CN104561208B - 一种螺旋藻抗肿瘤多肽的三酶解制备方法 - Google Patents
一种螺旋藻抗肿瘤多肽的三酶解制备方法 Download PDFInfo
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Abstract
本发明提供一种螺旋藻抗肿瘤多肽的三酶解制备方法。该方法为:取螺旋藻粉,用超纯水配制成浓度为5%的溶液,反复冻融后,冰浴中均质、超声,离心取上清液,冷冻干燥备用;将其配置成的蛋白液,加入胃蛋白酶进行酶解,控制pH值,加入胰蛋白酶进行酶解,加入胰凝乳蛋白酶进行酶解,控制pH值,灭酶,冷却,离心,取上清液;依次用截留分子量分别为10 KD、5 KD以及3 KD的超滤膜过滤,获得三种螺旋藻蛋白酶解液;将0‑3K的酶解液进行葡聚糖凝胶Sephadex G‑15柱层析,水洗脱,收集得到4个多肽组分,即螺旋藻抗肿瘤多肽。本发明得到的螺旋藻多肽和单肽组分,为抗肿瘤药物和保健食品的开发利用奠定了理论基础。
Description
技术领域
本发明属于生物技术领域,具体涉及一种螺旋藻抗肿瘤多肽的三酶解制备方法。
背景技术
生物活性肽是对机体的功能或状态具有积极作用并最终影响机体健康的特殊蛋白质片段。相较于蛋白质而言,小分子肽片段的优越性主要体现在:更易被人体吸收利用;活性高,在较小浓度下即可发挥其特有的生理作用;分子量小,易于修饰和改造,能够通过人工化学合成等。而相较于单一的氨基酸而言,小分子肽除了具有特殊的生理活性外,在吸收通道和吸收速度上也具有氨基酸无可比拟的优越性。已有研究证实,人体小肠存在专门的低聚肽吸收通道,人体摄入的蛋白质经过多种消化酶的水解,主要以低肽的形式被吸收,且二肽和三肽的吸收速度比同组成的氨基酸更快。
海洋环境复杂多变,其高盐、高压、低温、寡营养等独特条件赋予了海洋生物某些优良的特性。许多研究表明,生物活性肽,尤其是海洋来源的生物活性肽具有抗氧化、抗肿瘤、抑菌、降压、降血糖等多种作用。而近年来,海洋来源的天然生物抗肿瘤肽也取得一定的进展,成为抗肿瘤药物和保健品开发的重要来源。
螺旋藻(Spirulina)是人类迄今为止所发现的最优质的纯天然蛋白质食品源,其蛋白质含量高达50-70%,由18种氨基酸组成,包含人体全部8种必需氨基酸,且配比合理。其丰富的蛋白质和氨基酸为开发螺旋藻生物活性肽提供了良好的物质基础。利用酶解手段将螺旋藻蛋白进行非变性水解,不仅能提高螺旋藻蛋白的溶解性和体内吸收利用率,还能获取具有特殊生理功能的生物活性肽。目前已有报道从螺旋藻蛋白酶解物中成功提取到抗氧化肽、ACE抑制肽、抑菌肽等,但抗肿瘤肽的研究尚处于初级阶段。本文以MTT实验为指导,通过酶解、超滤、凝胶色谱分离技术,纯化得到多个抗肿瘤活性肽组分,并通过质谱技术对其组分和序列进行初步鉴定,为进一步开发螺旋藻的食用和药用价值提供理论依据。
发明内容
为进一步开发螺旋藻在食品和生物医学领域的应用价值,本发明的目的是提供一种螺旋藻抗肿瘤多肽的三酶解制备方法。
为实现本发明的目的,采用如下技术方案:
一种螺旋藻抗肿瘤多肽的三酶解制备方法,包括如下步骤:
(1)采用反复冻融、均质和超声联用的方法,提取螺旋藻蛋白:取10~50 g螺旋藻粉,用超纯水配制成浓度为5% (w/v)的溶液,反复冻融2-5次,冰浴中均质、超声,离心取上清液,冷冻干燥备用;
