CN107164310A - 一种体内重建毛囊的方法 - Google Patents

一种体内重建毛囊的方法 Download PDF

Info

Publication number
CN107164310A
CN107164310A CN201710511718.0A CN201710511718A CN107164310A CN 107164310 A CN107164310 A CN 107164310A CN 201710511718 A CN201710511718 A CN 201710511718A CN 107164310 A CN107164310 A CN 107164310A
Authority
CN
China
Prior art keywords
cell
culture
corium
cells
hole
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN201710511718.0A
Other languages
English (en)
Inventor
吴训伟
冷雪
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Shandong Stomatology Hospital (school Of Stomatology Shandong University)
Original Assignee
Shandong Stomatology Hospital (school Of Stomatology Shandong University)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Shandong Stomatology Hospital (school Of Stomatology Shandong University) filed Critical Shandong Stomatology Hospital (school Of Stomatology Shandong University)
Priority to CN201710511718.0A priority Critical patent/CN107164310A/zh
Publication of CN107164310A publication Critical patent/CN107164310A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602Vertebrate cells
    • C12N5/0625Epidermal cells, skin cells; Cells of the oral mucosa
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01KANIMAL HUSBANDRY; CARE OF BIRDS, FISHES, INSECTS; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
    • A01K67/00Rearing or breeding animals, not otherwise provided for; New breeds of animals
    • A01K67/027New breeds of vertebrates
    • A01K67/0271Chimeric animals, e.g. comprising exogenous cells
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01KANIMAL HUSBANDRY; CARE OF BIRDS, FISHES, INSECTS; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
    • A01K2207/00Modified animals
    • A01K2207/12Animals modified by administration of exogenous cells
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01KANIMAL HUSBANDRY; CARE OF BIRDS, FISHES, INSECTS; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
    • A01K2227/00Animals characterised by species
    • A01K2227/10Mammal
    • A01K2227/105Murine
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/10Growth factors
    • C12N2501/113Acidic fibroblast growth factor (aFGF, FGF-1)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/10Growth factors
    • C12N2501/115Basic fibroblast growth factor (bFGF, FGF-2)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/10Growth factors
    • C12N2501/117Keratinocyte growth factors (KGF-1, i.e. FGF-7; KGF-2, i.e. FGF-12)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/10Growth factors
    • C12N2501/119Other fibroblast growth factors, e.g. FGF-4, FGF-8, FGF-10
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/70Enzymes
    • C12N2501/72Transferases (EC 2.)
    • C12N2501/727Kinases (EC 2.7.)

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Environmental Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Animal Husbandry (AREA)
  • Dermatology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biodiversity & Conservation Biology (AREA)
  • Materials For Medical Uses (AREA)

Abstract

本发明公开了一种体内重建毛囊的方法,它涉及美容整形技术领域。它的步骤为:首先细胞分离,将新鲜分离的细胞培养扩增,并以细胞球或细胞团块状培养,移植前细胞准备,可以直接取新鲜分离的皮肤单细胞,或培养扩增的表皮和真皮细胞按比例混合,或细胞球又或细胞团块,将其重悬于培养液,将免疫缺陷小鼠麻醉,用针头或取皮器在裸鼠皮肤上打洞,将准备好的细胞悬液用移液管枪头转移到打好的洞内,转移好所有细胞,盖上硅胶膜并缝合好,再铺一层凡士林纱布,包扎并及时观察处理,3周后可见毛发生长。本发明操作简便,创伤小,毛囊形成效率高,可注射细胞数目范围大,适合注射团块细胞和数量较多的细胞,适合开发应用于临床或医美上治疗脱发疾病。

