CN104330572A - 一种用于间接ELISA检测猪PRRSV病毒IgG或IgA抗体的试剂盒 - Google Patents
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Abstract
本发明属于生物检测试剂领域,涉及一种用于间接ELISA检测猪PRRSV病毒IgG或IgA抗体的试剂盒。一种用于间接ELISA检测猪血清或唾液PRRSV病毒IgG或IgA抗体的试剂盒,该试剂盒包含:a)抗体检测板,b)HRP标记的羊抗猪IgG抗体溶液或HRP标记的羊抗猪IgA,c)阳性对照:PRRSV标准阳性血清或唾液,d)阴性对照:PRRSV阴性血清或唾液,e)样品稀释液,f)10×浓缩洗涤液,g)底物显色液,h)终止液。本发明试剂盒用于猪血清或唾液中PRRSV IgG或IgA抗体的有很好的PRRSV特异性和敏感性。重复性试验也表明该试剂盒具有良好的重复性好。
Description
技术领域
本发明属于生物检测试剂领域,涉及一种用于间接ELISA检测猪PRRSV病毒IgG或IgA抗体的试剂盒。
背景技术
猪繁殖与呼吸障碍综合征(Porcine reproductive and respiratory syndrome,PRRS)又称猪高致病性蓝耳病,由猪繁殖与呼吸障碍综合征病毒(Porcine reproductive and respiratory syndrome virus,PRRSV)感染所致。该病在中国的流行和分布十分广泛,危害日趋严重,已成为制约养猪业发展的重要传染性疾病。该病在临床上主要表现为持续高热、粪便干燥、呼吸障碍及繁殖性能下降,母猪在怀孕后期出现流产、死胎以及木乃伊胎[1]。具有发病率高、持续时间长、难治疗和易反复等特点。
目前猪群中PRRSV抗体检测主要采用血清学方法,主要包括免疫过氧化物酶单层试验(IPMA)、间接免疫荧光试验(IFA)、酶联免疫吸附试验(ELISA)和血清中和试验(SN)等。血清学检测技术因操作简便,且敏感性和特异性较高,已成为猪繁殖与呼吸障碍综合征的主要检测方法之一。然而,血清学检测方法费时、费力,对猪产生的应激较大,同时威胁着操作者的安全。血清样本难以满足大量样本数的要求,不能对动物随机、随时采样。
唾液采集方便,利用猪好奇心理及嗜好咀嚼的特性,将灭菌处理的棉球悬挂于猪面前,将吸收唾液的棉球置于干净的封口袋中,挤压到离心管中,-20℃保存备用。目前关于用唾液来检测疾病的方法已经在人医临床上开始应用,如在儿童孤独症、口干症、乙型肝炎表面抗原以及艾滋病等。但唾液样本在兽医临床上尚未得到广泛应用。
发明内容
本发明的目的是针对现有技术的上述不足,提供一种用于间接ELISA检测猪血清或唾液中PRRSVIgG或IgA抗体的试剂盒。
本发明的目的可通过如下技术方案实现:
一种用于间接ELISA检测猪血清或唾液PRRSV病毒IgG或IgA抗体的试剂盒,该试剂盒包含:a)抗体检测板,b)HRP标记的羊抗猪IgG抗体溶液或HRP标记的羊抗猪IgA抗体溶液, c)阳性对照:PRRSV标准阳性血清或唾液,d)阴性对照:PRRSV阴性血清或唾液,e)样品稀释液,f)10×浓缩洗涤液,g)底物显色液,h)终止液,其中:所述的抗体检测板为包被PRRSVJXA1重组N蛋白的96孔酶标板;所述的PRRSV JXA1重组N蛋白通过以下方法制备得到:
1)根据PRRSV JXA1株设计1对扩增包括N蛋白全基因序列的特异性引物F1:SEQ ID NO.1和SEQ ID NO.2,以PRRSV JXA1株基因组DNA为模板,PCR扩增PRRSV JXA1株N蛋白基因片段;
2)将扩增的片段插入pET-28a表达载体的EcoRI和XhoI酶切位点间得到重组表达质粒pET-28a-N,经双酶切及测序验证;
3)将重组表达质粒转化大肠杆菌BL21(DE3)感受态细胞,培养基因工程菌诱导表达目的蛋白;
4)重组菌体离心后,纯化得所述的PRRSV JXA1重组N蛋白。
