CN105063137A - 一种基于施氏假单胞菌细胞催化的秦皮甲素羟基保护反应方法 - Google Patents
一种基于施氏假单胞菌细胞催化的秦皮甲素羟基保护反应方法 Download PDFInfo
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Abstract
本发明公开了一种基于施氏假单胞菌细胞催化的秦皮甲素羟基保护反应方法。该方法步骤如下:在10mL带塞三角瓶中分别加入有机溶剂、秦皮甲素水合物、酰化底物和施氏假单胞菌细胞催化剂,混合均匀,置于水浴恒温振荡器反应。在本研究所确定的最佳反应条件下,施氏假单胞菌细胞促秦皮甲素水合物丙酰化反应的最大产率为98.9%。反应条件对施氏假单胞菌细胞在秦皮甲素水合物酰化反应中的区域选择性影响不大,6’-区域选择性保持在94%以上。
Description
技术领域
本发明属于生物催化及生物医药合成与控制领域,具体涉及一种基于施氏假单胞菌细胞催化的秦皮甲素羟基保护反应方法。
背景技术
黄酮类化合物是两个苯环通过三个碳原子相互连接而形成的一系列重要的多酚类化合物,广泛存在于几乎所有的植物,尤其是蔬菜和水果;在医药、食品和化妆品上有很大的应用价值。黄酮有多种生物活性包括抗氧化活性,抗炎,抗癌的,抗菌,抗过敏和抗病毒等,然而,由于其多羟基结构的特点,大部分黄酮生物活性受限于其低脂溶性或水溶性。位于苯环或配糖体骨架上的羟基对黄酮的生物和化学活性有重要的影响。黄酮的酯化被认为一种很有前景的方法用于提高黄酮的溶解度,从而使黄酮展示出更多的生理活性。已有研究表明,有选择地修饰黄酮类化合物结构不仅可以提高物理化学属性,例如,热稳定性和脂溶性;而且增强其生物活性,如抗氧化活性;抗菌活性;细胞渗透能力;减肥和降血脂功能。
秦皮甲素水合物是黄酮的一种,具有抗炎、抗菌、抗血凝、镇痛等活性,是枯草杆菌的生长抑制剂,同时对化学性致癌亦有抑制作用。秦皮甲素水合物有5个羟基,分布在苯环或者糖环上。环上的羟基对其活性有重要的影响,因此选择性的对秦皮甲素水合物的羟基进行酯化具有重要的意思,即可以保持其活性又可以增加其溶解度来增加其他方面的活性。
发明内容
利用传统的化学方法通常难以对特定的羟基进行保护,本发明目的在于开发一种保护秦皮甲素水合物6’羟基的方法。施氏假单胞菌细胞促秦皮甲素水合物酰化反应的最适有机溶剂、酰基供体、酰基供体与秦皮甲素水合物摩尔比、初始水含量、施氏假单胞菌细胞催化剂用量、反应温度和振荡速度分别为50%(v/v)异辛烷-吡啶、丙酸乙烯酯(VP)、20:1、0%(v/v)、20g/L、40℃和180rpm,反应产率可达98.9%。反应条件对施氏假单胞菌细胞在秦皮甲素水合物丙酰化反应中的区域选择性影响不大,6’-区域选择性保持在94%以上。
该方法所用的催化剂制备简单易操作,反应条件温和,产率高,初速度快,羟基保护区域选择性可控制,克服了传统化学方法的选择性低而导致底物利用率低,产物纯度低,易生成副产物等缺点。
本发明目的通过以下技术方案来实现:
一种基于施氏假单胞菌细胞催化的秦皮甲素羟基保护反应方法,包括以下步骤:
1)制作施氏假单胞菌细胞催化剂:将细菌种子液接种至含产酶诱导剂的液体培养基中,接种量为0.5%~20%(v/v),培养条件为30℃~50℃,培养时间为12~144h;离心后收集菌体,蒸馏水洗涤两次,经真空冷冻干燥12h-36h,收获菌体干粉,即为细菌细胞催化剂;
