CN105535959A - 单纯性疱疹病毒i型ul18基因缺失减活疫苗的制备方法 - Google Patents

单纯性疱疹病毒i型ul18基因缺失减活疫苗的制备方法 Download PDF

Info

Publication number
CN105535959A
CN105535959A CN201511007010.9A CN201511007010A CN105535959A CN 105535959 A CN105535959 A CN 105535959A CN 201511007010 A CN201511007010 A CN 201511007010A CN 105535959 A CN105535959 A CN 105535959A
Authority
CN
China
Prior art keywords
gene
fragment
plasmid
obtains
live vaccine
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Withdrawn
Application number
CN201511007010.9A
Other languages
English (en)
Inventor
王一飞
任哲
程江
王巧利
王璐
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Jinan University
University of Jinan
Original Assignee
Jinan University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Jinan University filed Critical Jinan University
Priority to CN201511007010.9A priority Critical patent/CN105535959A/zh
Publication of CN105535959A publication Critical patent/CN105535959A/zh
Withdrawn legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/51Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
    • A61K2039/525Virus
    • A61K2039/5254Virus avirulent or attenuated
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2710/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA dsDNA viruses
    • C12N2710/00011Details
    • C12N2710/16011Herpesviridae
    • C12N2710/16034Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

本发明提供一种单纯性疱疹病毒I型UL18基因缺失减活疫苗的制备方法,包括如下步骤:S1单纯性疱疹病毒I型UL18基因的同源重组敲除,得到不含UL18基因和外源基因的重组菌株,所述同源重组敲除的重组敲除系统为包含BAC-HSV-1载体和pREDI?重组质粒的宿主菌;S2?BAC载体的切除及HSV-1?UL18基因缺失减活疫苗的获得。本发明属于生物医药技术领域,通过本发明提供的方法可以制备得到减毒活疫苗,具有疫苗安全有效、不易发生毒力回复等优点,可有效防治HSV-1的感染。

