CN106472317A - 核桃楸离体培养不定芽诱导植株再生的方法 - Google Patents
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Abstract
核桃楸离体培养不定芽诱导植株再生的方法,涉及一种核桃楸的植株再生方法。本发明是要解决现有核桃楸组织培养器官发生困难、褐化现象严重、诱导率和生根率低的问题。方法:一、对核桃楸合子胚进行预处理;二、取经过预处理的核桃楸合子胚接种于培养基中培养至出现愈伤组织;三、将愈伤组织接种于培养基中,进行光暗交替培养,至长出不定芽;四、将带有不定芽的愈伤组织切成块进行光照培养,进行不定芽伸长,转入培养基中进行不定芽的抽茎;五、将抽茎的不定芽转入培养基中进行不定芽生根;六、炼苗后移栽到温室培养。本方法的愈伤组织诱导率和不定芽诱导率高达100%,不定芽抽茎率和生根率较高,能够显著降低褐化率。用于核桃楸组织培养领域。
Description
技术领域
本发明涉及一种核桃楸的植株再生方法。
背景技术
核桃楸(Juglans mandshurica Maxim)为胡桃科核桃属植物,又名胡桃楸、东北核桃,俗称山核桃。产于我国东北、华北各地,由于遭受破坏严重,自然资源大量减少,因而被列为国家Ⅱ级珍稀树种。核桃楸木材质地细韧,色泽淡雅,纹理致密,为家具、建筑等优良用材。其果实山核桃,果仁含脂肪70%以上,风味独特,香味浓郁,既是高热能营养食品,又是补气养血、润肺健脑的绿色保健食品。在我国,早已把核桃楸的幼果、树皮、根皮作为清热解毒、消炎的中药材使用,核桃楸的青皮中含有胡桃醌、黄酮类、萜类等多种有效成分,对治疗肿瘤、冠心病、高血压等疾病具有一定作用。核桃楸的树叶提取物,可以制造杀虫剂,生产绿色环保农药。可以说,核桃楸从根到梢的各个部位都有用,浑身是宝。
目前核桃楸主要依靠种子和扦插两种途径繁育,速度慢,人工成本较高。研究核桃楸组培快繁技术已经成为扩大其人工种植种源的重要基础。但由于核桃楸细胞中含有丰富的酚类,因此在组织培养过程中褐化现象十分严重。另外现有的组培快繁方法诱导率和生根率并不高,难以满足核桃楸繁育的需要。
发明内容
本发明是要解决现有核桃楸组织培养器官发生困难、褐化现象严重、诱导率和生根率低的问题,提供一种核桃楸离体培养不定芽诱导植株再生的方法。
本发明核桃楸离体培养不定芽诱导植株再生的方法,包括以下步骤:
一、对核桃楸合子胚进行预处理
5月取材,先用洗衣粉水刷洗核桃楸果实表面,然后用流水冲洗1~2h,接着用无菌水冲洗3次,置于2~4℃条件下处理12~24h,然后移至超净台,利用紫外灯灭菌15~30min,用质量浓度为75%的乙醇溶液浸泡2次,每次30s,再用质量浓度为0.1%的HgCl2溶液浸泡5-10min,然后用无菌水冲洗3-5次,备用;
二、取经过步骤一预处理的核桃楸合子胚接种于含有1.0~1.5mg/L噻苯隆(TDZ)、0.5~1.0mg/L 6-BA、350mg/L谷氨酰胺、500mg/L水解酪蛋白、0.5~1.0g/L Na2S2O3、0.5~1.0g/L PVP、6.0g/L琼脂和30g/L蔗糖的MS改良培养基中,进行暗培养至出现愈伤组织;
步骤二所述暗培养的温度为22-25℃;
三、将愈伤组织接种于含有0.5~1.0mg/L 6-BA、0.5~1.0g/L Na2S2O3、0.5~1.0g/L PVP和6.0g/L琼脂的MS改良培养基中,在光照强度为32~36μmol·m-2·s-1,温度为23~25℃的环境中进行光暗交替培养,光暗周期为14h/10h,至长出不定芽;
