CN106383101A - 基于“off‑on‑off ”模式的汞离子的荧光检测方法及荧光探针芯片 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了基于“off‑on‑off”模式的汞离子的荧光检测方法及荧光探针芯片。该方法中,随着待测样品中的Hg2+的浓度逐渐增加,Hg2+首先与杂交液中的TQ形成T–Hg2+–T结构,与TQ配对的带荧光标记的AC以游离状态存在,随后AC与芯片表面固定的探针TP发生杂交反应而被捕获,表现为荧光逐渐增强,即“off–on”模式”;然后,随着Hg2+的浓度继续增加,剩余Hg2+与芯片上的探针TP形成T–Hg2+–T结构,而原在芯片上捕获的AC被取代,从荧光探针表面离开,表现为荧光逐渐衰减,即“on–off”模式”;根据荧光探针芯片所检测得到的荧光强度确定待测溶液中Hg2+的浓度。本发明基于T‑T错配原理,借助于两次目标诱导的构象变化,结合光纤的倏逝波荧光检测平台,可实时检测Hg2+。
Description
技术领域
本发明涉及基于“off-on-off”模式的汞离子的荧光检测方法及荧光探针芯片。
背景技术
近年来我国已发生了多起重金属汞的污染事件,严重威胁着广大人民群众的身体健康和生态安全。为控制汞离子(Hg2+)经摄入进入人体内,《生活饮用水卫生标准》(GB5749-2006)严格限定饮用水中汞离子(Hg2+)的浓度不能高于0.001mg/L,并基于原子荧光光谱(ACS)、电感耦合等离子体质谱(ICP/MS)等仪器开发了检测痕量Hg2+的标准方法(GB/T4470-1998、GB/T 23362.4-2009等)。尽管标准的仪器方法检测饮用水中Hg2+具有灵敏、准确等优点,但也存在着样品前处理复杂,仪器设备昂贵,检测时间长等问题,难以实现快速现场检测或对突发水污染事件做出快速响应。
近年来研究发现汞离子(Hg2+)能够与胸腺嘧啶(T)特异结合,形成T-Hg2+-T错配结构,这就为汞离子(Hg2+)的快速、特异识别提供一条便捷的途径。目前基于错配原理的生物传感器得到快速发展并已应用于Hg2+离子的现场和在线检测之中。
在这些方法中,由于具有高灵敏度,选择性强,检测速度快等特点,使基于目标诱导构象转变(Target-induced conformational switching)检测策略的生物传感器受到更多的关注。Long等人利用目标诱导靶诱导结构转换开发了一种“Turn off”模式的光纤生物传感器。该生物传感器可以高灵敏度检测Hg2+,检出限低至1.2nm,在数分钟内可以检测浓度在1.2nm到10μM范围的Hg2+。Du等人设计了一种荧光双探针的芯片基生物传感器,该传感器使用“Turn on”检测模式对Hg2+的检测限可达8.6nM,但检测需要两个费时的DNA杂交过程。可见上述研究还存着易产生假信号或者检测时间长的问题,并不能满足实际检测的需要。因此,研制适合汞离子(Hg2+)检测的快速、灵敏和宽范围的检测方法已成为防治汞离子(Hg2 +)污染的迫切需求。
发明内容
本发明的目的是提供基于“off-on-off”模式的汞离子的荧光检测方法及荧光探针芯片,该方法的检测限为0.4nM,检测范围为0.4nM-50μM,检测时间在15min以内。
本发明提供的一种用于检测汞离子的荧光探针芯片的制备方法,它包括如下步骤:
a)将基片表面的羟基进行活化;
b)将经步骤a)处理的基片表面进行硅烷化;
c)将经步骤b)处理的基片表面进行偶联化;