2)在带塞三角瓶中加入有机溶剂;
3)加入黄酮类水合物;
4)加入酰基供体,形成有机溶剂反应体系;
5)在有机溶剂反应体系中加入0~160μL水;
6)加入施氏假单胞菌细胞催化剂使整个反应体系最终质量为20~160mg,混合均匀;
7)置于水浴恒温振荡器反应,震荡速度为100~260rpm。
进一步地,可适当改变步骤2)所述带塞三角瓶的体积来放大或缩小反应体系体积;带塞三角瓶体积为10mL;步骤2)所述有机溶剂是单一种类有机溶剂或混合有机溶剂,其中单一种类有机溶剂是吡啶,混合有机溶剂是乙腈-吡啶、叔丁醇-吡啶、叔戊醇-吡啶、四氢呋喃-吡啶、正己烷-吡啶、异丙醚-吡啶、石油醚-吡啶或异辛烷-吡啶;步骤2)所述有机溶剂为2mL体积比为1:1的异辛烷-吡啶;
进一步地,步骤3)所述黄酮类水合物用量为10mmol/L-90mmol的秦皮甲素水合物;
进一步地,步骤4)所述酰基供体为用量为60~2400mmol的丙酸乙烯酯;
进一步地,步骤5)所使用水为超纯水或双蒸水;反应温度控制方法为水浴摇床恒温震荡器水浴或恒温摇瓶柜气浴等;
进一步地,步骤7)所述反应温度为20℃~50℃。
进一步优化地,所述方法具体包括以下步骤:
1)制作施氏假单胞菌细胞催化剂;
2)在10mL带塞三角瓶中加入2mL有机溶剂,可为纯机溶剂或混合有机溶剂;
3)加入秦皮甲素水合物;
4)加入酰基供体丙酸乙烯酯,用量为60~2400mmol;
5)在2mL50%(v/v)异辛烷-吡啶反应体系中加入0-160μL水;
6)在2mL50%(v/v)异辛烷-吡啶(VP)反应体系中加入施氏假单胞菌细胞催化剂使整个反应体系最终质量为20~160mg;
8)秦皮甲素水合物羟基保护时反应温度范围为20℃~50℃,水浴恒温振荡器反应;
9)在水浴恒温振荡器振荡反应,速度为100~260rpm。
步骤2)中反应所使用的三角瓶体积不限于10mL,反应体系可适当放大或缩小;有机溶剂是单一种类有机溶剂如吡啶或是混合有机溶剂,如乙腈-吡啶、叔丁醇-吡啶、叔戊醇-吡啶、四氢呋喃-吡啶、正己烷-吡啶、异丙醚-吡啶、石油醚-吡啶或异辛烷-吡啶;最佳混合有机溶剂为异辛烷-吡啶,所有混合有机溶剂最佳配比均为1:1(v/v),但不限于此配比。
步骤7)恒温震荡器不限于水浴摇床,如恒温摇瓶柜等气浴条件也可。
本发明与现有的技术相比具有如下的优点:
1.利用施氏假单胞菌细胞催化剂作为生物催化剂,较之化学催化剂反应条件温和、环境友好;较之酶催化剂成本低。
2.该方法催化剂制备简单易操作,酰基供体丙酸乙烯酯常用易购买,初速度快,产率高,区域选择性高,克服了传统化学方法的选择性低导致底物利用率低,产物纯度低,易生成副产物等缺点。
具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明作进一步说明,但本发明的实施和保护范围不限于此。
实施例1
在10mL带塞三角瓶中加入2mL吡啶、60mmol秦皮甲素水合物、1200mmol丙酸乙烯酯和80mg施氏假单胞菌细胞催化剂,混合均匀,置于水浴恒温振荡器反应(40℃、180r/min),定时取样20μl,用60%(体积分数,下同)甲醇-水混合溶液稀释50倍,混合均匀后离心(15,000r/min)15min,自动进样器取上清液20μl,供高效液相色谱分析。在纯溶剂吡啶中施氏假单胞菌细胞可以催化秦皮甲素水合物发生酰化反应,24后产率为16.7%,6’区域选择性为98.6%.
