CN105820225A - 水稻粒形调控蛋白OsPIL15、基因、载体和应用 - Google Patents
水稻粒形调控蛋白OsPIL15、基因、载体和应用 Download PDFInfo
- Publication number
- CN105820225A CN105820225A CN201610340690.4A CN201610340690A CN105820225A CN 105820225 A CN105820225 A CN 105820225A CN 201610340690 A CN201610340690 A CN 201610340690A CN 105820225 A CN105820225 A CN 105820225A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- ospil15
- gene
- seqidno
- rice
- transgenic
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/415—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from plants
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
- C12N15/79—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
- C12N15/82—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for plant cells, e.g. plant artificial chromosomes (PACs)
- C12N15/8216—Methods for controlling, regulating or enhancing expression of transgenes in plant cells
- C12N15/8218—Antisense, co-suppression, viral induced gene silencing [VIGS], post-transcriptional induced gene silencing [PTGS]
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
- C12N15/79—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
- C12N15/82—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for plant cells, e.g. plant artificial chromosomes (PACs)
- C12N15/8216—Methods for controlling, regulating or enhancing expression of transgenes in plant cells
- C12N15/8222—Developmentally regulated expression systems, tissue, organ specific, temporal or spatial regulation
- C12N15/823—Reproductive tissue-specific promoters
- C12N15/8235—Fruit-specific
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
- C12N15/79—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
- C12N15/82—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for plant cells, e.g. plant artificial chromosomes (PACs)
- C12N15/8241—Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology
- C12N15/8261—Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology with agronomic (input) traits, e.g. crop yield
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
- C12N15/79—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
- C12N15/82—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for plant cells, e.g. plant artificial chromosomes (PACs)
- C12N15/8241—Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology
- C12N15/8261—Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology with agronomic (input) traits, e.g. crop yield
- C12N15/8262—Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology with agronomic (input) traits, e.g. crop yield involving plant development
- C12N15/8269—Photosynthesis
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2800/00—Nucleic acids vectors
- C12N2800/60—Vectors containing traps for, e.g. exons, promoters
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Plant Pathology (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
- Reproductive Health (AREA)
- Botany (AREA)
- Gastroenterology & Hepatology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Physiology (AREA)
- Virology (AREA)
- Pregnancy & Childbirth (AREA)
Abstract
