CN107441771A - 过滤出口注射器内分散多孔颗粒与液体的相互作用和分离 - Google Patents
过滤出口注射器内分散多孔颗粒与液体的相互作用和分离 Download PDFInfo
- Publication number
- CN107441771A CN107441771A CN201710732505.0A CN201710732505A CN107441771A CN 107441771 A CN107441771 A CN 107441771A CN 201710732505 A CN201710732505 A CN 201710732505A CN 107441771 A CN107441771 A CN 107441771A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- liquid
- porous particulate
- core bar
- divided porous
- syringe
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Classifications
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D15/00—Separating processes involving the treatment of liquids with solid sorbents; Apparatus therefor
- B01D15/08—Selective adsorption, e.g. chromatography
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D15/00—Separating processes involving the treatment of liquids with solid sorbents; Apparatus therefor
- B01D15/08—Selective adsorption, e.g. chromatography
- B01D15/26—Selective adsorption, e.g. chromatography characterised by the separation mechanism
- B01D15/38—Selective adsorption, e.g. chromatography characterised by the separation mechanism involving specific interaction not covered by one or more of groups B01D15/265 - B01D15/36
- B01D15/3804—Affinity chromatography
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D15/00—Separating processes involving the treatment of liquids with solid sorbents; Apparatus therefor
- B01D15/08—Selective adsorption, e.g. chromatography
- B01D15/42—Selective adsorption, e.g. chromatography characterised by the development mode, e.g. by displacement or by elution
- B01D15/424—Elution mode
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D36/00—Filter circuits or combinations of filters with other separating devices
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D61/00—Processes of separation using semi-permeable membranes, e.g. dialysis, osmosis or ultrafiltration; Apparatus, accessories or auxiliary operations specially adapted therefor
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K1/00—General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
- C07K1/14—Extraction; Separation; Purification
- C07K1/16—Extraction; Separation; Purification by chromatography
- C07K1/22—Affinity chromatography or related techniques based upon selective absorption processes