d)将名称为TP的单链DNA探针固定在经步骤c)处理的基片表面,所述固定的步骤如下:将经步骤c)处理的基片在名称为TP的单链DNA探针溶液中浸泡16~20小时,取出基片,依次进行清洗和干燥;所述TP为含有聚脱氧胸苷酸的单链DNA,所述单链DNA的端部修饰有氨基。
上述的制备方法,
步骤a)中,所述基片可表面具有二氧化硅膜的基片,如为硅片、石英片、玻璃片或光纤基片。所述活化的步骤可如下:将所述基片浸泡于硫酸-过氧化氢溶液,在70~110℃(如80℃)下静置45~90分钟(如60分钟),取出基片进行洗涤和干燥,然后100~120℃(如120℃)静置3~12h(如3小时)。所述硫酸-过氧化氢溶液的制备方法可如下:将3体积份浓硫酸和1体积份30%过氧化氢混合。所述硫酸-过氧化氢溶液的制备方法具体如下:将3体积份浓硫酸(即质量分数为98.3%的硫酸溶液)和1体积份30%过氧化氢(即质量分数为30%的过氧化氢溶液)混合。
步骤b)中,所述硅烷化的步骤可如下:将经步骤a)处理的基片浸泡于硅烷化剂溶液中,室温静置10~60min(如10min),取出基片进行洗涤和干燥,在130℃~200℃(如180℃)下烘烤1~12h(如1h),得到表面硅烷化的基片。所述硅烷化溶液的溶质可为3-氨丙基三乙氧基硅烷(APTES),溶剂可为无水乙醇或丙酮,APTES体积百分含量可为2%~10%(如6%)。
步骤c)中,所述偶联化的步骤如下:将经步骤b)处理的基片浸泡于戊二醛偶联剂溶液中,室温静置30~120min(如60min),取出基片进行洗涤和干燥,得到表面偶联化的基片。所述戊二醛偶联剂溶液的溶剂可为Tris-HCl缓冲液,体积百分含量为0.4%~5%(如2%)。
步骤d)中,所述名称为TP的单链DNA探针溶液由名称为TP的单链DNA、NaCl和Tris-HCl缓冲液组成,其中,所述名称为TP的单链DNA探针的浓度为200~400nM(如300nM),所述NaCl的浓度为50~200mM(如200mM),所述Tris-HCl缓冲液的浓度为10~50mM(如50mM)。
所述浸泡的时间具体可为16小时;所述浸泡在室温条件下,湿度为55~75%的密闭环境中进行。所述干燥具体可为在室温条件用氮气吹干。
所述氨基通常可修饰在所述名称为TP的单链DNA的任意一端,如5’端。
所述方法在所述固定之后还包括将所述基片表面上的DNA进行封闭的步骤。所述封闭可采用浓度为10~50μM(如20μM)的甘氨酸水溶液,封闭时间可为1~5h(如1h)。
上述的制备方法中,所述聚脱氧胸苷酸中脱氧胸苷酸的个数可为14~18,优选为16。所述氨基具体可来自NH2-(CH2)6。
由上述任一项所述的制备方法制备得到的荧光探针芯片,也在本发明的保护范围内,该荧光探针芯片可实现基于“off-on-off”模式的汞离子的检测。
包括上述的荧光探针芯片在内的用于检测汞离子的生物传感器,也在本发明的保护范围内。所述生物传感器可为全光纤倏逝波生物传感器。
本发明进一步提供了一种基于“off-on-off”模式的汞离子的荧光检测方法,该检测方法中,随着待测样品中的Hg2+的浓度逐渐增加,Hg2+首先与名称为TQ的标记了荧光淬灭基团的单链DNA形成T–Hg2+–T结构,与TQ配对的名称为AC的标记了荧光基团的单链DNA以游离状态存在,随后所述AC(称之为靶标)与芯片表面固定的名称为TP的单链DNA探针发生杂交反应而被捕获,表现为芯片表面荧光逐渐增强,即“off–on”模式”;然后,随着Hg2+的浓度继续增加,剩余Hg2+与所述芯片上的探针TP形成T–Hg2+–T结构,而原在所述芯片上捕获的所述AC被取代,并从所述芯片表面离开,表现为荧光逐渐衰减,即“on–off”模式”;根据所述芯片所检测得到的荧光强度确定所述待测溶液中Hg2+的浓度。