本发明公开了一种水稻粒形调控蛋白OsPIL15、基因、载体和应用,属于植物基因工程技术领域。通过构建胚乳特异性启动子Gt13a驱动的OsPIL15过表达载体和OsPIL15干涉载体,并利用农杆菌浸染水稻胚性愈伤组织,筛选、分化得到转基因阳性植株,对转基因植株籽粒产量相关的表型进行鉴定,验证OsPIL15与水稻籽粒大小的关系,其中转OsPIL15基因超表达转基因株系的籽粒粒长、粒宽和千粒重显著降低,而RNAi干涉转基因株系的籽粒粒长、粒宽和千粒重显著增加,表明基因OsPIL15在调控水稻籽粒大小、粒重以及增加作物产量上具有潜在的工业应用价值,能产生更高的经济效益。
Description
技术领域
本发明涉及一种水稻粒形调控蛋白OsPIL15,同时还涉及编码该蛋白的基因,以及载体和应用,属于植物基因工程技术领域。
背景技术
水稻是一种重要的粮食作物,为全世界一半以上的人口提供主食,是人类重要的食物来源。在我国,水稻种植面积占粮食作物种植面积的1/3以上,产量约占粮食总产量的42%,近2/3的人口以稻米为主食,因此水稻在我国粮食安全中占有极其重要的地位,是国家粮食安全的基石。水稻产量主要由产量构成三要素穗数、每穗粒数和千粒重决定。水稻的胚乳是淀粉和蛋白的主要存储器官,而灌浆期胚乳的生长发育直接决定水稻的产量和品质(Bhullaretal.,2013;Xuetal.,2008)。因此通过生物技术手段提高水稻籽粒大小,促进水稻灌浆充实,对提高水稻产量具有重要意义。
众所周知,光是作物生长发育所需的重要生态因子之一,是作物产量形成的基础,超过90%的作物产量由光合作用提供。同时光也是一种重要的环境信号,它能调节植物基因表达,影响酶活及植物形态构建等各个代谢环节,使植物更好地适应外界环境(Carvalhoetal.,2011)。光敏色素能够感受红光和远红光,黑暗环境中光敏色素以不活跃的红光吸收型(Pr)存在,红光照射后可转变为活跃的远红光吸收型(Pfr)((Franklinetal.,2010)。远红光吸收型能够从细胞质进入到细胞核中,并与转录因子相互作用调节下游基因的表达(Baeetal.,2008),与Pfr直接作用的转录因子属于bHLH家族,被称为光敏色素互作因子(PIFs)或(PILs)(Toledo-Ortizetal.,2003)。作为bHLH蛋白的一种,所有的PIFs家族蛋白都包含在N端与光敏色素互作的APB(ActivePhytochromeB-binding)或APA(ActivePhytochromeA-binding)结构域和C端bHLH-DNA结合结构域及核定位结构域(Khannaetal.,2004;Shenetal.,2008)。bHLH结构域由大约15个氨基酸的DNA结合区和约60个氨基酸螺旋-环-螺旋(HLH)结合区组成,它能够与靶基因启动子区域的G-box(CACGTG)或PBE-box(CACATG)结合,从而调控下游靶基因表达(Hornitscheketal.,2012;Zhangetal.,2013)。
在水稻中,Nakamura等通过同源性分析在水稻基因组中鉴定了6个PIF转录因子(OsPIL11-OsPIL16),这6个转录因子均有着与拟南芥中PIFs类似的APB基序(Nakamuraetal.,2007)。OsPILs在叶片中的表达量是根和花中的10倍,在种子发育过程中一些OsPILs也有表达,其中OsPIL11表达量较高,OsPIL13、OsPIL14、OsPIL15表达水平中等,而OsPIL12的表达较低(Jeongetal.,2013)。OsPIL13在水稻中超表达后能够促进水稻节间伸长,反之则抑制其节间伸长,这表明一些OsPILs能够促进细胞的伸长(Todakaetal.,2012)。研究表明,超表达OsPIL15的水稻种子在黑暗环境中的萌发受到抑制,基因芯片技术推测这可能与OsPIL15抑制生长素合成路径和细胞壁生成有关,而持续7d的红光和远红光照射可以解除这一抑制,使转基因水稻种子顺利萌发(Zhouetal.,2014)。PGLI是一个非典型的bHLH家族基因,过量表达PGLI会增加水稻籽粒长度和重量,而APG是PGLI的拮抗性互作因子,APG基因也即PIFs家族的OsPIL16,APG干涉后籽粒显著变长变宽,表明OsPIL16能够负调控PGL1进而调控籽粒大小(Heangetal.,2012)。
发明内容
本发明的目的是提供一种水稻粒形调控蛋白OsPIL15。
再者,本发明提供一种编码上述蛋白的基因。
同时,本发明提供一种调控水稻粒形的载体。
最后,本发明提供一种上述基因、载体在调控水稻粒形中的应用。
为了实现以上目的,本发明所采用的技术方案是:
水稻粒形调控蛋白OsPIL15,其氨基酸序列如SEQIDNO.1所示。
编码上述蛋白的基因,其碱基序列如SEQIDNO.2、SEQIDNO.3所示。
OsPIL15过表达载体,其上插入有编码如SEQIDNO.1所示氨基酸序列的基因。具体的,基因序列如SEQIDNO.2或SEQIDNO.4所示。
RNAi干涉载体,其上插入有如SEQIDNO.12、SEQIDNO.13所示的基因序列。
基因序列SEQIDNO.2、SEQIDNO.4、SEQIDNO.12、SEQIDNO.13以及OsPIL15过表达载体、RNAi干涉载体在调控水稻粒形中的应用。
基因序列SEQIDNO.12、SEQIDNO.13以及RNAi干涉载体在培育(高产)水稻品系以及提高水稻产量中的应用。
本发明的有益效果:
本发明提供了一种可用于调控水稻籽粒大小和粒重的蛋白及基因OsPIL15。通过构建胚乳特异性启动子Gt13a驱动的OsPIL15过表达载体和OsPIL15干涉载体,并利用农杆菌浸染水稻胚性愈伤组织,筛选、分化得到转基因阳性植株,对转基因植株籽粒产量相关的表型进行鉴定,验证OsPIL15与水稻籽粒大小的关系,其中转OsPIL15基因超表达转基因株系籽粒粒长、粒宽和千粒重显著降低,而RNAi干涉转基因株系籽粒粒长、粒宽和千粒重显著增加,表明基因OsPIL15在调控水稻籽粒大小和粒重以及增加作物产量上具有潜在的工业应用价值,能产生更高的经济效益。
本发明针对当前人口不断增长和粮食需求不断增加的现状,利用光敏色素互作因子在调节水稻产量中的作用,探讨光敏色素互作因子在水稻品种改良中的功能,从而为OsPIL15在培育高产水稻,特别是通过调控籽粒大小进而增加千粒重提供依据。本发明基于OsPIL15的表达载体可以为培育高产水稻新品系提供一种简单有效的技术手段,基因OsPIL15在提高水稻籽粒大小和粒重以及增加作物产量上具有潜在的应用价值,可利用分子改良技术在生产中加以应用。
附图说明
图1为OsPIL15过表达载体的结构示意图;
图2为OsPIL15RNAi干涉载体的结构示意图;
图3为OsPIL15超表达转基因株系花后12d籽粒胚乳中OsPIL15表达量分析图;
图4为OsPIL15RNAi干涉转基因株系花后12d籽粒胚乳中OsPIL15表达量分析图;
图5为野生型对照、OsPIL15超表达和RNAi干涉转基因株收获籽粒粒长差异分析图;
图6为野生型对照、OsPIL15超表达和RNAi干涉转基因株收获籽粒粒长比较图;
图7为野生型对照、OsPIL15超表达和RNAi干涉转基因株收获籽粒粒宽差异分析图;
图8为野生型对照、OsPIL15超表达和RNAi干涉转基因株收获籽粒粒宽比较图;
图9为野生型对照、OsPIL15超表达和RNAi干涉转基因株收获籽粒千粒重差异分析图。
具体实施方式