Description

单纯性疱疹病毒I型UL18基因缺失减活疫苗的制备方法
技术领域
本发明属于生物医药技术领域,尤其涉及一种单纯性疱疹病毒I型UL18基因缺失减活疫苗的制备方法。
背景技术
单纯疱疹病毒(Herpessimplexvirus,HSV),属于疱疹病毒科(Herpesviridaefamily),α疱疹病毒亚科(Alphaherpesvirinaefamily)。HSV病毒为双链DNA病毒,从外到内含有囊膜、皮层、衣壳及基因组等四种病毒结构。HSV-1是单纯疱疹病毒的一种,主要引起喉、口、眼、脸及神经系统的感染,可引起疱疹性脑炎,唇疱疹等多种疾病。有调查结果显示,90%以上的人一生中均会受到疱疹病毒的感染,单纯疱疹病毒感染已成为世界上第四大的传染性疾病。
HSV病毒在细胞内的增殖是一个有序的复杂过程,按先后顺序HSV病毒的胞内增殖过程大致可以分为以下几个阶段:1)病毒吸附于宿主细胞膜的表面;2)病毒穿过细胞膜;3)病毒基因组进入细胞核内;4)病毒基因的表达;5)基因组DNA的复制;6)病毒核衣壳的组装;7)病毒颗粒的形成;8)子代病毒的释放。HSV病毒在细胞内基因组DNA的复制是病毒产生致病性的必须过程,若缺少该过程,将不能组装成完整的病毒颗粒,从而严重减低对机体的致病性。
目前临床上治疗HSV病毒感染的主要药物是以阿昔洛韦(ACV)为代表的核苷类似物,为临床治疗HSV感染的“金标准”。此类药物均通过影响病毒DNA的复制过程而发挥抗病毒作用,为HSV病毒复制过程特异性的抑制药物。这类药物在在上世纪80年代开始ACV耐药株就有出现,且在接受骨髓移植病人、免疫缺陷人群和艾滋病人群体中更易出现耐药。目前临床应用最多的药物还是核苷类似物,由于此类药物的过多应用,耐药的问题也越来越严重,尤其是在发生耐药后没有很好的替代药物的治疗,往往给患者带来极大的痛苦。目前并无单纯疱疹病毒感染,尤其是复发性感染的特效治疗方法,抗病毒药物常规用药虽能缓解一些临床症状,但不能彻底清除体内潜伏的病毒,也不能减少复发次数,因此迫切需要开发能有效防治单纯疱疹病毒感染的疫苗。
病毒减毒活疫苗是最为经典的疫苗形式,传统的减毒活疫苗主要是通过连续培养筛选得到的,但这种方法耗时费力,用这种方法很难得到致病性降低的单纯疱疹病毒毒株。中国专利申请201010253601.5公开了单纯疱疹病毒Ⅰ型基因重组减毒活疫苗及其制备方法,该减毒活疫苗敲除了单纯疱疹病毒Ⅰ型基因组中的UL43、UL44、UL45、UL46和UL47基因。该减毒活疫苗是敲除了其基因组中的复制或感染非必需基因片段,能够诱导机体的免疫应答系统,及时清除感染的病毒,抑制感染的进一步发展,但其制备方法有诸多不足之处:(1)选取拟敲除基因序列上下游700bp至2000bp的同源侧翼序列和荧光蛋白基因组成同源重组框,由于目的片段太长使PCR扩增困难;(2)选择pShuttle-CMV载体,同源重组框整合到拟敲除基因的正确位置效率偏低,成功机率不大;(3)用荧光蛋白基因代替拟敲除病毒基因用于筛选鉴定,虽然此方法快速、简便,但最终未能将荧光蛋白基因去除,构建的减毒活疫苗仍表达该蛋白。
因此,现有技术存在减毒活疫苗的制备方法复杂、成功效率偏低等缺点。
发明内容
为解决现有技术中存在的问题,本发明提供一种单纯疱疹病毒I型UL18基因缺失减活疫苗的制备方法,通过该方法可以制备得到减毒活疫苗,具有疫苗安全有效、不易发生毒力回复等优点,可有效防治HSV-1的感染。
本发明提供一种单纯疱疹病毒I型UL18基因缺失减活疫苗的制备方法,包括如下步骤:
S1单纯疱疹病毒I型UL18基因的同源重组敲除,得到不含UL18基因和外源基因的重组菌株,所述同源重组敲除的重组敲除系统为包含BAC-HSV-1载体和pREDI重组质粒的宿主菌;
S2BAC载体的切除及HSV-1UL18基因缺失减活疫苗的获得。
优选地,所述步骤S1包括如下步骤:
S1.1pREDI重组质粒的构建:设计启动子PrhaB的PCR扩增引物,PCR扩增得到PrhaB片段;设计I-SceI的PCR扩增引物,PCR扩增得到I-SecI片段;将所述PrhaB片段和所述I-SecI片段通过重组PCR连接,得到PrhaB-I-SecI片段;将所述PrhaB-I-SecI片段和pKD46λ-redrecombinase载体连接,获得pREDI重组质粒;
S1.2重组敲除系统的构建:将所述pREDI重组质粒转入含BAC-HSV-1载体的宿主菌中,得到同源重组敲除的重组敲除系统;
