CN105056220A - 一种斑点叉尾鮰爱德华氏菌病疫苗的制备方法 - Google Patents
一种斑点叉尾鮰爱德华氏菌病疫苗的制备方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN105056220A CN105056220A CN201510416046.6A CN201510416046A CN105056220A CN 105056220 A CN105056220 A CN 105056220A CN 201510416046 A CN201510416046 A CN 201510416046A CN 105056220 A CN105056220 A CN 105056220A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- vaccine
- ietalurus punetaus
- tarda
- ietalurus
- punetaus
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Abstract
本发明提供了一种斑点叉尾鮰爱德华氏菌病疫苗的制备方法,由提取菌种、感染、取材、悬液制备、扩大培养、计数、灭活、合成、稀释、分装、检验十一个步骤组成,所制备的斑点叉尾鮰爱德华氏菌病疫苗由爱德华氏菌,再加入适量双抗及防腐剂组成,本发明成本低廉,操作方便,可有效提高斑点叉尾鮰免疫力,防治斑点叉尾鮰爱德华氏菌病发生。
Description
技术领域
本发明涉及水产养殖病害防治领域,具体涉及一种斑点叉尾鮰爱德华氏菌病疫苗的制备方法。
背景技术
斑点叉尾鮰(IctalurusPunctatus(Rafinesque)亦称沟鲶(ChannelCatfish),属于鲶形目(Siluriformes)、鮰科(Ictaluridae)鱼类。具有食性杂、生长快、适应性广、易饲养、易起捕以及肉质上乘等优点,是世界闻名的养殖品种和游钓对象。斑点叉尾鮰含肉率高,而且营养丰富,据测定,含肉率为75.71%;肌肉中粗蛋白占19.42%,脂肪占1.01%,水分占77.58%,灰分占1.12%,碳水化合物占0.87%;肌肉中含有18种氨基酸,占肌肉总量的18.72%,其中人体必需氨基酸占总氨基酸的42.26%。矿物质含量中Fe、Zn的含量较高,而对人体健康有害的物质如Pb、As等的含量很低。因此,斑点叉尾鮰历来深受东南亚各国和港、澳市场的欢迎,是我国外贸出口的重要水产品之一。当前随着斑点叉尾鮰养殖规模的扩大,集约化养殖程度的提高,其病害的危害也越来越大,其危害程度有加剧趋势,其常见病有:水霉病、腐皮病、出血性腐败症、爱德华氏菌病、柱状病、小瓜虫病、鱼波豆虫病等,特别是斑点叉尾鮰爱德华氏菌病传染性强,发病率高、死亡率最高,可造成鱼种、成鱼大量死亡,给养殖户造成较大经济损失。其病原体是爱德华氏菌(Edwardsiellatarda),是该菌广泛分布于自然界,菌体短杆状,具周鞭毛,有动力,革兰氏染色阴性。当皮肤受伤可使病原菌侵入机体而发病,引起外伤的主要原因有捕捞损伤和寄生虫寄生损伤等。
近几年来,国产、进口的药物对斑点叉尾鮰爱德华氏菌病均无明显疗效或成本太高,效果不明显。只能通过免疫的途径进行预防,而这种疫苗目前在还是空白。
发明内容
本发明提供了一种斑点叉尾鮰爱德华氏菌病疫苗的制备方法,本发明成本低廉,操作方便,可有效提高斑点叉尾鮰免疫力,防治斑点叉尾鮰爱德华氏菌病发生。
本发明是通过下面的技术方案来实现的。
一种斑点叉尾鮰爱德华氏菌病疫苗的制备方法,其特征在于,具体步骤如下:
(1)、提取菌种:从患有明显爱德华氏菌病症状的斑点叉尾鮰肝脏、肾脏、血液、腹水中分离出病原菌爱德华氏菌,立即放入4-8℃的冰箱中保存;
(2)、感染:将分离的病原菌接种于健康的斑点叉尾鮰体内,在室内进行感染试验,每只斑点叉尾鮰接种的病原菌数为1-2×109个,检查是否有毒力,证明确有毒力才用作制疫苗材料;
(3)、取材:取上述斑点叉尾鮰发病组织材料,称重,每克组织材料中加0.85%生理盐水10毫升,用研钵或匀浆器进行匀浆,制成10%浓度的组织悬液,将制得的组织悬液直接置于-30℃~-40℃低温冰箱中保存,或者向制得的组织悬液中按10%加入50%的磷酸缓冲甘油,将其置4-8℃的冰箱中保存。