下述实施例仅对本发明作进一步详细说明,但不构成对本发明的任何限制。
实施例1
OsPIL15基因序列的合成:
在水稻生物学网站(http://rapdb.dna.affrc.go.jp/)下载OsPIL15(Os01g0286100)基因组DNA序列(如SEQIDNO.5所示),序列前端斜体部分为5’端UTR(非翻译区),下划线部分为CDS序列(外显子,编码区),末尾斜体部分为3’端UTR,无标记部分为内含子。
SEQIDNO.5:
ATGTGGGTGCAACGCGATCTTTCGCTGCCTCCGGTTTAGCTCTCCGGTTGATTCCGATCGAGGAAGCTGATGCATGTGTTTGTATATGGCTCGGTGTTTTGTGTGTGCAGGTCCGACGGCAACGACTTCGCCGAGCTGCTGTGGGAGAACGGCCAGGCGGTGGTGCACGGGAGGAAGAA GCACCCGCAGCCGGCCTTCCCGCCGTTCGGCTTCTTCGGTGGCACCGGCGGTGGCGGCGGCGGCAGCAGTAGTAGAG CCCAGGAGAGGCAGCCCGGCGGCATCGATGCGTTCGCCAAGGTGGGGGGCGGCTTCGGCGCCTTGGGCATGGCTCCG GCGGTGCACGACTTCGCTTCTGGCTTCGGCGCCACCACGCAGGACAACGGTGATGATGACACCGTTCCGTGGATCCA TTACCCCATAATTGACGATGAAGACGCCGCCGCCCCTGCTGCTCTCGCAGCAGCGGACTATGGCTCCGACTTCTTCT CCGAGCTCCAGGCGGCGGCGGCTGCCGCGGCGGCCGCCGCGCCGCCGACCGATCTCGCCTCTCTGCCAGCCTCCAAT CACAACGGCGCCACCAATAACAGAAATGCTCCGGTTGCCACCACCACCACCAGGGAACCCTCCAAGGAAAGCCACGG CGGCCTGTCGGTTCCCACCACCCGAGCCGAGCCGCAGCCGCAGCCACAGCTCGCCGCAGCCAAGCTGCCTCGGTCGA GCGGCAGCGGCGGCGGCGAGGGCGTGATGAACTTCTCGCTCTTCTCCCGCCCGGCCGTCCTGGCGAGGGCGACGCTG GAGAGCGCGCAGAGGACGCAGGGCACCGACAATAAGGCGTCCAATGTCACCGCGAGCAACCGCGTCGAGTCGACGGT CGTGCAGACGGCGAGCGGGCCAAGGAGCGCACCGGCGTTCGCCGATCAGAGGGCGGCGGCGTGGCCGCCGCAGCCGA AGGAGATGCCGTTCGCGTCCACGGCAGCCGCTCCCATGGCCCCGGCCGTTAACCTGCACCACGAGATGGGCCGTGAC AGGGCAGGCCGAACCATGCCTGTCCACAAAACCGAGGCGAGGAAGGCACCTGAGGCCACGGTCGCGACATCGTCGGT GTGCTCCGGCAACGGAGCTGGGAGTGACGAGCTGTGGCGCCAGCAGAAGCGGAAGTGCCAGGCCCAGGCAGAGTGCT CAGCTAGCCAAGACGATGTAAGTAAATGGTATGAGATAGATATGCACTGCATAACCAGCTGACTATACCTTCGCTGATTCTCATGATAAAAAACTGGTTCTATTCAGGATCTTGACGATGAACCTGGAGTATTGAGAAAATCTGGAACCAGGAG CACGAAACGCAGCCGCACAGCTGAGGTTCACAATTTATCAGAAAGGGTGAGTAGCTCACATCTTCAGTGCATGGATCATCCTGCATCCATTTGCTTCAAAGTTCACATGTCAGTGCATTGATCATCCTGCATCCATTTGCTTCAATCCCATGACTCGACTCATGCTGCAATTTTATTGACTGTATTGCAACCCAACAATCTTTGCAGAGGAGAAGGGACAGGATCAATGAA AAGATGCGCGCTCTGCAAGAACTCATTCCCAACTGCAACAAGGTAAAGATAAGCCATTCCATCGTCTTGCTCCCTCTGAGATGCCTCTGAATGAACATTTGGTCAATTCAGGCATGCTATGTTTTGCAGATTGATAAAGCCTCGATGCTGGATG AAGCTATAGAGTACCTCAAAACCCTTCAGCTTCAAGTACAGGTACATTGAAACTGCCTTCGAACAAATGTACCATGATTGTCGGGTGAATATGTACATAGATGCATTGACAAGGTGCAGTTGTCATTGACACAGATGATGTCCATGGGAACTGG GCTGTGCATTCCTCCAATGCTATTACCAACAGCCATGCAGCACTTGCAAATTCCACCGATGGCTCATTTCCCTCATC TCGGCATGGGATTGGGGTACGGGATGGGCGTCTTCGACATGAGCAACACTGGAGCACTTCAGATGCCACCCATGCCT GGTGCTCACTTTCCCTGCCCAATGATCCCAGGTGCGTCACCACAAGGTCTTGGGATCCCTGGCACAAGCACCATGCC AATGTTTGGGGTTCCTGGGCAAACAATTCCTTCGTCAGCGTCTAGTGTACCACCATTTGCATCTTTGGCTGGTCTTC CTGTTAGGCCAAGCGGGGTCCCTCAAGTATCAGGCGCCATGGCTAACATGGTGCAAGACCAGCAACAAGGCATAGCG AATCAACAGCAGCAATGTCTGAACAAGGAAGCTATACAGGGAGCAAATCCAGGTGATTCACAAATGCAGATCATCAT GCAGGTACTAATTAAAAATTAACAAATGATGTCAAGCGAATAGAAGACATTTGCTAGTACTTAAGTGCATTACTTACTCCAGTTTATTTTAATATTCCAGGGTGACAACGAGAATTTTAGGATACCCTCTTCAGCCCAAACAAAAAGCAGTCAA TTTTCAGATGGTACCGGCAAGGGGACCAACGCTAGAGAGAGAGATGGGGCTGAAACATAA
将上述CDS序列拼接在一起得到编码氨基酸的碱基序列(如SEQIDNO.3所示),序列前端斜体ATG为起始密码子,末尾斜体TAA为终止密码子,下划线部分为KpnI和SacI酶切位点。由序列SEQIDNO.3翻译得到的氨基酸序列如SEQIDNO.1所示,由于终止密码子TAA不翻译蛋白,末尾以*表示。
SEQIDNO.3:
TCCGACGGCAACGACTTCGCCGAGCTGCTGTGGGAGAACGGCCAGGCGGTGGTGCACGGGAGGAAGAAGCACCCGCAGCCGGCCTTCCCGCCGTTCGGCTTCTTCGGTGGCACCGGCGGTGGCGGCGGCGGCAGCAGTAGTAGAGCCCAGGAGAGGCAGCCCGGCGGCATCGATGCGTTCGCCAAGGTGGGGGGCGGCTTCGGCGCCTTGGGCATGGCTCCGGCGGTGCACGACTTCGCTTCTGGCTTCGGCGCCACCACGCAGGACAACGGTGATGATGACACCGTTCCGTGGATCCATTACCCCATAATTGACGATGAAGACGCCGCCGCCCCTGCTGCTCTCGCAGCAGCGGACTATGGCTCCGACTTCTTCTCCGAGCTCCAGGCGGCGGCGGCTGCCGCGGCGGCCGCCGCGCCGCCGACCGATCTCGCCTCTCTGCCAGCCTCCAATCACAACGGCGCCACCAATAACAGAAATGCTCCGGTTGCCACCACCACCACCAGGGAACCCTCCAAGGAAAGCCACGGCGGCCTGTCGGTTCCCACCACCCGAGCCGAGCCGCAGCCGCAGCCACAGCTCGCCGCAGCCAAGCTGCCTCGGTCGAGCGGCAGCGGCGGCGGCGAGGGCGTGATGAACTTCTCGCTCTTCTCCCGCCCGGCCGTCCTGGCGAGGGCGACGCTGGAGAGCGCGCAGAGGACGCAGGGCACCGACAATAAGGCGTCCAATGTCACCGCGAGCAACCGCGTCGAGTCGACGGTCGTGCAGACGGCGAGCGGGCCAAGGAGCGCACCGGCGTTCGCCGATCAGAGGGCGGCGGCGTGGCCGCCGCAGCCGAAGGAGATGCCGTTCGCGTCCACGGCAGCCGCTCCCATGGCCCCGGCCGTTAACCTGCACCACGAGATGGGCCGTGACAGGGCAGGCCGAACCATGCCTGTCCACAAAACCGAGGCGAGGAAGGCACCTGAGGCCACGGTCGCGACATCGTCGGTGTGCTCCGGCAACGGAGCTGGGAGTGACGAGCTGTGGCGCCAGCAGAAGCGGAAGTGCCAGGCCCAGGCAGAGTGCTCAGCTAGCCAAGACGATGATCTTGACGATGAACCTGGAGTATTGAGAAAATCTGGAACCAGGAGCACGAAACGCAGCCGCACAGCTGAGGTTCACAATTTATCAGAAAGGAGGAGAAGGGACAGGATCAATGAAAAGATGCGCGCTCTGCAAGAACTCATTCCCAACTGCAACAAGATTGATAAAGCCTCGATGCTGGATGAAGCTATAGAGTACCTCAAAACCCTTCAGCTTCAAGTACAGATGATGTCCATGGGAACTGGGCTGTGCATTCCTCCAATGCTATTACCAACAGCCATGCAGCACTTGCAAATTCCACCGATGGCTCATTTCCCTCATCTCGGCATGGGATTGGGGTACGGGATGGGCGTCTTCGACATGAGCAACACTGGAGCACTTCAGATGCCACCCATGCCTGGTGCTCACTTTCCCTGCCCAATGATCCCAGGTGCGTCACCACAAGGTCTTGGGATCCCTGGCACAAGCACCATGCCAATGTTTGGGGTTCCTGGGCAAACAATTCCTTCGTCAGCGTCTAGTGTACCACCATTTGCATCTTTGGCTGGTCTTCCTGTTAGGCCAAGCGGGGTCCCTCAAGTATCAGGCGCCATGGCTAACATGGTGCAAGACCAGCAACAAGGCATAGCGAATCAACAGCAGCAATGTCTGAACAAGGAAGCTATACAGGGAGCAAATCCAGGTGATTCACAAATGCAGATCATCATGCAGGGTGACAACGAGAATTTTAGGATACCCTCTTCAGCCCAAACAAAAAGCAGTCAATTTTCAGATGGTACCGGCAAGGGGACCAACGCTAGAGAGAGAGATGGGGCTGAAACA
SEQIDNO.1:
MSDGNDFAELLWENGQAVVHGRKKHPQPAFPPFGFFGGTGGGGGGSSSRAQERQPGGIDAFAKVGGGFGALGMAPAVHDFASGFGATTQDNGDDDTVPWIHYPIIDDEDAAAPAALAAADYGSDFFSELQAAAAAAAAAAPPTDLASLPASNHNGATNNRNAPVATTTTREPSKESHGGLSVPTTRAEPQPQPQLAAAKLPRSSGSGGGEGVMNFSLFSRPAVLARATLESAQRTQGTDNKASNVTASNRVESTVVQTASGPRSAPAFADQRAAAWPPQPKEMPFASTAAAPMAPAVNLHHEMGRDRAGRTMPVHKTEARKAPEATVATSSVCSGNGAGSDELWRQQKRKCQAQAECSASQDDDLDDEPGVLRKSGTRSTKRSRTAEVHNLSERRRRDRINEKMRALQELIPNCNKIDKASMLDEAIEYLKTLQLQVQMMSMGTGLCIPPMLLPTAMQHLQIPPMAHFPHLGMGLGYGMGVFDMSNTGALQMPPMPGAHFPCPMIPGASPQGLGIPGTSTMPMFGVPGQTIPSSASSVPPFASLAGLPVRPSGVPQVSGAMANMVQDQQQGIANQQQQCLNKEAIQGANPGDSQMQIIMQGDNENFRIPSSAQTKSSQFSDGTGKGTNARERDGAET*。
根据载体pTCK303所需酶切位点(KpnI和SacI),对OsPIL15的CDS序列进行优化。由于该序列中有KpnI和SacI两个酶切位点,而在构建超表达载体时需要使用这两个酶切位点,如果不进行优化,在用这两个酶切割时会把CDS序列切断,因此在合成基因时需要把这两个酶切位点优化掉,即利用生物编码氨基酸的简并密码子,在不改变翻译出氨基酸序列的情况下,把这两个酶切位点去掉,得到如SEQIDNO.2所示的碱基序列。序列前端斜体ATG为起始密码子,末尾斜体TGA为终止密码子。
SEQIDNO.2:
AGCGATGGGAACGACTTCGCGGAACTCCTGTGGGAGAATGGGCAAGCGGTCGTCCACGGCCGCAAGAAACATCCGCAGCCGGCCTTCCCGCCATTTGGCTTCTTTGGCGGCACAGGGGGCGGCGGCGGGGGCAGCTCCAGCAGGGCCCAAGAAAGGCAGCCAGGGGGCATCGATGCGTTTGCGAAAGTGGGCGGCGGCTTTGGGGCGCTCGGCATGGCGCCGGCGGTCCATGATTTTGCGTCCGGCTTCGGCGCCACCACCCAAGATAACGGCGATGATGATACCGTCCCGTGGATCCACTATCCGATCATCGACGACGAAGATGCCGCCGCGCCAGCGGCCCTCGCGGCCGCGGACTACGGGTCCGATTTTTTCTCCGAACTGCAAGCCGCCGCGGCGGCCGCGGCCGCGGCCGCCCCACCAACAGATCTCGCCTCCCTCCCAGCCTCCAACCACAACGGCGCGACCAACAACAGGAACGCCCCAGTCGCCACCACAACCACCAGGGAGCCATCCAAGGAGAGCCATGGGGGGCTCTCCGTGCCAACCACAAGGGCCGAGCCACAGCCACAACCACAGCTGGCGGCCGCCAAACTCCCAAGGAGCAGCGGGAGCGGCGGCGGCGAGGGGGTCATGAATTTCTCCCTCTTTTCCCGCCCAGCCGTCCTCGCCAGGGCCACACTGGAATCCGCGCAACGCACACAGGGGACAGACAATAAGGCCAGCAACGTCACCGCGTCCAATCGCGTGGAGAGCACCGTGGTCCAAACAGCGAGCGGCCCAAGGTCCGCCCCAGCCTTTGCGGATCAGCGCGCCGCGGCCTGGCCACCACAGCCAAAGGAAATGCCGTTTGCCAGCACAGCGGCGGCCCCAATGGCGCCAGCCGTCAATCTCCACCATGAGATGGGCCGCGATAGGGCGGGCAGGACAATGCCAGTCCACAAGACAGAGGCCCGCAAAGCCCCAGAAGCGACCGTCGCCACAAGCTCCGTGTGTAGCGGGAATGGCGCCGGGAGCGACGAACTGTGGAGGCAACAGAAGAGGAAGTGTCAAGCGCAGGCCGAATGCAGCGCGTCCCAAGACGACGACCTCGATGATGAGCCAGGGGTCCTCCGCAAAAGCGGCACACGCTCCACAAAGAGGAGCCGCACCGCCGAGGTCCATAACCTCTCCGAGCGCAGGAGGCGCGATCGCATCAACGAGAAAATGCGCGCGCTCCAAGAGCTGATCCCAAACTGCAACAAGATCGACAAGGCCAGCATGCTCGACGAGGCCATCGAGTACCTGAAAACCCTGCAGCTCCAGGTGCAGATGATGAGCATGGGCACAGGGCTCTGCATCCCACCGATGCTGCTGCCGACAGCCATGCAACACCTGCAGATCCCACCGATGGCCCATTTCCCACATCTCGGCATGGGGCTGGGGTATGGGATGGGGGTGTTCGACATGTCCAACACCGGCGCGCTGCAAATGCCGCCAATGCCAGGGGCCCACTTTCCGTGCCCAATGATTCCAGGCGCCTCCCCACAGGGCCTCGGCATTCCAGGCACAAGCACAATGCCGATGTTCGGCGTGCCGGGGCAAACCATTCCAAGCAGCGCCTCCAGCGTCCCACCATTTGCCAGCCTCGCCGGGCTCCCAGTGAGGCCATCCGGCGTCCCACAAGTCAGCGGGGCGATGGCCAACATGGTGCAAGATCAGCAGCAGGGGATTGCCAACCAGCAGCAACAATGCCTGAACAAGGAAGCGATCCAAGGGGCGAACCCAGGGGACAGCCAGATGCAGATCATCATGCAGGGCGACAACGAGAACTTTCGCATCCCGAGCAGCGCCCAGACAAAAAGCAGCCAATTCAGCGATGGCACCGGCAAGGGGACAAATGCCAGGGAGCGCGATGGGGCCGAGACA
在序列SEQIDNO.2前后添加酶切位点,并在起始密码子ATG前加上一段5’端UTR,以使CDS能更好的翻译序列,优化得到的碱基序列如SEQIDNO.4所示。序列前端下划线处为KpnI酶切位点,末尾下划线处为SacI酶切位点,斜体部分为5’端UTR。
SEQIDNO.4:
GGTACC TGAGCGATGGGAACGACTTCGCGGAACTCCTGTGGGAGAATGGGCAAGCGGTCGTCCACGGCCGCAAGAAACATCCGCAGCCGGCCTTCCCGCCATTTGGCTTCTTTGGCGGCACAGGGGGCGGCGGCGGGGGCAGCTCCAGCAGGGCCCAAGAAAGGCAGCCAGGGGGCATCGATGCGTTTGCGAAAGTGGGCGGCGGCTTTGGGGCGCTCGGCATGGCGCCGGCGGTCCATGATTTTGCGTCCGGCTTCGGCGCCACCACCCAAGATAACGGCGATGATGATACCGTCCCGTGGATCCACTATCCGATCATCGACGACGAAGATGCCGCCGCGCCAGCGGCCCTCGCGGCCGCGGACTACGGGTCCGATTTTTTCTCCGAACTGCAAGCCGCCGCGGCGGCCGCGGCCGCGGCCGCCCCACCAACAGATCTCGCCTCCCTCCCAGCCTCCAACCACAACGGCGCGACCAACAACAGGAACGCCCCAGTCGCCACCACAACCACCAGGGAGCCATCCAAGGAGAGCCATGGGGGGCTCTCCGTGCCAACCACAAGGGCCGAGCCACAGCCACAACCACAGCTGGCGGCCGCCAAACTCCCAAGGAGCAGCGGGAGCGGCGGCGGCGAGGGGGTCATGAATTTCTCCCTCTTTTCCCGCCCAGCCGTCCTCGCCAGGGCCACACTGGAATCCGCGCAACGCACACAGGGGACAGACAATAAGGCCAGCAACGTCACCGCGTCCAATCGCGTGGAGAGCACCGTGGTCCAAACAGCGAGCGGCCCAAGGTCCGCCCCAGCCTTTGCGGATCAGCGCGCCGCGGCCTGGCCACCACAGCCAAAGGAAATGCCGTTTGCCAGCACAGCGGCGGCCCCAATGGCGCCAGCCGTCAATCTCCACCATGAGATGGGCCGCGATAGGGCGGGCAGGACAATGCCAGTCCACAAGACAGAGGCCCGCAAAGCCCCAGAAGCGACCGTCGCCACAAGCTCCGTGTGTAGCGGGAATGGCGCCGGGAGCGACGAACTGTGGAGGCAACAGAAGAGGAAGTGTCAAGCGCAGGCCGAATGCAGCGCGTCCCAAGACGACGACCTCGATGATGAGCCAGGGGTCCTCCGCAAAAGCGGCACACGCTCCACAAAGAGGAGCCGCACCGCCGAGGTCCATAACCTCTCCGAGCGCAGGAGGCGCGATCGCATCAACGAGAAAATGCGCGCGCTCCAAGAGCTGATCCCAAACTGCAACAAGATCGACAAGGCCAGCATGCTCGACGAGGCCATCGAGTACCTGAAAACCCTGCAGCTCCAGGTGCAGATGATGAGCATGGGCACAGGGCTCTGCATCCCACCGATGCTGCTGCCGACAGCCATGCAACACCTGCAGATCCCACCGATGGCCCATTTCCCACATCTCGGCATGGGGCTGGGGTATGGGATGGGGGTGTTCGACATGTCCAACACCGGCGCGCTGCAAATGCCGCCAATGCCAGGGGCCCACTTTCCGTGCCCAATGATTCCAGGCGCCTCCCCACAGGGCCTCGGCATTCCAGGCACAAGCACAATGCCGATGTTCGGCGTGCCGGGGCAAACCATTCCAAGCAGCGCCTCCAGCGTCCCACCATTTGCCAGCCTCGCCGGGCTCCCAGTGAGGCCATCCGGCGTCCCACAAGTCAGCGGGGCGATGGCCAACATGGTGCAAGATCAGCAGCAGGGGATTGCCAACCAGCAGCAACAATGCCTGAACAAGGAAGCGATCCAAGGGGCGAACCCAGGGGACAGCCAGATGCAGATCATCATGCAGGGCGACAACGAGAACTTTCGCATCCCGAGCAGCGCCCAGACAAAAAGCAGCCAATTCAGCGATGGCACCGGCAAGGGGACAAATGCCAGGGAGCGCGATGGGGCCGAGACATGAGAGCTC。