Description

一种体内重建毛囊的方法
技术领域
本发明涉及的是美容整形技术领域,具体涉及一种体内重建毛囊的方法。
背景技术
目前有三种常用重建毛囊方法:小室法、注射法和移植法,这些方法都有各自的缺陷,实用价值不高。比如小室法是将含有细胞的小室植入小鼠背部,该方法花费的时间较长,且针对不同的伤口形态需要制作不同大小的小室,在伤口愈合之前,被试动物需要一直带着这个沉重的小室,不适用于临床大规模应用。注射法是将毛囊混合细胞注射到小鼠皮内或皮下,该方法简便易操作,但不适合注射团块细胞和数量较多的细胞,而且重建的毛发生长方向杂乱,不易穿出皮肤,再生毛发效率较低,因此,该方法将来也不能用于临床实践。移植法是最近改良的一种新的移植方法能,有效再生毛发,但它跟小室法相似,需要大片切除宿主的皮肤(创伤大),移植操作比较复杂,实际应用,特别是开发临床治疗脱发的应用受限。基于此,设计一种新型的体内重建毛囊的打洞法尤为必要。
发明内容
针对现有技术上存在的不足,本发明目的是在于提供一种体内重建毛囊的方法(孔洞法),操作简便,创伤小,毛囊形成效率高,适合注射团块细胞和数量较多的细胞,易于推广使用,并且可开发应用于临床或美容领域来解决脱发问题。
为了实现上述目的,本发明是通过如下的技术方案来实现:一种体内重建毛囊的方法,其步骤为:
(1)细胞分离:取出生1-3天的C57小鼠,剪去四肢和尾巴,用镊子把整块皮剥下,浸泡在含有2.5mg/ml解离酶的PBS 中4℃孵育过夜,机械法将表皮细胞和真皮细胞分离。
(2)细胞培养:将上步新鲜分离的细胞按照以下方法培养扩增:
①表皮细胞培养:用含10mM Rock蛋白激酶抑制剂的含10%胎牛血清的DMEM培养基重悬细胞,接种到事先用包被基质处理过的细胞培养瓶(细胞数大约在300万-500万每T75细胞培养瓶)中,培养三天,之后换成CNT07或其它表皮培养基培养,每2天换液一次,显微镜下观察细胞,待细胞长满时进行传代或后续研究,表皮按1:3传代。
②真皮细胞培养:10%胎牛血清的DMEM并带有FGF生长因子的真皮培养基重悬细胞,接种在100mm细胞培养皿,每5天换一次液,细胞长满后传代或直接进行第3步,真皮按1:3-10倍传代。
(3)细胞球培养:取分离或培养好的真皮和表皮细胞按一定比例混合,重悬在含10mM Rock蛋白激酶抑制剂的含10%胎牛血清的DMEM真皮培养基中,接种到不能贴壁的培养皿(6孔板)进行悬浮培养,在37度培养箱孵育16-24小时,形成细胞球状。
(4)细胞团块培养:取分离或培养好的真皮和表皮细胞按一定比例混合,重悬在含10mM Rock蛋白激酶抑制剂的含10%胎牛血清的DMEM真皮培养基中,接种到薄膜如硅胶膜上,在37度培养箱培养2小时形成细胞团块。
(5)移植前细胞准备:可以直接取步骤(1)中的新鲜分离的皮肤单细胞,或步骤(2)中的培养扩增的表皮和真皮细胞按一定比例混合的单细胞,或步骤(3)中的细胞球,又或步骤(4)中的细胞团块,将其重悬在5-10ul F12培养液,细胞数可以控制在1000-100万/ul的浓度进行移植。
(6)在裸鼠皮肤上打洞:将免疫缺陷小鼠(裸鼠)麻醉,用21G针头或取皮器进行皮肤打洞,洞的大小可根据需要而定。
(7)细胞移植:将第5步准备好的细胞用移液管枪头转移到打好的洞内,转移好所有细胞,盖上硅胶膜,必要时可缝合皮肤与膜片,然后铺一层凡士林纱布,包扎小鼠。
(8)观察处理:及时观察小鼠,7-10天去掉包扎,3周后可见毛发生长。
作为优选,所述步骤(1)表皮细胞分离的步骤为:将C57乳鼠的表皮组织切成均匀的粘稠状,置于含有0.025%胰酶的DPBS中,37℃水浴震荡消化20-30分钟,100um过滤器过滤,细胞悬液用含10%FBS的DMEM 中和,低速离心,沉淀用F12培养基洗一次,然后再用F12培养基重悬,细胞计数。
真皮细胞分离的步骤为:用手术刀将乳鼠真皮组织切成粘稠状,用含2.5mg/ml一型胶原酶的DMEM 在37℃水浴中震荡消化25min,然后加入DNase继续消化5min,100um过滤器过滤,细胞悬液用含10%FBS的DMEM 中和,离心,沉淀用F12培养基洗一次,然后再用F12培养基重悬,细胞计数。
作为优选,所述步骤(3)中真皮和表皮细胞的混合比例为真皮:表皮=1-5:1。
作为优选,所述步骤(4)中真皮和表皮细胞的混合比例为真皮:表皮=1-5:1。