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/10—Processes for the isolation, preparation or purification of DNA or RNA
- C12N15/1003—Extracting or separating nucleic acids from biological samples, e.g. pure separation or isolation methods; Conditions, buffers or apparatuses therefor
- C12N15/1006—Extracting or separating nucleic acids from biological samples, e.g. pure separation or isolation methods; Conditions, buffers or apparatuses therefor by means of a solid support carrier, e.g. particles, polymers
- C12N15/101—Extracting or separating nucleic acids from biological samples, e.g. pure separation or isolation methods; Conditions, buffers or apparatuses therefor by means of a solid support carrier, e.g. particles, polymers by chromatography, e.g. electrophoresis, ion-exchange, reverse phase
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N1/00—Sampling; Preparing specimens for investigation
- G01N1/28—Preparing specimens for investigation including physical details of (bio-)chemical methods covered elsewhere, e.g. G01N33/50, C12Q
- G01N1/34—Purifying; Cleaning
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Plant Pathology (AREA)
- Crystallography & Structural Chemistry (AREA)
- Water Supply & Treatment (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Immunology (AREA)
- Pathology (AREA)
- Treatment Of Liquids With Adsorbents In General (AREA)
- Solid-Sorbent Or Filter-Aiding Compositions (AREA)
Abstract
本发明属于分子尤其是生物大分子的制备领域,涉及一种在带滤膜(4)出口以及分散多孔颗粒(3)的注射器(2)里实施的固体和液体相互作用和分离的方法,克服了现有层析技术效率低和不易控制的缺点以及现有磁分离技术处理体积小的缺点。通过注射器(2)的芯杆(1)从滤膜(4)出口抽动吸入和推动排出液体(5),方便、高效并可控地实施了分散多孔颗粒(3)和液体(5)的相互作用和分离,可以实现清洗、结合、封闭和洗脱等反应,而这些反应的组合构成适用于各类分子尤其是蛋白质和核酸等生物大分子的亲和纯化方法。本发明还教导一种含滤膜(4)出口和芯杆(1)的注射器(2)和分散多孔颗粒(3)的适用于样品亲和纯化的试剂盒。
Description
技术领域
本发明涉及一种在带有过滤出口的注射器里实现的分散多孔颗粒与液体批次相互作用和分离的方法,特别适合于生物大分子如蛋白质和核酸的亲和纯化制备。
背景技术
基于固相介质和液体相互作用和分离的分析和制备技术在分子科学中已经得到广泛的应用。生物大分子尤其是蛋白质不宜用温度和溶剂等物理方法进行纯化,因为它敏感的活性很容易被这些纯化手段所破坏。因此,在保持活性状态的要求下,液态生物大分子和它的固相化配体的亲和结合及分离成为常用的一种纯化它的方法。
为了提高固液相互作用的效率,固相介质可以采用高比表面积的多孔颗粒结构。对蛋白质和核酸一类的生物大分子纯化应用来说,最常用的多孔颗粒材料是琼脂糖、纤维素和二氧化硅。基于堆积介质的柱层析是经典的纯化体系,但它有固相介质和液体相互作用和分离的效率低并不易进行作用时间及程度控制的缺点,造成诸如过程缓慢、层析柱易被引入的气泡或杂物或粘性所堵塞、介质用量大而成本高以及最终纯化产品被稀释等一系列问题。基于磁性固相介质的纯化技术可以实现分散颗粒与液体的高效、无堵塞和可控的批次相互作用和分离,克服了上述堆积介质层析柱的缺点,但因为普通磁铁吸引力的有效范围有限,能可靠处理的样品体积实际上仅为几毫升。