S1.3UL18基因同源重组片段的PCR扩增:以所述重组敲除系统的Kam-SacB全片段为模板,以CCCACCCCCCCGTGGGTCTAGCCGGGCCGGCGCCGATCCACGCGGCAGG(SEQIDNO.1)为上游引物,TGGCTTTGTTGAATAAATCGCGACCACGGCCAGAGCGACCCGTCC(SEQIDNO.2)为下游引物PCR扩增获得UL18基因下游同源片段A-C段;以GGACGGGTCGCTCTGGCCGTGGTCGCGATTTATTCAACAAAGCCACG(SEQIDNO.3)为上游引物,GGCCTAGGGATAACAGGGTAATTGCCAGTGTTACAACCAATTAACC(SEQIDNO.4)为下游引物,PCR扩增获得正向筛选标记基因卡那霉素抗性基因Kam片段;以CTGGCAATTACCCTGTTATCCCTAGGCCCGTAGTCTGCAAATCCTTTT(SEQIDNO.5)为上游引物,CATCGCGATACCCTCGGGCATCTCGCATCTTGCAAGAATGGGCCTCGTT(SEQIDNO.6)为下游引物,PCR扩增获得反向筛选标记基因SacB-B片段;以GGACGGGTCGCTCTGGCCGTGGTCGCGATTTATTCAACAAAGCCACG(SEQIDNO.7)为上游引物,CATCGCGATACCCTCGGGCATCTCGCATCTTGCAAGAATGGGCCTCGTT(SEQIDNO.8)为下游引物,通过第一次重组PCR将所述Kam片段与所述SacB-B片段连接,获得Kam-SacB-B片段;以Kam-SacB-B片段为模板,以TGGATGCCCACCCCCACCCCCCCGTGGGTCTAGCCGGGC(SEQIDNO.9)为上游引物,ATGCTGGCGGACGGCTTTGAAACTGACATCGCGATACCCTCGGGCATCTCG(SEQIDNO.10)为下游引物,通过第二次重组PCR将所述Kam-SacB-B片段与所述A-C段连接,获得A-C-Kam-SacB-B片段,即UL18基因同源重组片段;
S1.4携带正反选择标记基因的重组菌株的筛选:将所述UL18基因同源重组片段电转化至所述重组敲除系统中,通过正向筛选标记基因Kam进行重组细菌的筛选;对转化获得的单克隆进行PCR鉴定,确定筛选的重组菌株UL18基因的成功去除及正反标记基因的正确插入;
S1.5去除正反选择标记基因的重组菌株的鉴定:鼠李糖诱导I-SceI内切酶合成,切除Kam-SacB片段,发生第二次同源重组,得到不含UL18基因和外源基因的重组菌株。
本发明中重组敲除系统的构建与中国专利申请CN104894046中HSV-1病毒体外基因敲除系统的构建方案相同,在此将中国专利申请CN104894046的相关内容引入本发明中。
优选地,所述步骤S2包括如下步骤:
S2.1将所述不含UL18基因和外源基因的重组菌株进行扩大培养,进行质粒抽提,获得BAC-17.37ΔUL18质粒,电转化至Vero-pCDNA3.1-UL18-Cre细胞,使用含G418的培养基进行培养,通过蓝白斑实验挑选白斑,反复冻融,离心取上清得到HSV-1UL18基因缺失减活疫苗;
S2.2将S2.1得到的HSV-1UL18基因缺失减活疫苗感染Vero-pCDNA3.1-UL18细胞,再通过
蓝白斑实验挑取白斑,反复冻融,离心取上清,得到纯化后的HSV-1UL18基因缺失减活疫苗。
优选地,所述质粒抽提采用BAC大量抽提试剂盒进行;所述含G418的培养基包括DMEM基础培养基、1~4%体积百分含量的胎牛血清和0.5~2ug/ml的G418。
优选地,所述Vero-pCDNA3.1-UL18-Cre细胞的制备包括如下步骤:
A)以BAC-17.37穿梭质粒为模板,设计引物扩增UL18基因,将该基因片段用BamHI和BstXI限制性内切酶酶切后亚克隆到pCDNA3.1(+)质粒,得到pCDNA3.1-UL18质粒;
B)通过反转录P1噬菌体的RNA,扩增得到Cre基因片段,将所述pCDNA3.1-UL18质粒和Cre基因片段经BamHI酶切后用T4连接酶进行连接,挑选单克隆进行Cre基因和UL18基因的PCR鉴定和测序,得到真核表达pCDNA3.1-UL18-CRE质粒;
C)将所述pCDNA3.1-UL18-CRE质粒利用lipo2000脂质体转染到Vero细胞内,使用G418溶液进行筛选,得到Vero-pCDNA3.1-UL18-CRE细胞。
优选地,所述Vero-pCDNA3.1-UL18细胞的制备包括如下步骤:
A)以BAC-17.37穿梭质粒为模板,设计引物扩增UL18基因,将该基因片段用BamHI和BstXI限制性内切酶酶切后亚克隆到pCDNA3.1(+)质粒,得到pCDNA3.1-UL18质粒;