作为优选,所述步骤(6)中洞的大小在0.1-2mm之间,洞的数量根据洞的大小决定,洞与洞之间距离在0.5-1mm左右。
本发明的有益效果:
(1)操作简单方便;
(2)创伤小,洞可大可小,灵活性好;
(3)毛囊形成效率高;
(4)可以注射的细胞数目范围大;
(5)可以注射单细胞,也可用细胞团块;
(6)可以形成正常的皮肤结构;
(7)符合美容要求,实际应用前景广。
具体实施方式
为使本发明实现的技术手段、创作特征、达成目的与功效易于明白了解,下面结合具体实施方式,进一步阐述本发明。
本具体实施方式采用以下技术方案:一种体内重建毛囊的方法,其步骤为:
(1)细胞分离:取出生1-3天的C57小鼠,剪去四肢和尾巴,用镊子把整块皮剥下,浸泡在含有2.5mg/ml解离酶的PBS 中4℃孵育过夜,机械法将表皮细胞和真皮细胞分离。
①表皮细胞分离的步骤为:将C57乳鼠的表皮组织切成均匀的粘稠状,置于含有0.025%胰酶的DPBS中,37℃水浴震荡消化20-30分钟,100um过滤器过滤,细胞悬液用含10%FBS的DMEM 中和,低速离心,沉淀用F12培养基洗一次,然后再用F12培养基重悬,细胞计数。
②真皮细胞分离的步骤为:用手术刀将乳鼠真皮组织切成粘稠状,用含2.5mg/ml一型胶原酶的DMEM 在37℃水浴中震荡消化25min,然后加入DNase继续消化5min,100um过滤器过滤,细胞悬液用含10%FBS的DMEM 中和,离心,沉淀用F12培养基洗一次,然后再用F12培养基重悬,细胞计数。
(2)细胞培养:上步新鲜分离的细胞可以直接进行第五步细胞的移植前准备,也可按照以下方法培养扩增:
①表皮细胞培养:用含10mM Rock蛋白激酶抑制剂的含10%胎牛血清的DMEM培养基重悬细胞,接种到事先用包被基质处理过的细胞培养瓶(细胞数大约在300万-500万每T75细胞培养瓶)中,培养三天,之后换成CNT07或其它表皮培养基培养,每2天换液一次,显微镜下观察细胞,待细胞长满时进行传代或后续研究,表皮按1:3传代。
②真皮细胞培养:10%胎牛血清的DMEM并带有FGF生长因子的真皮培养基重悬细胞,接种在100mm细胞培养皿,每5天换一次液,细胞长满后传代或直接进行第3步,真皮按1:3-10倍传代。
(3)细胞球培养:取分离或培养好的真皮和表皮细胞按一定比例混合(真皮:表皮=1-5:1),重悬在含10mM Rock蛋白激酶抑制剂的含10%胎牛血清的DMEM真皮培养基中,接种到不能贴壁的培养皿(6孔板)进行悬浮培养,在37度培养箱孵育16-24小时,形成细胞球状。
(4)细胞团块培养:取分离或培养好的真皮和表皮细胞按一定比例混合(真皮:表皮=1-5:1),重悬在含10mM Rock蛋白激酶抑制剂的含10%胎牛血清的DMEM真皮培养基中,接种到薄膜如硅胶膜上,在37度培养箱孵育2小时形成细胞团块。
(5)移植前细胞准备:可以直接取步骤(1)中的新鲜分离的皮肤单细胞,或步骤(2)中的培养扩增的表皮和真皮细胞按一定比例混合的单细胞,或步骤(3)中的细胞球,又或步骤(4)中的细胞团块,将其重悬在5-10ul F12培养液,细胞数可以控制在1000-100万/ul的浓度进行移植。
(6)在裸鼠皮肤上打洞:将免疫缺陷小鼠(裸鼠)麻醉,用21G针头或取皮器进行皮肤打洞,洞的大小在0.1-2mm之间,洞的数量根据洞的大小决定,洞与洞之间距离在0.5-1mm左右。
(7)细胞移植:将第5步准备好的细胞用移液管枪头转移到打好的洞内,转移好所有细胞,盖上硅胶膜,必要时可缝合皮肤与膜片,然后铺一层凡士林纱布,包扎小鼠。
(8)观察处理:及时观察小鼠,7-10天去掉包扎,3周后可见毛发生长。
本具体实施方式通过先在皮肤上打洞,然后再把单细胞或细胞团块用移液管或注射器打到洞内来达到重建毛囊的目的,该方法简称孔洞法,相比传统的小室法、注射法和移植法,不仅操作简便,创伤小,而且可以注射的细胞数目范围大,可以形成正常的皮肤结构,毛囊形成效率高,符合现代美容要求,适合开发应用于临床上或医美上治疗脱发疾病,具有广阔的应用前景。
以上显示和描述了本发明的基本原理和主要特征和本发明的优点。本行业的技术人员应该了解,本发明不受上述实施例的限制,上述实施例和说明书中描述的只是说明本发明的原理,在不脱离本发明精神和范围的前提下,本发明还会有各种变化和改进,这些变化和改进都落入要求保护的本发明范围内。本发明要求保护范围由所附的权利要求书及其等效物界定。