将序列SEQIDNO.4交由苏州金唯智生物科技有限公司合成,合成后的DNA连接在pUC57载体上(通过KpnI和SacI两个酶切位点连接在pUC57载体上),得到含有目标DNA的重组质粒(同样由苏州金唯智生物科技有限公司合成)。
实施例2
调控水稻粒形的OsPIL15过表达载体的构建:
使用限制性内切酶KpnI和SacI分别对含有目标DNA的重组质粒pUC57::OsPIL15和含有胚乳特异性启动子Gt13a(Heetal.,2011;Ningetal.,2008)的表达载体pTCK303进行双酶切,纯化回收得到目标DNAOsPIL15和线性化质粒pTCK303。使用T4DNA连接酶连接,连接产物转化至DH5α感受态细胞,在含有50mg/L卡那霉素的LB培养基上,37℃倒置培养16h。对含有重组质粒的大肠杆菌进行菌落PCR验证,选取验证正确的质粒进行酶切验证,并将酶切验证正确的质粒命名为pTCK303::OsPIL15,结构示意图见图1。
实施例3
OsPIL15RNAi干涉载体的构建:
使用TRIzol试剂(Invitrogen,Carlsbad,CA,USA)提取粳稻品种日本晴叶片总RNA,并用RNase-freeDNaseI(TaKaRaBioInc.,Otsu,Shiga,Japan)去除DNA污染。取3μg总RNA,使用反转录酶(Promega,Madison,WI,USA)反转录得到cDNA。以cDNA为模板,以OsPIL15(KpnI)-F、OsPIL15(BamHI)-R为引物(如SEQIDNO.6、7所示),扩增得到反式干扰片段OsPIL15anti-sense(如SEQIDNO.12所示);以OsPIL15(SpeI)-F、OsPIL15(SacI)-R为引物(如SEQIDNO.8、9所示),扩增得到顺式干扰片段OsPIL15sense(如SEQIDNO.13所示,该序列是CDS序列SEQIDNO.3中的一部分,选取这一部分,通过RNAi方法即可干扰整个蛋白SEQIDNO.1的表达)。
使用限制性内切酶KpnI和BamHI分别对OsPIL15anti-sense和含有胚乳特异性启动子Gt13a的表达载体pTCK303进行双酶切,纯化回收酶切产物;用T4连接酶连接后转化大肠杆菌DH5α,筛选出阳性克隆并测序,得到连接有OsPIL15anti-sense的重组质粒pTCK303::OsPIL15anti-sense。使用限制性内切酶SpeI和SacI分别对OsPIL15sense和重组质粒pTCK303::OsPIL15anti-sense进行双酶切,纯化回收酶切产物;用T4连接酶连接,转化大肠杆菌后菌落PCR筛选出阳性克隆并测序,最终得到OsPIL15RNAi干涉载体,结构示意图见图2。
OsPIL15(KpnI)-F:5’-GTACGGTACCCTGGCACAAGCACCATGC-3’;
OsPIL15(BamHI)-R:5’-AGCTGGATCCATCTGAAAATTGACTGCTTTTTGTT-3’。
OsPIL15(SpeI)-F:5’-GTACACTAGTCTGGCACAAGCACCATGC-3’;
OsPIL15(SacI)-R:5’-AGCTGAGCTCATCTGAAAATTGACTGCTTTTTGTT-3’。
实施例4
OsPIL15过表达载体和OsPIL15RNAi干涉载体转化水稻品种日本晴,包括以下步骤:
1、OsPIL15过表达载体和OsPIL15RNAi干涉载体转化农杆菌EHA105
1)分别取两种表达载体1μg,加入到200μL冰上溶化的感受态细胞中,轻混,冰浴30min,液氮中速冻5min,37℃水浴5min,再迅速冰浴2min;
2)加入800μLLB液体培养基(不含抗生素),28℃轻摇5h(4~6h均可);
3)取菌体离心,除去上清液,剩余菌体重悬后涂布于AB培养基上(Kan50mg/L,Rif50mg/L,组分见下表1),28℃倒置暗培养3天。
表1AB培养基
2、浸染水稻愈伤组织,转基因阳性植株筛选、分化和鉴定,包括以下步骤:
1)去壳种子用70%的乙醇浸泡1min,无菌水冲洗4次(3~5次均可);
2)再用30%的NaClO(原液为有效氯10%,每50mL加一滴Tween-20)浸泡15min,无菌水清洗5次;
3)重复步骤2),但NaClO中不加Tween-20;
4)种子放置在垫有滤纸的已灭菌的培养皿中,将种子表面的水分吸干,转一次干净的垫滤纸培养皿,将种子吹干;
5)灭菌后的种子播种于N6D培养基上(组分见下表2),32℃持续光照培养5天;
表2N6D培养基
铁盐(100×)的配制方法为:将3.73g乙二铵四乙酸二钠Na2EDTA·2H2O)和2.78gFeSO4.7H2O分别溶解,混合并用,蒸馏水定容至1000mL,下同;
肌醇(500×)的配制方法为:5g肌醇定容至100mL蒸馏水中,下同;
6)用灭菌勺子刮掉AB培养基上的农杆菌菌落,并悬浮于AAM培养液中(含As,组分见下表3),使OD600约为0.1;
表3AAM培养液
7)预培养的种子浸于农杆菌菌液中,轻轻晃动约1.5min,再用无菌滤纸吸去多余的菌液,吹干;
8)将种子接于N6D-As共培养培养基上(组分见下表4),培养基上预先垫一层浸有AAM培养液的无菌滤纸;
表4N6D-As共培养培养基
9)25℃黑暗共培养3天;
10)共培养后的种子用含400mg/L羧苄的无菌水冲洗5次,并用之浸泡30min,以彻底去除农杆菌;
11)用无菌滤纸吸去水分并吹干,接种于含50mg/L潮霉素B和400mg/L羧苄的N6D-S筛选培养基上(组分见下表5),32℃持续光照培养两周;
表5N6D-S筛选培养基
12)将生长旺盛的愈伤组织转移到含50mg/L潮霉素B和250mg/L羧苄的RE-III培养基上(组分见下表6)诱导分化,28℃持续光照两周;
表6RE-III培养基
13)转移分化出的幼苗至含50mg/L潮霉素B和200mg/L羧苄的HF培养基上(组分见下表7)诱导生根,28℃每天16h光照两周;
表7HF培养基
14)待试管苗生长稳定后将瓶口打开,加入1cm深的常温灭菌水,在温度28℃(25~30℃均可),湿度>50%的环境中过渡培养4天(3此时间不宜过长,3~5天均可,否则会产生污染),将褐化组织小心去除,根部培养基用水冲洗干净,注意不要造成根部损伤,然后移栽到已经准备好的合适土壤中;
15)提取水稻转基因再生苗叶片DNA,使用潮霉素引物进行PCR阳性鉴定,引物序列Hyg-F、Hyg-R如SEQIDNO.10、11所示;
Hyg-F:CGATTCCGGAAGTGCTTGAC;
Hyg-R:CGTCTGCTGCTCCATACAAG。