上述的检测方法中,所述方法可包括如下步骤:
1)制备含有AC-TQ的杂交液;所述AC-TQ是由名称为AC的标记了荧光基团的单链DNA和名称为TQ的标记了荧光淬灭基团的单链DNA杂交而成的双链DNA,所述杂交液中不含游离状态AC;所述AC为含有聚脱氧腺苷酸的单链DNA,所述TQ为含有聚脱氧胸苷酸的单链DNA;
2)将待测样品与所述含有AC-TQ的杂交液进行Hg2+诱导形成T–Hg2+–T结构反应,得到反应液,将所述反应液与所述的固定了DNA探针的荧光芯片进行杂交反应或者进行Hg2+诱导表面探针形成T–Hg2+–T的结构变化,检测反应后芯片的荧光强度,根据所述荧光强度确定所述待测样品中汞离子的浓度。
上述的检测方法中,步骤1)中,所述含有AC-TQ的杂交液由溶剂和溶质组成,所述溶剂为pH 7.2~7.4,浓度为10~50mM的Tris-HAc缓冲液;所述溶质为所述AC-TQ和NaNO3,所述AC-TQ在所述含有AC-TQ的杂交液中的浓度为20~50nM,NaNO3在所述含有AC-TQ的杂交液中的浓度为30~300mM(如50mM)。
所述荧光基团在所述AC中的位置和所述荧光淬灭基团在所述TQ中的位置满足所述AC与所述TQ能形成所述AC-TQ,并使荧光淬灭。
所述AC中的脱氧腺苷酸的个数和所述TQ中的脱氧胸苷酸个数满足在液体中能形成所述AC-TQ;所述TP中的脱氧胸苷酸的个数满足在液体中与所述AC中的脱氧腺苷酸形成杂交双链。
所述荧光基团为羧基荧光素FAM、花青素荧光染料Cy3、花青素荧光染料Cy5和花青素荧光染料Cy5.5中任一种;所述荧光淬灭基团为荧光淬灭基团BHQ1,荧光淬灭基团Dabcyl、荧光淬灭基团BHQ2和荧光淬灭基团BHQ3中任一种。
步骤2)可采用标准曲线法或标准加入法进行检测;所述标准曲线法的步骤如下:(注,这是实验室测纯水样品中汞离子的方法)配制一系列不同浓度的Hg2+的标准溶液Ⅰ,建立荧光强度与Hg2+浓度的标准曲线;根据待测样品的荧光强度和所述标准曲线即可得到所述待测样品中Hg2+的浓度;所述标准加入法的步骤如下(注,这是实验室测真实水样的方法):以不含汞离子的待测样品为溶剂,配制一系列所述不同浓度的Hg2+的标准溶液Ⅱ,建立荧光强度与Hg2+浓度的标准加入法曲线,即可得到所述含汞离子的待测样品中Hg2+的浓度。
上述的方法中,所述标准溶液Ⅰ中Hg2+的浓度和所述准溶液Ⅱ中加入的Hg2+的浓度为0~50μM;当浓度为0~10μM时,荧光强度与Hg2+浓度呈正相关;当浓度10~40μM时,荧光强度不变;当浓度为40~50μM时,荧光强度与Hg2+浓度呈负相关;所述方法还包括根据杂交时间(荧光信号达到最大值时对应的时间)判断Hg2+所在的浓度范围的步骤。
上述的方法中,所述待测样品可为环境水样,如饮用水。
本发明方法中,根据T-Hg2+-T配位化学,高亲和力的T-T错配可能取代低亲和力的A-T杂交。随着Hg2+加入到缓冲液中,带荧光标记的AC被取代并被释放到缓冲液中,从而被TP探针所捕获,表现为荧光逐渐增强(“off–on”模式)。当加入Hg2+的量持续增加,使光纤表面的TP之间形成T-T错配,并使待荧光标价的AC从表面离去,可观察到并荧光逐渐衰减(“on–off”模式)。
本发明具有如下有益效果:
本发明基于T-T错配原理,借助于两次目标诱导的构象变化,结合光纤的倏逝波荧光检测平台,开发出一种具有“off–on–off”检测模式实时检测Hg2+的检测方法。由于双模检测方式的使用,降低了背景噪声的影响,避免虚假信号,提高了灵敏度(检测限至0.4nM),扩大了检测范围(0.4nM-50μM)。而其他金属离子干扰可以忽略不计。同时该传感器成功用于对湖泊水中Hg2+的检测,上述结果均表明该传感器具有广阔的应用前景。