B)将所述pCDNA3.1-UL18质粒利用lipo2000脂质体转染到Vero细胞内,使用G418溶液进行筛选,得到Vero-pCDNA3.1-UL18细胞。
优选地,所述UL18基因的扩增引物包括:上游引物:TAACCATGGGCATGCTGGCGGACGGCTTT(SEQIDNO.11);下游引物:GCGCTCGAGGGGATAGCGTATAACGGGGGC(SEQIDNO.12)。
与现有技术相比,本发明的有益效果包括:
(1)本发明提供的制备方法简单、高效,制得的HSV-1UL18基因缺失减活疫苗不易发生毒力回复,其病毒度滴度和感染能力明显减弱,保留了较高的免疫原性,进入机体后仅能刺激机体产生免疫应答而无致病作用,安全有效。
(2)本发明提供的HSV-1UL18基因缺失减活疫苗的制备方法合理、简单、高效,BAC载体上的red基因表达能够提高同源重组效率,鼠李糖诱导的I-SceI内切酶合成使基因组发生第二次同源重组,切除外源性抗性基因和SacB基因,在敲除目的基因的同时未引入外源基因,可控性强。
(3)构建的Vero-pCDNA3.1-UL18-CRE细胞可以在切割去掉BAC质粒的同时,还可以提供基因缺失病毒株生长所需的VP23蛋白,使得HSV-1UL18基因缺失减活疫苗得到顺利的纯化筛选,提高了纯化效率。
附图说明
图1单纯性疱疹病毒I型UL18基因缺失减活疫苗的构建策略示意图。
图2Cre基因的PCR扩增产物验证电泳图;其中,M指DNAmarker,1指非相关条带,2指Cre基因目标条带。
图3UL18基因的PCR扩增产物验证电泳图;其中,M指DNAmarker,1指阳性对照,2指UL18基因目标条带。
图4携带正反选择标记基因的PCR扩增产物验证电泳图;其中,A指UL18基因的验证电泳图,B指Kam片段的验证电泳图,C指SacB片段的验证电泳图,M指DNAmarker,P指阳性对照,N指阴性对照。
图5去除正反选择标记基因的PCR扩增产物验证电泳图;其中A指UL18基因的验证电泳图,B指Kam片段的验证电泳图,C指SacB片段的验证电泳图,M指DNAmarker,P指阳性对照,N指阴性对照。
具体实施方式
下面结合附图和实施例对本发明做进一步详细说明。
本发明技术方案中单纯性疱疹病毒I型UL18基因缺失减活疫苗的构建策略示意图如图1所示。
实施例1UL18基因表达载体的真核细胞株的构建
以BAC-17.37穿梭质粒为模板,设计引物(SEQIDNO.5、SEQIDNO.6)扩增UL18基因(2696bp),将该基因片段用BamHI和BstXI限制性内切酶酶切后亚克隆到pCDNA3.1(+)质粒(购自优宝生物公司,货号VT1001),得到pCDNA3.1-UL18质粒;
通过反转录P1噬菌体的RNA,扩增得到Cre基因片段,将所述pCDNA3.1-UL18质粒和Cre基因片段经BamHI酶切后用T4连接酶进行连接,挑选单克隆进行Cre基因和UL18基因的PCR鉴定,结果如图2和图3所示,得到真核表达pCDNA3.1-UL18-CRE质粒;
将所述pCDNA3.1-UL18-CRE质粒利用lipo2000脂质体(购自invitrogen,货号为11668-019)转染到Vero细胞(购自美国ATCC公司)内,使用1mg/ml浓度的G418溶液(购自东巨化工公司)进行筛选,得到Vero-pCDNA3.1-UL18-CRE细胞。
将所述pCDNA3.1-UL18质粒利用lipo2000脂质体转染到Vero细胞内,使用1mg/ml浓度的G418溶液进行筛选,得到Vero-pCDNA3.1-UL18细胞。
实施例2HSV-1UL18基因的同源重组敲除
2.1pREDI重组质粒的构建
设计启动子PrhaB的PCR扩增引物,PCR扩增得到PrhaB片段(2.0kb);设计I-SceI的PCR扩增引物,PCR扩增得到I-SecI片段(0.7kb);将所述PrhaB片段和所述I-SecI片段通过重组PCR连接,得到PrhaB-I-SecI片段;将所述PrhaB-I-SecI片段和pKD46λ-redrecombinase载体连接,获得pREDI重组质粒。pREDI重组质粒具有由L-阿拉伯糖诱导启动的λ-redrecombinase,以及由鼠李糖诱导启动的I-SecI内切酶基因。
2.2重组敲除系统的构建
将构建的pREDI重组质粒转入含BAC-HSV-1载体的宿主菌中,宿主菌为EPI300E.Coli,得到同源重组敲除的重组敲除系统。
2.3UL18基因同源重组片段的PCR扩增