(4)、悬液制备:将步骤(3)分离出的致病菌爱德华氏菌接种在普通琼脂营养基或肉汤培养基内,培养24-48小时,加入少量生理盐水,用接种环将菌苔刮下,充分振荡,制成细菌分布均匀的悬液;
(5)、扩大培养:取单个菌落在25-30℃条件下培养48-72小时,振荡使培养斜面上的菌落洗下,或用灭菌接种环轻轻刮下,进行灭活处理;
(6)、灭活:将扩大培养结束的爱德华氏菌悬液摇匀,放入60-70℃恒温水浴1.5-2.5小时灭活或32℃恒温水浴中70-73小时灭活,即制成灭活疫苗;
(7)、合成:将灭活后的菌液置于高速离心机中,用3000转/分离心机离心30-40分钟,分离出上清液,向分离出的上清液中添加一定量得青霉素、链霉素和浓度为10%的福尔马林溶液,并摇匀,其中,每10毫升上清液中加入青霉素8000单位、链霉素8000单位,10%浓度的福尔马林溶液0.1毫升;
(8)、稀释:用0.85%的无菌盐水稀释灭活菌液至浓度为5×109cfu/ml;
(9)、分装:将稀释后的灭活菌液,置于4-8℃冰箱中保存备用;
(10)、检验:对上述稀释好的灭活菌液进行无菌、安全及免疫效果三项检验,要求,灭活菌液中没有活菌存在,灭活细菌的安全的系数要达到100%,免疫保护率达到80%以上;
(11)、检验合格后的灭活菌液,继续置于4-8℃冰箱中保存备用。
步骤(7)合成时,每10毫升上清液中加入青霉素8000单位、链霉素8000单位,10%浓度的福尔马林溶液0.1毫升。
步骤(10)所述的无菌检验方法具体操作是:提取0.2ml灭活菌样本接种在普通营养琼脂培养基上,在25-28℃条件下培养48小时,观察是否形成菌落,若形成菌落则说明疫苗含菌,必须重新灭活,只有在琼脂平板上没有出现菌落出现才说明灭活彻底,灭活菌液中确实没有活菌存在。
步骤(10)所述的安全检验方法具体操作是:对当年健康斑点叉尾鮰鱼种进行腹腔注射,每尾注射0.3-0.5毫升,在水温25-28℃的水缸中饲养,经15d观察无发病或死亡说明该灭活细菌是安全的,必须做到100%安全才可使用。
步骤(10)所述的免疫效果检验方法具体操作是:在给健康斑点叉尾鮰接种上述制备的疫苗,二周后进行攻毒,观察免疫保护率,具体操作方法是取上述疫苗,每尾斑点叉尾鮰注射疫苗量为0.3-0.5ml,每天观察斑点叉尾鮰的发病及症状等情况并做好记录,另外用新鲜的或甘油保存的病鱼组织制成的未经灭活处理的浓度为10%的组织悬液,分别注射到已注射过疫苗的斑点叉尾鮰和没有注射过疫苗的斑点叉尾鮰体内进行对照,每尾按0.5毫升进行腹腔注射,继续观察15天,如果对照组全部发生爱德华氏菌病,死亡率在70%以上,病斑点叉尾鮰症状与天然发病的症状一样或相似,而免疫组仍健康存活,免疫保护率在80%以上,证明此疫苗有效。
免疫方法:
1、注射法。
①注射部位:一般通过肌注或腹腔注射进行免疫,这样操作用量较均,避免浪费。
②注射时间:一般在放养鱼种阶段进行。
③注射剂量:注射一次见效,注射剂量:鱼苗为0.3-0.5毫升/尾,成鱼为2毫升/公斤,每毫升疫苗中含有50亿菌,
2、口服方法三天为一个疗程,鱼苗第一天用量为100毫升/公斤饲料,第二、三天减半;成鱼第一天用量为150毫升/公斤饲料,第二天为100毫升/公斤饲料,第三天为50毫升/公斤饲料。在菌苗拌入饲料时,要搅拌均匀,同时菌苗要在投喂前1-4小时拌入饲料,不宜过早,切忌过夜,以免菌苗变质,一般拌有菌苗的饲料为平时每日投喂量的1/5或2/5,等拌有菌苗的饲料吃完后再投放其余饲料。
3、浸浴免疫适用于大批鱼群的免疫,目前在国内应用于生产性鱼池的浸浴免疫方法有:疫苗加莨菪碱法,即用0.5%浓度下充氧浸浴3小时。
本发明的有益效果:
本发明方法制备的斑点叉尾鮰爱德华氏菌病疫苗,具有成本低廉,操作方便,可有效提高斑点叉尾鮰免疫力,对斑点叉尾鮰保护率可以达到80%以上,且防治效果显著,操作方便,易于实现,无任何副作用,可给斑点叉尾鮰养殖户带来巨大的经济效益和社会效益。
具体实施方式
斑点叉尾鮰爱德华氏菌病疫苗的制备方法,具体操作步骤如下:
1、提取菌种:从患有明显爱德华氏菌病症状的斑点叉尾鮰肝脏、肾脏、血液、腹水中分离出病原菌爱德华氏菌,立即放入4-8℃的冰箱中保存;
