达到降低生产成本以及保护环境的目的。
电子束辐照技术是一种新型食品加工技术，一般用于杀菌杀虫，防止微生物的侵染而造成果蔬的腐烂，维持果蔬的感官品质；控制致病微生物、虫害，降低它们的呼吸强度，降低营养成分消耗的速度，延长货架期；现在有研究证明其可以提高食品的品质。
目前，一般是通过控制反应参数，如反应底物的摩尔比例、反应温度、反应时间、脂肪酶的种类和添加量等提高结构脂质OPO得率。Wei等人通过响应面的方法优化了结构脂质OPO的反应条件，得到最佳的工艺参数：底物摩尔比为1:6，反应时间4h，反应温度60℃，将结构脂质OPO的得率提高到40.23％；Liu等人研究了超声预处理对结构脂质OPO产率的影响，发现超声波预处理后1h，OPO含量可提高到35.9％，在最佳工艺条件下，4h内OPO 产率可达51.8％。
本发明通过运用磁性纳米管固定化酶，提高了脂肪酶的稳定性和重复利用率，而电子辐照技术则能够有效提高结构脂质OPO的得率。
发明内容
本发明所要解决的技术问题是克服上述现有技术的不足，提供一种提高结构脂质OPO得率的方法，显著提高结构脂质OPO的产率，实现OPO的有效利用。
本发明所要解决的技术问题是通过以下技术方案来实现的：
一种提高结构脂质OPO得率的方法，该制备方法包括以下步骤：(1)取底物摩尔比为 1:5的三棕榈酸甘油酯和油酸、6％的磁性纳米管固定化酶于10mL圆底烧瓶中混合，置于80℃水浴加热30min；(2)将烧瓶进行电子束辐照预处理，电子束剂量为10-40Gy，处理时间为 1-5h；而后，将其置于50℃的水浴循环系统中，200r/min磁力搅拌6h，制备1,3-二油酸-2- 棕榈酸甘油酯即结构脂质OPO，过滤后进一步通过分子蒸馏的方式分离纯化，真空度为0.4 MPa，进料速率为3mL/min，加热温度为170℃，刮板转速为250r/min，得到纯化后的结构脂质OPO；
所述的磁性碳纳米管固定酶的方法，具体步骤如下：
(1)磁性碳纳米管的纯化：取质量比为1:100的多壁碳纳米管和浓硝酸溶液于60℃磁力加热搅拌回流24小时，纯化后冷却至室温；(2)磁性碳纳米管的氧化：取质量比为1:60的纯化多壁碳纳米管与浓H2SO4和HNO3混合物(浓度为3:1(v/v))，40℃下超声处理3h后完成氧化；(3)磁性碳纳米管的磁化：取质量比为1:500:15的氧化后的多壁碳纳米管、磁性Fe2O3纳米粒子和丙酮搅拌混合10min，使得磁性Fe2O3纳米粒子均匀分散在多壁碳纳米管中；(4)脂肪酶的固定化：在磷酸盐缓冲液(0.1M，pH7.0)中，加入质量比为1:20的磁化后的多壁碳纳米管和脂肪酶，在30℃下搅拌8h后磁力分离，洗涤后冻干保存于4℃的条件下；
所述的电子束辐照，所述的优选参数为：电子束剂量为20Gy，反应时间为2h。
本发明通过运用磁性纳米管固定化酶，提高了脂肪酶的稳定性和重复利用率，减少了成本，降低了能耗；而电子辐照技术则能够有效提高结构脂质OPO的得率。
有益效果
1.本发明运用磁性纳米管固定化酶，提高了脂肪酶的稳定性和重复利用率，减少了成本，降低了能耗，有利于保护环境。
2.本发明采用电子辐照技术，其原理是通过高压脉冲作用对化合物的结构进行改变，提高了酯交换的速度，进而有效提高结构脂质OPO的得率。
附图说明
附图1是本发明制备结构脂质OPO的工艺流程图。
具体实施方式
下面结合附图对本发明具体实施例进行详细描述：
一种提高结构脂质OPO得率的方法，该制备方法包括以下步骤：(1)取底物摩尔比为 1:5的三棕榈酸甘油酯和油酸、6％的磁性纳米管固定化酶于10mL圆底烧瓶中混合，置于80℃水浴加热30min；(2)将烧瓶进行电子束辐照预处理，电子束剂量为10-40Gy，处理时间为 1-5h；而后，将其置于50℃的水浴循环系统中，200r/min磁力搅拌6h，制备1,3-二油酸-2- 棕榈酸甘油酯即结构脂质OPO，过滤后进一步通过分子蒸馏的方式分离纯化，真空度为0.4 MPa，进料速率为3mL/min，加热温度为170℃，刮板转速为250r/min，得到纯化后的结构脂质OPO；
所述的磁性碳纳米管固定酶的方法，具体步骤如下：
(1)磁性碳纳米管的纯化：取质量比为1:100的多壁碳纳米管和浓硝酸溶液于60℃磁力加热搅拌回流24小时，纯化后冷却至室温；(2)磁性碳纳米管的氧化：取质量比为1:60的纯化多壁碳纳米管与浓H2SO4和HNO3混合物(浓度为3:1(v/v))，40℃下超声处理3h后完成氧化；(3)磁性碳纳米管的磁化：取质量比为1:500:15的氧化后的多壁碳纳米管、磁性Fe2O3纳米粒子和丙酮搅拌混合10min，使得磁性Fe2O3纳米粒子均匀分散在多壁碳纳米管中；(4)脂肪酶的固定化：在磷酸盐缓冲液(0.1M，pH7.0)中，加入质量比为1:20的磁化后的多壁碳纳米管和脂肪酶，在30℃下搅拌8h后磁力分离，洗涤后冻干保存于4℃的条件下；