以所述重组敲除系统的Kam-SacB全片段为模板,以CCCACCCCCCCGTGGGTCTAGCCGGGCCGGCGCCGATCCACGCGGCAGG(SEQIDNO.1)为上游引物,TGGCTTTGTTGAATAAATCGCGACCACGGCCAGAGCGACCCGTCC(SEQIDNO.2)为下游引物PCR扩增获得UL18基因下游同源片段A-C段;以GGACGGGTCGCTCTGGCCGTGGTCGCGATTTATTCAACAAAGCCACG(SEQIDNO.3)为上游引物,GGCCTAGGGATAACAGGGTAATTGCCAGTGTTACAACCAATTAACC(SEQIDNO.4)为下游引物,PCR扩增获得正向筛选标记基因卡那霉素抗性基因Kam片段;以CTGGCAATTACCCTGTTATCCCTAGGCCCGTAGTCTGCAAATCCTTTT(SEQIDNO.5)为上游引物,CATCGCGATACCCTCGGGCATCTCGCATCTTGCAAGAATGGGCCTCGTT(SEQIDNO.6)为下游引物,PCR扩增获得反向筛选标记基因SacB-B片段;以GGACGGGTCGCTCTGGCCGTGGTCGCGATTTATTCAACAAAGCCACG(SEQIDNO.7)为上游引物,CATCGCGATACCCTCGGGCATCTCGCATCTTGCAAGAATGGGCCTCGTT(SEQIDNO.8)为下游引物,通过第一次重组PCR将所述Kam片段与所述SacB-B片段连接,获得Kam-SacB-B片段;以Kam-SacB-B片段为模板,以TGGATGCCCACCCCCACCCCCCCGTGGGTCTAGCCGGGC(SEQIDNO.9)为上游引物,ATGCTGGCGGACGGCTTTGAAACTGACATCGCGATACCCTCGGGCATCTCG(SEQIDNO.10)为下游引物,通过第二次重组PCR将所述Kam-SacB-B片段与所述A-C段连接,获得A-C-Kam-SacB-B片段,即UL18基因同源重组片段;
2.4携带正反选择标记基因的重组菌株的筛选
将所述UL18基因同源重组片段电转化至所述重组敲除系统中,通过正向筛选标记基因Kam进行重组细菌的筛选;对转化获得的单克隆进行PCR鉴定,确定筛选的重组菌株UL18基因的成功去除及正反标记基因的正确插入,除了阳性对照组能够扩增出UL18基因外,阴性对照及三个克隆均不能够扩增出UL18基因,结果如图4-A所示,除了阴性对照组不能扩增出Kam和SacB片段外,其余组均能够正确扩增出Kam和SacB片段,结果如图4-B和4-C所示;通过第一次同源重组,完成了UL18基因的敲除,但引入了外源基因。
2.5去除正反选择标记基因的重组菌株的鉴定
鼠李糖诱导I-SceI内切酶合成,切除Kam-SacB片段,发生第二次同源重组,即在A-C-Kam-SacB-B片段的C片段与UL18基因下游片段之间进行第二次同源重组,得到不含UL18基因和外源基因的重组菌株。通过SacB反向筛选标记基因对正确去除标记基因的细菌进行筛选,获得完全去除标记基因的UL18敲除菌株,不含外源基因。通过PCR对挑选的克隆进行鉴定,除了阳性对照组能够扩增出UL18基因外,阴性对照及三个克隆均不能够扩增出UL18基因,结果如图5-A所示,证明了UL18基因的成功敲除。通过Kam和SacB扩增引物对Kam和SacB进行验证,除了阳性对照能扩增出Kam和SacB片段外,其余组均不能够扩增出Kam和SacB片段,说明Kam片段和SacB片段已从HSV-1基因组内去除成功,结果如图5-B和5-C所示。
实施例3BAC载体的切除及HSV-1UL18基因缺陷型毒株的获得
将所述不含UL18基因和外源基因的重组菌株进行扩大培养,采用BAC大量抽提试剂盒进行质粒抽提,获得BAC-17.37ΔUL18质粒,电转化至实施例1构建的Vero-pCDNA3.1-UL18-Cre细胞,使用含2%体积百分含量的胎牛血清和1ug/ml的G418的DMEM培养基进行培养,在细胞发生病变前24h,移去细胞培养液,然后用含1%琼脂糖和2%FBS的DMEM培养基覆盖,当形成可见病理效果后,加入含有400ug/mlX-gal(购自BioSynthAG瑞士)磷酸盐缓冲液,然后通过蓝白斑实验挑选白斑,反复冻融,离心取上清,得到HSV-1UL18基因缺失的DNA疫苗。
将得到的HSV-1UL18基因缺失的DNA疫苗感染实施例1制得的Vero-pCDNA3.1-UL18细胞,再通过蓝白斑实验挑取白斑,反复冻融,离心取上清,得到纯化后的HSV-1UL18基因缺失的DNA疫苗(HSV-1-ΔUL18)。
实施例4重组HSV-1UL18基因缺失的DNA疫苗的复制感染