2、感染:将分离的病原菌以1-2×109/只的浓度接种于健康的斑点叉尾鮰体内,感染试验在室内进行,检查是否有毒力,证明确有毒力才用作制疫苗材料;
3、取材:取上述斑点叉尾鮰发病组织材料,称重,每克组织材料中加0.85%生理-30℃~-40℃低温冰箱中保存,或者放入50%的磷酸缓冲甘油中,置4-8℃的冰箱中保存(使用时一定要用无菌蒸馏水冲洗3次,最后用生理盐水冲洗1次),按上述从发病的斑点叉尾鮰体内提取菌种的方法分离出爱德华氏菌;
4、悬液制备:将致病菌爱德华氏菌接种在普通琼脂营养基或肉汤培养基内,培养24-48小时,加入少量生理盐水,用接种环将菌苔刮下,经过振荡,使成浓厚悬液。须使细菌分布均匀,切忌成块、成团,如果是液体(如肉汤)培养就不必用盐水洗刮;
5、扩大培养:取单个菌落在25-30℃条件下培养48-72小时;
6、计数:用微生物方法进行活菌计数,使每毫升含菌5×1010个;
7、灭活:将爱德华氏菌悬液摇匀后放入放入65℃恒温水浴2小时灭活或32℃恒温水浴中72小时灭活,即成灭活疫苗;
8、合成:将灭活后的灭活菌液置于高速离心机中,用3000转/分离心机离心半小时,取其上清液,按照每毫升悬液,加入青霉素8000单位、链霉素8000单位,并每10毫升悬液中,加入10%浓度的福尔马林0.1毫升,摇匀;
9、稀释:用0.85%无菌盐水稀释灭活菌液至浓度5×109cfu/ml;
10、将悬液按每瓶100毫升进行分装,置于4-8℃冰箱中保存备用。
11、检验包括无菌检验、安全检验、和免疫效果检验。无菌检验是提取0.2ml灭活菌样本接种在普通营养琼脂培养基上,在25-28℃条件下培养48小时,观察是否形成菌落,若形成菌落则说明疫苗含菌,必须重新灭活,只有在琼脂平板上没有出现菌落出现才说明灭活彻底,灭活菌液中确实没有活菌存在。安全检验,是对当年健康斑点叉尾鮰鱼种进行腹腔注射,每尾注射0.3-0.5毫升,在水温25-28℃的水缸中饲养,经15d观察无异样(无发病或死亡)才说明该灭活细菌是安全的,必须做到100%安全才可使用。免疫效果检验是在给健康斑点叉尾鮰接种疫苗二周后进行攻毒,观察免疫保护率,方法是取上述疫苗,每尾鱼注射疫苗量为0.5ml,每天观察鱼的发病及症状等情况并做好记录,另外用1:10新鲜的或甘油保存的病毒组织制成的未经灭活处理的病毒悬液,注射到已注射过疫苗的鱼和没有注射过疫苗的鱼进行对照,每尾按0.3-0.5毫升进行腹腔注射,继续观察15天。如果对照组全部发生爱德华氏菌病,死亡率在70%以上,病鱼症状与天然发病的症状一样或相似,而免疫组仍健康存活,免疫保护率在80%以上,证明此疫苗有效。
应用斑点叉尾鮰爱德华氏菌病疫苗对照实验数据
1、安全检验:选择健康无病、无伤的15-20厘米斑点叉尾鮰鱼种100尾,分A、B、C、D、E5组,每组20尾,进行腹腔注射,每组注射剂量依次为0.1ml、0.2ml、0.3ml、0.4ml、0.5ml,室内饲养,水温控制在25℃-28℃,观察15天,五组均无发病和死亡现象,全部存活。见表1。
表1不同剂量灭活苗的安全检验
单位:ml、d、尾
2、免疫效力检验:选择健康无病、无伤的15-20厘米斑点叉尾鮰鱼种,100尾,随机分A、B两组,每组50尾,A为试验组,B为对照组,A组每尾腹腔注射灭活苗0.5ml,观察15天,结果A、B两组均无发病和死亡现象,然后进行攻毒试验,取种菌病料悬液,10倍稀释,A、B两组每尾各腹腔接种0.5ml,分别进行正常饲养,水温控制在25℃-28℃左右,观察15天,结果A组死亡6尾,存活44尾,死亡率12%,免疫保护率88%;B组全部死亡,死亡率100%。见表2。
表2斑点叉尾鮰鱼种接种灭活疫苗后攻毒试验
单位:ml、d、尾、%
3、某场大面积斑点叉尾鮰种的免疫效力检验:某场内共有斑点叉尾鮰池7口,随机分为A、B两组,A组鱼池4口,为试验组,B组鱼池3口,为对照组,试验组鱼池待放养鱼种时进行免疫接种,每尾腹腔注射0.5ml,B组不进行接种,只进行常规鱼病预防措施,秋冬起捕时计数对比,结果A组最低免疫保护率84.2%,最高免疫保护率91%,平均免疫保护率87.5%;B组鱼池成活率分别为61.2%、63.7%、63.2%,平均成活率为62.7%,见表3。