菌种培养方法:斜面培养基,营养肉汤培养基;种子液培养24h后接种到发酵培养基中,接种量为2%(v/v),180r/m,30℃,培养48h。种子液培养基(w/v)为1%葡萄糖,1%牛肉膏,1%蛋白胨,0.5%K2HPO4,0.02%MgSO4·7H2O,0.5%NaCl,pH7.0±0.1;发酵培养基(w/v)为0.5%大豆油,0.1%酵母浸膏,0.5%(NH4)2SO4,0.1%K2HPO4,0.02%MgSO4·7H2O。
实施例2
在8个10mL带塞三角瓶中均加入60mmol秦皮甲素水合物和1200mmol丙酸乙烯酯,再向8个带塞三角瓶中分别加入2mL混合有机溶剂(体积分数为25%的乙腈-吡啶、体积分数为25%的叔丁醇-吡啶、体积分数为25%的叔戊醇-吡啶、体积分数为25%的四氢呋喃-吡啶、体积分数为25%的正己烷-吡啶、体积分数为25%的异丙醚-吡啶、体积分数为25%的石油醚-吡啶,体积分数为25%的异辛烷-吡啶),最后向每个带塞三角瓶中均加入80mg施氏假单胞菌细胞催化剂,混合均匀,置于水浴恒温振荡器反应(40℃、180r/min),定时取样10μl,用40%甲醇-水混合溶液稀释100倍,混合均匀后离心(15,000r/min)15min,自动进样器取上清液20μl,供高效液相色谱分析。反应结果如表1。
表1含吡啶混合有机溶剂对施氏假单胞菌细胞促秦皮甲素水合物丙酰化反应的影响
反应条件:2mL混合有机溶剂,80m施氏假单胞菌细胞催化剂,60mmol秦皮甲素水合物,1200mmol丙酸乙烯酯,40℃,180rpm,反应24h。
a体积分数,v/v。
实施例3
在9个10mL带塞三角瓶中均加入60mmol秦皮甲素水合物和1200mmol丙酸乙烯酯(VA),再向10个带塞三角瓶中分别加入2mL不同体积分数的混合有机溶剂异辛烷-吡啶(0%、5%、10%、15%、20%、30%,35%,40%,50%),最后向每个带塞三角瓶中均加入100mg施氏假单胞菌细胞催化剂,混合均匀,置于水浴恒温振荡器反应(40℃、180r/min),定时取样20μL,用60%甲醇-水混合溶液稀释50倍,混合均匀后离心(15,000r/min)15min,自动进样器取上清液20μL,供高效液相色谱分析。反应结果如表2。
表2混合有机溶剂中两组分的体积比对施氏假单胞菌细胞促秦皮甲素水合物丙酰化反应的影响
反应条件:2mL混合有机溶剂,80mg施氏假单胞菌细胞催化剂,60mmol秦皮甲素水合物,1200mmol丙酸乙烯酯,40℃,180rpm,反应24h。
实施例4
在9个10mL带塞三角瓶中均加入2mL30%(v/v)正己烷-吡啶混合有机溶剂,再向8个带塞三角瓶中分别加入不同用量秦皮甲素水合物(10mmol、20mmol、30mmol、40mmol、50mmol、60mmol、70mmol、80mmol、90mmol),最后向每个带塞三角瓶中均加入600mmol丙酸乙烯酯和80mg施氏假单胞菌细胞催化剂,混合均匀,置于水浴恒温振荡器反应(40℃、180r/min),定时取样20μl,用60%甲醇-水混合溶液稀释50倍,混合均匀后离心(15,000r/min)15min,自动进样器取上清液20μL,供高效液相色谱分析。反应结果表明,当秦皮甲素水合物浓度较低时(5~250mmol/L),增加底物的量,反应速度显著增加;继续增大秦皮甲素水合物的浓度,反应速度增加趋于缓慢;在实验考察的浓度范围内,反应速度尚未催于恒定值,可推知40mg/mL的全细胞催化剂投入量在反应体系中仍未被底物饱和。然而,随着秦皮甲素水合物浓度的增大(>30mmol/L),反应产率呈缓慢下降趋势,区域选择性有所下降,但此浓度内始终在94%以上。
实施例5
在8个10mL带塞三角瓶中均加入2mL50%(v/v)异辛烷-吡啶混合有机溶剂、60mmol秦皮甲水合物和1200mmol丙酸乙烯酯,再向8个带塞三角瓶中分别加入不同质量施氏假单胞菌细胞催化剂(10mg、20mg、30mg、40mg、50mg、60mg、700mg、80mg),混合均匀,置于水浴恒温振荡器反应(30℃、140r/min),定时取样20μL,用60%甲醇-水混合溶液稀释50倍,混合均匀后离心(15,000r/min)15min,自动进样器取上清液20μL,供高效液相色谱分析。反应结果表明,在秦皮甲素水合物的丙酰化反应中,催化剂用量大于20mg/mL时产率趋于平稳,且在用量为20mg/mL时产率达最大值65%;在丙酰化反应中,催化剂用量大于40mg/mL时,继续增大催化剂用量,产率几乎不再增长,最大值为98.6%;而区域选择性变化不大,始终在95%以上。
实施例6