(2)取步骤(1)得到的螺旋藻蛋白配置成1%~5%的蛋白液,加入胃蛋白酶在控制条件下进行酶解,酶解过程中使用0.05~0.2 mol/L的NaOH和HCl来调节反应体系的pH值,控制pH值在pH±0.05之间,酶解完后再调节酶解条件,加入胰蛋白酶在控制条件下进行酶解,酶解体系的pH值控制方法同上,之后加入胰凝乳蛋白酶在控制条件下进行酶解,酶解体系的pH值控制方法同上,酶解完毕后灭酶,冷却至室温,将酶解液离心,取上清液;
(3)取步骤(2)得到的酶解液,依次用截留分子量分别为10 KD、5 KD以及3 KD的超滤膜过滤,从而获得分子量大小范围为0-3 KD、3-5 KD,5-10KD和大于10 KD的螺旋藻蛋白酶解液;
(4)取步骤(3)得到的0-3K的酶解液进行葡聚糖凝胶Sephadex G-15柱层析,水洗脱,按照出峰的时间顺序,收集得到4个多肽组分,分别命名为Tr1、Tr2、Tr3和Tr4,即螺旋藻抗肿瘤多肽。
上述方法中,步骤(1)所述反复冻融条件为:-20 ℃冰箱中冷冻4~8h,再置于 37℃水浴中解冻2~3h;所述均质条件为:样品置于冰浴中均质1~3min,在转速为3000~5000rpm搅拌 20~50s,然后在7000~12000rpm 搅拌40~80s,最后在3000~5000rpm搅拌20~50s。
上述方法中,步骤(1)所述超声条件为:样品置于冰浴中,以460~670 W 的功率超声20~15min,超声过程中每超声4~8s,间隔6~10s再继续超声4~8s,如此循环。
上述方法中,步骤(1)所述离心条件为:4 ℃,8000 ~10000r/min,离心 30 ~60min。
上述方法中,步骤(2)胃蛋白酶、胰蛋白酶与胰凝乳蛋白酶三酶解的水解条件是:加入胃蛋白酶,酶解温度37℃,pH=1~2,酶解时间1~3 h,酶与底物浓度比为4~6%(w/w),加入胰蛋白酶,酶解温度37℃,pH=7~9,酶解时间2~4h,酶与底物浓度比为3~5%(w/w),加入胰凝乳蛋白酶,酶解温度37℃,pH=7~9,酶解时间2~4h,酶与底物浓度比为4~6%(w/w)。
上述方法中,步骤(2)所述灭酶条件为:80~95℃水浴灭酶10~15 min。
上述方法中,步骤(2)所述离心条件为8000~10000 r/min,离心30~60 min。
上述方法中,步骤(3)所述的超滤在CO2压力为0.1~0.25 MPa的室温下用超滤杯结合10K,5K和3K的超滤膜超滤。
上述方法中,步骤(4)所述的葡聚糖凝胶Sephadex G-15分离纯化,具体条件为:柱体积为150~200 mL,上样量为1~4 mL,上样浓度为50~150 mg/mL,流动相为水,流速为0.35mL/min,每8 min收集一管,总共收集160管,检测波长为280 nm。
上述方法中,步骤(4)所述螺旋藻抗肿瘤多肽组份通过 MALDI-TOF-TOF质谱分析鉴定得到,Tr1多肽中的的其中一条肽分子量为935.567,序列为RPARSLVH (C→N)。
与现有的技术相比,本发明具有如下的技术优点和效果:
本发明得到的4个螺旋藻多肽组份对乳腺癌细胞(MCF-7)和肝癌细胞(HepG-2)均具有抑制作用。其中,Tr1对MCF-7和HepG-2的半抑制浓度IC50值分别为:60.12 µg/mL和82.48µg/mL。Tr2对MCF-7的半抑制浓度IC50值小于实验最低剂量浓度31.25 µg/mL,对HepG-2半抑制浓度IC50为90.74µg/mL。Tr3对MCF-7和HepG-2的半抑制浓度IC50值分别为:238.86µg/mL和176.37µg/mL。MALDI-TOF-TOF-MS二级质谱分析得出Tr1多肽中的的其中一条肽分子量为935.567,序列为RPARSLVH (C→N)。因而本发明得到的螺旋藻多肽有利于抗肿瘤药物和保健食品的开发利用。
