CN105296507A - 拉沙热病毒样颗粒、其制备方法与应用 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及一种拉沙热病毒样颗粒、其制备方法与应用。本发明将拉沙热病毒Z、N、GPC基因分别与昆虫细胞表达载体连接,利用杆状病毒/昆虫细胞表达系统来生产拉沙热病毒样颗粒。将所述拉沙热病毒样颗粒与防腐剂和佐剂混合,即制备得到拉沙热疫苗。本发明的拉沙热病毒样颗粒及其疫苗能高效诱导机体产生中和抗体,填补了国内此类疫苗的空白。本发明的制备方法适于工业化生产,具有成本低、安全性高等优点。
Description
技术领域
本发明涉及一种拉沙热病毒样颗粒、其制备方法与应用,属于免疫学及基因工程技术领域。
背景技术
拉沙热(Lassafever)是一种急性病毒性疾病,其病原为拉沙热病毒(Lassavirus,LASV)。在20世纪50年代首次发现拉沙热的发生,但直到1969年才分离出拉沙热病毒。其临床症状表现差异很大,导致诊断非常困难。拉沙热主要在西非流行,据统计,每年西非LASV感染者超过20万人,造成3000多人死亡。LASV感染的主要途径是与拉沙热病人和纳塔尔种多乳房鼠(Mastomysnatalensis)(一种广泛分布、高度共栖的啮齿类动物)接触。最近报道有旅客经商务飞机将LASV传入德国、荷兰、英国和美国,表明该病原体高危险、高传染性,有传入我国的可能。LASV被列为A类生物武器制剂,在世界范围内,拉沙热一直是公共卫生方面受关注的一个焦点,但是目前尚没有批准的拉沙热疫苗。
LASV是一种两节段的单股负链RNA病毒,有包膜,表面覆盖长约8~10nm的方形树突,属沙粒病毒科(Arenaviridae)的旧世界群(OldWorldgroup)。LASV基因组由两节段的双义(ambisense)单链RNA组成,编码5个结构蛋白,分别是3.4kb的S链和7.2kb的L链。S链的两个基因编码核蛋白(NP)、包膜糖蛋白GP1和GP2。L链的两个基因编码病毒聚合酶蛋白(L)和Z蛋白。GP1与GP2蛋白,是由G基因编码的前体糖蛋白GPC经翻译后裂解而来,GP1与GP2以四聚体形式构成横跨病毒囊膜的表面纤突,其上具不同抗原决定簇,与病毒的中和作用有关。
近年来,应用病毒样颗粒作为疫苗逐渐受到重视,特别是生物安全要求高的烈性病毒。病毒样颗粒是由病毒的结构蛋白自主包装形成,与天然病毒的形态一致,且能够诱导机体产生细胞免疫和体液免疫。且病毒样颗粒不包裹核酸,不能复制,因此也没有感染性,是一种安全的抗原。
目前尚无利用杆状病毒/昆虫细胞表达系统制备拉沙热病毒样颗粒方面的报道。因此,探索拉沙热病毒样颗粒的制备方法,应对日趋严峻的拉沙热疫情防控形势成为亟待解决的问题。
发明内容
本发明针对现有技术的不足,提供一种利用杆状病毒-昆虫细胞表达系统高效制备拉沙热病毒样颗粒的方法。
本发明的另一目的是提供拉沙热病毒样颗粒及其应用。
本发明的技术方案如下:
一种拉沙热病毒样颗粒的制备方法,包括以下步骤:
(1)合成拉沙热病毒Z基因、拉沙热病毒N基因和拉沙热病毒GPC基因;
所述拉沙热病毒Z基因的核苷酸序列如SEQIDNO:1所示;拉沙热病毒N基因的核苷酸序列如SEQIDNO:3所示;拉沙热病毒GPC基因的核苷酸序列如SEQIDNO:5所示;
(2)将步骤(1)制得的拉沙热病毒Z基因、拉沙热病毒N基因和拉沙热病毒GPC基因分别插入到昆虫细胞表达载体中,转化含有重组杆状病毒基因组的大肠杆菌DH10Bac感受态细胞,提取阳性质粒,制得整合了拉沙热病毒Z基因、拉沙热病毒N基因和拉沙热病毒GPC基因的重组杆状病毒Bacmid质粒;
(3)将步骤(2)制得的重组杆状病毒Bacmid质粒分别转染昆虫细胞,拯救获得整合了拉沙热病毒Z基因的重组杆状病毒、整合了拉沙热病毒N基因的重组杆状病毒、整合了拉沙热病毒GPC基因的重组杆状病毒;