用于间接ELISA检测猪血清PRRSV病毒IgG抗体的试剂盒中所述的酶标板中抗原包被浓度为1.25μg/mL,使用的封闭液为3%BSA的PBST溶液;所述的HRP标记的羊抗猪IgG抗体溶液稀释度为1:4000;阳性对照为用PBST溶液1:40稀释的PRRSV标准阳性血清;阴性对照为用PBST溶液1:40稀释的PRRSV阴性血清。
用于间接ELISA检测猪血清PRRSV病毒IgA抗体的试剂盒中所述的酶标板中抗原包被浓度为2.5μg/mL,使用的封闭液为1%BSA的PBST溶液;所述的HRP标记的羊抗猪IgA抗体溶液稀释度为1:1000;阳性对照为用PBST溶液1:4稀释的PRRSV标准阳性血清;阴性对照为用PBST溶液1:4稀释的PRRSV阴性血清。
用于间接ELISA检测猪唾液PRRSV病毒IgG抗体的试剂盒中所述的酶标板中抗原包被浓度为2.5μg/mL,使用的封闭液为1%BSA的PBST溶液;所述的HRP标记的羊抗猪IgG抗体溶液稀释度为1:2000;阳性对照为用PBST溶液1:2稀释的PRRSV阳性唾液样本;阴性对照为用PBST溶液1:2稀释的PRRSV阴性唾液样本。
用于间接ELISA检测猪唾液PRRSV病毒IgA抗体的试剂盒中所述的酶标板中抗原包被浓度为2.5μg/mL,使用的封闭液为1%BSA的PBST溶液;所述的HRP标记的羊抗猪IgA抗体溶液稀释度为1:1000;阳性对照为用PBST溶液1:2稀释的PRRSV阳性唾液样本;阴性对照为用PBST溶液1:2稀释的PRRSV阴性唾液样本。
所述的样品稀释液为所述的样品稀释液为PBST。
本发明所述的PBST溶液为含5%Tween-20的PBS溶液。
有益效果:
PRRSV病毒基因组约15kb,含8个阅读框(ORFs),其中ORF7长372bp,编码PRRSV的核衣壳蛋白N蛋白。N蛋白最为保守,欧洲型和美洲型毒株含有共同的N蛋白抗原决定簇。N蛋白含量较高,占病毒结构蛋白的20~40%,是病毒的主要结构蛋白,有较强的免疫活性。本发明通过基因工程手段合成了重组E蛋白,以重组N蛋白为包被抗原,建立检测猪血清或唾液中PRRSV抗体的间接ELISA方法和间接ELISA试剂盒。血清交叉试验证明,本发明试剂盒用于猪血清或唾液中PRRSV IgG或IgA抗体的有很好的PRRSV特异性和敏感型。重复性试验也表明该试剂盒具有良好的重复性好。
附图说明
图1N蛋白基因RT-PCR扩增结果
M:DL1000Marker;1,2:N蛋白基因
图2pET-28a-N重组质粒双酶切鉴定
M1:DL 5000Marker;1:pET-28a-N基因PCR产物;2:pET-28a-N重组质粒双酶切产物;3:pET-28a双酶切产物
图3重组N蛋白诱导表达的SDS-PAGE分析
M:蛋白Marker;1:pET-28a/BL21(DE3)菌液,2:pET-28a-N诱导前菌液,3:pET-28a-N诱导后菌裂解液上清,4:pET-28a-N诱导后菌裂解液沉淀
图4重组N蛋白的亲和层析纯化
M:蛋白Marker;1:纯化后的重组N蛋白
图5重组N蛋白的Western blot分析
M:预染蛋白Marker;1:纯化后的重组N蛋白
具体实施方式
实施例1重组N蛋白的表达及纯化
1.1N蛋白基因的扩增
根据美洲株PRRSV JXA1株(GenBank:KC422729)设计1对扩增包括N蛋白全基因序列的特异性引物:P1:5'-CCGGAATTCATGCCAAATAACAACGGCAAG-3'(SEQ ID NO.1);
P2:5'-CCGCTCGAGTCATGCTGAGGGTGATGCTGT-3'(SEQ ID NO.2),
分别于上游和下游的5'端插入EcoRI和XhoI限制性酶切位点。引物由英骏生物技术有限公司合成,该扩增片段大小为372bp。从病毒细胞培养液中提取总RNA,按照试剂盒说明进行RT-PCR扩增目的基因。PCR扩增程序为:94℃预变性3min;94℃45s,55℃45s,72℃1min,35个循环;72℃延伸10min。反应结束后取5μLPCR产物进行1.0%琼脂糖凝胶电泳检查,结果显示与预期大小相符(图1)。