培养基母液如N6大量元素(20×)、N6微量元素(1000×)、N6有机物(100×)、MS大量元素(20×)、MS微量元素(1000×)、MS有机物(100×)、AAMMacro(20×)、AAMMicro(1000×)、AAMOrganic+Gly(200×)、AAMAminoAcid(10×)的组成分别见下表8~17。
表8N6大量元素(20×)
表9N6微量元素(1000×)
表10N6有机物(100×)
表11MS大量元素(20×)
表12MS微量元素(1000×)
表13MS有机物(100×)
表14AAMMacro(20×)
表15AAMMicro(1000×)
表16AAMOrganic+Gly(200×)
表17AAMAminoAcid(10×)
试验例
1、转基因植株OsPIL15表达量检测
OsPIL15超表达植株表达量采用半定量法检测,OsPIL15干涉植株表达量采用荧光定量法检测。转基因植株和非转基因野生型水稻花后12天胚乳使用TRIzol试剂(Invitrogen,Carlsbad,CA,USA)提取总RNA,取1μg总RNA使用反转录酶(Promega,Madison,WI,USA)反转录。
半定量使用Taq酶(康为世纪,北京)扩增,以OsActin为内参,采用1%琼脂糖凝胶电泳检测,结果见图3。由图3可知,野生型WT和超表达植株OX-23中原始OsPIL15基因表达量基本相当,而OsPIL15优化后的合成基因在野生型WT中无表达,在超表达株系OX-23中有较高的表达量,表明基因OsPIL15在OX-23株系中实现了超表达。
荧光定量使用20μL定量体系,其中模板cDNA按1:20稀释后加5μL,正反引物各加0.8μl,再加入4.2μL的ddH2O,荧光染料(SYBRGreenqRT-PCRMasterMix;Toyobo)10μL,使用CFX96RealTimeSystem(BioRad,USA)定量检测,相对表达量采用2-ΔΔCT法计算,结果见图4。由图4可知,干涉株系RNAi-38中OsPIL15表达量比野生型WT显著降低,表明基因OsPIL15在RNAi-38株系中实现了低表达。
2、转基因植株籽粒表型分析
分别选取超表达OsPIL15和干涉OsPIL15转基因株系中OsPIL15表达量提高和降低的独立转基因株系,每个株系选取5株,每株随机选取30粒成熟收获后的籽粒,使用大米外观品质检测仪(JMWT12,东孚久恒,北京)对籽粒粒长和粒宽进行测定,5次重复取平均值,结果见图5~8。千粒重测定为随机选取1000粒种子称重,5次重复得到千粒重,结果见图9。
由图5~6可知,超表达株系OX-26、OX-30的粒长比野生型极显著减小,超表达株系OX-23、OX-31的粒长比野生型显著减小,而3个RNAi干涉株系的粒长均比野生型极显著增大。
由图7~8可知,4个超表达株系的粒宽均极显著小于野生型,而3个RNAi干涉株系除RNAi-39的粒宽显著大于野生型外,其余两个株系均达到极显著水平。
由图9可知,4个超表达株系的千粒重较野生型显著或极显著降低,而3个RNAi干涉株系较野生型显著或极显著提高。
Claims (10)
1.水稻粒形调控蛋白OsPIL15,其特征在于:蛋白OsPIL15的氨基酸序列如SEQIDNO.1所示。
2.编码如权利要求1所述蛋白OsPIL15的基因。
3.根据权利要求2所述的基因,其特征在于:碱基序列如SEQIDNO.2、SEQIDNO.3所示。
4.OsPIL15过表达载体,其特征在于:载体上插入有编码如SEQIDNO.1所示氨基酸序列的基因。
5.根据权利要求4所述的过表达载体,其特征在于:基因序列如SEQIDNO.2或SEQIDNO.4所示。
6.RNAi干涉载体,其特征在于:载体上插入有如SEQIDNO.12、SEQIDNO.13所示的基因序列。
7.如权利要求2或3所述基因在调控水稻粒形中的应用。
8.如权利要求4或5所述过表达载体在调控水稻粒形中的应用。
9.如权利要求6所述干涉载体在调控水稻粒形中的应用。
10.根据权利要求9所述的应用,其特征在于,干涉载体在培育高产水稻品系以及提高水稻产量中的应用。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201610340690.4A CN105820225B (zh) | 2016-05-20 | 2016-05-20 | 水稻粒形调控蛋白OsPIL15、基因、载体和应用 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201610340690.4A CN105820225B (zh) | 2016-05-20 | 2016-05-20 | 水稻粒形调控蛋白OsPIL15、基因、载体和应用 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN105820225A true CN105820225A (zh) | 2016-08-03 |
CN105820225B CN105820225B (zh) | 2019-01-29 |
Family
ID=56530962
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201610340690.4A Active CN105820225B (zh) | 2016-05-20 | 2016-05-20 | 水稻粒形调控蛋白OsPIL15、基因、载体和应用 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN105820225B (zh) |
Cited By (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN107164401A (zh) * | 2017-05-25 | 2017-09-15 | 河南农业大学 | 一种基于CRISPR/Cas9技术制备水稻OsPIL15突变体的方法及应用 |
CN107460199A (zh) * | 2017-10-10 | 2017-12-12 | 扬州大学 | 水稻粒形调控基因gs9及其应用 |
CN112553245A (zh) * | 2019-09-25 | 2021-03-26 | 扬州大学 | OsPIL16基因的新用途 |
CN112941086A (zh) * | 2021-03-12 | 2021-06-11 | 信阳农林学院 | OsPIL15基因在调控水稻耐盐性中的应用 |
CN115724931A (zh) * | 2022-09-13 | 2023-03-03 | 江西省超级水稻研究发展中心(江西省农科院海南水稻育种中心) | 水稻基因OsBRR1在调控水稻株型及粒型中的应用 |
CN115927445A (zh) * | 2022-07-13 | 2023-04-07 | 扬州大学 | OsPIL15基因在调控水稻节水抗旱中的应用 |
CN116555290A (zh) * | 2023-07-03 | 2023-08-08 | 云南农业大学 | OsPIL1基因在提高水稻籼稻品种产量和抗性的方法及应用 |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105018522A (zh) * | 2015-07-17 | 2015-11-04 | 山东省水稻研究所 | 基因OsPIL16在同时提高水稻的干旱和盐胁迫耐性中的应用 |