(4)将步骤(3)制得的整合了拉沙热病毒Z基因的重组杆状病毒、整合了拉沙热病毒N基因的重组杆状病毒、整合了拉沙热病毒GPC基因的重组杆状病毒混合后接种昆虫细胞,培养后收获上清,上清经纯化,制得拉沙热病毒样颗粒。
上述拉沙热病毒Z基因的GenBank登录号为:KM821898,拉沙热病毒N基因的GenBank登录号为:KM821845,拉沙热病毒GPC基因的GenBank登录号为:KM821845。
根据本发明优选的,所述步骤(2)中,昆虫细胞表达载体选自:AcRP23-lacZ、AcRP6-SC、AcUWl-lacZ、BacPAK6、BactoPac、Bacmid、p2Bac、p2Blue、BlucBacII、p89B310、pAc360、pAc373、pAcAB3、pAcAB4、PAcAS3、pAcC129、pAcC4、DZI、pAcGP67、pAcIEl、pAcJPl、pAcMLF2、pAcMLF7、pAcMLF8、pAcMPl、pAcMP2、pAcRP23、pAcRP25、pAcRW4、pAcsMAG、pAcUWl、pAcUW21、pAcUW2A、pAcUW2B、pAcUW3、pAcUW31、pAcUW41、pAcUW42、pAcUW43、pAcUW51、pAcVC2、pAcVC3、pAcYMl、pAcJcC5、pBacl、pBac2、pBlueBacIII、pBlueBacHis、pEV55、mXIV、pIEINeo、pJVETL、pJVNhel、pJVP10、pJVrsMAG、pMBac、pP10、pPAKl、pPBac、pSHONEX1.1、pSYNXIVVI+、pSYNVI+wp、pSYNXIVVI-、pVL1391、pVL1392、pVL1393、pVL941、pVL945、pVL985、pVTBac、pBM030、pUAC-5、pFastBacDual、pFastBac1、pFastBacHTA、pFastBacHTB、pFastBacHTC、pFastBacDual之一或两种以上的混合;进一步优选的,所述步骤(2)中,昆虫细胞表达载体为pFastBac1。
根据本发明优选的,所述步骤(2)中,重组杆状病毒为重组苜蓿银纹夜蛾核型多角体病毒rAcMNPV。
根据本发明优选的,所述步骤(3)中,昆虫细胞选自草地贪夜蛾(Spodopterafrugiperda)Sf21细胞系、昆虫细胞选自草地贪夜蛾(Spodopterafrugiperda)Sf9细胞系、昆虫细胞选自草地贪夜蛾(Spodopterafrugiperda)MimicSf9细胞系、甜菜夜蛾(Spodopteraexigua)Se301细胞系、BCIRL/AMCY-SeE-CLG1细胞系、BCIRL/AMCY-SeE-CLG4细胞系、粉纹夜蛾(Trichoplusiani)BTI-Tn-5B1-4细胞系、BTI-Tn-5C1细胞系、BTI-Tn-5F2细胞系,斜纹贪夜蛾(Spodopteralitura)ZSU-S1-1细胞系、IBL-SL1A细胞系、家蚕卵巢细胞系BmN之一;进一步优选的,昆虫细胞选自昆虫细胞选自草地贪夜蛾(Spodopterafrugiperda)Sf9细胞系。
根据本发明优选的,所述步骤(4)中,昆虫细胞选自草地贪夜蛾(Spodopterafrugiperda)Sf21细胞系、昆虫细胞选自草地贪夜蛾(Spodopterafrugiperda)Sf9细胞系、昆虫细胞选自草地贪夜蛾(Spodopterafrugiperda)MimicSf9细胞系、甜菜夜蛾(Spodopteraexigua)Se301细胞系、BCIRL/AMCY-SeE-CLG1细胞系、BCIRL/AMCY-SeE-CLG4细胞系、粉纹夜蛾(Trichoplusiani)BTI-Tn-5B1-4细胞系、BTI-Tn-5C1细胞系、BTI-Tn-5F2细胞系,斜纹贪夜蛾(Spodopteralitura)ZSU-S1-1细胞系、IBL-SL1A细胞系、家蚕卵巢细胞系BmN之一;进一步优选的,昆虫细胞选自草地贪夜蛾(Spodopterafrugiperda)Sf9细胞系。