1.2重组质粒的构建
将N基因纯化回收后,经EcoRI和XhoI双酶切后,克隆至经EcoRI和XhoI双酶切消化后的pET-28a表达载体中,于16℃连接过夜,转化大肠杆菌DH5α,碱裂解法少制备质粒,经PCR扩增及酶切鉴定,筛选阳性重组表达质粒pET-28a-N,双酶切鉴定为阳性后,送至测序公司进行序列测定。pET-28a-N经测序鉴定,与PRRSV JXA1(GenBank:KC422729)的同源率达99%。重组质粒经EcoRI和XhoI双酶切鉴定,1%琼脂糖凝胶电泳观察,可见约5369bp和372bp的条带,与预期结果一致,说明重组质粒构建成功(图2)。
1.3重组融合蛋白在大肠杆菌中的表达
将阳性重组质粒转化至表达菌BL21(DE3)中,挑取阳性克隆,接种于新鲜LB液体培养基中,37℃振荡培养至OD600达到约0.6左右,加入诱导剂IPTG至终浓度为1mmol/L,18℃诱导培养12h后,离心收集菌体,SDS-PAGE检测表达情况。离心后菌体经超声破碎后,分别取上清和沉淀,SDS-PAGE分析表达蛋白的可溶性。经12%SDS-PAGE电泳分析,空载体菌pET-28a/BL21(DE3)及pET-28a-N诱导前菌液没有出现目的蛋白,超声裂解液上清在17kD左右出现目的蛋白,说明该表达蛋白为可溶性蛋白(图3)。
1.4重组蛋白的纯化及免疫学活性检测
37℃诱导培养5h的200mL重组菌体离心后,用150mL 50mmol/L PBS重悬菌体沉淀,按约1:10的比例加入200μL质量浓度为50g/L,含1%Triton X-100的预冷的溶菌酶,混合作用30min后,250W超声裂解2h,离心之后上清用0.22μm的滤器过滤。用3mL镍琼脂糖凝胶基质装柱,自然沉降30min,加过滤后上清,然后依次用10~20倍柱床体积的PBS缓冲液洗涤1次,用100、200、300、400mmol/L咪唑磷酸盐缓冲液洗脱,与上清液和沉淀物进行12%的SDS-PAGE检测。12%SDS-PAGE电泳分析表明,尽管有少量杂蛋白,但目的蛋白占绝对多的含量,且纯度可达90%以上(图4)。
按常规方法(Dea S,Wilson L,Therrien D,et al.Competitive ELISA for detection of antibodies to porcine reproductive and respiratory syndrome virus using recombinant E.coil-expressed nucleocapsid),对纯化N蛋白进行Western blot分析,分别应用PRRS标准阳性血清与HRP标记的羊抗猪IgG作为一抗和二抗,检测重组融合蛋白的免疫原性。结果显示:纯化N蛋白在目标条带处出现明显印迹(图5)。
实施例2血清IgG ELISA检测方法的建立
1.1最佳抗原包被浓度与血清稀释浓度的确定
将实施例1中纯化的N蛋白用PH9.6,0.05M碳酸盐缓冲液稀释成6个稀释度进行包被10μg/mL,5μg/mL,2.5μg/mL,1.25μg/mL,0.625μg/mL及0.313μg/mL,每个稀释度重复两孔,100μL/孔,4℃包被过夜。PBST(含0.5%Tween-20的PBS)洗涤3次,每孔加入100μL 3%BSA(稀释于PBST中)于37℃温箱中封闭2h。PRRSV标准阳性血清、阴性血清分别于封闭液中进行1:10,1:20,1:40,1:80稀释,每孔100μL,37℃温箱中孵育1h进行ELISA方阵实验。HRP标记的抗猪IgG抗体于PBST中1:5000倍稀释(说明书推荐稀释倍数),每孔100μL,37℃温箱中孵育1h。加入100μL显色底物,37℃避光显色10min。100μL 2mol/L H2SO4终止反应。测定各孔OD450nm值,根据阳性血清OD450nm值和阴性血清OD450nm值之比(即P/N)的最大值,确定最佳抗原包被浓度与血清稀释浓度。
表1重组N蛋白最佳抗原包被浓度和血清最佳稀释度的确立