Claims (6)

1.一种体内重建毛囊的方法,其特征在于,其步骤为:
(1)细胞分离:取出生1-3天的C57小鼠,剪去四肢和尾巴,用镊子把整块皮剥下,浸泡在含有2.5mg/ml解离酶的PBS 中4℃孵育过夜,机械法将表皮细胞和真皮细胞分离;
(2)细胞培养:将上步新鲜分离的细胞按照以下方法培养扩增:
①表皮细胞培养:用含10mM Rock蛋白激酶抑制剂的含10%胎牛血清的DMEM培养基重悬细胞,接种到事先用包被基质处理过的细胞培养瓶(细胞数大约在300万-500万每T75细胞培养瓶)中,培养三天,之后换成CNT07或其它表皮培养基培养,每2天换液一次,显微镜下观察细胞,待细胞长满时进行传代或后续研究,表皮按1:3传代;
②真皮细胞培养:10%胎牛血清的DMEM并带有FGF生长因子的真皮培养基重悬细胞,接种在100mm细胞培养皿,每5天换一次液,细胞长满后传代或直接进行第3步,真皮按1:3-10倍传代;
(3)细胞球培养:取分离或培养好的真皮和表皮细胞按一定比例混合,重悬在含10mMRock蛋白激酶抑制剂的含10%胎牛血清的DMEM真皮培养基中,接种到不能贴壁的培养皿(6孔板)进行悬浮培养,在37度培养箱孵育16-24小时,形成细胞球状;
(4)细胞团块培养:取分离或培养好的真皮和表皮细胞按一定比例混合,重悬在含10mMRock蛋白激酶抑制剂的含10%胎牛血清的DMEM真皮培养基中,接种到薄膜如硅胶膜上,在37度培养箱培养2小时形成细胞团块;
(5)移植前细胞准备:可以直接取步骤(1)中的新鲜分离的皮肤单细胞,或步骤(2)中的培养扩增的表皮和真皮细胞按一定比例混合的单细胞,或步骤(3)中的细胞球,又或步骤(4)中的细胞团块,将其重悬在5-10ul F12培养液,细胞数可以控制在1000-100万/ul的浓度进行移植;
(6)在裸鼠皮肤上打洞:将免疫缺陷小鼠(裸鼠)麻醉,用21G针头或取皮器进行皮肤打洞,洞的大小可根据需要而定;
(7)细胞移植:将第5步准备好的细胞用移液管枪头转移到打好的洞内,转移好所有细胞,盖上硅胶膜,必要时可缝合皮肤与膜片,然后铺一层凡士林纱布,包扎小鼠;
(8)观察处理:及时观察小鼠,7-10天去掉包扎,3周后可见毛发生长。
2.根据权利要求1所述的一种体内重建毛囊的方法,其特征在于,所述步骤(1)表皮细胞分离的步骤为:将C57乳鼠的表皮组织切成均匀的粘稠状,置于含有0.025%胰酶的DPBS中,37℃水浴震荡消化20-30分钟,100um过滤器过滤,细胞悬液用含10%FBS的DMEM 中和,低速离心,沉淀用F12培养基洗一次,然后再用F12培养基重悬,细胞计数。
3.根据权利要求1所述的一种体内重建毛囊的方法,其特征在于,所述步骤(1)真皮细胞分离的步骤为:用手术刀将乳鼠真皮组织切成粘稠状,用含2.5mg/ml一型胶原酶的DMEM在37℃水浴中震荡消化25min,然后加入DNase继续消化5min,100um过滤器过滤,细胞悬液用含10%FBS的DMEM 中和,离心,沉淀用F12培养基洗一次,然后再用F12培养基重悬,细胞计数。
4.根据权利要求1所述的一种体内重建毛囊的方法,其特征在于,所述步骤(3)中真皮和表皮细胞的混合比例为真皮:表皮=1-5:1。
5.根据权利要求1所述的一种体内重建毛囊的方法,其特征在于,所述步骤(4)中真皮和表皮细胞的混合比例为真皮:表皮=1-5:1。
6.根据权利要求1所述的一种体内重建毛囊的方法,其特征在于,所述步骤(6)中洞的大小在0.1-2mm之间,洞的数量根据洞的大小决定,洞与洞之间距离在0.5-1mm左右。
CN201710511718.0A 2017-06-29 2017-06-29 一种体内重建毛囊的方法 Pending CN107164310A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201710511718.0A CN107164310A (zh) 2017-06-29 2017-06-29 一种体内重建毛囊的方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201710511718.0A CN107164310A (zh) 2017-06-29 2017-06-29 一种体内重建毛囊的方法