附图说明
图1为本发明“off–on–off”模式宽范围检测Hg2+的原理图。
图2为实施例2中“off–on–off”模式宽范围检测Hg2+的检测结果图,图2(a)为0-10μM Hg2+与荧光信号的关系曲线;图2(b)为40-50μM Hg2+与荧光信号的关系曲线;图2(c)为0-50μM Hg2+与对应荧光信号的线性拟合关系曲线。
图3为“off–on–off”模式Hg2+检测生物传感器对不同金属离子的选择性检测结果图。
图4为“off–on–off”模式Hg2+检测生物传感器对浓度为10nM的汞离子(Hg2+)溶液的重复性检测结果图。
图5为“off–on–off”模式Hg2+检测生物传感器对饮用水中不同浓度的汞离子(Hg2 +)的检测结果图,图5(a)为0-10μM Hg2+与对应荧光信号的线性拟合关系曲线;图5(b)为40-50μM Hg2+与对应荧光信号的线性拟合关系曲线。
具体实施方式
下面结合具体实施方式对本发明进行进一步的详细描述,给出的实施例仅为了阐明本发明,而不是为了限制本发明的范围。
下述实施例中的实验方法,如无特殊说明,均为常规方法。
下述实施例中所用的材料、试剂等,如无特殊说明,均可从商业途径得到。
3-氨丙基三乙氧基硅烷(APTES)为sigma-aldrich公司的产品,CAS号为919-30-2。
下述实施例中的AC:(3’-AAAAAAAAAAAAAAAA-F-5’)(其中F为花青素荧光染料Cy3)为生工生物工程(上海)股份有限公司的产品。
下述实施例中的TQ:(5’-TTTTTTTTTTTTTTTT-Q-3’)(其中Q为荧光淬灭基团BHQ2)为生工生物工程(上海)股份有限公司的产品。
下述实施例中的TP:(5’-NH2-(CH2)6-TTTTTTTTTTTTTTTT-3’)为生工生物工程(上海)股份有限公司的产品。
全光纤倏逝波生物传感器为本实验室自行开发,中国专利ZL 200610089497.4(CN1873450A)。
光纤为南京春辉科技实业有限公司的产品,产品型号为HCS。
实施例1、制备用于检测Hg2+的荧光探针芯片及生物传感器
一、用于检测Hg2+的荧光探针芯片
1、光纤基片表面羟基活化
将光纤基片浸泡于硫酸-过氧化氢溶液,80℃静置1h,取出浸泡后的光纤基片,采用超纯水冲洗3次后用N2吹干,然后120℃静置3h,得到表面羟基活化的光纤基片,将表面羟基活化的光线基片置于干燥器中冷却和保存。
硫酸-过氧化氢溶液的制备方法:将质量百分含量为98.3%的浓硫酸和质量百分含量为30%的过氧化氢按照体积比3:1进行混合,得到硫酸-过氧化氢溶液。
2、表面硅烷化
将步骤1得到的表面羟基活化的光线基片浸泡于硅烷化剂溶液中,室温静置10min,取出浸泡后的光纤基片,依次用无水乙醇和水冲洗各3次,然后用N2吹干,180℃烘烤1h,得到表面硅烷化的光纤基片,将表面硅烷化的光纤基片置于干燥器中冷却和保存。
硅烷化剂溶液的制备方法:将3-氨丙基三乙氧基硅烷(APTES)溶解于无水乙醇,每6mL APTES溶于100mL无水乙醇中,形成体积百分含量为6%的硅烷化剂溶液。
3、表面偶联化
将步骤2得到的表面硅烷化的光纤基片浸泡于戊二醛偶联剂溶液中,室温静置60min,取出浸泡后的光纤基片,依次用高纯水和浓度为50mM的Tris-HCl缓冲液(pH=7.4)各冲洗3次,然后用N2吹干,得到表面偶联化的光线基片,将表面偶联化的光线基片置于干燥器中冷却和保存。
偶联剂溶液:含2%(体积百分含量)戊二醛的浓度为50mM的Tris-HCl缓冲液(pH=7.4)。