根据本发明优选的,所述步骤(4)中,整合了拉沙热病毒Z基因的重组杆状病毒(AcMNPV-Z)、整合了拉沙热病毒N基因的重组杆状病毒(AcMNPV-N)、整合了拉沙热病毒GPC基因的重组杆状病毒(AcMNPV-GPC)按MOI(感染复数)比例2:1:1混合。
根据本发明优选的,所述步骤(4)中,纯化为采用蔗糖密度梯度离心进行纯化,蔗糖质量体积浓度为20%、30%和60%,单位g/mL。质量体积浓度30%和60%之间得到纯化拉沙热病毒样颗粒。
一种拉沙热病毒样颗粒,包含拉沙热病毒Z蛋白、拉沙热病毒N蛋白、拉沙热病毒G1蛋白、拉沙热病毒G2蛋白;所述的拉沙热病毒Z蛋白的氨基酸序列如SEQIDNO.2所示,所述的拉沙热病毒N蛋白的氨基酸序列如SEQIDNO.4所示,所述的拉沙热病毒G1蛋白的氨基酸序列如SEQIDNO.6所示,所述的拉沙热病毒G2蛋白的氨基酸序列如SEQIDNO.7所示。
上述拉沙热病毒样颗粒在制备拉沙热疫苗中的应用。
上述拉沙热病毒样颗粒在制备预防和/或治疗拉沙热的药物中的应用。
一种拉沙热疫苗,该疫苗是由上述拉沙热病毒样颗粒为药效成分与其他辅料复配制得。根据本发明优选的,所述其他辅料为防腐剂和/或佐剂。进一步优选的,所述佐剂为206佐剂。
上述制备方法中的操作如无特别说明,均可采用本领域常规操作条件。
有益效果
本发明采用杆状病毒表达系统在昆虫细胞生物反应器中安全、高效地生产拉沙热病毒样颗粒,所制备的拉沙热病毒样颗粒及其疫苗能高效诱导机体产生中和抗体,填补了国内此类疫苗的空白。本发明的制备方法适于工业化生产,具有成本低、安全性高等优点。
附图说明
图1为本发明实施例3中重组杆状病毒感染Sf9细胞产生细胞病变的结果;
图中,A:空白Sf9细胞;B:感染重组杆状病毒AcMNPV-Z;C:感染重组杆状病毒AcMNPV-N;D:感染重组杆状病毒AcMNPV-GPC。
图2为本发明实施例4中免疫荧光鉴定重组病毒表达拉沙热病毒蛋白的结果;
图中,A:感染野生型杆状病毒;B:感染重组杆状病毒AcMNPV-Z;C:感染重组杆状病毒AcMNPV-N;D:感染重组杆状病毒AcMNPV-GPC。
图3为本发明实施例4中WesternBlot鉴定拉沙热病毒样颗粒组成的结果;
图中,M:蛋白marker;1-2:AcMNPV-Z、AcMNPV-N、AcMNPV-GPC共感染的Sf9细胞;3野生型杆状病毒感染Sf9细胞(对照)。
图4为本发明实施例4中拉沙热病毒样颗粒的电镜与免疫电镜鉴定结果;
图中,A-C:拉沙热病毒样颗粒电镜结果;D-F:拉沙热病毒样颗粒免疫电镜结果。
图5为本发明实施例5中脾细胞SFCs和脾细胞产生细胞因子水平的分析结果;
图中,A:小鼠脾细胞中分泌IFN-γ的细胞数;B:小鼠脾细胞上清中产生的IL-2浓度;C:小鼠脾细胞上清中产生的IFN-γ浓度;D:小鼠脾细胞上清中产生的IL-4浓度。
图6本发明实施例5中拉沙热病毒样颗粒疫苗免疫小鼠后中和抗体水平。
具体实施方式
下面结合实施例对本发明的技术方案做进一步阐述,但本发明所保护范围不限于此。
若未特别指明,实施例均按照常规实验条件,如Sambrook等分子克隆实验手册(SambrookJ&RussellDW,Molecularcloning:alaboratorymanual,2001),或按照制造厂商说明书建议的条件。
实施例1重组转移载体的构建
1、拉沙热结构基因的获得
拉沙热病毒Z基因、拉沙热病毒N基因、拉沙热病毒GPC基因的核苷酸序列来源于GenBank(登录号分别为KM821898、KM821845和KM821845),核苷酸序列由上海生工合成,长度分别为297bp、1476bp和1710bp,并将目的序列连接至PUC57载体(购自ThermoFisherScientific公司),分别命名为PUC57-Z,PUC57-N,PUC57-GPC。