表3大面积斑点叉尾鮰种的免疫效力检验
单位:ml、尾、%
4、结论:使用斑点叉尾鮰爱德华氏菌病疫苗,方法简便,安全无毒性,对养殖场斑点叉尾鮰养殖有免疫保护作用,能提高斑点叉尾鮰养殖成活率,对发生斑点叉尾鮰爱德华氏菌病有很好预防效果。
Claims (2)
1.一种斑点叉尾鮰爱德华氏菌病疫苗的制备方法,其特征在于,具体步骤如下:
(1)、提取菌种:从患有明显爱德华氏菌病症状的斑点叉尾鮰肝脏、肾脏、血液、腹水中分离出病原菌爱德华氏菌,立即放入4-8℃的冰箱中保存;
(2)、感染:将分离的病原菌接种于健康的斑点叉尾鮰体内,在室内进行感染试验,每尾斑点叉尾鮰接种的病原菌数为1×109-2×109个,检查是否有毒力,证明确有毒力才用作制疫苗材料;将分离的病原菌倒入灭菌空试管中,用无菌生理盐水稀释调节菌浓度,与麦氏比浊管进行比色,使菌浓度达到5×109cfu/ml;
(3)、取材:取上述斑点叉尾鮰发病组织材料,称重,每克组织材料中加0.85%生理盐水10毫升,用研钵或匀浆器进行匀浆,制成10%浓度的组织悬液,将制得的组织悬液直接置于-30℃~-40℃低温冰箱中保存,或者向制得的组织悬液中按10%加入50%的磷酸缓冲甘油,将其置4-8℃的冰箱中保存;
(4)、悬液制备:将步骤(3)分离出的致病菌爱德华氏菌接种在普通琼脂营养基或肉汤培养基内,培养24-48小时,加入少量生理盐水,用接种环将菌苔刮下,充分振荡,制成细菌分布均匀的悬液;
(5)、扩大培养:取单个菌落在25-30℃条件下培养48-72小时,振荡使培养斜面上的菌落洗下,或用灭菌接种环轻轻刮下,进行灭活处理;
(6)、灭活:将扩大培养结束的爱德华氏菌悬液摇匀,放入60-70℃恒温水浴1.5-2.5小时灭活或32℃恒温水浴中70-73小时灭活,即制成灭活疫苗;
(7)、合成:将灭活后的菌液置于高速离心机中,用3000转/分离心机离心30-40分钟,分离出上清液,向分离出的上清液中添加一定量的青霉素、链霉素和浓度为10%的福尔马林溶液,并摇匀;
(8)、稀释:用0.85%的无菌盐水稀释灭活菌液至浓度为5×109cfu/ml;
(9)、分装:将稀释后的灭活菌液,置于4-8℃冰箱中保存备用;
(10)、检验:对上述稀释好的灭活菌液进行无菌、安全及免疫效果三项检验,要求,灭活菌液中没有活菌存在,灭活细菌的安全的系数要达到100%,免疫保护率达到80%以上;
(11)、检验合格后的灭活菌液,继续置于4-8℃冰箱中保存备用,
步骤(10)所述的无菌检验方法具体操作是:提取0.2ml灭活菌样本接种在普通营养琼脂培养基上,在25-28℃条件下培养48小时,观察是否形成菌落,若形成菌落则说明疫苗含菌,必须重新灭活,只有在琼脂平板上没有出现菌落出现才说明灭活彻底,灭活菌液中确实没有活菌存在;
步骤(10)所述的安全检验方法具体操作是:对当年健康斑点叉尾鮰鱼种进行腹腔注射,每尾注射0.3-0.5毫升,在水温25-28℃的水缸中饲养,经15d观察无发病或死亡说明该灭活细菌是安全的,必须做到100%安全才可使用;
步骤(10)所述的免疫效果检验方法具体操作是:在给健康斑点叉尾鮰接种上述制备的疫苗,二周后进行攻毒,观察免疫保护率,具体操作方法是取上述疫苗,每尾斑点叉尾鮰注射疫苗量为0.3-0.5ml,每天观察斑点叉尾鮰的发病及症状等情况并做好记录,另外用新鲜的或甘油保存的病鱼组织制成的未经灭活处理的浓度为10%的悬液,分别注射到已注射过疫苗的斑点叉尾鮰和没有注射过疫苗的斑点叉尾鮰体内进行对照,每尾按0.3-0.5毫升进行腹腔注射,继续观察15天,如果对照组全部发生爱德华氏菌病,死亡率在70%以上,病斑点叉尾鮰症状与天然发病的症状一样或相似,而免疫组仍健康存活,免疫保护率在80%以上,证明此疫苗有效。