附图说明
图1为实施例1中0-3 K酶解液组份的葡聚糖凝胶SephadexG-15柱层析洗脱曲线。
图2为实施例1中所制备的4个多肽组份浓度均为500 µg/mL时对乳腺癌细胞(MCF-7)和肝癌细胞(HepG-2)抑制效果。
图3为实施例1所制备的螺旋藻多肽中荷质比m/z = 935.567的二级质谱图。
具体实施方式
以下结合实例和附图对本发明的具体实施作进一步说明,但本发明的实施和保护范围不限于此。
实施例1
(1)取10 g螺旋藻粉,用超纯水配制成浓度为5% (w/v)的溶液,在-20 ℃冰箱中冷冻4h,再置于 37℃水浴中解冻2h,如此反复冻融5次。样品置于冰浴中均质2min,转速为5000rpm 30s→10000rpm 1min→5000rpm 30s 。然后冰浴中以460W 的功率超声20min(每超声 6 s ,间隔 9 s)。4 ℃,8000r/min,离心 30 min。
(2)取步骤(1)得到的螺旋藻蛋白配置成2%(w/w)的蛋白液,加入胃蛋白酶,使酶与底物浓度比为4%(w/w),调节温度至37℃,pH为1.0,酶解1 h。然后调节pH至7.0,按照3%(w/w)的酶底比加入胰蛋白酶酶解2h。再按照4%(w/w)的酶底比加入胰凝乳蛋白酶,酶解2h。该过程中使用0.05mol/L的NaOH和HCl来调节反应体系的pH值,控制pH值在pH±0.05之间。酶解完毕后80℃水浴中灭酶15min,冷却至室温,8000r/min,离心30min后取上清液。
(3)取步骤(2)得到的酶解液,依次用截留分子量分别为10 KD、5 KD以及3 KD的超滤膜过滤(CO2的压力为0.10 MPa的室温下),从而获得分子量大小范围为0-3 KD、3-5 KD,5-10KD和大于10 KD的螺旋藻蛋白酶解液。
(4)取步骤(2)得到的0-3K的酶解液进行葡聚糖凝胶Sephadex G-15柱层析,柱体积为150 mL,上样量为1 mL,上样浓度为150 mg/mL,流动相为水,流速为0.40 mL/min,每8min收集一管,总共收集160管,检测波长为280 nm,按照出峰的时间顺序,收集得到4个多肽组分,分别命名为Tr1、Tr2、Tr3和Tr4(图1)。
通过步骤(1)~(4)得到4种螺旋藻多肽组份,用MTT法对这4个组份进行抗肿瘤活性检测,结果表明当这4种组份的浓度分别为500 µg/mL时,对乳腺癌细胞MCF-7和肝癌细胞HepG-2均具有一定的抑制作用(图 2)。其中,Tr 1、 Tr 2和Tr4对乳腺癌细胞MCF-7的半数抑制浓度IC50值分别为60.12µg/mL,小于31.25µg/mL以及238.86µg/mL。对HepG-2的半数抑制浓度IC50值分别为82.48µg/mL,90.74µg/mL以及176.37µg/mL。MALDI-TOF-TOF-MS二级质谱分析得出Tr1多肽中的的其中一条肽分子量为935.567,序列为RPARSLVH (C→N)。
实施例2
(1)取20 g螺旋藻粉,用超纯水配制成浓度为5% (w/v)的溶液,在-20 ℃冰箱中冷冻5h,再置于 37℃水浴中解冻2.5h,如此反复冻融4次。样品置于冰浴中均质70s,转速为4000rpm 20s→12000rpm 30s→4000rpm 20s 。然后冰浴中以500 W 的功率超声20min(每超声 5 s ,间隔 7 s)。4 ℃,8000r/min,离心 40 min。