拉沙热病毒Z基因、拉沙热病毒N基因、拉沙热病毒GPC基因的原始核苷酸序列分别如SEQIDNO:1、SEQIDNO:3和SEQIDNO:5所示,由它们编码的氨基酸序列分别如SEQIDNO:2、SEQIDNO:4和SEQIDNO:6所示。
2、酶切、连接、转化及鉴定
将pFastBac1载体(购自Invitrogen公司)和PUC57-Z质粒进行酶切处理,酶切体系50μl,组成如下:
DNA10μl,限制性内切酶BamHI/限制性内切酶NotI各2μl,10×M缓冲溶液5μl,ddH2O31μl。
混匀后,在37℃条件下酶切5h。然后,纯化后的酶切产物用于DNA连接,连接体系20μl,组成如下:
缓冲液2μl,T4连接酶1μl,酶切目的产物7.5μl,载体1.5μl,ddH2O8μl。混匀后,16℃连接8h。
最后,将连接产物与感受态细胞(E.coliDH5)采用热休克方法进行转化,获得阳性质粒pFastBac1-Z。同样,按照上述方法通过酶切连接将拉沙热病毒N基因和拉沙热病毒GPC基因连接至pFastBac1载体,分别命名为pFastBac1-Z、pFastBac1-N、pFastBac1-GPC。
实施例2重组杆状病毒的构建
1、重组杆状病毒基因组的构建
将pFastBac1-Z、pFastBac1-N、pFastBac1-GPC转移载体转化E.coliDH10Bac感受态细胞(含有苜蓿银纹夜蛾核型多角体杆状病毒AcMNPV基因组,InvitrogenCatNO.10359-016),转化条件如下:
将2μlpFastBac1-Z、pFastBac1-N或pFastBac1-GPC与E.coliDH10Bac混匀后,冰浴35min,42℃热应激50s后,再进行冰浴3min,然后,加入1ml无抗性LB培养基,在37℃、200rpm条件下培养4~5h后,菌液进行10-1、10-2、10-3倍比连续稀释,从各稀释液中分别取100μl涂在含有三抗抗性细菌培养皿上(含50μg/ml卡那霉素、7μg/ml庆大霉素、10μg/ml四环霉素、X-gal),37℃培养48h后,进行蓝白斑筛选。
2、重组杆状病毒基因组的鉴定
在上述培养皿中,挑取白斑菌落,划线于含有三抗和X-gal的细菌培养皿上,继续培养48h后,挑取白色菌落,接菌至含三抗抗性的液体LB培养基(蛋白胨10g/L,酵母膏5g/L,氯化钠10g/L)中,在37℃、200rpm条件下培养12~16h后,采用碱裂解与异丙醇沉淀结合的方法提取重组杆状病毒基因组DNA。
实施例3重组杆状病毒的拯救
将提取的重组杆状病毒基因组DNA转染昆虫细胞Sf9,转染过程如下:
(1)将4μg重组DNA加入到250μl无血清和双抗的Grace培养液中,混匀,室温静止5min;
(2)将6μl脂质体Lipfectin2000加入到250μl无血清和双抗的Grace培养液中,混匀,室温静止5min;
(3)将上述(1)和(2)溶液等体积混合,室温静止20min;
(4)在上述(3)静止期间,将用6孔板培养好的草地贪夜蛾(Spodopterafrugiperda)Sf9细胞系(覆盖孔底面积已经达到70~80%,购自Invitrogen公司)用无血清和双抗的Grace培养液轻洗三次,然后,每孔加入1ml新鲜的Grace培养液,待备用;将(3)中混合物轻轻加入到每孔细胞中,轻轻混匀,在27℃条件下静止培养5~6h。
(5)将上述(4)每孔中的液体弃掉,加入2ml完全Grace培养液(含有双抗和10%血清),27℃条件下静止培养48~72h,收集细胞上清液,用其感染新培养的Sf9细胞,提高重组杆状病毒滴度,反复接种2代后,显微镜下观察细胞状态,收取细胞上清液,4℃保存备用。重组杆状病毒命名为AcMNPV-Z、AcMNPV-N、AcMNPV-GPC。
结果显示,重组杆状病毒AcMNPV-Z、AcMNPV-N、AcMNPV-GPC在Sf9细胞产生明显的细胞病变,空白组未见病变(图1)。