2.根据权利要求1所述的斑点叉尾鮰爱德华氏菌病疫苗的制备方法,其特征在于:步骤(7)合成时,每10毫升上清液中加入青霉素8000单位、链霉素8000单位,10%浓度的福尔马林溶液0.1毫升。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201510416046.6A CN105056220A (zh) | 2015-07-14 | 2015-07-14 | 一种斑点叉尾鮰爱德华氏菌病疫苗的制备方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201510416046.6A CN105056220A (zh) | 2015-07-14 | 2015-07-14 | 一种斑点叉尾鮰爱德华氏菌病疫苗的制备方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN105056220A true CN105056220A (zh) | 2015-11-18 |
Family
ID=54485885
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201510416046.6A Pending CN105056220A (zh) | 2015-07-14 | 2015-07-14 | 一种斑点叉尾鮰爱德华氏菌病疫苗的制备方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN105056220A (zh) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105853511A (zh) * | 2016-04-12 | 2016-08-17 | 中国水产科学研究院长江水产研究所 | 防治斑点叉尾鮰爱德华氏菌病的中草药药饵及其制备方法 |
CN111100833A (zh) * | 2019-12-31 | 2020-05-05 | 浙江省淡水水产研究所 | 表达鲇鱼爱德华氏菌外膜蛋白的重组菌、制备方法及应用 |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102370975A (zh) * | 2010-08-17 | 2012-03-14 | 广西壮族自治区水产研究所 | 斑点叉尾鮰爱德华氏病疫苗的制备方法 |
CN102552894A (zh) * | 2011-12-01 | 2012-07-11 | 李进村 | 一种乌鳢腹水病疫苗的制备方法 |
WO2012149549A2 (en) * | 2011-04-29 | 2012-11-01 | Auburn University | Bacillus bacteria for use in treating and preventing infection in aquatic animals |
-
2015
- 2015-07-14 CN CN201510416046.6A patent/CN105056220A/zh active Pending
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102370975A (zh) * | 2010-08-17 | 2012-03-14 | 广西壮族自治区水产研究所 | 斑点叉尾鮰爱德华氏病疫苗的制备方法 |
WO2012149549A2 (en) * | 2011-04-29 | 2012-11-01 | Auburn University | Bacillus bacteria for use in treating and preventing infection in aquatic animals |
CN102552894A (zh) * | 2011-12-01 | 2012-07-11 | 李进村 | 一种乌鳢腹水病疫苗的制备方法 |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
侯娟等: "斑点叉尾鮰病毒疫苗的研制", 《贵州农业科学》 * |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105853511A (zh) * | 2016-04-12 | 2016-08-17 | 中国水产科学研究院长江水产研究所 | 防治斑点叉尾鮰爱德华氏菌病的中草药药饵及其制备方法 |
CN105853511B (zh) * | 2016-04-12 | 2019-10-25 | 中国水产科学研究院长江水产研究所 | 防治斑点叉尾鮰爱德华氏菌病的中草药药饵及其制备方法 |