所述的电子束辐照，所述的优选参数为：电子束剂量为20Gy，反应时间为2h。
实施例1：(1)磁性碳纳米管的纯化：取1g多壁碳纳米管，分散在100mL含的5.6M浓硝酸的水溶液中，磁力加热搅拌60℃回流24小时，冷却至室温，在10000r/min，10min的条件下离心，除去上清液，将沉淀用去离子水洗至中性后在80℃真空干燥12h；磁性碳纳米管的氧化：取1g纯化后多壁碳纳米管，分散在60ml(v/v)，浓度为3:1(v/v)的浓H2SO4和HNO3的混合物中，温度控制在40℃，超声处理3h，在10000r/min，10min的条件下离心，除去上清液，将沉淀用去离子水洗至中性后在80℃真空干燥12h；磁性碳纳米管的磁化：取氧化后的多壁碳纳米管1g、磁性Fe2O3纳米粒子500mg和丙酮15mL经过10min的搅拌混合后，静置5min，使得磁性Fe2O3纳米粒子均匀分散在多壁碳纳米管中，离心，除去上清液，将沉淀在80℃下真空干燥12h；脂肪酶的固定化：在200mL磷酸盐缓冲液(0.1M，pH7.0)中，加入1g磁化的多壁碳纳米管和100mL浓度为6mg/mL脂肪酶，在30℃下连续搅拌8h，将多壁碳纳米管从脂肪酶溶液中磁力分离，分别用缓冲液和丙酮洗涤，经冻干保存于4℃；(2) 取底物摩尔比为1:5的三棕榈酸甘油酯和油酸、6％的磁性纳米管固定化酶，于10mL圆底烧瓶中混合；(3)将烧瓶经过电子束辐照进行预处理，电子束剂量为20Gy，反应时间为2h； (4)将其放入温度50℃的水浴循环系统中，在200r/min的磁力搅拌下进行反应，反应时间为6h，过滤后进一步通过分子蒸馏的方式分离纯化，真空度为0.4MPa，进料速率为3mL/min，加热温度为170℃，刮板转速为250r/min，得到纯化后的结构脂质OPO。
实施例2：(1)磁性碳纳米管的纯化：取1g多壁碳纳米管，分散在100mL含的5.6M浓硝酸的水溶液中，磁力加热搅拌60℃回流24小时，冷却至室温，在10000r/min，10min的条件下离心，除去上清液，将沉淀用去离子水洗至中性后在80℃真空干燥12h；磁性碳纳米管的氧化：取1g纯化后多壁碳纳米管，分散在60ml(v/v)，浓度为3:1(v/v)的浓H2SO4和HNO3的混合物中，温度控制在40℃，超声处理3h，在10000r/min，10min的条件下离心，除去上清液，将沉淀用去离子水洗至中性后在80℃真空干燥12h；磁性碳纳米管的磁化：取氧化后的多壁碳纳米管1g、磁性Fe2O3纳米粒子500mg和丙酮15mL经过10min的搅拌混合后，静置5min，使得磁性Fe2O3纳米粒子均匀分散在多壁碳纳米管中，离心，除去上清液，将沉淀在80℃下真空干燥12h；脂肪酶的固定化：在200mL磷酸盐缓冲液(0.1M，pH7.0)中，加入1g多壁碳纳米管和100mL浓度为6mg/mL脂肪酶，在30℃下连续搅拌8h，将多壁碳纳米管从脂肪酶溶液中磁力分离，分别用缓冲液和丙酮洗涤，经冻干保存于4℃；(2)取底物摩尔比为1:5的三棕榈酸甘油酯和油酸、6％的磁性纳米管固定化酶，于10mL圆底烧瓶中混合；(3)将烧瓶经过电子束辐照进行预处理，电子束剂量为10Gy，反应时间为1h；(4)将其放入温度50℃的水浴循环系统中，在200r/min的磁力搅拌下进行反应，反应时间为6h，过滤后进一步通过分子蒸馏的方式分离纯化，真空度为0.4MPa，进料速率为3mL/min，加热温度为170℃，刮板转速为250r/min，得到纯化后的结构脂质OPO。