四、将带有不定芽的愈伤组织切成块转入含有0.1~0.5mg/L噻苯隆、0.02~0.04mg/L NAA、0.5~1.0g/L Na2S2O3、0.5~1.0g/L PVP和6.0g/L琼脂的MS改良培养基中培养,每日光照12~14h,在光照强度为32~38μmol·m-2·s-1,温度为22~24℃的环境中进行光照培养,每2~3天继代培养一次,进行不定芽伸长,当不定芽伸长至2~3cm,将其转入含有0.05~0.5mg/L 6-BA、0.05~0.2mg/L NAA、0.5~1.0g/L Na2S2O3、0.5~1.0g/L PVP和6.0g/L琼脂的MS改良培养基中培养,进行不定芽的抽茎;
五、将抽茎的不定芽转入含有2.0mg/L吲哚乙酸、1.0mg/L NAA、6.0g/L琼脂和60g/L蔗糖的1/2MS改良培养基,在光照强度为32~38μmol·m-2·s-1,温度为22~24℃的环境中,进行光照培养以实现不定芽的生根;
六、将根长超过2cm的植株经炼苗2~3d后移栽到温室培养。
步骤六中炼苗移栽的具体方法为:取根长超过2cm的植株,移到自然光下,炼苗2~3d,然后洗去根系上的培养基,栽种到草炭:蛭石=2:1(v/v)混合基质中,在自然光下培育20~25天,然后移栽到土壤中。所述蛭石经过0.5%高锰酸钾溶液消毒。
所述MS改良培养基包含以下成分:NH4NO3 1650mg·L-1、KNO3 1900mg·L-1、CaCl2·2H2O440mg·L-1、MgSO4·7H2O 560mg·L-1、KH2PO4170mg·L-1、KI 1.66mg·L-1、H3BO36.2mg·L-1、MnSO4·4H2O 22.3mg·L-1、ZnSO4·7H2O 8.6mg·L-1、NaMo4·2H2O 0.25mg·L-1、CuSO4·5H2O 0.05mg·L-1、CoCl2·6H2O 0.05mg·L-1、FeSO4·7H2O 27.8mg·L-1、Na2-EDTA25.6mg·L-1、肌醇1000mg·L-1、盐酸硫胺素1.0mg·L-1、烟酸1.0mg·L-1、盐酸吡哆素0.5mg·L-1、甘氨酸4.0mg·L-1和蒸馏水。
所述1/2MS改良培养基包含以下成分:NH4NO3 825mg·L-1、KNO3 950mg·L-1、CaCl2·2H2O 220mg·L-1、MgSO4·7H2O 280mg·L-1、KH2PO4 85mg·L-1、KI 0.83mg·L-1、H3BO36.2mg·L-1、MnSO4·4H2O 11.2mg·L-1、ZnSO4·7H2O 8.6mg·L-1、NaMo4·2H2O0.25mg·L-1、CuSO4·5H2O 0.025mg·L-1、CoCl2·6H2O 0.025mg·L-1、FeSO4·7H2O13.9mg·L-1、Na2-EDTA 12.8mg·L-1、肌醇500mg·L-1、盐酸硫胺素0.5mg·L-1、烟酸0.5mg·L-1、盐酸吡哆素0.25mg·L-1、甘氨酸2.0mg·L-1和蒸馏水。
本发明的有益效果:
本发明建立了高效、稳定的核桃楸不定芽诱导方法,利用本发明方法可解决核桃楸育种周期长、见效慢的问题,为核桃楸的基因工程育种和遗传改良工作奠定基础。
本发明以核桃楸的合子胚为外植体进行不定芽的诱导,获得愈伤组织,愈伤组织诱导率和不定芽诱导率高达100%,不定芽抽茎率高达85.36%,而不定芽生根率可达85%以上。本发明方法操作步骤简便可行,能够显著降低褐化程度,褐化率仅为8.9%~10.4%。本发明方法与现有技术相比产生了预料不到的技术效果,这对核桃楸离体培养而言是一大突破,对于核桃楸的大量扩繁和基因工程育种研究具有广泛的应用价值。