CN111100833A (zh) * | 2019-12-31 | 2020-05-05 | 浙江省淡水水产研究所 | 表达鲇鱼爱德华氏菌外膜蛋白的重组菌、制备方法及应用 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN101144062B (zh) | 一种干酪乳杆菌菌株及其制品在禽类免疫中的应用 | |
JP2001500364A (ja) | 飼 料 | |
EP3071226B1 (en) | Fish vaccine | |
CN101868248A (zh) | 鱼疫苗 | |
CN100366726C (zh) | 一种球虫卵囊培养和保存用溶液及使用方法 | |
CN109007370A (zh) | 复合功能仔猪饲料添加剂及其制备方法 | |
CN108939062A (zh) | 一种杀鲑气单胞菌疫苗及其应用 | |
CN101999555B (zh) | 羊专用型动物营养素及其制备方法 | |
KR101168658B1 (ko) | 생균제와 그 제조 방법 및 생균제와 농산부산물을 이용한 고체 발효 사료 및 그 제조 방법 | |
CN108003240A (zh) | 一种海水养殖鱼多联抗独特型卵黄抗体疫苗及其制备方法 | |
CN101020051A (zh) | 海水鱼致病弧菌外膜蛋白亚单位疫苗的制备和使用方法 | |
CN102552894B (zh) | 一种乌鳢腹水病疫苗的制备方法 | |
Critchley | A comparison of human and animal botulism: a review | |
EP3071227B1 (en) | Fish vaccine | |
CN101999556B (zh) | 肉牛专用型动物营养素及其制备方法 | |
CN105056220A (zh) | 一种斑点叉尾鮰爱德华氏菌病疫苗的制备方法 | |
CN101606581A (zh) | 一种绿色饲料添加剂及其制备方法 | |
CN102715129B (zh) | 一种草药鸡的饲养方法及其所用饲料 | |
CN105797149A (zh) | 草鱼细菌性败血症和草鱼细菌性赤皮病二联蜂胶灭活疫苗及制备工艺 | |
JP2011506577A (ja) | 魚類ワクチン | |
Kassa et al. | Bacterial flora of Nile tilapia of pond fish and their relationship with predisposing factors | |
Yustiati et al. | Effectiveness of Potassium Diformate on Feed to Improve Immune Performance of Goldfish (Carassius auratus L.) | |
CN107412417A (zh) | 一种预防斑点叉尾鮰肠道败血症的复方中草药制剂及方法 | |
Damayanti et al. | THE EFFECT OF ADDITION OF TURMERIC FLOUR (Curcuma longa Linn) INFEED ON THE PERFORMANCE OF THE GROWTH AND IMMUNE SYSTEM OF FISH (Oreochromis niloticus) | |
CN106818621A (zh) | 一种安徽白山羊种羊科学饲养管理及免疫技术 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
RJ01 | Rejection of invention patent application after publication | ||
RJ01 | Rejection of invention patent application after publication |
Application publication date: 20151118 |