实施例4拉沙热病毒样颗粒的表达与鉴定
1、间接免疫荧光方法鉴定目的蛋白表达
采用间接免疫荧光检测拉沙热病毒的Z、N、GPC蛋白表达情况。用AcMNPV-Z、AcMNPV-N、AcMNPV-GPC分别感染96孔板培养的Sf9细胞(培养孔底壁约被细胞覆盖80%)(MOI=2),在27℃条件下,细胞静止培养48~72h之后,吸掉上清液,轻轻用PBS溶液清洗细胞2次,弃净PBS溶液,每孔加入100μl80%浓度的预冷丙酮,在-20℃条件下,固定Sf9细胞2h,用PBST溶液清洗3次后,细胞与LASV的多抗(1:500倍稀释)37℃反应2h;用PBST溶液清洗3次后,细胞与FITC标记的羊抗鼠二抗IgG37℃反应1h,用PBST溶液清洗3次后,最后,用荧光显微镜检测实验结果。
结果显示,采用LASV多抗作为一抗时,AcMNPV-Z、AcMNPV-N、AcMNPV-GPC分别感染的Sf9细胞展现出高强度的绿色荧光,相比之下,对照组细胞没有绿色荧光出现,表明重组杆状病毒正确表达目的蛋白(图2)。
2、Westernblot鉴定目的蛋白表达
为了分析AcMNPV-Z、AcMNPV-N、AcMNPV-GPC共感染的Sf9细胞对拉沙热病毒的Z、N、GPC蛋白和病毒样颗粒(VLPs)的表达情况,将重组杆状病毒以MOI比例为2:1:1共感染Sf9细胞,细胞培养72h之后,收集细胞上清液,4℃保存备用。采用蔗糖密度梯度离心方法纯化VLPs:首先,将收集的细胞培养上清液3.5×104rpm离心2h,获得的沉淀用PBS溶解后,缓慢加到梯度蔗糖(20%-30%-60%,w/v,单位g/mL)上层液面上,3.5×104rpm离心2h,然后,收集30%-60%蔗糖液面之间的白带,溶解在PBS中,经过去除蔗糖和浓缩后获得VLPs,最后,用BCA方法测定蛋白浓度。取100μl获得的蛋白液,加入5×上样缓冲液25μl混匀,煮沸5min,然后,用于Westernblott检测与分析。在进行Westernblot过程中,封闭液采用5%的脱脂奶粉,室温封闭时间为2h;一抗采用LASV多抗,室温反应2h;二抗采用羊抗鼠的HRP标记的IgG,室温反应1h;显色液选用AB混合液,最后,利用LAS-4000系统照相保存结果。
Westernblot结果显示,重组杆状病毒成功表达LASV的四个结构蛋白Z(40kDa)、N(40kDa)、GPC(GP140kDa,GP236kDa)的特异性条带,与预测大小相符,而对照组没有特异性条带出现,表明目的蛋白表达正确(图3),经检测,拉沙热病毒Z蛋白的氨基酸序列如SEQIDNO.2所示,拉沙热病毒N蛋白的氨基酸序列如SEQIDNO.4所示,拉沙热病毒G1蛋白的氨基酸序列如SEQIDNO.6所示,拉沙热病毒G2蛋白的氨基酸序列如SEQIDNO.7所示。
3、拉沙热病毒样颗粒形态的观察与分析
采用电镜和免疫电镜方法检测与分析拉沙热VLPs的形态与结构。将纯化的VLPs样品吸附到金属网上之后,用1%磷钨酸染色2-3min,然后,用滤纸吸掉金属网上的残余染色液,最后,利用电镜(JEM1200EXII)观察与分析并记录实验结果。
采用免疫电镜进一步观察拉沙热病毒样颗粒的形态与结构。将培养物上清吸附到金属网上,用TBST(25mMTris-Cl,150mMNaCl,0.05%Tween20,pH7.2)漂洗2次,滤纸吸净网上残余液后,将GPC单克隆抗体与金属网37℃孵育30min,金属网以同样方法漂洗之后,与TBST稀释的金颗粒标记的蛋白A(AproteinA-goldparticles),直径10-15nm,37℃孵育30min,金属网被漂洗和滤纸处理之后,用1%磷钨酸染色2-3min,最后,用电镜检测与分析,记录实验结果。
电镜结果显示,重组杆状病毒按照一定比例感染的Sf9细胞上清液中,可见到圆形且具有囊膜的球状VLPs,直径大小在100~300nm范围之内,其形态结构与文献报道的LASV具有一致性(图4中A、B、C)。