4、TP探针的固定
在室温环境下,将在步骤3得到的表面偶联化的光纤基片浸入名称为TP的单链DNA探针溶液中16小时,然后放入湿度为55-75%,最佳湿度为65%的密闭环境中室温静置20h,依次用0.2%(质量百分含量)的SDS溶液和超纯水各冲洗3次,然后用浓度为20μM的甘氨酸水溶液进行封闭1h,然后再用0.2%(质量百分含量)的SDS溶液和超纯水各冲洗3次,每次1min,用N2吹干,得到表面固定有名称为TP的单链DNA探针的芯片,命名为TP探针芯片。
名称为TP的单链DNA探针溶液的制备方法:将名称为TP的单链DNA探针和NaCl溶于浓度为50mM的Tris-HCl缓冲液(pH=7.4)中,使名称为TP的单链DNA探针的浓度为300nM,NaCl的浓度为200mM。
名称为TP的单链DNA探针:5’-NH2-(CH2)6-TTTTTTTTTTTTTTTT-3’。
实施例2、汞离子(Hg2+)的检测
一、制备TP探针芯片
制备方法同实施例1。
二、汞离子(Hg2+)的检测
如图1所示,随着待测样品中的Hg2+的浓度逐渐增加,Hg2+首先与名称为TQ的标记了荧光淬灭基团的单链DNA形成T–Hg2+–T结构,与TQ配对的名称为AC的标记了荧光基团的单链DNA以游离状态存在,随后AC(称之为靶标)与芯片表面固定的名称为TP的单链DNA探针发生杂交反应而被捕获,表现为芯片表面荧光逐渐增强,即“off–on”模式”;然后,随着Hg2+的浓度继续增加,剩余Hg2+与芯片上的探针TP形成T–Hg2+–T结构,而原在芯片上捕获的AC被取代,从芯片表面离开,表现为荧光逐渐衰减,即“on–off”模式”;根据芯片所检测得到的荧光强度确定待测溶液中Hg2+的浓度。
进一步地,检测的具体步骤如下:
1、制备含有AC-TQ的杂交液
AC(靶标1):3’-AAAAAAAAAAAAAAAA-F-5’(其中F为花青素荧光染料Cy3),
TQ(靶标2):5’-TTTTTTTTTTTTTTTT-Q-3’(其中B为荧光淬灭基团BHQ2)。
含有AC-TQ的杂交液的制备:由溶剂和溶质组成,溶剂可为pH7.4,浓度为10mM的Tris-HAc缓冲液,溶质为AC-TQ和NaNO3,AC-TQ在杂交液中的浓度为30nM;NaNO3在杂交液中的浓度为50mM。
2、将汞离子(Hg2+)溶液用浓度为0.1M硝酸溶液稀释成如下浓度(μM):0.021、0.21、0.42、0.83、3.34、6.67、10.0与33.33、40.0、43.33、46.67、48.34、50.0;分别向1-13号试管中各加入300μL的含有AC-TQ的杂交液,然后将上述不同浓度的汞离子(Hg2+)溶液依次加入到1-13号含有300μL的含有AC-TQ的杂交液的试管中,其中各浓度汞离子(Hg2+)溶液的加入体积均相同且≤1%的含有AC-TQ的杂交液的体积,室温(20-30℃)静置8min进行液相杂交反应,分别得到1-13号液相杂交反应后的溶液,9号为对照管,将等体积的0.1M HNO3替代不同浓度的汞离子(Hg2+)溶液,其它不变。Hg2+能够与AC-TQ中的TQ形成T–Hg2+–T结构,使得AC-TQ中的AC以游离状态存在。
3.分别将1-14号液相杂交反应后的溶液通入TP探针芯片中,测定0-500s时间范围内液相杂交反应后的溶液与TP探针芯片作用产生的荧光信号,液相杂交反应后的溶液中以游离状态存在的AC能够与TP探针芯片表面固定的TP探针杂交,形成TP-AC的双链,利用全光纤倏逝波生物传感器进行汞离子(Hg2+)检测。在激光引起的倏逝波激发下,结合在TP探针芯片表面的TP-AC的双链产生荧光信号,并为仪器所检测,将不同时间产生的荧光信号进行收集。