具体实施方式
本发明技术方案不局限于以下所列举具体实施方式,还包括各具体实施方式间的任意组合。
具体实施方式一:本实施方式核桃楸离体培养不定芽诱导植株再生的方法,包括以下步骤:
一、对核桃楸合子胚进行预处理;
二、取经过步骤一预处理的核桃楸合子胚接种于含有1.0~1.5mg/L噻苯隆、0.5~1.0mg/L 6-BA、350mg/L谷氨酰胺、500mg/L水解酪蛋白、0.5~1.0g/L Na2S2O3、0.5~1.0g/LPVP、6.0g/L琼脂和30g/L蔗糖的MS改良培养基中,进行暗培养至出现愈伤组织;
三、将愈伤组织接种于含有0.5~1.0mg/L 6-BA、0.5~1.0g/L Na2S2O3、0.5~1.0g/L PVP和6.0g/L琼脂的MS改良培养基中,在光照强度为32~36μmol·m-2·s-1,温度为23~25℃的环境中进行光暗交替培养,至长出不定芽;
四、将带有不定芽的愈伤组织切成块转入含有0.1~0.5mg/L噻苯隆、0.02~0.04mg/L NAA、0.5~1.0g/L Na2S2O3、0.5~1.0g/L PVP和6.0g/L琼脂的MS改良培养基中培养,每日光照12~14h,在光照强度为32~38μmol·m-2·s-1,温度为22~24℃的环境中进行光照培养,每2~3天继代培养一次,进行不定芽伸长,当不定芽伸长至2~3cm,将其转入含有0.05~0.5mg/L 6-BA、0.05~0.2mg/L NAA、0.5~1.0g/L Na2S2O3、0.5~1.0g/L PVP和6.0g/L琼脂的MS改良培养基中培养,进行不定芽的抽茎;
五、将抽茎的不定芽转入含有2.0mg/L吲哚乙酸、1.0mg/L NAA、6.0g/L琼脂和60g/L蔗糖的1/2MS改良培养基,在光照强度为32~38μmol·m-2·s-1,温度为22~24℃的环境中,进行光照培养以实现不定芽的生根;
六、将根长超过2cm的植株经炼苗2~3d后移栽到温室培养。
具体实施方式二:本实施方式与具体实施方式一不同的是:步骤一中所述对核桃楸合子胚进行预处理的方法具体为:5月取材,先用洗衣粉水刷洗核桃楸果实表面,然后用流水冲洗1~2h,接着用无菌水冲洗3次,置于2~4℃条件下处理12~24h,然后移至超净台,利用紫外灯灭菌15~30min,用质量浓度为75%的乙醇溶液浸泡2次,每次30s,再用质量浓度为0.1%的HgCl2溶液浸泡5-10min,然后用无菌水冲洗3-5次,备用。其它与具体实施方式一相同。
具体实施方式三:本实施方式与具体实施方式一或二不同的是:步骤二所述暗培养的温度为22-25℃。其它与具体实施方式一或二相同。
具体实施方式四:本实施方式与具体实施方式一或二不同的是:步骤二所述暗培养的温度为23-24℃。其它与具体实施方式一或二相同。
具体实施方式五:本实施方式与具体实施方式一至四之一不同的是:步骤三中在光照强度为33~35μmol·m-2·s-1,温度为24℃的环境中进行光暗交替培养。其它与具体实施方式一至四之一相同。
具体实施方式六:本实施方式与具体实施方式一至五之一不同的是:步骤三中光暗交替培育的光暗周期为14h/10h。其它与具体实施方式一至五之一相同。