实施例3：(1)磁性碳纳米管的纯化：取1g多壁碳纳米管，分散在100mL含的5.6M浓硝酸的水溶液中，磁力加热搅拌60℃回流24小时，冷却至室温，在10000r/min，10min的条件下离心，除去上清液，将沉淀用去离子水洗至中性后在80℃真空干燥12h；磁性碳纳米管的氧化：取1g纯化后多壁碳纳米管，分散在60ml(v/v)，浓度为3:1(v/v)的浓H2SO4和HNO3的混合物中，温度控制在40℃，超声处理3h，在10000r/min，10min的条件下离心，除去上清液，将沉淀用去离子水洗至中性后在80℃真空干燥12h；磁性碳纳米管的磁化：取氧化后的多壁碳纳米管1g、磁性Fe2O3纳米粒子500mg和丙酮15mL经过10min的搅拌混合后，静置5min，使得磁性Fe2O3纳米粒子均匀分散在多壁碳纳米管中，离心，除去上清液，将沉淀在80℃下真空干燥12h；脂肪酶的固定化：在200mL磷酸盐缓冲液(0.1M，pH7.0)中，加入1g磁化的多壁碳纳米管和100mL浓度为6mg/mL脂肪酶，在30℃下连续搅拌8h，将多壁碳纳米管从脂肪酶溶液中磁力分离，分别用缓冲液和丙酮洗涤，经冻干保存于4℃；(2) 取底物摩尔比为1:5的三棕榈酸甘油酯和油酸、6％的磁性纳米管固定化酶，于10mL圆底烧瓶中混合；(3)将烧瓶经过电子束辐照进行预处理，电子束剂量为40Gy，反应时间为5h； (4)将其放入温度50℃的水浴循环系统中，在200r/min的磁力搅拌下进行反应，反应时间为6h，过滤后进一步通过分子蒸馏的方式分离纯化，真空度为0.4MPa，进料速率为3mL/min，加热温度为170℃，刮板转速为250r/min，得到纯化后的结构脂质OPO。
实施例4：(1)取底物摩尔比为1:5的三棕榈酸甘油酯和油酸、6％的脂肪酶，于10mL圆底烧瓶中混合；(2)将烧瓶放入温度50℃的水浴循环系统中，在200r/min的磁力搅拌下进行反应，反应时间为6h，过滤后进一步通过分子蒸馏的方式分离纯化，真空度为0.4MPa，进料速率为3mL/min，加热温度为170℃，刮板转速为250r/min，得到纯化后的结构脂质OPO。
实施例5：(1)取底物摩尔比为1:5的三棕榈酸甘油酯和油酸、6％的脂肪酶，于10mL圆底烧瓶中混合；(2)将烧瓶经过电子束辐照进行预处理，电子束剂量为20Gy，反应时间为2h； (3)将其放入温度50℃的水浴循环系统中，在200r/min的磁力搅拌下进行反应，反应时间为6h，过滤后进一步通过分子蒸馏的方式分离纯化，真空度为0.4MPa，进料速率为3mL/min，加热温度为170℃，刮板转速为250r/min，得到纯化后的结构脂质OPO。
实施例6：(1)磁性碳纳米管的纯化：取1g多壁碳纳米管，分散在100mL含的5.6M浓硝酸的水溶液中，磁力加热搅拌60℃回流24小时，冷却至室温，在10000r/min，10min的条件下离心，除去上清液，将沉淀用去离子水洗至中性后在80℃真空干燥12h；磁性碳纳米管的氧化：取1g纯化后多壁碳纳米管，分散在60ml(v/v)，浓度为3:1(v/v)的浓H2SO4和HNO3的混合物中，温度控制在40℃，超声处理3h，在10000r/min，10min的条件下离心，除去上清液，将沉淀用去离子水洗至中性后在80℃真空干燥12h；磁性碳纳米管的磁化：取氧化后的多壁碳纳米管1g、磁性Fe2O3纳米粒子500mg和丙酮15mL经过10min的搅拌混合后，静置5min，使得磁性Fe2O3纳米粒子均匀分散在多壁碳纳米管中，离心，除去上清液，将沉淀在80℃下真空干燥12h；脂肪酶的固定化：在200mL磷酸盐缓冲液(0.1M，pH7.0)中，加入1g多壁碳纳米管和100mL浓度为6mg/mL脂肪酶，在30℃下连续搅拌8h，将多壁碳纳米管从脂肪酶溶液中磁力分离，分别用缓冲液和丙酮洗涤，经冻干保存于4℃；(2)取底物摩尔比为1:5的三棕榈酸甘油酯和油酸、6％的磁性纳米管固定化酶，于10mL圆底烧瓶中混合；(3)将烧瓶放入温度50℃的水浴循环系统中，在200r/min的磁力搅拌下进行反应，反应时间为6h，过滤后进一步通过分子蒸馏的方式分离纯化，真空度为0.4MPa，进料速率为 3mL/min，加热温度为170℃，刮板转速为250r/min，得到纯化后的结构脂质OPO。
表1为各实施例固定化酶的活力和结构脂质OPO的产率
测定指标：
脂肪酶的活力：按照GB-T 23535-2009的方法测定了重复利用10次后的脂肪酶的活力。
结构脂质OPO的产率：高效液相色谱法测定了OPO含量。
表1各实施例固定化酶的活力和结构脂质OPO的产率
由表1可知，磁性纳米管固定化脂肪酶后，重复使用10次，脂肪酶仍然保持较高的活力 (58.43-83.32U/mL)，促进了反应的进行，明显提高结构脂质OPO的产率。在最优的参数下，结构脂质OPO的产率达到61.25％，比普通的酯交换法提高31.13％，显著提高了结构脂质OPO 的得率。
虽然本发明已以较佳的实施例公开如上，但其并非用以限定本发明，任何熟悉此技术的人，在不脱离本发明的精神和范围内，都可以做各种改动和修饰，因此本发明的保护范围应该以权利要求书所界定的为准。