4、检测完成后分别用饱和尿素溶液、0.2%(质量百分含量)SDS水溶液洗涤使用后的TP探针芯片以去除靶标,使用高纯水和浓度为10mM的Tris-HAc缓冲液(pH=7.4)再生芯片。
结果如图2所示,图2(a)为浓度为0、0.021、0.21、0.42、0.83、3.34、6.67和10.0μM的Hg2+的实际检测图,随着汞离子浓度的增加,每个浓度的Hg2+检测的最强荧光信号值是逐渐增大直至稳定。图2(b)为浓度为33.33、40.0、43.33、46.67、48.34和50.0μM的Hg2+的实际检测图,随着汞离子浓度的增加,每个浓度的Hg2+检测的最强荧光信号值是逐渐减小直至衰减到零。
Hg2+浓度值作为横坐标,对应荧光强度百分比为纵坐标拟合得到趋势线,见图2(c)(当Hg2+浓度在0–10μM范围时,y=10.73x+5.55,R2=0.98;当Hg2+浓度值为40-50μM范围内时,y=-8.48x+36.28,R2=0.98)。根据最低检测限为仪器信噪比3倍的原则,计算出Hg2+的最低检测限为0.4nM。图2(a)-图2(c)的纵坐标为荧光强度百分比(荧光强度百分比=该浓度下的荧光强度/10.0μM下的荧光强度(最大荧光强度)×100%)。
需要指出:由于荧光强度表现为先增加后衰减的模式,当测定未知样品的荧光强度对应两个Hg2+浓度时,可采用杂交时间来判断Hg2+浓度。如图2(a)和图2(b)所示,对于“off–on”模式7min内(10μM Hg2+)可以达到平衡,而“on–off”模式,需要13min(40μM Hg2+)才能达到平衡。但更为方便的方法是通过简单的稀释或浓缩,利用本生物传感器确定其浓度。
三、不同金属离子的选择性检测
检测步骤:
1、分别向1-11号试管中各加入300μL的含有AC-TQ的杂交液,然后将11种常见金属离子(Ag+、Ca2+、Zn2+、Fe2+、Cu2+、Cd2+、Mn2+、Mg2+、Pb2+、Fe3+、Al3+)依次加入到1-11号试管中,这11种金属离子加入后的最终浓度为10μM,各金属离子溶液的加入体积均相同且≤1%的含有AC-TQ的杂交液的体积,室温(20-30℃)静置8min进行液相杂交反应。所获得信号强度,与Hg2+液加入后浓度为1μM时,获得的信号强度进行对比。其中Hg2+母液为硝酸汞溶液,Fe2+母液为硝酸亚铁溶液,Mn2+母液为硝酸锰溶液,Al3+母液为硝酸铝溶液,Fe3+母液为硝酸铁溶液,Ag+母液为硝酸银溶液,Cd2+母液为氯化镉溶液,Cu2+母液为硝酸铜溶液,Pb2+母液为草酸铅溶液,Zn2+母液为硝酸铅溶液,Mg2+母液为硝酸镁溶液,Ca2+母液为硝酸钙溶液。
2.将1-11号液相杂交反应后的溶液分别通入TP探针芯片中,利用全光纤倏逝波生物传感器进行检测TP探针芯片对不同金属离子的选择性,收集荧光信号,并进行结果分析,利用最强荧光信号值计算百分比信号值。百分比信号值(%)=(待测金属离子的最强荧光信号值/1μM Hg2+的最强荧光信号值)×100%。
3、检测完成后分别用饱和尿素溶液、0.2%(质量百分含量)SDS水溶液洗涤使用后的TP探针芯片以去除靶标,使用高纯水和浓度为10mM的Tris-HAc缓冲液(pH=7.4)再生芯片。
结果如图3所示,发现11种金属离子相对于Hg2+的百分比信号值均小于10%,干扰性可以忽略,该探针芯片对于Hg2+检测具有良好的选择性。
四、浓度为10nM的汞离子(Hg2+)溶液的重复性检测
检测步骤如下:
1、将浓度为10μM的汞离子(Hg2+)溶液加入到含有300μL的含有AC-TQ的杂交液的试管中,其中浓度为10nM的汞离子(Hg2+)溶液的加入体积≤1%的含有AC-TQ的杂交液的体积,室温(20-30℃)静置8min进行液相杂交反应,得到液相杂交反应后的溶液,对照为加入等体积的蒸馏水替代浓度为10nM的汞离子(Hg2+)溶液。
2.将液相杂交反应后的溶液的通入TP探针芯片中,利用全光纤倏逝波生物传感器进行TP探针芯片对于汞离子(Hg2+)检测的重复性实验,共进行15次检测,收集荧光信号,并进行结果分析,利用最强荧光信号值计算百分比信号值。百分比信号值(%)=(单次信号值/信号的平均值)×100%。
3、检测完成后分别用饱和尿素溶液、0.2%(质量百分含量)SDS水溶液洗涤使用后的TP探针芯片以去除靶标,使用高纯水和浓度为10mM的Tris-HAc缓冲液(pH=7.4)再生芯片。
结果如图4所示,TP探针芯片对于汞离子(Hg2+)检测具有很好的重复性。按上述检测步骤,重复对于浓度为10nM的Hg2+进行检测,18次实验的分析结果表明,数据具有良好的一致性,该探针芯片重复性好。
实施例3、饮用水中汞离子(Hg2+)的检测
一、制备TP探针芯片及生物传感器
制备方法同实施例1。
二、TP探针芯片的应用
含有AC-TQ的的杂交液的制备方法同实施例2。
含汞离子(Hg2+)饮用水的配制:取丹江口水库水,将其过0.22μm的过滤膜,得到过滤水;在1000mL过滤水加入浓度为1M的HNO3溶液调节pH至1,得到HNO3酸化水样,将浓度为100mg/L的汞离子(Hg2+)标准溶液(采用浓度为0.1M的硝酸溶液配制的汞离子(Hg2+)标准溶液)加入到HNO3酸化水样中,配置成汞离子(Hg2+)浓度梯度分别为0.21、0.41、0.83、1.67、3.34、6.67、10.0、13.34μM的HNO3酸化水样与33.33、40.0、43.33、46.67、50.0μM的HNO3酸化水样。
检测步骤:
1、分别向1-13号试管中各加入300μL的含有AC-TQ的杂交液,将含不同浓度汞离子(Hg2+)的HNO3酸化水样依次加入到1-13号含有300μL的含有AC-TQ的杂交液的试管中,其中含不同浓度汞离子(Hg2+)的HNO3酸化水样的加入体积均相同且≤1%的含有AC-TQ的杂交液的体积,室温(20-30℃)静置8min进行液相杂交反应,分别得到1-7号液相杂交反应后的溶液;14号为对照管,将等体积的HNO3酸化水样替代含不同浓度汞离子(Hg2+)的HNO3酸化水样,其它不变。
2、将1-14号液相杂交反应后的溶液分别通入TP探针芯片中,利用全光纤倏逝波生物传感器检测含不同浓度汞离子(Hg2+)的HNO3酸化水样中汞离子(Hg2+)的浓度,收集荧光信号,利用最强荧光信号值进行结果分析。
3、检测完成后分别用饱和尿素溶液、0.2%(质量百分含量)SDS水溶液洗涤使用后的TP探针芯片以去除靶标,使用高纯水和浓度为10mM的Tris-HAc缓冲液(pH=7.4)再生芯片。
结果如图5所示,以Hg2+浓度为0.21、0.41、0.83、1.67、3.34、6.67、10.0、13.34μM的HNO3酸化水样为横坐标,对应的荧光强度百分比为纵坐标拟合得到趋势线:在Hg2+的浓度在0nM to 10μM时,Y=8.89x+5.01,R2=0.98);以Hg2+浓度为33.33、40.0、43.33、46.67、50.0μM的HNO3酸化水样为横坐标,对应的荧光强度百分比为纵坐标拟合得到趋势线:在Hg2+的浓度在40μM to 50μM时,表现为负相关线性关系(Y=-7.58x+394.36,R2=0.98),具有很好的线性关系,表明该方法适用于实际水样检测。荧光强度百分比=该浓度下的荧光强度/10.0μM下的荧光强度(最大荧光强度)×100%。使用实际水样,取得的结果与高纯水一致,并且利用ICP-MS检测该水样中Hg2+的含量,与本发明方法的实测结果一致。