具体实施方式七:本实施方式与具体实施方式一至六之一不同的是:步骤六中炼苗移栽的具体方法为:取根长超过2cm的植株,移到自然光下,炼苗2~3d,然后洗去根系上的培养基,栽种到草炭:蛭石=2:1混合基质中,在自然光下培育20~25天,然后移栽到土壤中。其它与具体实施方式一至六之一相同。
具体实施方式八:本实施方式与具体实施方式七不同的是:所述蛭石经过0.5%高锰酸钾溶液消毒。其它与具体实施方式七相同。
具体实施方式九:本实施方式与具体实施方式一至八之一不同的是:步骤二、三和四中所述MS改良培养基包含以下成分:NH4NO3 1650mg·L-1、KNO3 1900mg·L-1、CaCl2·2H2O440mg·L-1、MgSO4·7H2O 560mg·L-1、KH2PO4170mg·L-1、KI 1.66mg·L-1、H3BO36.2mg·L-1、MnSO4·4H2O 22.3mg·L-1、ZnSO4·7H2O 8.6mg·L-1、NaMo4·2H2O 0.25mg·L-1、CuSO4·5H2O 0.05mg·L-1、CoCl2·6H2O 0.05mg·L-1、FeSO4·7H2O 27.8mg·L-1、Na2-EDTA25.6mg·L-1、肌醇1000mg·L-1、盐酸硫胺素1.0mg·L-1、烟酸1.0mg·L-1、盐酸吡哆素0.5mg·L-1、甘氨酸4.0mg·L-1和蒸馏水。其它与具体实施方式一至八之一相同。
具体实施方式十:本实施方式与具体实施方式一至九之一不同的是:步骤五中所述1/2MS改良培养基包含以下成分:NH4NO3 825mg·L-1、KNO3 950mg·L-1、CaCl2·2H2O220mg·L-1、MgSO4·7H2O 280mg·L-1、KH2PO4 85mg·L-1、KI 0.83mg·L-1、H3BO3 6.2mg·L-1、MnSO4·4H2O 11.2mg·L-1、ZnSO4·7H2O 8.6mg·L-1、NaMo4·2H2O 0.25mg·L-1、CuSO4·5H2O 0.025mg·L-1、CoCl2·6H2O 0.025mg·L-1、FeSO4·7H2O 13.9mg·L-1、Na2-EDTA12.8mg·L-1、肌醇500mg·L-1、盐酸硫胺素0.5mg·L-1、烟酸0.5mg·L-1、盐酸吡哆素0.25mg·L-1、甘氨酸2.0mg·L-1和蒸馏水。其它与具体实施方式一至九之一相同。
下面对本发明的实施例做详细说明,以下实施例在以本发明技术方案为前提下进行实施,给出了详细的实施方案和具体的操作过程,但本发明的保护范围不限于下述的实施例。
实施例1:
本实施例核桃楸离体培养不定芽诱导植株再生的方法,包括以下步骤:
一、对核桃楸合子胚进行预处理
5月取材,先用洗衣粉水刷洗核桃楸果实表面,然后用流水冲洗2h,接着用无菌水冲洗3次,置于4℃条件下处理12h,然后移至超净台,利用紫外灯灭菌15min,用质量浓度为75%的乙醇溶液浸泡2次,每次30s,再用质量浓度为0.1%的HgCl2溶液浸泡10min,然后用无菌水冲洗3次,备用;
二、取经过步骤一预处理的核桃楸合子胚接种于含有1.5mg/L噻苯隆、0.5mg/L 6-BA、350mg/L谷氨酰胺、500mg/L水解酪蛋白、0.5g/L Na2S2O3、1.0g/L PVP、6.0g/L琼脂和30g/L蔗糖的MS改良培养基中,进行暗培养至出现愈伤组织;所述暗培养的温度为26℃;
三、将愈伤组织接种于含有1.0mg/L 6-BA、0.5g/L Na2S2O3、1.0g/L PVP和6.0g/L琼脂的MS改良培养基中,在光照强度为33μmol·m-2·s-1,温度为24℃的环境中进行光暗交替培养,光暗周期为14h/10h,至长出不定芽;
