CN108048399B - 一种meth诱导树鼩多巴胺神经元原代细胞自噬的方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种METH诱导树鼩多巴胺神经元原代细胞自噬的方法,包括如下步骤:步骤一:培养树鼩原代多巴胺神经元;步骤二:使用浓度为0.1‑1mM的METH诱导树鼩原代多巴胺神经元自噬,本发明测定了当METH浓度为0.5mM时能够诱导树鼩多巴胺神经元自噬,可以为下一步研究自噬信号及通路提供一个模型。
Description
技术领域
本发明涉及成瘾的生物学技术领域,具体涉及一种METH诱导树鼩多巴胺神经元原代细胞自噬的方法。
背景技术
甲基丙苯胺(Methamphetamine,METH)是一种依赖性极高的精神活性物质。长期大量使用可对神经系统产生显著的毒性作用。自噬是通过溶酶体途径对细胞内受损的细胞器、错误折叠的蛋白质和浸入其内的病原体进行降解的过程。但是自噬异常与很多疾病相关,包括肿瘤、免疫性疾病和神经退行性疾病等。科研人员前期研究显示,吗啡成瘾过程中线粒体功能异常,进而诱发自噬。过度自噬却是细胞程序性死亡的一种方式,与神经退行性疾病密切相关。近年来,研究表明,自噬参与了METH神经毒性的发生发展,但自噬在METH神经毒性及其依赖机制中的作用目前尚未完全阐明,本专利用METH诱导新生树鼩原代多巴胺神经元自噬,并研究自噬的信号通路,从而为进一步的研究METH的自噬机制及神经毒性提供理论基础。
发明内容
为了解决上述背景中提到的问题,本发明目的在于提供一种METH诱导树鼩多巴胺神经元原代细胞自噬的方法,解决因测试站包含所有的测试项,一次只能测试一个样品,测试站内部功能使用率低下导致测试时间冗长的问题。
为实现上述目的,本发明提供如下技术方案:
一种METH诱导树鼩多巴胺神经元原代细胞自噬的方法,包括:
步骤一:培养树鼩原代多巴胺神经元;
步骤二:使用浓度为0.1—1mM的METH诱导树鼩原代多巴胺神经元自噬。
培养树鼩原代多巴胺神经元包括:
1)取新生3天内树鼩,麻醉后,于冰上无菌条件下取树鼩头部放于75%酒精浸泡5-10分钟,冰上取出完整大脑;
2)将步骤1的大脑放入预冷的D-Hank’s液,去除软膜血管,剥离出海马、大脑皮质及中脑,用D-Hank’s液清洗后,用眼科剪将组织反复剪碎1—1.5mm,移入15ml离心管,2500转离心5分钟;
3)将步骤2离心后弃上清,加入3ml 0.25%胰酶消化液,转入T25细胞瓶,反复吹打后放入温箱消化15-20分钟;
4)将步骤3消化后加入5ml培养液终止消化,所述培养液为高糖DMEM细胞培养基、5%FBS和1%双抗混合液,反复吹打消化后的细胞直至无肉眼可见的组织块,之后采用70目细胞筛过滤,滤液离心,弃上清,用神经元专用培养基重悬细胞并转入0.1mg/ml PDL包被的细胞板上培养,细胞板中细胞含量为1×106cell/孔,培养3d后换液,更换为神经元专用培养基,所述神经元专用培养基为neurbasal培养基、 2%B27、1%GlutamaxTM和 1%双抗,以后每3天换一次液,得到树鼩多巴胺能神经元;
5)当细胞贴壁并长汇合度为为70-80%时,进行酪氨酸羟化酶(TH)及Nestin蛋白的双荧光免疫鉴定为多巴胺神经元。
METH 诱导树鼩多巴胺神经元自噬:
1)配置有浓度分别为0,0.1mM,0.5mM,1mM的METH;