六孔板内每孔接种4×105个Vero细胞,培养24小时,按感染复数(MOI)0.1、0.5和1分别用野生型HSV-1(购自美国ATCC公司)和实施例3制得的HSV-1-ΔUL18感染Vero细胞,每个滴度四个复孔,并设置不加病毒的正常细胞为对照。实验结果表明野生型HSV-1病毒株72小时完全产生细胞病变效应(CPE),而HSV-1-ΔUL18病毒株>10天未观察到CPE,说明重组HSV-1-ΔUL18病毒株相对于野生型HSV-1而言复制和感染能力明显降低,基本无感染能力。
实施例5重组HSV-1UL18基因缺失的DNA疫苗的致病能力及免疫能力
本实施例,皆采用小鼠为实验观察。每次都以100ul体积的病毒悬液或其他对照溶剂腹腔接种清洁级BALB/c小鼠(雄性,6-8周龄,体重(20土2)g,购自广东省实验动物中心)。注射前使用NO进行短暂处理。若无特别说,病毒均悬浮于含2%PFBS的DMEM中。每天保证小鼠同等且充足的食物和水。
分别向小鼠腹腔注射100ul体积5×105pfuHSV-1、HSV-1-ΔUL18病毒株,并设注射不含病毒株的溶剂为对照组,每组12只小鼠。结果如表2所示,野生型HSV-1注射组全部小鼠由于感染于8天后死亡。而其它小鼠组均得以存活。
继续饲养以上存活的小鼠,30天后以最初给予的相同剂量的野生型HSV-1病毒株腹腔注射进行免疫攻击,结果发现HSV-1-ΔUL18病毒感染组的小鼠都未发现死亡,只是在注射后初期表现出一些不适。而溶剂对照组小鼠在注射10天后皆死亡。
以上内容是结合具体的优选实施方式对本发明所作的进一步详细说明,不能认定本发明的具体实施只局限于这些说明。对于本发明所属技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明构思的前提下,还可以做出若干简单推演或替换,都应当视为属于本发明的保护范围。
SEQUENCELISTING
<110>暨南大学
<120>单纯性疱疹病毒I型UL18基因缺失减活疫苗的制备方法
<130>
<160>8
<170>PatentInversion3.3
<210>1
<211>49
<212>DNA
<213>人工序列
<400>1
cccacccccccgtgggtctagccgggccggcgccgatccacgcggcagg49
<210>2
<211>45
<212>DNA
<213>人工序列
<400>2
tggctttgttgaataaatcgcgaccacggccagagcgacccgtcc45
<210>3
<211>47
<212>DNA
<213>人工序列
<400>3
ggacgggtcgctctggccgtggtcgcgatttattcaacaaagccacg47
<210>4
<211>46
<212>DNA
<213>人工序列
<400>4
ggcctagggataacagggtaattgccagtgttacaaccaattaacc46
<210>5
<211>48
<212>DNA
<213>人工序列
<400>5
ctggcaattaccctgttatccctaggcccgtagtctgcaaatcctttt48
<210>6
<211>49
<212>DNA
<213>人工序列
<400>6
catcgcgataccctcgggcatctcgcatcttgcaagaatgggcctcgtt49
<210>7
<211>47
<212>DNA
<213>人工序列
<400>7
ggacgggtcgctctggccgtggtcgcgatttattcaacaaagccacg47
<210>8
<211>49
<212>DNA
<213>人工序列
<400>8
catcgcgataccctcgggcatctcgcatcttgcaagaatgggcctcgtt49
<210>9
<211>39
<212>DNA
<213>人工序列
<400>9
tggatgcccacccccacccccccgtgggtctagccgggc39
<210>10
<211>51
<212>DNA
<213>人工序列
<400>10
atgctggcggacggctttgaaactgacatcgcgataccctcgggcatctcg51
<210>11
<211>29
<212>DNA
<213>人工序列
<400>11
taaccatgggcatgctggcggacggcttt29
<210>12
<211>30
<212>DNA
<213>人工序列
<400>12
gcgctcgaggggatagcgtataacgggggc30