(2)取步骤(1)得到的螺旋藻蛋白配置成3%(w/w)的蛋白液,加入胃蛋白酶,使酶与底物浓度比为5%(w/w),调节温度至37℃,pH为1.5,酶解1.5 h。然后调节pH至7.5,按照4%(w/w)的酶底比加入胰蛋白酶酶解3h。再按照5%(w/w)的酶底比加入胰凝乳蛋白酶,酶解3h。该过程中使用0.05mol/L的NaOH和HCl来调节反应体系的pH值,控制pH值在pH±0.05之间。酶解完毕后95℃水浴中灭酶10min,冷却至室温,8000r/min,离心40min后取上清液。
(3)取步骤(2)得到的酶解液,依次用截留分子量分别为10 KD、5 KD以及3 KD的超滤膜过滤(CO2的压力为0.15 MPa的室温下),从而获得分子量大小范围为0-3 KD、3-5 KD,5-10KD和大于10 KD的螺旋藻蛋白酶解液。
(4)取步骤(2)得到的0-3K的酶解液进行葡聚糖凝胶Sephadex G-15柱层析,柱体积为150 mL,上样量为2 mL,上样浓度为50 mg/mL,流动相为水,流速为0.40 mL/min,每8min收集一管,总共收集160管,检测波长为280 nm,按照出峰的时间顺序,收集得到4个多肽组分,分别命名为Tr1、Tr2、Tr3和Tr4,检测方法与结果参照实施例1。
实施例3
(1)取25 g螺旋藻粉,用超纯水配制成浓度为5% (w/v)的溶液,在-20 ℃冰箱中冷冻6h,再置于 37℃水浴中解冻3h,如此反复冻融3次。样品置于冰浴中均质150s,转速为3000rpm 50s→8000rpm 50s→3000rpm 50s 。然后冰浴中以600 W 的功率超声15min(每超声 4 s ,间隔 6 s)。4 ℃,8000r/min,离心 45 min。
(2)取步骤(1)得到的螺旋藻蛋白配置成4%(w/w)的蛋白液,加入胃蛋白酶,使酶与底物浓度比为5.5%(w/w),调节温度至37℃,pH为2.0,酶解2 h。然后调节pH至8.0,按照3%(w/w)的酶底比加入胰蛋白酶酶解4h。再按照4%(w/w)的酶底比加入胰凝乳蛋白酶,酶解4h。该过程中使用0.05mol/L的NaOH和HCl来调节反应体系的pH值,控制pH值在pH±0.05之间。酶解完毕后95℃水浴中灭酶10min,冷却至室温,8000r/min,离心45min后取上清液。
(3)取步骤(2)得到的酶解液,依次用截留分子量分别为10 KD、5 KD以及3 KD的超滤膜过滤(CO2的压力为0.22 MPa的室温下),从而获得分子量大小范围为0-3 KD、3-5 KD,5-10KD和大于10 KD的螺旋藻蛋白酶解液。
(4)取步骤(2)得到的0-3K的酶解液进行葡聚糖凝胶Sephadex G-15柱层析,柱体积为180 mL,上样量为2 mL,上样浓度为75 mg/mL,流动相为水,流速为0.40 mL/min,每8min收集一管,总共收集160管,检测波长为280 nm,按照出峰的时间顺序,收集得到4个多肽组分,分别命名为Tr1、Tr2、Tr3和Tr4,检测方法与结果参照实施例1。
实施例4
(1)取50 g螺旋藻粉,用超纯水配制成浓度为5% (w/v)的溶液,在-20 ℃冰箱中冷冻8h,再置于 37℃水浴中解冻3h,如此反复冻融2次。样品置于冰浴中均质3min,转速为3500rpm 60s→7000rpm 60s→3500rpm 60s 。然后冰浴中以670 W 的功率超声20min(每超声 7 s ,间隔 10 s)。4 ℃,8000r/min,离心 60 min。