Claims (9)
1.一种用于检测汞离子的荧光探针芯片的制备方法,包括如下步骤:
a)将基片表面的羟基进行活化;
b)将经步骤a)处理的基片表面进行硅烷化;
c)将经步骤b)处理的基片表面进行偶联化;
d)将名称为TP的单链DNA探针固定在经步骤c)处理的基片表面,所述固定的步骤如下:将所述经步骤c)处理的基片在名称为TP的单链DNA探针溶液中浸泡16~20小时,取出基片,依次进行清洗和干燥;所述TP为含有聚脱氧胸苷酸的单链DNA,所述单链DNA的端部修饰有氨基。
2.根据权利要求1所述的制备方法,其特征在于:步骤b)中,所述硅烷化的步骤如下:将经步骤a)处理的基片浸泡于硅烷化剂溶液中,室温静置10~60min,取出基片进行洗涤和干燥,在130℃~200℃下烘烤1~12h,得到表面硅烷化的基片;和/或,所述硅烷化溶液的溶质为3-氨丙基三乙氧基硅烷,溶剂为无水乙醇或丙酮,体积百分含量为2%~10%。
3.根据权利要求1或2所述的制备方法,其特征在于:步骤d)中,所述名称为TP的单链DNA探针溶液由名称为TP的单链DNA、NaCl和Tris-HCl缓冲液组成,其中,所述名称为TP的单链DNA探针的浓度为200~400nM,所述NaCl的浓度为50~200mM,所述Tris-HCl缓冲液的浓度为10~50mM。
4.根据权利要求1-3中任一项所述的制备方法,其特征在于:所述聚脱氧胸苷酸中脱氧胸苷酸的个数为14~18,优选为16。
5.权利要求1-4中任一项所述的制备方法制备得到的荧光探针芯片。
6.一种用于检测汞离子的生物传感器,其特征在于:它包括权利要求5所述的荧光探针芯片。
7.一种基于“off-on-off”模式的汞离子的荧光检测方法,其特征在于:随着待测样品中的Hg2+的浓度逐渐增加,Hg2+首先与名称为TQ的标记了荧光淬灭基团的单链DNA形成T–Hg2 +–T结构,与TQ配对的名称为AC的标记了荧光基团的单链DNA以游离状态存在,随后所述AC与芯片表面固定的名称为TP的单链DNA探针发生杂交反应而被捕获,表现为芯片表面荧光逐渐增强,即“off–on”模式”;然后,随着Hg2+的浓度继续增加,剩余Hg2+与所述芯片上的探针TP形成T–Hg2+–T结构,而原在所述芯片上捕获的所述AC被取代,并从所述芯片表面离开,表现为荧光逐渐衰减,即“on–off”模式”;根据所述芯片所检测得到的荧光强度确定所述待测溶液中Hg2+的浓度。
8.根据权利要求7所述的方法,其特征在于:所述方法包括如下步骤:
1)制备含有AC-TQ的杂交液;所述AC-TQ是由名称为AC的标记了荧光基团的单链DNA和名称为TQ的标记了荧光淬灭基团的单链DNA杂交而成的双链DNA,所述杂交液中不含游离状态AC;所述AC为含有聚脱氧腺苷酸的单链DNA,所述TQ为含有聚脱氧胸苷酸的单链DNA;
2)将待测样品与所述含有AC-TQ的杂交液进行Hg2+诱导形成T–Hg2+–T结构反应,得到反应液,将所述反应液与权利要求4所述的固定了DNA探针的荧光芯片进行杂交反应或者进行Hg2+诱导表面探针形成T–Hg2+–T结构变化,检测反应后芯片的荧光强度,根据所述荧光强度确定所述待测样品中汞离子的浓度。
9.根据权利要求8所述的方法,其特征在于:所述待测样品为环境水样。
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