在9个10mL带塞三角瓶中均加入2mL混合有机溶剂50%(v/v)异辛烷-吡啶和60mmol秦皮甲素水合物,再向9个带塞三角瓶中分别加入不同用量的丙酸乙烯酯(60mmol、300mmol、600mmol、900mmol、1200mmol、1500mmol、1800mmol、2100mmol、2400mmol),最后向每个带塞三角瓶中均加入40mg施氏假单胞菌细胞催化剂,混合均匀,置于水浴恒温振荡器反应(40℃、180r/min),定时取样20μL,用40%甲醇-水混合溶液稀释100倍,混合均匀后离心(15,000r/min)15min,自动进样器取上清液20μL,供高效液相色谱分析。反应结果表明,施氏假单胞菌细胞催化秦皮甲素水合物的丙酰化反应的初速度均随着羧酸丙烯酯与秦皮甲素水合物摩尔比的增加而增大,但6’-区域选择性变化不大,始终高于94%。
综合考虑,认为施氏假单胞菌细胞催化秦皮甲素水合物乙酰化反应中,丙酸乙烯酯与秦皮甲素水合物的最适比例为20:1,此时产率为94.9%。
实施例7
在9个10mL带塞三角瓶中均加入2mL混合有机溶剂50%(v/v)异辛烷-吡啶、60mmol秦皮甲素水合物和丙酸乙烯酯1200mmol,再向9个带塞三角瓶中分别加入不同体积的蒸馏水(0μL、20μL、40μL、60μL、80μL、100μL、120μL、140μL、160μL),最后向每个带塞三角瓶中均加入40mg施氏假单胞菌细胞催化剂,混合均匀,置于水浴恒温振荡器反应(40℃、180r/min),定时取样20μl,用60%甲醇-水混合溶液稀释50倍,混合均匀后离心(15,000r/min)15min,自动进样器取上清液20μL,供高效液相色谱分析。反应结果表明,当加入的蒸馏水很少时,酰化反应的初速度和产率随加入蒸馏水的量的增加而降低,达到一定的值后又随加入蒸馏水的量的增加变化不大,但区域选择性随基本不变,始终在93%以上,故认为反应体系的加入蒸馏水的量以0%为宜,此时,最大产率分别是96.3%。
实施例8
在7个10mL带塞三角瓶中均加入2mL混合有机溶剂50%(v/v)异辛烷-吡啶、0μL蒸馏水、60mmol秦皮甲素水合物、1200mmol丙酸乙烯酯和40mg施氏假单胞菌细胞催化剂,混合均匀,置于不同温度(20℃、25℃、30℃、35℃、40℃、45℃、50℃)下水浴恒温振荡器反应(180r/min),定时取样20μl,用60%甲醇-水混合溶液稀释50倍,混合均匀后离心(15,000r/min)15min,自动进样器取上清液20μl,供高效液相色谱分析。反应结果表明,在20~45℃温度范围内,随着反应温度的升高,施氏假单胞菌全细胞促秦皮甲素水合物丙酰化反应的初速度均随之增大。然而,与初速度相比,反应的产率表现出典型的先升后降的趋势。最适温度为40℃,此时,产率分别为96.3%,在反应温度达到40℃之前,产率随温度的上升而上升,而当温度高于40℃后,产率下降明显,6’-区域选择性的影响不大,均大于95%。
Claims (9)
1.一种基于施氏假单胞菌细胞催化的秦皮甲素羟基保护反应方法,其特征在于,包括以下步骤:
1)制作施氏假单胞菌细胞催化剂;
2)在带塞三角瓶中加入有机溶剂;
3)加入黄酮类水合物;
4)加入酰基供体,形成有机溶剂反应体系;
5)在有机溶剂反应体系中加入0~160μL水;
6)加入施氏假单胞菌细胞催化剂使整个反应体系最终质量为20~160mg,混合均匀;
7)置于水浴恒温振荡器反应,震荡速度为100~260rpm。
2.根据权利要求1所述的一种基于施氏假单胞菌细胞催化的秦皮甲素羟基保护反应方法,其特征在于步骤2)所述带塞三角瓶体积为10mL。
3.根据权利要求1所述的一种基于施氏假单胞菌细胞催化的秦皮甲素羟基保护反应方法,其特征在于步骤2)所述有机溶剂是单一种类有机溶剂或混合有机溶剂,其中单一种类有机溶剂是吡啶,混合有机溶剂是乙腈-吡啶、叔丁醇-吡啶、叔戊醇-吡啶、四氢呋喃-吡啶、正己烷-吡啶、异丙醚-吡啶、石油醚-吡啶或异辛烷-吡啶。
4.根据权利要求1所述的一种基于施氏假单胞菌细胞催化的秦皮甲素羟基保护反应方法,其特征在于步骤2)所述有机溶剂为2mL体积比为1:1的异辛烷-吡啶。
5.根据权利要求1所述的一种基于施氏假单胞菌细胞催化的秦皮甲素羟基保护反应方法,其特征在于步骤3)所述黄酮类水合物为摩尔用量为10mmol-90mmol的秦皮甲素水合物。
6.根据权利要求1所述的一种基于施氏假单胞菌细胞催化的秦皮甲素羟基保护反应方法,其特征在于步骤4)所述酰基供体为60~2400mmol的丙酸乙烯酯。
7.根据权利要求1中所述的一种基于施氏假单胞菌细胞催化的秦皮甲素羟基保护反应方法,其特征在于步骤5)所使用水为超纯水或双蒸水。
8.根据权利要求1中所述的一种基于施氏假单胞菌细胞催化的秦皮甲素羟基保护反应方法,其特征在于反应温度控制方法为水浴摇床恒温震荡器水浴或恒温摇瓶柜气浴等。
9.根据权利要求1所述的一种基于施氏假单胞菌细胞催化的秦皮甲素羟基保护反应方法,其特征在于步骤7)所述反应温度为20℃~50℃。