Claims (3)

1.一种提高结构脂质OPO得率的方法，该制备方法包括以下步骤：(1)取底物摩尔比为1:5的三棕榈酸甘油酯和油酸、6％的磁性纳米管固定化酶于10mL圆底烧瓶中混合，置于80℃水浴加热30min；(2)将烧瓶进行电子束辐照预处理，电子束剂量为10-40Gy，处理时间为1-5h；而后，将其置于50℃的水浴循环系统中，200r/min磁力搅拌6h，制备1,3-二油酸-2-棕榈酸甘油酯即结构脂质OPO，过滤后进一步通过分子蒸馏的方式分离纯化，真空度为0.4MPa，进料速率为3mL/min，加热温度为170℃，刮板转速为250r/min，得到纯化后的结构脂质OPO。
2.根据权利要求1所述的方法，其特征在于磁性碳纳米管固定化酶的方法，具体步骤如下：
(1)磁性碳纳米管的纯化：取质量比为1:100的多壁碳纳米管和浓硝酸溶液于60℃磁力加热搅拌回流24小时，纯化后冷却至室温；(2)磁性碳纳米管的氧化：取质量比为1:60的纯化多壁碳纳米管与浓H2SO4和HNO3混合物(浓度为3:1(v/v))，40℃下超声处理3h后完成氧化；(3)磁性碳纳米管的磁化：取质量比为1:500:15的氧化后的多壁碳纳米管、磁性Fe2O3纳米粒子和丙酮搅拌混合10min，使得磁性Fe2O3纳米粒子均匀分散在多壁碳纳米管中；(4)脂肪酶的固定化：在磷酸盐缓冲液(0.1M，pH7.0)中，加入质量比为1:20的磁化后的多壁碳纳米管和脂肪酶，在30℃下搅拌8h后磁力分离，洗涤后冻干保存于4℃的条件下。
3.根据权利要求1所述的方法，其特征在于电子束辐照预处理，所述的优选参数为：电子束剂量为20Gy，处理时间为2h。
CN201810808998.6A 2018-07-23 2018-07-23 一种提高结构脂质opo得率的方法 Pending CN108913725A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201810808998.6A CN108913725A (zh) 2018-07-23 2018-07-23 一种提高结构脂质opo得率的方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201810808998.6A CN108913725A (zh) 2018-07-23 2018-07-23 一种提高结构脂质opo得率的方法