注:+表示PRRSV阳性血清OD450值;-表示PRRSV阴性血清OD450值。
方阵结果显示,随着重组N蛋白浓度的递减,标准阴性、阳性血清浓度的递增,阳性样品OD450值随之不断减小,当抗原包被浓度为1.25μg/ml,标准阴性、阳性血清稀释度为1:40的时候,阳性标准血清的OD450值在1.0左右,阴性血清OD450值在0.1左右,P/N值最大(表1)。因此确定抗原包被浓度为1.25μg/mL,血清稀释度为1:40。
2.2最佳封闭液的确定
以最适的抗原包被浓度和抗体稀释度包被酶标板,PBST清洗3次之后,每孔加入100μL不同的封闭液。封闭液包括稀释于PBST中的1%BSA,3%BSA,1%OVA 3%OVA,5%脱脂奶粉,5%明胶和5%小牛血清。37℃封闭2h,其余各步骤同上。酶标仪测量各孔OD450nm值,计算P/N值,确定最佳封闭液。结果显示3%BSA的P/N值最高,以次为最佳封闭液。
2.3酶标二抗最佳工作浓度的确定
用已经确定的抗原和抗体最适工作浓度进行间接ELISA,HRP标记的羊抗猪IgG抗体按照1:1000、1:2000、1:4000和1:8000共4个梯度稀释,37℃孵育1h,TMB显色10min后终止。测定OD450nm值,P/N值最大时为酶标二抗的最适工作浓度。结果显示,P/N最高时,酶标二抗稀释度为1:4000,为最佳稀释度。
2.4判定标准的确定
选取用美国IDEXX Herd Chek ELISA试剂盒检测过的PRRSV阴性血清87份,用所建立的ELISA方法进行检测,每个样品做3个重复。测定OD450值,进行统计学分析,计算出血清样本平均OD值和标准差SD根据公式:样本的平均OD值+3×SD计算其判定标准的临界值。对87份阴性血清ELISA检测结果进行统计学分析,计算出血清样本平均OD450值为0.714,标准差SD为0.048,从而计算出临界值样本平均OD450值+3SD为0.318。样本OD450值≥0.318为阳性,样本OD450值<0.318为阴性。
2.5血清交叉反应试验
在同一条件下,分别对已知PRRSV、PCV-2、PPV、PRV、CSFV、JEV、TGEV阳性血清用已经建立的间接ELISA程序进行盲检;再将得出的结果与已知结果相比较。
利用PRRSV、PCV-2、PPV、PRV、CSFV、JEV、TGEV阳性血清进行ELISA交叉反应,除PRRSV阳性血清呈阳性外,其他血清OD450值均小于0.318,证明无血清学交叉反应。
2.6重复性试验
2.6.1批内重复试验
批内重复试验在同一批次、同一块酶标板上进行。已知为PRRSV阳性、弱阳性、阴性血清 5份,每份血清设置5个重复,计算批内变异系数CV=(SD/OD450平均值)×100%。
2.6.2批间重复试验
取5块不同批次的酶标板,检测PRRSV阳性、弱阳性、阴性血清5份,每个样本每块板设置2个重复,计算批间变异系数CV=(SD/OD450平均值)×100%。
用PRRSV阳性、弱阳性、阴性血清5份,分别取同一批次酶标板和不同批次酶标板,进行批内重复试验和批间重复试验。计算批内重复试验变异系数1.53%~2.74%,小于7.00%,说明该方法有良好的重复性。不同批次酶标板与同一份血清反应的OD450值及P/N值影响不大,t检验表明,差异不显著(P>0.05),因此本方法有良好重复性。
2.7特异性、敏感性、符合率试验
随机抽选267份血清平行用美国IDEXX HerdChek ELISA试剂盒和已建立的ELISA方法进行检测,分析该方法的特异性、敏感性,计算两者的符合率。
本方法与IDEXX公司ELISA检测试剂盒比较结果见表2。按常规方法得出比较结果,本试验方法敏感性达91.9%,特异性为91.5%。本研究结果与IDEXX公司检测结果的符合率为91.7%。
表2重组N蛋白与IDEXX公司ELISA检测试剂盒的比较
敏感性为148/161=91.9%;特异性为:97/106=91.5%;符合率为:(148+97)/267=91.7%