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Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2017016175A1 (zh) * | 2015-07-28 | 2017-02-02 | 华南理工大学 | 一种基于施氏假单胞菌细胞催化的秦皮甲素羟基保护反应方法 |
WO2018218903A1 (zh) * | 2017-05-27 | 2018-12-06 | 华南理工大学 | 一种全细胞催化制备曲克芦丁酯的方法 |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN104726374A (zh) * | 2015-03-18 | 2015-06-24 | 华南理工大学 | 催化柚皮苷酯合成反应的细菌细胞催化剂的制备方法 |
CN104726375A (zh) * | 2015-03-18 | 2015-06-24 | 华南理工大学 | 催化秦皮甲素酯交换反应的细菌细胞催化剂的制备方法 |
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Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105063137A (zh) * | 2015-07-28 | 2015-11-18 | 华南理工大学 | 一种基于施氏假单胞菌细胞催化的秦皮甲素羟基保护反应方法 |
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Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN104726374A (zh) * | 2015-03-18 | 2015-06-24 | 华南理工大学 | 催化柚皮苷酯合成反应的细菌细胞催化剂的制备方法 |
CN104726375A (zh) * | 2015-03-18 | 2015-06-24 | 华南理工大学 | 催化秦皮甲素酯交换反应的细菌细胞催化剂的制备方法 |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
GUANGLI FENG等: "A new, efficient and highly-regioselective approach to synthesis of 6-O-propionyl-D-glucose by using whole-cell biocatalysts", 《BIOCHEMICAL ENGINEERING JOURNAL》 * |
赖学能等: "秦皮甲素酰化反应中脂肪酶诱导剂对全细胞催化行为的影响及其产物结构鉴定", 《现代食品科技》 * |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2017016175A1 (zh) * | 2015-07-28 | 2017-02-02 | 华南理工大学 | 一种基于施氏假单胞菌细胞催化的秦皮甲素羟基保护反应方法 |
WO2018218903A1 (zh) * | 2017-05-27 | 2018-12-06 | 华南理工大学 | 一种全细胞催化制备曲克芦丁酯的方法 |
US11286511B2 (en) | 2017-05-27 | 2022-03-29 | South China University Of Technology | Method for preparing troxerutin ester using whole-cell catalysis |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
WO2017016175A1 (zh) | 2017-02-02 |
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Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
RJ01 | Rejection of invention patent application after publication |
Application publication date: 20151118 |
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RJ01 | Rejection of invention patent application after publication |