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN107164310A true CN107164310A (zh) 2017-09-15

Family

ID=59827629

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201710511718.0A Pending CN107164310A (zh) 2017-06-29 2017-06-29 一种体内重建毛囊的方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN107164310A (zh)

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109908179A (zh) * 2019-03-08 2019-06-21 广西医科大学第一附属医院 一种毛囊祖细胞的注射药剂
CN110699316A (zh) * 2019-10-29 2020-01-17 济南磐升生物技术有限公司 一种促进毛发再生以及防止脱发的细胞悬液的制备方法
CN110755689A (zh) * 2019-11-08 2020-02-07 中国医学科学院整形外科医院 一种毛囊的三维重建方法、重建方法制得的毛囊
CN110804580A (zh) * 2019-11-21 2020-02-18 山东大学 一种体外形成早期微毛囊的培养方法及其应用
WO2021004933A1 (en) 2019-07-10 2021-01-14 Kunz Helmuth Heinrich Methods for deriving autologous and hypoimmunogenic hair follicle containing sheets in vitro

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP1878790A1 (fr) * 2006-07-13 2008-01-16 L'Oréal Equivalent d`épiderme capable de se pigmenter obtenu à partir de cellules de la matrice, procédé de préparation et utilisation
CN103785064A (zh) * 2013-08-26 2014-05-14 济南磐升生物技术有限公司 一种用体外培养的细胞再生人类完整皮肤组织的方法
CN104548209A (zh) * 2015-02-03 2015-04-29 苏州磐升生物技术有限公司 一种组织工程表皮及其制备方法