免疫电镜结果显示,病毒样颗粒可以与GPC单抗结合,证明该颗粒存在LASVGPC蛋白(图4中D、E、F)。
实施例5病毒样颗粒的免疫原性研究
1、病毒样颗粒对小鼠的免疫
将纯化的拉沙热病毒样颗粒样品与206佐剂乳化后免疫小鼠。将健康雌性的BALB/c小鼠40只随机分成4组,每组10只小鼠,分别为空白组、206组、VLPs组、206+VLPs组(206与VLPs佐剂等体积乳化制成),免疫剂量10μg/只。小鼠免疫2次,两次免疫间隔14d,每只小鼠免疫剂量为50μl/只,免疫方法采用小鼠后肢肌肉注射。在加强免疫后不同时间,采集小鼠血液和脾脏,用于免疫指标检测与分析。
2、小鼠免疫指标的检测
(1)ELISpot对特异性T细胞活化的分析
在加强免疫后第14d,选用ELISpot实验检测与分析拉沙热病毒样颗粒特异性T细胞的免疫活性。首先,96孔ELISpot板用抗鼠IFN-γIgG(5μg/ml)包被,100μl/孔,4℃包被过夜,细胞板用PBS清洗后,采用10%牛血清37℃封闭2h,然后,用PBST洗板,待干后,4℃保存备用;每组免疫小鼠的脾细胞被分离后,制成细胞悬液,浓度为5×106/ml;将含有不同刺激物拉沙热病毒样颗粒(5μg/ml)或PMA(50ng/ml)和离子霉素(ionomycin)(1μg/ml)的1640细胞完全培养液加到上述96孔板相应孔中,100μl/孔,相同平行组设置3个复孔,其中,拉沙热病毒样颗粒作为抗原特异性刺激物,PMA和离子霉素作为阳性对照组刺激物,而阴性对照组不含有任何刺激物;然后,将上述新制备的脾细胞悬液加到96孔板中(采用1640细胞完全培养液配制),100μl/孔,轻轻振荡混匀,细胞在37℃和5%CO2条件下静止培养24h后,洗掉细胞,加入生物素标记的检测抗体,37℃孵育2h,用PBST洗板后,加入辣根过氧化物酶标记的链霉亲和素溶液,37℃孵育2h,同样细胞板洗完后,加入AEC(3-amino-9-ethylcarbazole)底物进行显色,室温避光孵育10-20min,然后,采用酶联斑点图像自动分析仪检测每孔产生的SFCs(SpotFormingCells)数量。最后,计算分析1×106个脾细胞中能够分泌抗原特异性IFN-γ的SFCs数量。
结果表明,二免14d后的小鼠脾细胞被拉沙热病毒样颗粒特异性抗原刺激后,206+VLPs组小鼠脾细胞产生的SFCs阳性数量显著高于(p<0.01)其它免疫组,包括空白组、206组、VLPs组,如图5中A所示。
(2)细胞因子浓度测定
将含有或不含拉沙热病毒样颗粒(5μg/ml)的1640细胞完全培养液分别加到96孔板中,100μl/孔,然后,将二免疫后第14d每组小鼠的脾细胞制成1×106/ml细胞悬液,加到96孔板中,100μl/孔,轻轻振荡混匀,在37℃、5%CO2条件下,细胞静止培养48-72h后,收集细胞上清液,并分装,-20℃保存备用。利用细胞因子ELISA检测试剂盒,检测上述脾细胞上清液中细胞因子(IL-2、IL-4、IL-10和IFN-γ)浓度。采用标准品的浓度及其OD450nm值绘制细胞因子的标准曲线,将其用于计算样品中IL-2、IL-4、IL-10和IFN-γ细胞因子的浓度。最后,实验数据采用SPSS13.0软件进行统计学分析。
结果表明,二免14d后的小鼠脾细胞经过LASVVLPs处理后,206+VLPs组小鼠脾细胞产生的IL-2和IFN-γ水平显著高于(p<0.01)其它免疫组(空白组、206佐剂组与VLPs组),并且,VLPs组小鼠脾细胞产生的IL-2和IFN-γ水平明显高于(p<0.01)空白组与206佐剂组;另外,VLPs组与免疫原实验组小鼠脾细胞产生的IL-4水平明显高于空白组与206组(p<0.05),如图5中B、C、D所示。
(3)中和试验