Claims (7)

1.一种单纯性疱疹病毒I型UL18基因缺失减活疫苗的制备方法,其特征在于:包括如下步骤:
S1单纯性疱疹病毒I型UL18基因的同源重组敲除,得到不含UL18基因和外源基因的重组菌株,所述同源重组敲除的重组敲除系统为包含BAC-HSV-1载体和pREDI重组质粒的宿主菌;
S2BAC载体的切除及HSV-1UL18基因缺失减活疫苗的获得。
2.根据权利要求1所述的单纯性疱疹病毒I型UL18基因缺失减活疫苗的制备方法,其特征在于:所述步骤S1包括如下步骤:
S1.1pREDI重组质粒的构建:设计启动子PrhaB的PCR扩增引物,PCR扩增得到PrhaB片段;设计I-SceI的PCR扩增引物,PCR扩增得到I-SecI片段;将所述PrhaB片段和所述I-SecI片段通过重组PCR连接,得到PrhaB-I-SecI片段;将所述PrhaB-I-SecI片段和pKD46λ-redrecombinase载体连接,获得pREDI重组质粒;
S1.2重组敲除系统的构建:将所述pREDI重组质粒转入含BAC-HSV-1载体的宿主菌中,得到同源重组敲除的重组敲除系统;
S1.3UL18基因同源重组片段的PCR扩增:以所述重组敲除系统的Kam-SacB全片段为模板,以CCCACCCCCCCGTGGGTCTAGCCGGGCCGGCGCCGATCCACGCGGCAGG为上游引物,TGGCTTTGTTGAATAAATCGCGACCACGGCCAGAGCGACCCGTCC为下游引物PCR扩增获得UL18基因下游同源片段A-C段;以GGACGGGTCGCTCTGGCCGTGGTCGCGATTTATTCAACAAAGCCACG为上游引物,GGCCTAGGGATAACAGGGTAATTGCCAGTGTTACAACCAATTAACC为下游引物,PCR扩增获得正向筛选标记基因卡那霉素抗性基因Kam片段;以CTGGCAATTACCCTGTTATCCCTAGGCCCGTAGTCTGCAAATCCTTTT为上游引物,CATCGCGATACCCTCGGGCATCTCGCATCTTGCAAGAATGGGCCTCGTT为下游引物,PCR扩增获得反向筛选标记基因SacB-B片段;以GGACGGGTCGCTCTGGCCGTGGTCGCGATTTATTCAACAAAGCCACG为上游引物,CATCGCGATACCCTCGGGCATCTCGCATCTTGCAAGAATGGGCCTCGTT为下游引物,通过第一次重组PCR将所述Kam片段与所述SacB-B片段连接,获得Kam-SacB-B片段;以Kam-SacB-B片段为模板,以TGGATGCCCACCCCCACCCCCCCGTGGGTCTAGCCGGGC为上游引物,ATGCTGGCGGACGGCTTTGAAACTGACATCGCGATACCCTCGGGCATCTCG为下游引物,通过第二次重组PCR将所述Kam-SacB-B片段与所述A-C段连接,获得A-C-Kam-SacB-B片段,即UL18基因同源重组片段;
S1.4携带正反选择标记基因的重组菌株的筛选:将所述UL18基因同源重组片段电转化至所述重组敲除系统中,通过正向筛选标记基因Kam进行重组细菌的筛选;对转化获得的单克隆进行PCR鉴定,确定筛选的重组菌株UL18基因的成功去除及正反标记基因的正确插入;
S1.5去除正反选择标记基因的重组菌株的鉴定:鼠李糖诱导I-SceI内切酶合成,切除Kam-SacB片段,发生第二次同源重组,得到不含UL18基因和外源基因的重组菌株。
3.根据权利要求1所述的单纯疱疹病毒I型UL18基因缺失减活疫苗的制备方法,其特征在于:所述步骤S2包括如下步骤:
S2.1将所述不含UL18基因和外源基因的重组菌株进行扩大培养,进行质粒抽提,获得BAC-17.37ΔUL18质粒,电转化至Vero-pCDNA3.1-UL18-Cre细胞,使用含G418的培养基进行培养,通过蓝白斑实验挑选白斑,反复冻融,离心取上清得到HSV-1UL18基因缺失减活疫苗;
S2.2将S2.1得到的HSV-1UL18基因缺失减活疫苗感染Vero-pCDNA3.1-UL18细胞,再通过
蓝白斑实验挑取白斑,反复冻融,离心取上清,得到纯化后的HSV-1UL18基因缺失减活疫
苗。
4.根据权利要求3所述的单纯疱疹病毒I型UL18基因缺失减活疫苗的制备方法,其特征在于:所述质粒抽提采用BAC大量抽提试剂盒进行;所述含G418的培养基包括DMEM基础培养基、1~4%体积百分含量的胎牛血清和0.5~2ug/ml的G418。
5.根据权利要求3所述的单纯疱疹病毒I型UL18基因缺失减活疫苗的制备方法,其特征在于:所述Vero-pCDNA3.1-UL18-Cre细胞的制备包括如下步骤:
A)以BAC-17.37穿梭质粒为模板,设计引物扩增UL18基因,将该基因片段用BamHI和BstXI限制性内切酶酶切后亚克隆到pCDNA3.1(+)质粒,得到pCDNA3.1-UL18质粒;
B)通过反转录P1噬菌体的RNA,扩增得到Cre基因片段,将所述pCDNA3.1-UL18质粒和Cre基因片段经BamHI酶切后用T4连接酶进行连接,挑选单克隆进行Cre基因和UL18基因的PCR鉴定和测序,得到真核表达pCDNA3.1-UL18-CRE质粒;
C)将所述pCDNA3.1-UL18-CRE质粒利用lipo2000脂质体转染到Vero细胞内,使用G418溶液进行筛选,得到Vero-pCDNA3.1-UL18-CRE细胞。
6.根据权利要求3所述的单纯疱疹病毒I型UL18基因缺失减活疫苗的制备方法,其特征在于:所述Vero-pCDNA3.1-UL18细胞的制备包括如下步骤:
A)以BAC-17.37穿梭质粒为模板,设计引物扩增UL18基因,将该基因片段用BamHI和BstXI限制性内切酶酶切后亚克隆到pCDNA3.1(+)质粒,得到pCDNA3.1-UL18质粒;
B)将所述pCDNA3.1-UL18质粒利用lipo2000脂质体转染到Vero细胞内,使用G418溶液进行筛选,得到Vero-pCDNA3.1-UL18细胞。
7.根据权利要求5或6所述的单纯疱疹病毒I型UL18基因缺失减活疫苗的制备方法,其特征在于:所述UL18基因的扩增引物包括:上游引物:TAACCATGGGCATGCTGGCGGACGGCTTT;下游引物:GCGCTCGAGGGGATAGCGTATAACGGGGGC。
CN201511007010.9A 2015-12-30 2015-12-30 单纯性疱疹病毒i型ul18基因缺失减活疫苗的制备方法 Withdrawn CN105535959A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201511007010.9A CN105535959A (zh) 2015-12-30 2015-12-30 单纯性疱疹病毒i型ul18基因缺失减活疫苗的制备方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201511007010.9A CN105535959A (zh) 2015-12-30 2015-12-30 单纯性疱疹病毒i型ul18基因缺失减活疫苗的制备方法