-
2016
- 2016-05-20 CN CN201610340690.4A patent/CN105820225B/zh active Active
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105018522A (zh) * | 2015-07-17 | 2015-11-04 | 山东省水稻研究所 | 基因OsPIL16在同时提高水稻的干旱和盐胁迫耐性中的应用 |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
JINJUN ZHOU等: "Overexpression of OsPIL15, a phytochromeinteracting factor‐like protein gene, represses etiolated seedling growth in rice", 《JOURNAL OF INTEGRATIVE PLANT BIOLOGY》 * |
刘燕霞等: "水稻简易RNAi载体构建及沉默效果鉴定", 《农业生物技术学报》 * |
Cited By (11)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN107164401A (zh) * | 2017-05-25 | 2017-09-15 | 河南农业大学 | 一种基于CRISPR/Cas9技术制备水稻OsPIL15突变体的方法及应用 |
CN107460199A (zh) * | 2017-10-10 | 2017-12-12 | 扬州大学 | 水稻粒形调控基因gs9及其应用 |
CN107460199B (zh) * | 2017-10-10 | 2019-09-03 | 扬州大学 | 水稻粒形调控基因gs9及其应用 |
CN112553245A (zh) * | 2019-09-25 | 2021-03-26 | 扬州大学 | OsPIL16基因的新用途 |
CN112553245B (zh) * | 2019-09-25 | 2022-06-07 | 扬州大学 | OsPIL16基因的新用途 |
CN112941086A (zh) * | 2021-03-12 | 2021-06-11 | 信阳农林学院 | OsPIL15基因在调控水稻耐盐性中的应用 |
CN115927445A (zh) * | 2022-07-13 | 2023-04-07 | 扬州大学 | OsPIL15基因在调控水稻节水抗旱中的应用 |
CN115724931A (zh) * | 2022-09-13 | 2023-03-03 | 江西省超级水稻研究发展中心(江西省农科院海南水稻育种中心) | 水稻基因OsBRR1在调控水稻株型及粒型中的应用 |
CN115724931B (zh) * | 2022-09-13 | 2024-01-19 | 江西省超级水稻研究发展中心(江西省农科院海南水稻育种中心) | 水稻基因OsBRR1在调控水稻株型及粒型中的应用 |
CN116555290A (zh) * | 2023-07-03 | 2023-08-08 | 云南农业大学 | OsPIL1基因在提高水稻籼稻品种产量和抗性的方法及应用 |
CN116555290B (zh) * | 2023-07-03 | 2023-09-12 | 云南农业大学 | OsPIL1基因在提高水稻籼稻品种产量和抗性的方法及应用 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN105820225B (zh) | 2019-01-29 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN105820225A (zh) | 水稻粒形调控蛋白OsPIL15、基因、载体和应用 | |
CN105755021A (zh) | 一种水稻耐镉基因OsGSTU37及其应用 | |
CN104450777A (zh) | 一种改善植物钾素吸收效率,对抗缺钾胁迫的方法及其中使用的重组表达载体 | |
CN107541520A (zh) | 与水稻根发育和抗逆性相关OsSAUR11基因及编码蛋白与应用 | |
CN106011146B (zh) | OsMADS47基因在调控水稻粒型中的应用 | |
CN107338230A (zh) | OsMPK11蛋白及其编码基因在调控植物抗旱性中的应用 | |
CN103014035B (zh) | 茎瘤芥抗逆基因及其植物表达载体和构建方法及应用 | |
CN105111295B (zh) | 抗根腐病和纹枯病的转wmyb-r基因小麦的培育方法及其相关生物材料 | |
CN105647940B (zh) | OsGRF6基因提高水稻产量的方法及其应用 | |
CN107406844A (zh) | 改良的转基因稻植物 | |
CN106811471A (zh) | 水稻spl7基因在调控株型中的应用 | |
CN102533811A (zh) | 枳促分裂原活化蛋白激酶基因PtrMAPK克隆及用于提高植物抗旱能力 | |
CN105524933A (zh) | OsJMJ714影响水稻籽粒大小以及盐胁迫耐性的功能及其应用 | |
WO2022188288A1 (zh) | 与水稻氮吸收与转化相关的蛋白质及其编码基因与应用 | |
CN105087589B (zh) | 一种启动子元件OsEmb2及利用其培育转基因水稻的方法和应用 | |
CN104774826B (zh) | 一种组蛋白脱乙酰化酶及其编码基因和应用 | |
CN113913440A (zh) | GhD1119基因调控陆地棉开花方面的应用 | |
CN107384940A (zh) | 大豆种子特异性磺肽素基因、其编码蛋白及其应用 | |
Parks et al. | Composite plants for a composite plant: an efficient protocol for root studies in the sunflower using composite plants approach | |
CN103525825B (zh) | 一种植物耐锰毒害重要基因ShMDH1的克隆及其应用 | |
CN104611335A (zh) | 花生特异启动子AhRSP与应用 | |
CN108795942A (zh) | 一种水稻外因胁迫诱导表达启动子Psubs3及其应用 | |
Tripathi et al. | Review on Biotechnological advances in Vigna radiata and their future prospects | |
CN108148849A (zh) | 一种苹果MdPHR1基因及其制备方法和应用 | |
CN104805065B (zh) | 一种水稻组蛋白脱乙酰化酶及其编码基因和应用 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
GR01 | Patent grant | ||
GR01 | Patent grant |