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP1878790A1 (fr) * 2006-07-13 2008-01-16 L'Oréal Equivalent d`épiderme capable de se pigmenter obtenu à partir de cellules de la matrice, procédé de préparation et utilisation
CN103785064A (zh) * 2013-08-26 2014-05-14 济南磐升生物技术有限公司 一种用体外培养的细胞再生人类完整皮肤组织的方法
CN104548209A (zh) * 2015-02-03 2015-04-29 苏州磐升生物技术有限公司 一种组织工程表皮及其制备方法

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
候春: "毛囊重建的实验研究", 《中国优秀硕士学位论文全文数据库》 *
王继萍 等: "打孔同步植入毛囊单位法治疗烧伤后瘢痕性脱发", 《中华烧伤杂志》 *
肖顺娥: "毛囊重建体内模型构建的实验研究", 《中国优秀硕士学位论文全文数据库》 *

Cited By (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109908179A (zh) * 2019-03-08 2019-06-21 广西医科大学第一附属医院 一种毛囊祖细胞的注射药剂
WO2021004933A1 (en) 2019-07-10 2021-01-14 Kunz Helmuth Heinrich Methods for deriving autologous and hypoimmunogenic hair follicle containing sheets in vitro
CN110699316A (zh) * 2019-10-29 2020-01-17 济南磐升生物技术有限公司 一种促进毛发再生以及防止脱发的细胞悬液的制备方法
CN110755689A (zh) * 2019-11-08 2020-02-07 中国医学科学院整形外科医院 一种毛囊的三维重建方法、重建方法制得的毛囊
CN110755689B (zh) * 2019-11-08 2022-01-25 中国医学科学院整形外科医院 一种毛囊的三维重建方法、重建方法制得的毛囊
CN110804580A (zh) * 2019-11-21 2020-02-18 山东大学 一种体外形成早期微毛囊的培养方法及其应用
CN110804580B (zh) * 2019-11-21 2021-09-28 山东大学 一种体外形成早期微毛囊的培养方法及其应用

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN107164310A (zh) 一种体内重建毛囊的方法
JP6469655B2 (ja) 代用皮膚および毛包新生の方法
US20030161815A1 (en) Cell delivery system
CN108525021A (zh) 基于3d打印的含血管及毛囊结构组织工程皮肤及其制备方法
CN102985534A (zh) 用于体外大量扩增毛囊干细胞的培养方法
CN104622771A (zh) 一种含自体脂肪干细胞的生物美容面膜的制备方法及其产品
CN106420390A (zh) 一种用于美容护肤的干细胞制剂及其制备方法
CN104087551A (zh) 一种体外分离培养人的表皮细胞的新方法
JP5340564B2 (ja) 人工皮膚およびその製造方法
CN103550828A (zh) 一种基于毛囊干细胞和硅凝胶敷料的皮肤重建方法
CN101264344B (zh) 含毛囊人工皮肤的制备方法及由其制备的人工皮肤
US20200149005A1 (en) The method of autologous primary hair follicles preparation in 3d culture
CN110693911A (zh) 经血源性子宫内膜干细胞制剂及其制备方法和应用
CN106554941A (zh) 一种治疗脱发的脂肪间充质干细胞
CN108324993B (zh) 一种诱导毛发再生的干细胞复合体、其制备方法及应用
CN106676060A (zh) 一种皮肤及毛囊再生的气液界面三维培养方法
CN108619169A (zh) 一种治疗缺血性脑卒中的间充质干细胞注射液及制备方法
JP4324988B2 (ja) 発毛誘導剤および発毛方法
CN105925524A (zh) 一种人原代成纤维细胞转化为表皮细胞的方法
CN108350420A (zh) 培养细胞的方法
CN112522180B (zh) 一种人头皮毛囊单细胞悬液及其制备方法和用途
CN206103015U (zh) 组织工程皮肤构建结合负压引流治疗难愈性创面的器械系统
CN112294849A (zh) 用于生发的脱细胞基质-细胞复合颗粒及制备方法
CN110755689B (zh) 一种毛囊的三维重建方法、重建方法制得的毛囊
JP4212280B2 (ja) ヒト毛のinvivo発毛誘導方法と、ヒト毛を有する非ヒト動物

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
RJ01 Rejection of invention patent application after publication

Application publication date: 20170915

RJ01 Rejection of invention patent application after publication