我们注意到,带过滤出口的注射器可以高效方便地实现并控制分散固相介质与液体的批次相互作用和分离(Analyst,2014,139,6266)。该方法实现了固相萃取,其目的是对目的分子进行定性或定量检测,不是以产量为基本要求的纯化制备,因而它采用了低结合效率的实心固相介质,没有注意到在制备需求中多孔介质在有限注射器空间里降低介质使用量并提高可制备样品体积或总量的优势和重要性。事实上,即使固相萃取以检测为目的,使用分散的多孔颗粒作为与目的分子进行批次结合和分离的固相介质有大幅提高萃取效率的好处(Trends in Analytical Chemistry,2017,90,142)。
发明内容
本发明提供一种简便、高效和可控的分散多孔颗粒与液体的批次相互作用和分离的方法,并以此为反应单元实现液样目的分子的亲和纯化制备。该反应单元基于带过滤出口的注射器,其针筒内装有分散多孔颗粒,利用芯杆的来回运动从滤膜出口吸入和推出液体样品,方便、高效并可控地分别实现了分散多孔颗粒和样品液体的批次相互作用和分离。此反应单元根据其性质和效果可以构成针对分散多孔颗粒与样品目的分子之间的结合、封闭、清洗和洗脱等反应,而这些反应单元的单独或组合使用可特别方便、高效并可控地实现了液体样品目的分子的亲和纯化。本发明克服了经典堆积介质柱层析方法的固体和液体相互作用和纯化的低效、堵塞和不可控等缺点,也避免了分散磁性颗粒批次相互作用和纯化方法可处理样品体积偏小的问题。
本发明特别适用于蛋白质和核酸等目的生物大分子的亲和纯化。相应的优选分散多孔颗粒材料包括但不限于琼脂糖、纤维素和二氧化硅。作为优选亲和纯化体系之一,配体分子通过共价或非共价的方式固化在分散多孔颗粒上,得到可用于亲和纯化的固相介质;作为优选亲和纯化体系之二,分散多孔颗粒与样品中的杂质分子结合,被纯化的目的分子液体即可被芯杆分离排出而收集;作为优选亲和纯化体系之三,分散多孔颗粒与样品中目的分子结合并与相应的产物液体分离后,再执行分散多孔颗粒与目的分子之间的清洗和洗脱反应,最终由芯杆排出的液体即为纯化的目的分子。
本发明还提供一种特别适用于蛋白质和核酸等生物大分子样品亲和纯化的分散多孔颗粒与液样批次相互作用和分离的试剂盒。该试剂盒由下列组员的部分或全部构成:带滤膜出口的注射器、分散多孔颗粒、结合液、清洗液、封闭液、洗脱液。
附图说明
图1.特别适用于生物大分子亲和纯化的带有过滤膜出口的注射器系统,内含被滤膜拦截的分散多孔颗粒,其芯杆来回运动可以吸取液体实现它与分散多孔颗粒固相介质发生批次相互作用,或排出液体以实现它与该固相介质的批次分离,实现一个固液相互作用和分离的反应单元。
具体实施方式
狭义上的纯化是把目的分子从多分子的混合样中分离出来,比如单克隆抗体从含各种杂蛋白的杂交瘤细胞培养液中的提取纯化;广义上的纯化是把目的分子从一个状态转移到另一个目的状态,比如把游离于液相的Protein G蛋白分子通过共价偶联固化到琼脂糖颗粒上,就是一种分子聚集状态改变的纯化。
本发明使用图1所示的一种含过滤膜4出口和分散多孔颗粒3的注射器2装置来实现固液相互作用和分离这一基本反应单元。在第一步相互作用事件中,抽动芯杆1,从滤膜4出口吸入取液体5样品,让样品分子与分散多孔颗粒3温育并发生特定相互作用、反应或结合;在第二步分离事件中,使用芯杆1把反应后的液体5从滤膜4出口推出,而反应后的分散多孔颗粒3留在注射器2内。
上述的带分散多孔颗粒3和滤膜4出口的注射器2的反应单元可以根据反应的性质和效果进一步分类,如但不限于下表所示
上述的反应单元可以单独或任何方式的组合使用,使得本发明特别适合蛋白质和核酸之类的生物大分子的亲和纯化,具体的类型如但不限于下表
本发明所涉及的注射器2的分散多孔颗粒3与液体5相互作用和分离系统的材质应该具有惰性,即不应该和液体5样品分子发生显著的物理相互作用或化学反应,以避免目的分子在固相表面的吸附或变性而导致活性和得率的下降,并且保证杂质分子与目的分子的有效分离。
本发明所涉及的注射器2针筒和芯杆1的材质应该有足够的机械强度以承受抽动的摩擦和压力并保持形状以及接触面的密闭,常见的例子有塑料、玻璃或金属。注射器2的优选直径在2毫米和100毫米之间,优选容纳液体体积在0.5毫升到1000毫升之间。注射器2的滤膜4材质应有足够机械强度以承受液体流动的压力,优选滤膜4孔径在10微米以上以保证过滤的通畅,常用的硅基或高分子材料制备的滤膜4可以从市场上获得(如深圳逗点生物技术有限公司制造的筛板)。
本发明特别关注诸如蛋白质和核酸之类的生物大分子亲和纯化,采用分散多孔颗粒3介质来实现颗粒内外巨大表面与目的分子的高效率相互作用和结合。这种分散多孔颗粒3粒径在10至100微米之间,可被上述滤膜4有效截留在注射器2内;其多孔结构的孔径要足够大,能使优选分子量在1千道尔顿和1千万道尔顿之间的生物分子如多肽、蛋白质、内毒素、病毒、质粒和核酸等自由进出;它还必须具有足够的抗变形刚性,在各种注射器操作的液体压力下不显著变形,保持它对目的分子的结合力并减少颗粒之间因变形而产生的能截留液体的内闭空间;当然,这些介质还要能够被化学修饰而引入功能基团或配体。满足上述要求的分散多孔颗粒3亲和介质的例子如但不限于琼脂糖、纤维素和二氧化硅,均可从GE、ThermoFisher、Qiagen等处购得。
综上所述,本发明所涉及的优选生物大分子亲和纯化体系包括但不限于下表
本发明的实质性内容包括但不限于以下实施例。
实施例1:带过滤出口注射器2
市场上容易购得或定制容纳液体体积为20毫升的一次性注射器2,其针筒和芯杆1材质均为不吸附蛋白质和核酸等生物大分子的聚丙烯。置于注射器2出口的20微米孔径的滤膜4可以从深圳逗点生物技术有限公司购得,其材质为不吸附蛋白质和核酸等生物大分子的经亲水化处理的聚乙烯。该注射器2用于以下实施例中。
实施例2:N-羟基琥珀酰亚胺活化琼脂糖与Protein G的介质偶联