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN108913725A true CN108913725A (zh) 2018-11-30

Family

ID=64415806

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201810808998.6A Pending CN108913725A (zh) 2018-07-23 2018-07-23 一种提高结构脂质opo得率的方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN108913725A (zh)

Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2009019567A8 (en) * 2007-08-03 2009-04-23 Next Technology Tecnotessile S Process for the functionalisation of polymeric materials and functionalized polymeric materials so obtained
CN102757988A (zh) * 2012-07-25 2012-10-31 浙江大学 一种1,3-二油酸-2-棕榈酸甘油三酯的制备方法
CN103160548A (zh) * 2013-02-01 2013-06-19 杭州恒诺科技有限公司 一种1,3-二油酸－2-棕榈酸甘油三酯的制备方法
US20140154749A1 (en) * 2008-04-30 2014-06-05 Xyleco, Inc. Processing biomass
CN104046662A (zh) * 2014-06-24 2014-09-17 东北农业大学 一种1,3-二油酸-2-棕榈酸甘油三酯的酶促酯交换制备方法
CN107803181A (zh) * 2017-10-18 2018-03-16 甘肃省商业科技研究所有限公司 磁性四氧化三铁纳米粒子修饰碳纳米管复合材料的制备及应用
CN108018329A (zh) * 2017-11-03 2018-05-11 中山大学 一种电子束辐照对酶活性的控制与原位检测方法