四、将带有不定芽的愈伤组织切成块转入含有0.2mg/L噻苯隆、0.04mg/L NAA、0.5g/L Na2S2O3、1.0g/L PVP和6.0g/L琼脂的MS改良培养基中培养,每日光照14h,在光照强度为38μmol·m-2·s-1,温度为24℃的环境中进行光照培养,每2天继代培养一次,进行不定芽伸长,当不定芽伸长至2cm,将其转入含有1.0mg/L 6-BA、0.05mg/L NAA、0.5g/L Na2S2O3、1.0g/L PVP和6.0g/L琼脂的MS改良培养基中培养,进行不定芽的抽茎;
五、将抽茎的不定芽转入含有2.0mg/L吲哚乙酸、1.0mg/L NAA、6.0g/L琼脂和60g/L蔗糖的1/2MS改良培养基,在光照强度为38μmol·m-2·s-1,温度为24℃的环境中,进行光照培养以实现不定芽的生根;
六、将根长超过2cm的植株经炼苗3d后移栽到温室培养。
步骤六中练苗移栽的具体方法为:取根长超过2cm的植株,移到自然光下,炼苗3d,然后洗去根系上的培养基,栽种到草炭:蛭石=2:1(v/v)混合基质中,在自然光下培育20天,然后移栽到土壤中。所述蛭石经过0.5%高锰酸钾溶液消毒。移栽成活率达到99%。
所述MS改良培养基和1/2MS改良培养基的配方如表1所示。
本实施例是方法中愈伤组织诱导率为100%,愈伤组织呈黄色疏松,生长较快。
愈伤组织表面有绿色的、颗粒状芽原基产生,且不定芽的诱导率为100%,不定芽生长旺盛,芽点大,呈嫩绿色。
本实施例的不定芽抽茎率为85.36%,不定芽生根的诱导率为89.4%,诱导形成的不定根数为2~5条,最长的不定根达5.0-6.0cm。再培养2周左右,不定根上长出许多侧根,这些侧根长达10cm以上,短达2cm左右。
本发明方法操作步骤简便可行,能够显著降低褐化程度,褐化率仅为8.9%。
从外植体培养至成苗仅用60d左右时间,极大地缩短了植株再生时间,不定芽分化仅需12d,小植株生根仅需6d。
实施例2:
本实施例核桃楸离体培养不定芽诱导植株再生的方法,包括以下步骤:
一、对核桃楸合子胚进行预处理
5月取材,先用洗衣粉水刷洗核桃楸果实表面,然后用流水冲洗2h,接着用无菌水冲洗3次,置于4℃条件下处理12h,然后移至超净台,利用紫外灯灭菌15min,用质量浓度为75%的乙醇溶液浸泡2次,每次30s,再用质量浓度为0.1%的HgCl2溶液浸泡10min,然后用无菌水冲洗3次,备用;
二、取经过步骤一预处理的核桃楸合子胚接种于含有1.0mg/L噻苯隆、1.0mg/L 6-BA、350mg/L谷氨酰胺、500mg/L水解酪蛋白、0.5g/L Na2S2O3、1.0g/L PVP、6.0g/L琼脂和30g/L蔗糖的MS改良培养基中,进行暗培养至出现愈伤组织;所述暗培养的温度为26℃;
三、将愈伤组织接种于含有1.0mg/L 6-BA、0.5g/L Na2S2O3、1.0g/L PVP和6.0g/L琼脂的MS改良培养基中,在光照强度为35μmol·m-2·s-1,温度为24℃的环境中进行光暗交替培养,光暗周期为14h/10h,至长出不定芽;
四、将带有不定芽的愈伤组织切成块转入含有0.5mg/L噻苯隆、0.02mg/L NAA、0.5g/L Na2S2O3、1.0g/L PVP和6.0g/L琼脂的MS改良培养基中培养,每日光照14h,在光照强度为38μmol·m-2·s-1,温度为22℃的环境中进行光照培养,每3天继代培养一次,进行不定芽伸长,当不定芽伸长至2cm,将其转入含有0.4mg/L 6-BA、0.2mg/L NAA、0.5g/L Na2S2O3、1.0g/L PVP和6.0g/L琼脂的MS改良培养基中培养,进行不定芽的抽茎;