介质偶联前预清洗反应:取出注射器芯杆1,放入4毫升N-羟基琥珀酰亚胺激活Sepharose 4FastFlow分散多孔颗粒3介质湿胶(GE),放回芯杆1,推挤出介质存储液液体5;用芯杆1抽取吸入12毫升冷1毫摩尔浓度盐酸清洗液液体5,与介质充分混匀并于室温下晃荡温育10分钟,推动芯杆1挤出清洗液液体5;重复上述盐酸清洗液体5清洗操作1次。
介质偶联结合反应:抽动芯杆1吸入4毫升每毫升10毫克Protein G(Sigma)溶液液体5(溶于0.2摩尔浓度碳酸盐缓冲液pH8.3,含0.5摩尔浓度氯化钠),与介质充分混匀并于室温下晃荡温育2小时,推动芯杆1挤出未反应的Protein G液体5。
介质封闭反应:抽动芯杆1吸入12毫升0.5摩尔浓度乙醇胺和0.5摩尔浓度氯化钠溶液pH8.3液体5,与介质充分混匀并于室温下晃荡温育2小时,推动芯杆1挤出液体5;抽动芯杆1吸入12毫升0.1摩尔浓度缓血酸胺液体5缓冲液pH8.5,与介质充分混匀并于室温下温育10分钟,推动芯杆1挤出液体5;抽动芯杆吸入12毫升0.1摩尔浓度醋酸缓冲液pH4.0液体5(含0.5摩尔浓度氯化钠),与介质充分混匀并于室温下晃荡温育10分钟,推动芯杆1挤出液体5;重复上述缓血酸胺缓冲液和醋酸缓冲液液体5清洗反应2次。
介质清洗反应:抽动芯杆1吸入12毫升磷酸缓冲盐溶液pH7.4液体5,与介质充分混匀并于室温下晃荡温育10分钟,推动芯杆1挤出液体5;重复上述清洗反应2次。
最终结果:抽动芯杆1吸入4毫升磷酸缓冲盐溶液pH7.4液体5(含20%乙醇防腐),即得偶联有Protein G琼脂糖分散多孔颗粒3悬液,待用。
实施例3:牛免疫球蛋白样内毒素去除的负纯化
介质预处理清洗反应:取出注射器芯杆1,放入4毫升聚ε-赖氨酸纤维素分散多孔颗粒3介质悬液(ThermoFisher),放回芯杆1,推挤出介质存储液液体5;用芯杆1抽取吸入12毫升0.2摩尔浓度氢氧化钠和95%乙醇溶液液体5,与介质充分混匀并于室温下晃荡温育2小时,推动芯杆1挤出溶液液体5;抽动芯杆1吸入12毫升2摩尔浓度氯化钠液体5,与介质充分混匀并于室温下晃荡温育10分钟,推动芯杆1挤出溶液液体5;抽动芯杆1吸入12毫升无内毒素水,与介质充分混匀并于室温下晃荡温育10分钟,推动芯杆1挤出液体5;抽动芯杆1吸入12毫升磷酸缓冲盐溶液pH7.4液体5,与介质充分混匀并于室温下温育10分钟,推动芯杆1挤出溶液液体5;重复磷酸缓冲盐溶液液体5清洗步骤2次。
介质结合反应:抽动芯杆1吸入12毫升每毫升1毫克浓度牛免疫球蛋白液体5(溶于磷酸缓冲盐溶液pH7.4),与介质充分混匀并于室温下晃荡温育1小时,推动芯杆1挤出溶液液体5。
最终结果:最后注射器芯杆1挤出的液体5即为内毒素去除的纯化牛免疫球蛋白。
实施例4:小鼠单抗正纯化
介质预清洗反应:推动芯杆1,挤出实施例2所制备的偶联有Protein G的琼脂糖分散多孔颗粒3介质悬浮液之液体5;抽动芯杆1吸入12毫升磷酸缓冲盐溶液pH7.4液体5。与介质充分混匀并于室温下晃荡温育10分钟,推动芯杆1挤出溶液液体5;重复磷酸缓冲盐溶液液体5清洗步骤2次。
介质结合反应:小鼠单抗腹水液2毫升于15,000g离心5分钟,取上清并加入2毫升磷酸缓冲盐溶液;抽动芯杆1吸入该单抗液样液体5,与介质充分混匀并于室温下晃荡温育1小时,推动芯杆1挤出溶液液体5。
介质清洗反应:抽动芯杆1吸入12毫升磷酸缓冲盐溶液液体5,与介质充分混匀并于室温下晃荡温育10分钟,推动芯杆1挤出液体5;重复磷酸缓冲盐溶液液体5清洗步骤2次。
介质洗脱反应:抽动芯杆1吸入4毫升0.1摩尔浓度柠檬酸缓冲溶液pH3.0液体5,与介质充分混匀并于室温下晃荡温育10分钟,推动芯杆1挤出洗脱液液体5;如有必要,重复上述洗脱反应1到数次,可以提高残留在分散多孔颗粒3孔径内部和颗粒之间以及注射器2内部的小鼠单抗分子的回收率。
最终结果:立即在汇总收集的洗脱液样加入1/10体积1摩尔浓度缓血酸胺缓冲液pH9.5实施中和反应,再经过透析或层析脱盐,即得纯化小鼠单抗样品。
实施例5:组氨酸标签重组蛋白正纯化
介质预清洗反应:取出注射器芯杆1,放入4毫升Ni Sepharose 6Fast Flow琼脂糖分散多孔颗粒3介质悬浮液(GE),放回芯杆1,推挤出介质存储液液体5;用芯杆1抽取吸入12毫升纯净水液体5,与介质充分混匀并于室温下晃荡温育10分钟,推动芯杆1挤出液体5;抽动芯杆1吸入12毫升20毫摩尔浓度磷酸缓冲液pH7.4液体5(含0.5摩尔浓度氯化钠和20毫摩尔浓度咪唑),与介质充分混匀并于室温下温育10分钟,推动芯杆1挤出液体5。
介质结合反应:抽动芯杆1吸入12毫升制备好的组氨酸标签重组蛋白澄清液液体5(溶于20毫摩尔浓度磷酸缓冲液pH7.4,含0.5摩尔浓度氯化钠和20毫摩尔浓度咪唑),与介质充分混匀并于室温下温育1小时,推动芯杆1挤出液体5。
介质清洗反应:抽动芯杆1吸入12毫升20毫摩尔浓度磷酸缓冲液pH7.4液体5(含0.5摩尔浓度氯化钠和0.1摩尔浓度咪唑),与介质充分混匀并于室温下温育10分钟,推动芯杆1挤出液体5;重复该清洗反应2次。
介质洗脱反应:抽动芯杆1吸入4毫升20毫摩尔浓度磷酸缓冲液pH7.4液体5(含0.5摩尔浓度氯化钠和0.4摩尔浓度咪唑),与介质充分混匀并于室温下温育10分钟,推动芯杆1挤出液体5;如有必要,重复上述洗脱反应1到数次,可以提高残留在分散多孔颗粒3孔径内部和颗粒之间以及注射器2内部的组氨酸标签重组蛋白分子的回收率。
最终结果:芯杆1挤出的洗脱液液体5汇总收集,经过透析或层析脱盐处理即为纯化组氨酸标签重组蛋白。
实施例6:转染级质粒提取和正纯化