2)当细胞生长汇合度为80%-90%时,用浓度分别为0mM、0.1mM、0.5mM、1mM的MET加入细胞培养液中,24小时后在光学显微镜下观察到细胞形态出现空泡;收集细胞,提取细胞中蛋白进行自噬标志蛋白LC3B和Beclin-1的测定。
3)用浓度为0.5m的MMETH作用于原代细胞时间分别为0h、12h、24h、48h和72h,收集细胞后提取蛋白进行自噬标志蛋白LC3B和Beclin-1的测定。
4)用浓度为0.5m的MMETH作用细胞24小时,收集细胞进行细胞超微结构的检测,与METH为0mM相比。
5)用浓度为0.5m的MMETH作用细胞24小时,用4%多聚甲醛固定后进行LC3B和TH双免疫荧光标记,检测细胞中LC3B的表达。
本发明测定了当METH浓度为0.5mM时能够诱导树鼩多巴胺神经元自噬,可以为下一步研究自噬信号及通路提供一个模型。
附图说明
图1是本发明不同浓度的METH作用于树鼩多巴胺神经元的形态变化对比图;
图2是本发明不同浓度METH作用于树鼩原代多巴胺神经元效果对比图;
图3是本发明不同浓度METH作用于树鼩原代多巴胺神经元自噬蛋白LC3B的表达;
图4是本发明不同浓度METH作用于树鼩原代多巴胺神经元自噬蛋白Beclin-1的表达;
图5是浓度为0.5m的METH作用于树鼩原代多巴胺神经元不同时间效果对比图;
图6是浓度为0.5m的METH作用于树鼩原代多巴胺神经元不同时间自噬蛋白LC3B的表达;
图7是浓度为0.5m的METH作用于树鼩原代多巴胺神经元不同时间自噬蛋白Beclin-1的表达;
图8是本发明METH作用于树鼩原代神经元后的电镜图;
图9是本发明METH作用树鼩原代神经元后LC3B的表达。
具体实施方式
为了更好的理解本发明的技术方案,下面结合附图对本发明提供的实施例进行详细地描述。
首先,培养树鼩原代多巴胺神经元
1)取新生3天内树鼩,麻醉后,于冰上无菌条件下取树鼩头部放于75%酒精浸泡5-10分钟,冰上取出完整大脑;
2)将步骤1的大脑放入预冷的D-Hank’s液,去除软膜血管,剥离出海马、大脑皮质及中脑,用D-Hank’s液清洗后,用眼科剪将组织反复剪碎1—1.5mm,移入15ml离心管,2500转离心5分钟;
3)将步骤2离心后弃上清,加入3ml0.25%胰酶消化液,转入T25细胞瓶,反复吹打后放入温箱消化15-20分钟;
4)将步骤3消化后加入5ml培养液终止消化,反复吹打消化后的细胞直至无肉眼可见的组织块,之后采用70目细胞筛过滤,滤液离心,弃上清,用神经元专用培养基重悬细胞并转入0.1mg/ml PDL包被的细胞板上培养,细胞板中细胞含量为1×106cell/孔,培养3d后换液,更换为新的神经元专用培养基,以后每3天换一次液,得到树鼩多巴胺能神经元;
5)当细胞贴壁并长至70-80%时,进行酪氨酸羟化酶(TH)及Nestin蛋白的双荧光免疫鉴定为多巴胺神经元。
然后,METH 诱导树鼩多巴胺神经元自噬:
配置有浓度分别为0,0.1mM,0.5mM,1mM的METH。
用浓度分别为0,0.1mM,0.5mM,1mM的METH作用于细胞,24小时后在光学显微镜下观察到细胞形态出现空泡,以METH浓度为0.5mM时最为明显,如附图1所示;当METH作用细胞24小时后,收集细胞,提取细胞中蛋白进行自噬标志蛋白LC3B和Beclin-1的测定,发现细胞中加入METH 24小时后,LC3B和Beclin-1蛋白表达水平均有上调,其中当METH浓度为0.5mM时,LC3B和Beclin-1蛋白表达水平上调最为明显,与METH为0mM相比,分别增加了1.14倍和1.12倍,如附图2所示。