五、将抽茎的不定芽转入含有2.0mg/L吲哚乙酸、1.0mg/L NAA、6.0g/L琼脂和60g/L蔗糖的1/2MS改良培养基,在光照强度为38μmol·m-2·s-1,温度为24℃的环境中,进行光照培养以实现不定芽的生根;
六、将根长超过2cm的植株经炼苗3d后移栽到温室培养。
步骤六中练苗移栽的具体方法为:取根长超过2cm的植株,移到自然光下,炼苗3d,然后洗去根系上的培养基,栽种到草炭:蛭石=2:1(v/v)混合基质中,在自然光下培育20天,然后移栽到土壤中。所述蛭石经过0.5%高锰酸钾溶液消毒。移栽成活率达到98%。
所述MS改良培养基和1/2MS改良培养基的配方如表1所示。
本实施例是方法中愈伤组织诱导率为100%,愈伤组织呈黄色疏松,生长较快。
愈伤组织表面有绿色的、颗粒状芽原基产生,且不定芽的诱导率为100%,不定芽生长旺盛,芽点大,呈嫩绿色。
本实施例的不定芽抽茎率为86.16%,不定芽生根的诱导率为91.22%,诱导形成的不定根数为2~5条,最长的不定根达5.0-6.0cm。再培养2周左右,不定根上长出许多侧根,这些侧根长达10cm以上,短达2cm左右。
本发明方法操作步骤简便可行,能够显著降低褐化程度,褐化率仅为9.4%。
从外植体培养至成苗仅用60d左右时间,极大地缩短了植株再生时间,不定芽分化仅需12d,小植株生根仅需6d。
表1
Claims (10)
1.核桃楸离体培养不定芽诱导植株再生的方法,其特征在于该方法包括以下步骤:
一、对核桃楸合子胚进行预处理;
二、取经过步骤一预处理的核桃楸合子胚接种于含有1.0~1.5mg/L噻苯隆、0.5~1.0mg/L6-BA、350mg/L谷氨酰胺、500mg/L水解酪蛋白、0.5~1.0g/L Na2S2O3、0.5~1.0g/LPVP、6.0g/L琼脂和30g/L蔗糖的MS改良培养基中,进行暗培养至出现愈伤组织;
三、将愈伤组织接种于含有0.5~1.0mg/L 6-BA、0.5~1.0g/L Na2S2O3、0.5~1.0g/LPVP和6.0g/L琼脂的MS改良培养基中,在光照强度为32~36μmol·m-2·s-1,温度为23~25℃的环境中进行光暗交替培养,至长出不定芽;
四、将带有不定芽的愈伤组织切成块转入含有0.1~0.5mg/L噻苯隆、0.02~0.04mg/LNAA、0.5~1.0g/L Na2S2O3、0.5~1.0g/L PVP和6.0g/L琼脂的MS改良培养基中培养,每日光照12~14h,在光照强度为32~38μmol·m-2·s-1,温度为22~24℃的环境中进行光照培养,每2~3天继代培养一次,进行不定芽伸长,当不定芽伸长至2~3cm,将其转入含有0.05~0.5mg/L 6-BA、0.05~0.2mg/L NAA、0.5~1.0g/L Na2S2O3、0.5~1.0g/L PVP和6.0g/L琼脂的MS改良培养基中培养,进行不定芽的抽茎;
五、将抽茎的不定芽转入含有2.0mg/L吲哚乙酸、1.0mg/L NAA、6.0g/L琼脂和60g/L蔗糖的1/2MS改良培养基,在光照强度为32~38μmol·m-2·s-1,温度为22~24℃的环境中,进行光照培养以实现不定芽的生根;
六、将根长超过2cm的植株经炼苗2~3d后移栽到温室培养。