质粒粗样制备:用2毫升灭菌离心管收集1.5毫升含pUC18质粒的JM109菌株的过夜培养液,经过12000g离心1分钟,吸弃上清液;加入300微升50毫摩尔浓度缓血酸胺盐酸缓冲液pH8.0(含10毫摩尔浓度乙二胺四乙酸),用移液枪反复吹打混匀;加入300微升1%十二烷基硫酸钠和0.2摩尔浓度氢氧化钠,温和颠倒混匀,室温静置裂解3分钟;加入300微升预冷2.5摩尔浓度盐酸胍和0.75摩尔浓度醋酸钾pH3.8,快速颠倒混匀,冰浴5分钟,重新混匀;4度下12,000g离心10分钟,取上清液备用。
介质与缓冲液:二乙氨乙基修饰的二氧化硅分散多孔颗粒3阴离子交换介质、平衡液Buffer QBT,清洗液Buffer QC,洗脱液QF均购自Qiagen。
介质预清洗反应:取出注射器芯杆1,放入1克二乙氨乙基修饰二氧化硅分散多孔颗粒3阴离子交换介质,放回芯杆1,用芯杆1抽取吸入12毫升Buffer QBT液体5,与介质充分混匀并于室温下晃荡温育10分钟,推动芯杆1挤出溶液液体5。
介质结合反应:抽动芯杆1吸入上述制备好的质粒粗样液体5,与介质充分混匀并于室温下温育30分钟,推动芯杆1挤出溶液液体5。
介质清洗反应:抽动芯杆1吸取12毫升Buffer QC液体5,与介质充分混匀并于室温下晃荡温育10分钟,推动芯杆1挤出溶液液体5;重复该液体5清洗反应2次。
介质洗脱反应:抽动芯杆1吸入4毫升Buffer QF液体5,与介质充分混匀并于室温下温育10分钟,推动芯杆1挤出含质粒的洗脱液液体5;如有必要,重复上述洗脱反应1到数次,可以提高残留在分散多孔颗粒3孔径内部和颗粒之间以及注射器2内部的质粒分子的回收率。
后处理反应:在汇总收集的洗脱液样中加入0.7倍体积异丙醇,颠倒混匀,15,000g离心30分钟,小心吸弃上清;加入1毫升70%乙醇清洗沉淀质粒,15,000g离心10分钟,小心吸弃上清;重复乙醇清洗操作一次;室温晾干10分钟,加入无内毒素水配制的10毫摩尔浓度缓血酸胺缓冲液pH8.0(含1毫摩尔浓度乙二胺四乙酸)溶解。
最终结果:纯化质粒液样。
实施例7:纯化目的分子的高效率层析洗脱回收
在实施例4、5和6的正纯化中,注射器芯杆1推挤洗脱液液体5后,仍有部分含目标分子的洗脱液液体5残留在分散多孔颗粒之间和颗粒内部孔道的空间中。如果液体5目的分子的浓度或粘稠度比较高,这部分残留损失会比较大,用上述多次洗脱的方法则造成最终目的分子样品的稀释。如果基于这种注射器的洗脱反应改为下述的层析洗脱反应,分布在各空间的目的分子基本上可以全部被洗脱液定向置换推洗出来,目的分子的回收率高。因此,目的分子高回收率的纯化步骤修饰如下。
介质预清洗反应:如实施例4、5或6所述。
介质结合反应:如实施例4、5或6所述。
介质清洗反应:如实施例4、5或6所述。
介质层析洗脱反应:在介质清洗反应的最后一步,芯杆1推动挤出清洗液液体5。在完成这一步后,取出芯杆1,将注射器针筒滤膜4出口朝下直立;注入12毫升最后用的清洗液,在液体下降流动中适当搅动悬浮的分散多孔颗粒3,注意清除气泡;在清洗液液面下降到固相介质界面时关闭滤膜4出口;加入介质湿胶体积1到3倍的洗脱液,打开滤膜4出口,收集流出的全部洗脱液样。
洗脱液样后处理:如实施例4、5或6所述。
实施例8:纯化试剂盒
根据本发明的实质设计适用于蛋白质和核酸等生物大分子样品亲和纯化的试剂盒。该试剂盒均含有带滤膜4出口和芯杆1的注射器2和分散多孔颗粒3介质,用户提供待纯化的液体5样品。具体应用的试剂盒如下述。
(1)介质偶联试剂盒:待偶联的配体样品液体5与有功能活性基团的分散多孔颗粒3的共价或非共价结合,得到新的具有配体的分散多孔颗粒。具体例子如但不限于实施例2。
(2)负纯化试剂盒:待纯化的样品液体5中的杂质与分散多孔颗粒3结合,得到芯杆1排出的纯化样品液体5,杂质与分散多孔颗粒3一道留在注射器2内。具体例子如但不限于实施例3。
(3)正纯化试剂盒:待纯化的样品液体5中的目的分子与分散多孔颗粒3结合,再经过清洗和洗脱,最后得到芯杆1排出的纯化样品液体5。具体例子如但不限于实施例4、5和6。
Claims (25)
1.一种固体和液体相互作用和分离的方法,其特征为在一个带有分散多孔颗粒(3)固体介质和滤膜(4)出口的注射器(2)里,芯杆(1)抽动吸入液体(5)与分散多孔颗粒(3)发生相互作用,芯杆(1)推动排出作用后的液体(5)与分散多孔颗粒(3)发生分离。
2.根据权利要求1所述的方法,其特征为所述的相互作用和分离实现了分散多孔颗粒(3)在清洗液液体(5)中的清洗反应。
3.根据权利要求1所述的方法,其特征为所述的相互作用和分离实现了分散多孔颗粒(3)与样品液体(5)分子的共价或非共价的结合反应。
4.根据权利要求1所述的方法,其特征为所述的相互作用和分离实现了分散多孔颗粒(3)与封闭液液体(5)分子的共价或非共价封闭反应。
5.根据权利要求1所述的方法,其特征为所述的相互作用和分离实现了分散多孔颗粒(3)在洗脱液液体(5)中的洗脱反应。
6.一种固相介质偶联配体的方法,其特征为含有如下次序的操作步骤:
(1)在一个带分散多孔颗粒(3)固相介质和滤膜(4)出口的注射器(2)里,抽动芯杆(1)吸入配体液体(5)并与分散多孔颗粒(3)发生共价或非共价偶联的结合反应,推动芯杆(1)排出反应后的配体液体(5);
(2)抽动芯杆(1)吸入封闭液液体(5)并与分散多孔颗粒(3)发生共价或非共价偶联的结合反应,推动芯杆(1)排出反应后的封闭液液体(5);
(3)抽动芯杆(1)吸入清洗液液体(5)并与分散多孔颗粒(3)发生清洗反应,推动芯杆(1)排出清洗液液体(5),留在注射器(2)里的带配体的分散多孔颗粒(3)即为目的固相介质。