选用慢病毒包装系统(VSV包装系统)构建的LASV假病毒(EGFP标记)检测二免后第14d免疫小鼠血清中抗体的中和活性。在进行中和试验过程中,首先,将加热灭活完全的小鼠血清进行1:2,1:4,1:8,1:16,1:32,1:64,1:128,1:256,1:512倍比稀释;然后,取每个稀释度的每组免疫小鼠血清分别加到96孔板中,50μl/孔,每个平行组设3个复孔,然后,在每孔中加入50μlLASV假病毒溶液,振荡混匀,37℃反应1h后,将293T细胞悬液(5×105个细胞/ml,采用含有10%FBS的DMEM细胞培养液配制)加入96孔板中,100μl/孔,轻轻振荡混匀后,细胞在37℃、5%CO2条件下,静置培养72h,最后,用荧光显微镜检测结果。抗体中和活性采用下述公式计算:
抗体中和活性﹦[(免疫组表达绿色荧光的细胞数-对照组表达绿色荧光的细胞数)/对照组表达绿色荧光的细胞数×100%]
结果显示,206+VLPs组小鼠血清在1:128倍稀释时具有100%的中和作用(抑制LASV假病毒感染程度),并且,血清在1:256倍稀释时,具有80%左右的中和作用;VLPs组小鼠血清在1:64倍稀释时具有100%的中和作用,而血清在1:128倍稀释时具有80%左右的中和作用;但是,空白组、206佐剂组小鼠血清没有中和活性。因此,中和试验结果表明VLPs能够诱导小鼠产生中和抗体,并且具有较强的中和作用(图6)。
虽然,上文中已经用一般性说明及具体实施方案对本发明作了详尽的描述,但在本发明基础上,可以对之作一些修改或改进,这对本领域技术人员而言是显而易见的。因此,在不偏离本发明精神的基础上所做的这些修改或改进,均属于本发明要求保护的范围。
Claims (10)
1.一种拉沙热病毒样颗粒的制备方法,其特征在于,包括以下步骤:
(1)合成拉沙热病毒Z基因、拉沙热病毒N基因和拉沙热病毒GPC基因;
所述拉沙热病毒Z基因的核苷酸序列如SEQIDNO:1所示;拉沙热病毒N基因的核苷酸序列如SEQIDNO:3所示;拉沙热病毒GPC基因的核苷酸序列如SEQIDNO:5所示;
(2)将步骤(1)制得的拉沙热病毒Z基因、拉沙热病毒N基因和拉沙热病毒GPC基因分别插入到昆虫细胞表达载体中,转化含有重组杆状病毒基因组的大肠杆菌DH10Bac感受态细胞,提取阳性质粒,制得整合了拉沙热病毒Z基因、拉沙热病毒N基因和拉沙热病毒GPC基因的重组杆状病毒Bacmid质粒;
(3)将步骤(2)制得的重组杆状病毒Bacmid质粒分别转染昆虫细胞,拯救获得整合了拉沙热病毒Z基因的重组杆状病毒、整合了拉沙热病毒N基因的重组杆状病毒、整合了拉沙热病毒GPC基因的重组杆状病毒;
(4)将步骤(3)制得的整合了拉沙热病毒Z基因的重组杆状病毒、整合了拉沙热病毒N基因的重组杆状病毒、整合了拉沙热病毒GPC基因的重组杆状病毒混合后接种昆虫细胞,培养后收获上清,上清经纯化,制得拉沙热病毒样颗粒。
2.如权利要求1所述的制备方法,其特征在于,所述步骤(2)中,昆虫细胞表达载体选自:AcRP23-lacZ、AcRP6-SC、AcUWl-lacZ、BacPAK6、BactoPac、Bacmid、p2Bac、p2Blue、BlucBacII、p89B310、pAc360、pAc373、pAcAB3、pAcAB4、PAcAS3、pAcC129、pAcC4、DZI、pAcGP67、pAcIEl、pAcJPl、pAcMLF2、pAcMLF7、pAcMLF8、pAcMPl、pAcMP2、pAcRP23、pAcRP25、pAcRW4、pAcsMAG、pAcUWl、pAcUW21、pAcUW2A、pAcUW2B、pAcUW3、pAcUW31、pAcUW41、pAcUW42、pAcUW43、pAcUW51、pAcVC2、pAcVC3、pAcYMl、pAcJcC5、pBacl、pBac2、pBlueBacIII、pBlueBacHis、pEV55、mXIV、pIEINeo、pJVETL、pJVNhel、pJVP10、pJVrsMAG、pMBac、pP10、pPAKl、pPBac、pSHONEX1.1、pSYNXIVVI+、pSYNVI+wp、pSYNXIVVI-、pVL1391、pVL1392、pVL1393、pVL941、pVL945、pVL985、pVTBac、pBM030、pUAC-5、pFastBacDual、pFastBac1、pFastBacHTA、pFastBacHTB、pFastBacHTC、pFastBacDual之一或两种以上的混合;进一步优选的,所述步骤(2)中,昆虫细胞表达载体为pFastBac1。