2.根据权利要求1所述的核桃楸离体培养不定芽诱导植株再生的方法,其特征在于步骤一中所述对核桃楸合子胚进行预处理的方法具体为:5月取材,先用洗衣粉水刷洗核桃楸果实表面,然后用流水冲洗1~2h,接着用无菌水冲洗3次,置于2~4℃条件下处理12~24h,然后移至超净台,利用紫外灯灭菌15~30min,用质量浓度为75%的乙醇溶液浸泡2次,每次30s,再用质量浓度为0.1%的HgCl2溶液浸泡5-10min,然后用无菌水冲洗3-5次,备用。
3.根据权利要求1所述的核桃楸离体培养不定芽诱导植株再生的方法,其特征在于步骤二所述暗培养的温度为22-25℃。
4.根据权利要求1所述的核桃楸离体培养不定芽诱导植株再生的方法,其特征在于步骤二所述暗培养的温度为23-24℃。
5.根据权利要求1所述的核桃楸离体培养不定芽诱导植株再生的方法,其特征在于步骤三中在光照强度为33~35μmol·m-2·s-1,温度为24℃的环境中进行光暗交替培养。
6.根据权利要求1所述的核桃楸离体培养不定芽诱导植株再生的方法,其特征在于步骤三中光暗交替培育的光暗周期为14h/10h。
7.根据权利要求1所述的核桃楸离体培养不定芽诱导植株再生的方法,其特征在于步骤六中炼苗移栽的具体方法为:取根长超过2cm的植株,移到自然光下,炼苗2~3d,然后洗去根系上的培养基,栽种到草炭:蛭石=2:1混合基质中,在自然光下培育20~25天,然后移栽到土壤中。
8.根据权利要求7所述的核桃楸离体培养不定芽诱导植株再生的方法,其特征在于所述蛭石经过0.5%高锰酸钾溶液消毒。
9.根据权利要求1所述的核桃楸离体培养不定芽诱导植株再生的方法,其特征在于步骤二、三和四中所述MS改良培养基包含以下成分:NH4NO3 1650mg·L-1、KNO3 1900mg·L-1、CaCl2·2H2O440mg·L-1、MgSO4·7H2O 560mg·L-1、KH2PO4170mg·L-1、KI 1.66mg·L-1、H3BO36.2mg·L-1、MnSO4·4H2O 22.3mg·L-1、ZnSO4·7H2O 8.6mg·L-1、NaMo4·2H2O0.25mg·L-1、CuSO4·5H2O 0.05mg·L-1、CoCl2·6H2O 0.05mg·L-1、FeSO4·7H2O 27.8mg·L-1、Na2-EDTA25.6mg·L-1、肌醇1000mg·L-1、盐酸硫胺素1.0mg·L-1、烟酸1.0mg·L-1、盐酸吡哆素0.5mg·L-1、甘氨酸4.0mg·L-1和蒸馏水。
10.根据权利要求1所述的核桃楸离体培养不定芽诱导植株再生的方法,其特征在于步骤五中所述1/2MS改良培养基包含以下成分:NH4NO3 825mg·L-1、KNO3 950mg·L-1、CaCl2·2H2O 220mg·L-1、MgSO4·7H2O 280mg·L-1、KH2PO4 85mg·L-1、KI 0.83mg·L-1、H3BO36.2mg·L-1、MnSO4·4H2O 11.2mg·L-1、ZnSO4·7H2O 8.6mg·L-1、NaMo4·2H2O0.25mg·L-1、CuSO4·5H2O 0.025mg·L-1、CoCl2·6H2O 0.025mg·L-1、FeSO4·7H2O13.9mg·L-1、Na2-EDTA12.8mg·L-1、肌醇500mg·L-1、盐酸硫胺素0.5mg·L-1、烟酸0.5mg·L-1、盐酸吡哆素0.25mg·L-1、甘氨酸2.0mg·L-1和蒸馏水。
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