7.根据权利要求6所述的方法,其特征为所述的分散多孔颗粒(3)固相介质是琼脂糖、纤维素或二氧化硅。
8.根据权利要求7所述的方法,其特征为所述的琼脂糖带有能和带胺基配体共价介质偶联反应的N-羟基琥珀酰亚胺。
9.一种负纯化方法,其特征为在一个带有分散多孔颗粒(3)固相介质和滤膜(4)出口的注射器(2)里,抽动杆芯(1)吸入样品液体(5)并与分散多孔颗粒(3)发生共价或非共价结合反应,推动芯杆(1)排出反应后纯化的目的样品液体(5)。
10.根据权利要求9所述的方法,其特征为所述的分散多孔颗粒(3)固相介质是琼脂糖、纤维素或二氧化硅。
11.根据权利要求10所述的方法,其特征为所述的纤维素带有能结合并去除内毒素的聚ε赖氨酸。
12.一种正纯化方法,其特征为含有如下次序的操作步骤:
(1)在一个带分散多孔颗粒(3)固相介质和滤膜(4)出口的注射器(2)里,抽动芯杆(1)吸入样品液体(5)并与分散多孔颗粒(3)发生结合反应,推动芯杆(1)排出反应后的样品液体(5);
(2)抽动芯杆(1)吸入清洗液液体(5)并与分散多孔颗粒(3)发生清洗反应,推动芯杆(1)排出反应后的清洗液液体(5);
(3)抽动芯杆(1)吸入洗脱液液体(5)并与分散多孔颗粒(3)发生洗脱反应,推动芯杆(1)排出纯化的目的洗脱液液体(5)。
13.根据权利要求12所述的方法,其特征为所述的分散多孔颗粒(3)固相介质是琼脂糖、纤维素或二氧化硅。
14.根据权利要求13所述的方法,其特征为所述的琼脂糖带有能结合并纯化免疫球蛋白的Protein A、Protein G或Protein L,结合并纯化组氨酸标签重组蛋白的镍,或结合并纯化谷胱甘肽转移酶的谷胱甘肽。
15.根据权利要求13所述的方法,其特征为所述的二氧化硅带有能结合并纯化核酸的二乙氨乙基。
16.一种纯化方法,其特征为含有如下次序的操作步骤:
(1)在一个带分散多孔颗粒(3)固相介质和滤膜(4)出口的注射器(2)里,抽动芯杆(1)吸入样品液体(5)并与分散多孔颗粒(3)发生结合反应,推动芯杆(1)排出反应后的配体液体(5);
(2)抽动芯杆(1)吸入清洗液液体(5)并与分散多孔颗粒(3)发生清洗反应,推动芯杆(1)排出反应后的清洗液液体(5);
(3)取出杆芯(1),滤膜(4)出口朝下竖立注射器针筒,放入洗脱液层析洗脱分散多孔颗粒(3),收集流出的纯化目的洗脱液。
17.根据权利要求16所述的方法,其特征为所述的分散多孔颗粒(3)固相介质是琼脂糖、纤维素或二氧化硅。
18.根据权利要求17所述的方法,其特征为所述的琼脂糖带有能结合并纯化免疫球蛋白的Protein A、Protein G或Protein L,结合并纯化组氨酸标签重组蛋白的镍,或结合并纯化谷胱甘肽转移酶的谷胱甘肽。
19.根据权利要求17所述的方法,其特征为所述的二氧化硅带有能结合并纯化核酸的二乙氨乙基。
20.一种纯化试剂盒,其特征为含有如下组分:
(1)带滤膜(4)出口和芯杆(1)的注射器(2);
(2)分散多孔颗粒(3)固相介质。
21.根据权利要求20所述的试剂盒,其特征为所述的分散多孔颗粒(3)固相介质是琼脂糖、纤维素或二氧化硅。
22.根据权利要求21所述的试剂盒,其特征为所述的琼脂糖带有能结合并正纯化免疫球蛋白的Protein A、Protein G或Protein L,结合并正纯化组氨酸标签重组蛋白的镍,或结合并正纯化谷胱甘肽转移酶的谷胱甘肽。
23.根据权利要求21所述的试剂盒,其特征为所述的二氧化硅带有能结合并正纯化核酸的二乙氨乙基。
24.根据权利要求21所述的试剂盒,其特征为所述的纤维素带有能结合并负纯化去除内毒素的聚ε赖氨酸。
25.根据权利要求21所述的试剂盒,其特征为所述的琼脂糖带有能和带胺基配体共价介质偶联反应的N-羟基琥珀酰亚胺。
Priority Applications (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201710732505.0A CN107441771A (zh) | 2017-08-18 | 2017-08-18 | 过滤出口注射器内分散多孔颗粒与液体的相互作用和分离 |
PCT/CN2018/098936 WO2019033946A1 (zh) | 2017-08-18 | 2018-08-06 | 过滤出口注射器内分散多孔颗粒与液体的相互作用和分离 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201710732505.0A CN107441771A (zh) | 2017-08-18 | 2017-08-18 | 过滤出口注射器内分散多孔颗粒与液体的相互作用和分离 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN107441771A true CN107441771A (zh) | 2017-12-08 |
Family
ID=60493883
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201710732505.0A Pending CN107441771A (zh) | 2017-08-18 | 2017-08-18 | 过滤出口注射器内分散多孔颗粒与液体的相互作用和分离 |
Country Status (2)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN107441771A (zh) |