Patent Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2009019567A8 (en) * 2007-08-03 2009-04-23 Next Technology Tecnotessile S Process for the functionalisation of polymeric materials and functionalized polymeric materials so obtained
US20140154749A1 (en) * 2008-04-30 2014-06-05 Xyleco, Inc. Processing biomass
CN102757988A (zh) * 2012-07-25 2012-10-31 浙江大学 一种1,3-二油酸-2-棕榈酸甘油三酯的制备方法
CN103160548A (zh) * 2013-02-01 2013-06-19 杭州恒诺科技有限公司 一种1,3-二油酸－2-棕榈酸甘油三酯的制备方法
CN104046662A (zh) * 2014-06-24 2014-09-17 东北农业大学 一种1,3-二油酸-2-棕榈酸甘油三酯的酶促酯交换制备方法
CN107803181A (zh) * 2017-10-18 2018-03-16 甘肃省商业科技研究所有限公司 磁性四氧化三铁纳米粒子修饰碳纳米管复合材料的制备及应用
CN108018329A (zh) * 2017-11-03 2018-05-11 中山大学 一种电子束辐照对酶活性的控制与原位检测方法

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
KUN GAO等: "Effects of 60Co-γ and Electron Beam Irradiation on Storage Quality of Panax ginseng", 《FOOD AND BIOPROCESS TECHNOLOGY》 *
赵军轻: "电子束处理对小麦储藏性能及加工品质的影响", 《中国优秀硕士学位论文全文数据库 工程科技Ⅰ辑》 *
马艳萍等: "60Co γ射线辐照对鲜食核桃萌芽及相关生理指标的影响", 《西北植物学报》 *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Zheng et al. Facile preparation of magnetic carbon nanotubes-immobilized lipase for highly efficient synthesis of 1, 3-dioleoyl-2-palmitoylglycerol-rich human milk fat substitutes
CN102517348A (zh) 表面活化的磁性纳米粒子固定化脂肪酶制备1, 3-甘油二酯的方法
CN100523206C (zh) 含有含多不饱和脂肪酸的甘油三酯的油或脂肪的生产方法
Aghabeigi et al. Immobilization of lipase on the graphene oxides magnetized with NiFe2O4 nanoparticles for biodiesel production from microalgae lipids
Zhao et al. Green synthesis of polydopamine functionalized magnetic mesoporous biochar for lipase immobilization and its application in interesterification for novel structured lipids production
CN105462692A (zh) 生物柴油制备方法
CN108285910A (zh) 一种固定化脂肪酶生产1,3-甘油二酯的方法
CN108913725A (zh) 一种提高结构脂质opo得率的方法
CN106106854B (zh) 一种人乳替代脂的制备方法
CN101519675B (zh) 聚乙烯醇固定化米根霉发酵l-乳酸的方法
CN111593046A (zh) 一种opl油脂的固定化磁酶制备方法
CN111057701A (zh) 一种固定化芽孢杆菌发酵生产中性植酸酶的方法
CN104212847A (zh) 一种海洋微藻培养制备epa的方法
CN111763626A (zh) 一种固定化酶法催化合成没食子酸丙酯的方法
CN111647593A (zh) 生物矿化型固定脂肪酶的制备方法及其在催化合成opo中的应用
CN110438171A (zh) 一种磷脂型dha的酶法制备方法
CN112592917B (zh) 一种磁性载脂肪酶的光酶催化剂及其制备方法和应用
CN105039440B (zh) 包衣菌体在有机介质中生物合成共轭α-亚麻酸异构体的方法
CN117646043A (zh) 一种同时制备富含棕榈油酸的单甘脂及富含油酸的甘油二酯的方法
KR102468425B1 (ko) 리파아제 고정화용 자성 볏짚 합성 방법 및 자성 볏짚에 고정화한 리파아제를 이용한 에스테르화 반응
CN117778368A (zh) 一种超高效固定化磷脂酶d及其制备方法和应用
CN105039444A (zh) 有机介质中生物合成共轭亚油酸异构体的方法
CN105039443A (zh) 有机介质中生物合成共轭γ-亚麻酸异构体的方法
CN105039438B (zh) 共轭γ-亚麻酸异构体的非水酶学合成方法
DE1695598B2 (de) Biotechnisches verfahren zur herstellung von 9-(beta-d-arabinofuranosyl)adenin

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
WD01 Invention patent application deemed withdrawn after publication

Application publication date: 20181130

WD01 Invention patent application deemed withdrawn after publication