3.如权利要求1所述的制备方法,其特征在于,所述步骤(2)中,重组杆状病毒为重组苜蓿银纹夜蛾核型多角体病毒rAcMNPV。
4.如权利要求1所述的制备方法,其特征在于,所述步骤(3)中,昆虫细胞选自草地贪夜蛾(Spodopterafrugiperda)Sf21细胞系、昆虫细胞选自草地贪夜蛾(Spodopterafrugiperda)Sf9细胞系、昆虫细胞选自草地贪夜蛾(Spodopterafrugiperda)MimicSf9细胞系、甜菜夜蛾(Spodopteraexigua)Se301细胞系、BCIRL/AMCY-SeE-CLG1细胞系、BCIRL/AMCY-SeE-CLG4细胞系、粉纹夜蛾(Trichoplusiani)BTI-Tn-5B1-4细胞系、BTI-Tn-5C1细胞系、BTI-Tn-5F2细胞系,斜纹贪夜蛾(Spodopteralitura)ZSU-S1-1细胞系、IBL-SL1A细胞系、家蚕卵巢细胞系BmN之一;进一步优选的,昆虫细胞选自草地贪夜蛾(Spodopterafrugiperda)Sf9细胞系。
5.如权利要求1所述的制备方法,其特征在于,所述步骤(4)中,昆虫细胞选自草地贪夜蛾(Spodopterafrugiperda)Sf21细胞系、昆虫细胞选自草地贪夜蛾(Spodopterafrugiperda)Sf9细胞系、昆虫细胞选自草地贪夜蛾(Spodopterafrugiperda)MimicSf9细胞系、甜菜夜蛾(Spodopteraexigua)Se301细胞系、BCIRL/AMCY-SeE-CLG1细胞系、BCIRL/AMCY-SeE-CLG4细胞系、粉纹夜蛾(Trichoplusiani)BTI-Tn-5B1-4细胞系、BTI-Tn-5C1细胞系、BTI-Tn-5F2细胞系,斜纹贪夜蛾(Spodopteralitura)ZSU-S1-1细胞系、IBL-SL1A细胞系、家蚕卵巢细胞系BmN之一;进一步优选的,昆虫细胞选自草地贪夜蛾(Spodopterafrugiperda)Sf9细胞系;
优选的,所述步骤(4)中,整合了拉沙热病毒Z基因的重组杆状病毒(AcMNPV-Z)、整合了拉沙热病毒N基因的重组杆状病毒(AcMNPV-N)、整合了拉沙热病毒GPC基因的重组杆状病毒(AcMNPV-GPC)按MOI(感染复数)比例2:1:1混合;
优选的,所述步骤(4)中,纯化为采用蔗糖密度梯度离心进行纯化,蔗糖质量体积浓度为20%、30%和60%,单位g/mL。
6.一种拉沙热病毒样颗粒,其特征在于,包含拉沙热病毒Z蛋白、拉沙热病毒N蛋白、拉沙热病毒G1蛋白、拉沙热病毒G2蛋白;所述的拉沙热病毒Z蛋白的氨基酸序列如SEQIDNO.2所示,所述的拉沙热病毒N蛋白的氨基酸序列如SEQIDNO.4所示,所述的拉沙热病毒G1蛋白的氨基酸序列如SEQIDNO.6所示,所述的拉沙热病毒G2蛋白的氨基酸序列如SEQIDNO.7所示。
7.权利要求6所述拉沙热病毒样颗粒在制备拉沙热疫苗中的应用。
8.权利要求6所述拉沙热病毒样颗粒在制备预防和/或治疗拉沙热的药物中的应用。
9.一种拉沙热疫苗,其特征在于,由权利要求6所述的拉沙热病毒样颗粒为药效成分与其他辅料复配制得。
10.如权利要求9所述的拉沙热疫苗,其特征在于,所述其他辅料为防腐剂和/或佐剂;优选的,所述佐剂为206佐剂。
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