实施例3血清、唾液IgA抗体ELISA检测方法的建立
对血清中IgG间接ELISA方法进行修改,优化反应条件,建立适合血清中IgA抗体检测的间接ELISA方法。其操作步骤与要求同血清中IgG检测方法一致,酶标二抗替换为HRP标记的羊抗猪IgA。其中所用的阴、阳性血清分别为免疫前及免疫后35d所分离的血清样本。对动物进行前腔静脉采血,采集血液于室温凝结后,于4℃过夜,待血清析出后经1000×g离心10min分离血清样本。
同时,在血清IgG检测方法的基础上,对对反应条件进行改良、优化,确定适合唾液中IgG、IgA抗体检测的方法。优化过程包括增大唾液样本反应体积,延长样本孵育时间,减小 样本稀释度和酶标抗体稀释度。采集免疫前唾液为阴性唾液样本,免疫后14d唾液为阳性唾液样本。采集的猪唾液于4℃经1000×g离心10min,分离上清液。迅速置于冰盒降温,于4℃短期保存,-20℃或-80℃长期保存。以重组N蛋白为包被抗原,对血清、唾液样本中IgG、IgA抗体检测的间接ELISA方法反应条件总结见表3。
表3间接ELISA检测猪血清、唾液中PRRSV IgG、IgA抗体反应条件
实施例4
一种用于检测猪血清中PRRSV病毒IgG抗体的试剂盒,主要由以下组份组成:
a)96孔酶标板4块。包被PRRSV JXA1重组N蛋白,其浓度为1.25μg/mL,以3%BSA为封闭液
b)稀释度为1:4000的HRP标记的羊抗猪IgG抗体溶液
c)阳性对照:1:40稀释的PRRSV标准阳性血清1管(1ml)
d)阴性对照:1:40稀释的PRRSV标准阴性血清1管(1ml)
e)样品稀释液:PBST 1瓶(50ml),0.2g磷酸二氢钾,2.9g磷酸氢二钠,8.0g氯化钠,2.0g氯化钾,0.5mL Tween20,加水定容至1000mL
f)10×浓缩洗涤液:PBST 1瓶(30ml),2g磷酸二氢钾,29g磷酸氢二钠,80g氯化钠,2g氯化钾,5mL Tween20,加水定容至1000mL
g)底物显色液:TMB溶液(15mL)
h)终止液:2M H2SO4(15mL)
实施例5
一种用于检测猪血清中PRRSV病毒IgA抗体的试剂盒,主要由以下组份组成:
a)96孔酶标板4块。包被PRRSV JXA1重组N蛋白,其浓度为2.5μg/mL,以1%BSA为封闭液
b)稀释度为1:1000的HRP标记的羊抗猪IgA
c)阳性对照:1:4稀释的PRRSV标准阳性血清1管(1ml)
d)阴性对照:1:4稀释的PRRSV标准阴性血清1管(1ml)
e)样品稀释液:PBST 1瓶(50ml),配方为:0.2g磷酸二氢钾,2.9g磷酸氢二钠,8.0g氯化钠,2.0g氯化钾,0.5mL Tween20,加水定容至1000mL
f)10×浓缩洗涤液:PBST 1瓶(30ml),配方为:2g磷酸二氢钾,29g磷酸氢二钠,80g氯化钠,2g氯化钾,5mL Tween20,加水定容至1000mL
g)底物显色液:TMB溶液(15mL)
h)终止液:2M H2SO4(15mL)
实施例6
一种用于检测猪唾液中PRRSV病毒IgG抗体的试剂盒,主要由以下组份组成:
a)96孔酶标板4块。包被PRRSV JXA1重组N蛋白,其浓度为1.25μg/mL,以1%BSA为封闭液;
b)稀释度为1:2000的HRP标记的羊抗猪IgG抗体溶液
c)阳性对照:1:2稀释的PRRSV标准阳性唾液1管(1ml)
d)阴性对照:1:2稀释的PRRSV标准阴性唾液1管(1ml)
e)样品稀释液:PBST 1瓶(50ml),配方为:0.2g磷酸二氢钾,2.9g磷酸氢二钠,8.0g氯化钠,2.0g氯化钾,0.5mL Tween20,加水定容至1000mL
f)10×浓缩洗涤液:PBST 1瓶(30ml),配方为:2g磷酸二氢钾,29g磷酸氢二钠,80g氯 化钠,2g氯化钾,5mL Tween20,加水定容至1000mL
g)底物显色液:TMB溶液(15mL)
h)终止液:2M H2SO4(15mL)
实施例7
一种用于检测猪血清中PRRSV病毒IgA抗体的试剂盒,主要由以下组份组成:
a)96孔酶标板4块。包被PRRSV JXA1重组N蛋白,其浓度为2.5μg/mL,以1%BSA为封闭液;
b)稀释度为1:1000的HRP标记的羊抗猪IgA
c)阳性对照:1:2稀释的PRRSV标准阳性唾液1管(1ml)
d)阴性对照:1:2稀释的PRRSV标准阴性唾液1管(1ml)
e)样品稀释液:PBST 1瓶(50ml),配方为:0.2g磷酸二氢钾,2.9g磷酸氢二钠,8.0g氯化钠,2.0g氯化钾,0.5mL Tween20,加水定容至1000mL
f)10×浓缩洗涤液:PBST 1瓶(30ml),配方为:2g磷酸二氢钾,29g磷酸氢二钠,80g氯化钠,2g氯化钾,5mL Tween20,加水定容至1000mL
g)底物显色液:TMB溶液(15mL)
h)终止液:2M H2SO4(15mL) 。
Claims (6)
1.一种用于间接ELISA检测猪血清或唾液PRRSV病毒IgG或IgA抗体的试剂盒,其特征在于该试剂盒包含:a)抗体检测板,b)HRP标记的羊抗猪IgG抗体溶液或HRP标记的羊抗猪IgA抗体溶液,c)阳性对照:PRRSV标准阳性血清或唾液,d)阴性对照:PRRSV阴性血清或唾液,e)样品稀释液,f)10×浓缩洗涤液,g)底物显色液,h)终止液,其中:所述的抗体检测板为包被PRRSV JXA1重组N蛋白的96孔酶标板;所述的PRRSV JXA1重组N蛋白通过以下方法制备得到:
1)根据PRRSV JXA1株设计1对扩增包括N蛋白全基因序列的特异性引物F1:SEQ ID NO.1和SEQ ID NO.2,以PRRSV JXA1株基因组RNA为模板,RT-PCR扩增PRRSV JXA1株N蛋白基因片段;
2)将扩增的片段插入pET-28a表达载体的EcoRI和XhoI酶切位点间得到重组表达质粒pET-28a-N,经双酶切及测序验证;
3)将重组表达质粒转化大肠杆菌BL21(DE3)感受态细胞,培养基因工程菌诱导表达目的蛋白;
4)重组菌体离心后,纯化得所述的PRRSV JXA1重组N蛋白。
2.根据权利要求1所述的试剂盒,其特征在于用于间接ELISA检测猪血清PRRSV病毒IgG抗体的试剂盒中所述的酶标板中抗原包被浓度为1.25μg/mL,使用的封闭液为3%BSA的PBST溶液;所述的HRP标记的羊抗猪IgG抗体溶液稀释度为1:4000;阳性对照为用PBST溶液1:40稀释的PRRSV标准阳性血清;阴性对照为用PBST溶液1:40稀释的PRRSV阴性血清。
3.根据权利要求1所述的试剂盒,其特征在于用于间接ELISA检测猪血清PRRSV病毒IgA抗体的试剂盒中所述的酶标板中抗原包被浓度为2.5μg/mL,使用的封闭液为1%BSA的PBST溶液;所述的HRP标记的羊抗猪IgA抗体溶液稀释度为1:1000;阳性对照为用PBST溶液1:4稀释的PRRSV标准阳性血清;阴性对照为用PBST溶液1:4稀释的PRRSV阴性血清。
4.根据权利要求1所述的试剂盒,其特征在于用于间接ELISA检测猪唾液PRRSV病毒IgG抗体的试剂盒中所述的酶标板中抗原包被浓度为2.5μg/mL,使用的封闭液为1%BSA的PBST溶液;所述的HRP标记的羊抗猪IgG抗体溶液稀释度为1:2000;阳性对照为用PBST溶液1:2稀释的PRRSV阳性唾液样本;阴性对照为用PBST溶液1:2稀释的PRRSV阴性唾液样本。
5.根据权利要求1所述的试剂盒,其特征在于用于间接ELISA检测猪唾液PRRSV病毒IgA抗体的试剂盒中所述的酶标板中抗原包被浓度为2.5μg/mL,使用的封闭液为1%BSA的PBST溶液;所述的HRP标记的羊抗猪IgA抗体溶液稀释度为1:1000;阳性对照为用PBST溶液1:2稀释的PRRSV阳性唾液样本;阴性对照为用PBST溶液1:2稀释的PRRSV阴性唾液样本。
6.根据权利要求1所述的试剂盒,其特征在于所述的样品稀释液为PBST。
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