WO (1) | WO2019033946A1 (zh) |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2019033946A1 (zh) * | 2017-08-18 | 2019-02-21 | 杭州立昂科技有限公司 | 过滤出口注射器内分散多孔颗粒与液体的相互作用和分离 |
CN109706056A (zh) * | 2019-01-14 | 2019-05-03 | 北京君立康博科技有限公司 | 核酸提取装置 |
CN112342125A (zh) * | 2020-11-11 | 2021-02-09 | 北京天恩泽基因科技有限公司 | 一种挤压式生物大分子回收装置及回收方法 |
CN114441663A (zh) * | 2020-11-04 | 2022-05-06 | 中国科学院上海药物研究所 | 一种使用固相微萃取亲和选择质谱筛选蛋白质阳性化合物的方法 |
Families Citing this family (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN115639030B (zh) * | 2022-11-28 | 2023-06-23 | 北京慧荣和科技有限公司 | 气溶胶采洗一体机及无人运输设备 |
Citations (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN2138993Y (zh) * | 1992-08-09 | 1993-07-28 | 苑少庆 | 输液配药过滤器 |
CN101644638A (zh) * | 2009-09-10 | 2010-02-10 | 中国科学院等离子体物理研究所 | 一种制备红外固体薄膜样品的方法 |
CN103977766A (zh) * | 2014-05-27 | 2014-08-13 | 南京大学 | 一种巯基和氨基共同修饰的介孔硅材料及其制法和用途 |
CN104437408A (zh) * | 2014-12-03 | 2015-03-25 | 江苏省苏微微生物研究有限公司 | 黄曲霉毒素b1免疫亲和柱的制备方法及其应用 |
CN105092733A (zh) * | 2015-07-31 | 2015-11-25 | 北京市药品检验所 | Lc-ms测试物中不挥发性缓冲盐含量的降低方法和装置 |
Family Cites Families (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP1829958A1 (en) * | 2004-11-30 | 2007-09-05 | Dml Co., Ltd. | Measuring kit for microbe in liquid sample, and relevant measuring method and measuring apparatus |
US20080300397A1 (en) * | 2007-05-31 | 2008-12-04 | Ge Healthcare Uk Limited | Modified spin column for simple and rapid plasmid dna extraction |
JP6161205B2 (ja) * | 2010-07-14 | 2017-07-12 | キアゲン ゲーエムベーハー | 生体分子の単離および/または精製のためのデバイス |
CN107441771A (zh) * | 2017-08-18 | 2017-12-08 | 杭州立昂科技有限公司 | 过滤出口注射器内分散多孔颗粒与液体的相互作用和分离 |
-
2017
- 2017-08-18 CN CN201710732505.0A patent/CN107441771A/zh active Pending
-
2018
- 2018-08-06 WO PCT/CN2018/098936 patent/WO2019033946A1/zh active Application Filing
Patent Citations (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN2138993Y (zh) * | 1992-08-09 | 1993-07-28 | 苑少庆 | 输液配药过滤器 |
CN101644638A (zh) * | 2009-09-10 | 2010-02-10 | 中国科学院等离子体物理研究所 | 一种制备红外固体薄膜样品的方法 |
CN103977766A (zh) * | 2014-05-27 | 2014-08-13 | 南京大学 | 一种巯基和氨基共同修饰的介孔硅材料及其制法和用途 |
CN104437408A (zh) * | 2014-12-03 | 2015-03-25 | 江苏省苏微微生物研究有限公司 | 黄曲霉毒素b1免疫亲和柱的制备方法及其应用 |
CN105092733A (zh) * | 2015-07-31 | 2015-11-25 | 北京市药品检验所 | Lc-ms测试物中不挥发性缓冲盐含量的降低方法和装置 |
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2019033946A1 (zh) * | 2017-08-18 | 2019-02-21 | 杭州立昂科技有限公司 | 过滤出口注射器内分散多孔颗粒与液体的相互作用和分离 |