(2)取步骤(1)得到的螺旋藻蛋白配置成5%(w/w)的蛋白液,加入胃蛋白酶,使酶与底物浓度比为6.0%(w/w),调节温度至37℃,pH为2.0,酶解2 h。然后调节pH至8.5,按照5%(w/w)的酶底比加入胰蛋白酶酶解3h。再按照6%(w/w)的酶底比加入胰凝乳蛋白酶,酶解3h。该过程中使用0.2mol/L的NaOH和HCl来调节反应体系的pH值,控制pH值在pH±0.05之间。酶解完毕后90℃水浴中灭酶10min,冷却至室温,8000r/min,离心60min后取上清液。
(3)取步骤(2)得到的酶解液,依次用截留分子量分别为10 KD、5 KD以及3 KD的超滤膜过滤(CO2的压力为0.20 MPa的室温下),从而获得分子量大小范围为0-3 KD、3-5 KD,5-10KD和大于10 KD的螺旋藻蛋白酶解液。
(4)取步骤(2)得到的0-3K的酶解液进行葡聚糖凝胶Sephadex G-15柱层析,柱体积为200 mL,上样量为4 mL,上样浓度为50 mg/mL,流动相为水,流速为0.40 mL/min,每8min收集一管,总共收集160管,检测波长为280 nm,按照出峰的时间顺序,收集得到4个多肽组分,分别命名为Tr1、Tr2、Tr3和Tr4,检测方法与结果参照实施例1。
本发明的上述实施例仅仅是为清楚地说明本发明所作的举例,而并非是对本发明的实施方式的限定。对于所属领域的普通技术人员来说,在上述说明的基础上还可以做出其它不同形式的变化或变动。这里无需也无法对所有的实施方式予以穷举。凡在本发明的精神和原则之内所作的任何修改、等同替换和改进等,均应包含在本发明权利要求的保护范围之内。
Claims (6)
1.一种螺旋藻抗肿瘤多肽的三酶解制备方法,其特征在于,具体包括如下步骤:
(1)取10~50 g螺旋藻粉,用超纯水配制成浓度为5% (w/v)的溶液,反复冻融2-5次,冰浴中均质、超声,离心取上清液,冷冻干燥备用;
(2)取步骤(1)得到的螺旋藻蛋白配置成1%~5%的蛋白液,加入胃蛋白酶在控制条件下进行酶解,酶解过程中使用0.05~0.2 mol/L的NaOH和HCl来调节反应体系的pH值,控制pH值在pH±0.05之间,酶解完后再调节酶解条件,加入胰蛋白酶在控制条件下进行酶解,酶解体系的pH值控制方法同上,之后加入胰凝乳蛋白酶在控制条件下进行酶解,酶解体系的pH值控制方法同上,酶解完毕后灭酶,冷却至室温,将酶解液离心,取上清液;所述胃蛋白酶、胰蛋白酶与胰凝乳蛋白酶三酶解的水解条件是:加入胃蛋白酶,酶解温度37℃,pH=1~2,酶解时间1~3 h,酶与底物浓度比为4~6%(w/w),加入胰蛋白酶,酶解温度37℃,pH=7~9,酶解时间2~4h,酶与底物浓度比为3~5%(w/w),加入胰凝乳蛋白酶,酶解温度37℃,pH=7~9,酶解时间2~4h,酶与底物浓度比为4~6%(w/w);
(3)取步骤(2)得到的酶解液,依次用截留分子量分别为10 KD、5 KD以及3 KD的超滤膜过滤,从而获得分子量大小范围为0-3 KD、3-5 KD,5-10KD和大于10 KD的螺旋藻蛋白酶解液;所述的超滤在CO2压力为0.1~0.25 MPa的室温下用超滤杯结合10K,5K和3K的超滤膜超滤;
(4)取步骤(3)得到的0-3K的酶解液进行葡聚糖凝胶Sephadex G-15柱层析,水洗脱,收集得到4个多肽组分,按照出峰的时间顺序,收集得到4个多肽组分,分别命名为Tr1、Tr2、Tr3和Tr4,即螺旋藻抗肿瘤多肽;所述螺旋藻抗肿瘤多肽组份通过 MALDI-TOF-TOF质谱分析鉴定得到,Tr1多肽中的其中一条肽分子量为935.567,其中C→N序列为RPARSLVH ;所述的葡聚糖凝胶Sephadex G-15分离纯化,具体条件为:柱体积为150~200 mL,上样量为1~4mL,上样浓度为50~150 mg/mL,流动相为水,流速为0.35 mL/min,每8 min收集一管,总共收集160管,检测波长为280 nm。