用浓度为0.5m的MMETH作用于原代细胞时间分别为0h、12h、24h、48h和72h,收集细胞后提取蛋白进行自噬标志蛋白LC3B和Beclin-1的测定,METH诱导自噬蛋白LC3B和Beclin-1蛋白质水平的表达,与0h相比,12h时分别增加了2.25倍和2.97倍,而24h后两种蛋白表达水平最高,分别增加了5.13倍和5.03倍,如附图3所示。
用浓度为0.5m的MMETH作用细胞24小时,收集细胞进行细胞超微结构的检测,与METH为0mM相比,加入METH0.5mM后,双层或多层膜结构的自噬体明显增多,如附图4所示。
用浓度为0.5m的MMETH作用细胞24小时,用4%多聚甲醛固定后进行LC3B和TH双免疫荧光标记,检测细胞中LC3B的表达,结果显示METH作用细胞后,细胞中LC3B的表达明显增多,如附图5。
以上所述的实施例仅仅是对本发明的优选实施方式进行描述,并非对本发明的范围进行限定,在不脱离本发明设计精神的前提下,本领域普通技术人员对本发明的技术方案作出的各种变形和改进,均应落入本发明的保护范围内。
Claims (1)
1.一种METH诱导树鼩多巴胺神经元原代细胞自噬的方法,其特征在于,包括如下步骤:
步骤一:培养树鼩原代多巴胺神经元,步骤如下:
1)取新生3天内树鼩,麻醉后,于冰上无菌条件下取树鼩头部放于75%酒精浸泡5-10分钟,冰上取出完整大脑;
2)将大脑放入预冷的D-Hank’s液,去除软膜血管,剥离出海马、大脑皮质及中脑,用D-Hank’s液清洗后,用眼科剪将组织反复剪碎1—1.5mm,移入15ml离心管,2500转离心5分钟;
3)离心后弃上清,加入3ml0.25%胰酶消化液,转入T25细胞瓶,反复吹打后放入温箱消化15-20分钟;
4)消化后加入5ml培养液终止消化,反复吹打消化后的细胞直至无肉眼可见的组织块,之后采用70目细胞筛过滤,滤液离心,弃上清,用神经元专用培养基重悬细胞并转入0.1mg/ml PDL包被的细胞板上培养,细胞板中细胞含量为1×106cell/孔,培养3d后换液,更换为神经元专用培养基,以后每3天换一次液,得到树鼩多巴胺神经元细胞;所述的培养液为高糖DMEM细胞培养基、5%FBS和1%双抗混合液;所述的神经元专用培养基为neurbasal培养基、2%B27、1%GlutamaxTM和 1%双抗;
5)当细胞贴壁并长至汇合度为70-80%时,进行酪氨酸羟化酶(TH)及Nestin蛋白的双荧光免疫鉴定为多巴胺神经元;
步骤二,使用浓度为0.1-1mM的METH诱导树鼩原代多巴胺神经元自噬,步骤如下:
1)配置有浓度分别为0,0.1mM,0.5mM,1mM的METH;
2)当细胞生长汇合度为80%-90%时,用浓度分别为0mM、0.1mM、0.5mM、1mM的METH加入细胞培养液中,24小时后在光学显微镜下观察到细胞形态出现空泡;收集细胞,提取细胞中蛋白进行自噬标志蛋白LC3B和Beclin-1的测定;
3)用浓度为0.5m的MMETH作用于原代细胞时间分别为0h、12h、24h、48h和72h,收集细胞后提取蛋白进行自噬标志蛋白LC3B和Beclin-1的测定;
4)用浓度为0.5m的MMETH作用细胞24小时,收集细胞进行细胞超微结构的检测,与METH为0mM相对比;
5)用浓度为0.5m的MMETH作用细胞24小时,用4%多聚甲醛固定后进行LC3B和TH双免疫荧光标记,检测细胞中LC3B的表达。
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