CN109706056A (zh) * | 2019-01-14 | 2019-05-03 | 北京君立康博科技有限公司 | 核酸提取装置 |
CN109706056B (zh) * | 2019-01-14 | 2024-02-27 | 北京君立康科技发展有限责任公司 | 核酸提取装置 |
CN114441663A (zh) * | 2020-11-04 | 2022-05-06 | 中国科学院上海药物研究所 | 一种使用固相微萃取亲和选择质谱筛选蛋白质阳性化合物的方法 |
CN112342125A (zh) * | 2020-11-11 | 2021-02-09 | 北京天恩泽基因科技有限公司 | 一种挤压式生物大分子回收装置及回收方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
WO2019033946A1 (zh) | 2019-02-21 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN107441771A (zh) | 过滤出口注射器内分散多孔颗粒与液体的相互作用和分离 | |
EP2867256A1 (en) | Purification of biological molecules | |
JP5079506B2 (ja) | 動物についての、バイオテクノロジー(生物学的研究を含む)および医学的診断での適用のための、細胞、生体粒子および/または分子を液体から単離するための装置ならびに方法 | |
US11846635B2 (en) | Magnetic immunoglobulin-binding particles | |
JP5318110B2 (ja) | サンプル調製装置 | |
ES2418831T3 (es) | Dispositivo y procedimiento de cromatografía de afinidad bajo vacío | |
KR102178191B1 (ko) | 크로마토그래피 막, 이를 포함하는 장치 및 이의 이용방법 | |
JP5863699B2 (ja) | 不純物を含有する混合物から得た生体分子の精製方法 | |
AU778440B2 (en) | Sample processing device | |
JPH04504911A (ja) | 生物学的物質の分離及び採取様遠心分離管及び多孔性選択手段の組合せ | |
CN107249746A (zh) | 用于收集核酸样本的系统和方法 | |
CN113795270A (zh) | 从全血移除目标对象的全血处理装置和方法 | |
KR20080049791A (ko) | 액체 혼합물로부터 목표 분자를 분리하기 위한 단일 경로방법 및 장치 | |
US8053565B2 (en) | Multi-media affinity column to prevent leaching of ligands | |
JP2022526153A (ja) | 生体分子を分離するための方法 | |
Powell et al. | Quantitative analysis of protein recovery from dilute, large volume samples by tangential flow ultrafiltration | |
CN214286794U (zh) | 生物颗粒纯化装置 | |
JP2022513463A (ja) | 容積測定ローディング流量を低減し、そして結合及び溶出クロマトグラフィー精製の生産性を増大するためのインライン生成物濃縮 | |
EP3770600B1 (en) | Purification process for cells | |
CN216273870U (zh) | 一种全自动密度梯度分离仪与蛋白纯化系统联用装置 | |
US20230384191A1 (en) | Sample preparation system and sample preparation method | |
JPH02167071A (ja) | 非ヒト動物由来白血球系細胞の分離材、分離器および分離方法 | |
WO2010002455A1 (en) | Porous asymmetric membranes | |
WO2019189064A1 (ja) | インラインミキサーとハイドロサイクロンを統合したモジュールを複数用いて抗体を細胞培養液から連続的に製造する装置および当該装置を用いた抗体の製造方法 | |
JPH03123837A (ja) | カートリッジ |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PB01 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
WD01 | Invention patent application deemed withdrawn after publication |
Application publication date: 20171208 |
|
WD01 | Invention patent application deemed withdrawn after publication |