2.根据权利要求1所述的一种螺旋藻抗肿瘤多肽的三酶解制备方法,其特征在于,步骤(1)所述反复冻融条件为:-20 ℃冰箱中冷冻4~8h,再置于 37℃水浴中解冻2~3h;所述均质条件为:样品置于冰浴中均质1~3min,在转速为3000~5000rpm搅拌 20~50s,然后在7000~12000rpm 搅拌40~80s,最后在3000~5000rpm搅拌20~50s。
3.根据权利要求1所述的一种螺旋藻抗肿瘤多肽的三酶解制备方法,其特征在于,步骤(1)所述超声条件为:样品置于冰浴中,以460~670 W 的功率超声20~15min,超声过程中每超声4~8s,间隔6~10s再继续超声4~8s,如此循环。
4.根据权利要求1所述的一种螺旋藻抗肿瘤多肽的三酶解制备方法,其特征在于,步骤(1)所述离心条件为:4 ℃,8000 ~10000r/min,离心 30 ~60min。
5.根据权利要求1所述的一种螺旋藻抗肿瘤多肽的三酶解制备方法,其特征在于,步骤(2)所述灭酶条件为:80~95℃水浴灭酶10~15 min。
6.根据权利要求1所述的一种螺旋藻抗肿瘤多肽的三酶解制备方法,其特征在于,步骤(2)所述离心条件为8000~10000 r/min,离心30~60 min。
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CN101899102A (zh) * | 2010-07-12 | 2010-12-01 | 华南理工大学 | 一种从螺旋藻中分离高纯度藻蓝蛋白的方法 |
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2015
- 2015-01-21 CN CN201510031433.8A patent/CN104561208B/zh active Active
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101899102A (zh) * | 2010-07-12 | 2010-12-01 | 华南理工大学 | 一种从螺旋藻中分离高纯度藻蓝蛋白的方法 |
Non-Patent Citations (2)
Title |
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富硒螺旋藻蛋白水解多肽的制备及其对ACE 活性的抑制作用;王韵等;《现代食品科技》;20130731;第29卷(第7期);摘要和第1575页右栏1.3部分,第1576页左栏2.1部分以及表1,第1577页2.4部分 * |
螺旋藻抗肿瘤肽的分离及壳聚糖纳米粒子复合物的制备;张博超;《中国优秀硕士学位论文全文数据库 工程科技Ⅰ辑》;20130115(第1期);摘要,第15-42页2.3-3.5部分,第16页2.3.3,第33页最后1段,第34页全部,以及图3-1和图3-2,第31页最后1段-第32页2.2.2.6,第32页3.3.3.5 * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
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