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN105535959A true CN105535959A (zh) 2016-05-04

Family

ID=55815835

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201511007010.9A Withdrawn CN105535959A (zh) 2015-12-30 2015-12-30 单纯性疱疹病毒i型ul18基因缺失减活疫苗的制备方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN105535959A (zh)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2019179998A1 (en) 2018-03-19 2019-09-26 Boehringer Ingelheim Vetmedica Gmbh New ehv with inactivated ul18 and/or ul8

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104894046A (zh) * 2015-05-29 2015-09-09 暨南大学 Hsv-1病毒体外基因敲除系统及其制备方法与应用

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104894046A (zh) * 2015-05-29 2015-09-09 暨南大学 Hsv-1病毒体外基因敲除系统及其制备方法与应用

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2019179998A1 (en) 2018-03-19 2019-09-26 Boehringer Ingelheim Vetmedica Gmbh New ehv with inactivated ul18 and/or ul8
CN111867625A (zh) * 2018-03-19 2020-10-30 勃林格殷格翰动物保健有限公司 具有失活ul18和/或ul8的新ehv
US11384365B2 (en) 2018-03-19 2022-07-12 Boehringer Ingelheim Vetmedica Gmbh EHV with inactivated UL18 and/or UL8

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN102618508B (zh) 一种重组猪伪狂犬病毒及其构建方法和应用
CN110218706B (zh) 表达h7n9亚型高致病性禽流感病毒ha蛋白的重组火鸡疱疹病毒的构建与应用
CN101820905A (zh) 重组锦鲤疱疹病毒(KHV)或鲤疱疹病毒3(CyHV-3)及用于预防普通鲤鱼或锦鲤中由KHV/CyHV-3引发的疾病的疫苗
Vilela et al. Application of CRISPR/Cas9 in understanding avian viruses and developing poultry vaccines
CN104480142A (zh) 一种鸭瘟病毒基因缺失转移载体及其应用
CN115927473B (zh) 一种用于单纯疱疹病毒感染性疾病的基因治疗药物
CN104928261B (zh) 伪狂犬病病毒la‑a株、构建方法及其应用
Tai et al. In vitro characterization of felid herpesvirus 1 (FHV-1) mutants generated by recombineering in a recombinant BAC vector
CN102268410B (zh) 一株适应幼仓鼠肾传代细胞的新城疫病毒耐热弱毒株及其制备方法和应用
Chen et al. Construction of a full-length infectious bacterial artificial chromosome clone of duck enteritis virus vaccine strain
CN105121634B (zh) 具有提高的病毒生产能力的细胞系及其生产方法
CN105535959A (zh) 单纯性疱疹病毒i型ul18基因缺失减活疫苗的制备方法
Kamel et al. The Quest for Immunity: Exploring Human Herpesviruses as Vaccine Vectors
CN112661819A (zh) 新型冠状病毒rbd的重组病毒样颗粒及其构建方法
CN101967466A (zh) Orf7缺陷型水痘病毒株、含有该毒株的疫苗及其应用
CN101926992B (zh) 单纯疱疹病毒i型基因重组减毒活疫苗及其制备方法
CN103333916A (zh) 适应鸡新城疫病毒增殖的bhk细胞系的建立方法及其应用
CN105695421A (zh) 一种长效的重组狂犬病病毒疫苗株及其制备方法
CN105561303A (zh) 单纯疱疹病毒i型ul5基因缺失的dna疫苗的制备方法
CN105641692A (zh) 单纯疱疹病毒ⅰ型基因重组减毒活疫苗及其制备方法
CN104357460B (zh) 重组鸭病毒性肠炎病毒、制备方法和应用
CN111690688B (zh) 表达靶向REV的CRISPR/Cas9的重组马立克氏病病毒及其应用
CN102140441B (zh) 基于减毒痘苗病毒天坛株为载体的禽流感疫苗
CN106350475A (zh) 一种新型火鸡疱疹病毒的细菌人工染色体、构建方法与应用
CN102657861A (zh) 单纯疱疹病毒ⅰ型基因重组减毒活疫苗及其制备方法

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
WW01 Invention patent application withdrawn after publication
WW01 Invention patent application withdrawn after publication

Application publication date: 20160504