一种用于扩增短链RNA的引物及其相关方法
技术领域
本发明涉及分子检测领域,特别涉及反转录聚合酶链式反应(RT-PCR)中检测全长为18-25nt的成熟miR所用的反转录引物的设计与应用技术领域。
背景技术
成熟miR是最近发现的一类全长为18-25nt的单链小分子非编码RNA,是由茎环结构的转录前体(包括pri-miRNA约1000bp、pre-miRNA约60-70bp)加工而成。2011年11月Sanger miRBase数据库(18.0版)公布,发现了2万多种转录本,包括人类的近2000种。miRNAs是Victor Ambros及其同事首先在线虫体内发现的,是一类非编码的内源性单链小分子RNA。其5`端的2-8nt种子区域(seed region)可与其靶mRNA的3`UTR以Waston-Crick碱基全部或部分互补配对(Watson-Crick basepairing),从而发挥转录调控作用。人们预测大约30%的人类基因受miRNAs的调控,每种miRNA调控大约200种靶基因,而每种基因又受多种miRNA调控。各项研究亦表明它参与了人体重要的生物学进程,如发育、造血、器官形成、细胞分化、凋亡和增殖、癌症发生等。随着对miRNAs研究的日趋深入,众多的研究数据显示超过50%的miRNAs基因位于癌基因或脆性基因区域,发挥着癌基因或抑癌基因的作用,在多种癌症中表达上调或降低。
第一篇有关miRNA的论文发表于1993年,随后的十年间相关的研究论文相当有限,然而近5-6年来有关miRNA的研究论文数成倍增加,2010年大约就有近12000篇论文公开发表并且有文献表明,成熟miRNA具有组织特异性、疾病特异性、存在于外周血且非常稳定。因此,miRNA不仅有治疗价值而且有诊断价值。miRNA已经成为广大学者研究的热点,并逐渐向应用领域转化。如何进行准确、特异地检测miRNA成为首先要解决的问题。虽然miRNAs是一类表达相对丰富的转录本,但他们在不同物种和组织中的表达水平变化非常大。低丰度的miRNAs,通常用克隆、northern blot和芯片的技术将难以检测。如果要精确和定量检测miRNA尤其是低丰度miRNA,qRT-PCR技术无疑是最佳选择,因为实时荧光定量PCR技术是检测基因表达的金标准。1985年,美国科学家Kary Mullis在高速公路的启发下,经过两年的努力,发明了PCR技术,并在Science杂志上发表了关于PCR技术的第一篇学术论文。从此,PCR技术得到了生命科学界的普遍认同,Kary Mullis也因此而获得1993年的诺贝尔化学奖。PCR的基本工作原理就是以拟扩增的DNA分子为模板,以一对分别与模板互补的寡核苷酸片段为引物,在DNA聚合酶的作用下,按照半保留复制的机理沿着模板链延伸直至完成新的DNA合成。通过不断重复这一过程,可以使目的DNA片段得到扩增。另一方面,新合成的DNA片段也可以作为模板,因而PCR技术可使DNA的合成量呈指数型增长。
PCR是一种级联反复循环的DNA合成反应过程。PCR技术的基本反应由三个步骤组成:
1.变性:通过加热使模板DNA完全变性成为单链,同时引物自身和引物之间存在的局部双链也得以消除;
2.退火:将温度下降至适宜温度,使引物与模板DNA退火结合;
3.延伸:将温度升高,热稳定DNA聚合酶以dNTP为底物催化合成DNA链延伸。
以上三步为一个循环,新合成的DNA分子又可以作为下一轮合成的模板,经多次循环后即可达到扩增DNA片段的目的。到目前为止,PCR技术已有十几种之多,例如,将PCR与反转录酶结合,成为反转录PCR(RT-PCR)用于RNA的扩增,将PCR与抗体等相结合就成为免疫PCR等。
应用PCR技术检测有一定长度(如100bp到几个kb)的DNA或RNA,初学PCR的技术人员也不会有多大的困难,但是如何设计长度只有18-25nt的成熟miRNA的反转录引物、特异性的正向引物、标记染料的TaqMan探针和反向引物是解决miRNA定量RT-PCR检测的关键所在。因为普通引物的理想长度在15-30bp之间,按照常规的做法一条成熟miRNA的长度就几乎为引物链覆盖了,这样扩增将难以实现。目前解决这一问题的是美国的AB公司,她采用了一种茎环引物反转录成熟miR,来加长转录后的cDNA,实现PCR扩增检测的目的。
在中国专利文献库检索也没有相关文献。
发明内容
本发明所解决首要技术问题是提供一种用于短链RNA(包括成熟miR)RT-PCR扩增的新式引物。该引物在设计思路上与前述的当前引物根本不同,通过巧妙的设计将引物的特异性大大提高,设计简单,成本低,适用广。
本发明所解决另一个技术问题是提供一种相关的扩增短链RNA的方法。
本发明解决上述首要技术问题所采用的技术方案是:一种用于扩增短链RNA的引物,其引物共4条,分别为茎环反转录引物、特异性正向引物、通用反向引物和通用探针,其特征是:茎环反转录引物由5段不同长度的寡核苷酸组成,3`端的6-8bp组成第一区域与miRNA的3`端形成特异性互补,决定反转录的特异性,第二区域和第五区域互补结合,形成引物内部双链结构,其Tm值应高于反转录最适温度2-5℃,在反转录的过程中始终保持双链形式,靠近5`端的核苷酸环状结构第四区域设为通用反向引物区,其Tm值接近特异性正向引物或略高于2-5℃,靠近3`端的核苷酸环状结构第三区域设为通用探针区,探针区的GC含量一般大于70%,保证探针的长度不超过20bp且Tm值高于特异性正向引物的Tm值3-10℃,第三区域与第四区域之间应至少间隔3bp以上;
优选,所述的茎环反转录引物,其3`端和5`端分别有一段互补配对的序列长度15-20个核苷酸,并且3`端还有一段6-8个核苷酸的单链结构,该单链与成熟的靶miR特异性互补配对。
优选,所述通用探针区和通用反向引物区序列的Tm值接近或一致,并大于茎环引物内部双链Tm值2-5℃。
作为优选,所述的特异性正向引物,其Tm值小于通用探针和通用反向引物Tm值2-5℃。
作为优选,所述的通用反向引物,其序列与茎环反转录引物的通用反向引物区序列一致。
作为优选,所述的通用探针,其序列与茎环反转录引物的通用探针区序列一致。
本发明解决上述另一个技术问题所采用的技术方案是:
一种上述引物扩增短链RNA的方法,其特征在于:
茎环反转录引物在合适的温度和反转录酶的作用下与靶miRNA的3`端特异性结合,并反转录成cDNA第一链;
特异性正向引物3`端由靶miR 5`端的10-18个碱基决定,其5`端的尾部序列可根据反应Tm值随机构成,通用反向引物由茎环引物的通用反向引物区序列构成,通用探针由茎环引物的通用探针区序列构成;
经过充分预变性后,当退火温度达到特异性正向引物特异性序列的Tm值时,特异性正向引物与cDNA第一链的3`端特异性结合,并在DNA合成酶的作用下延伸合成cDNA第二链;
再变性后,cDNA第二链与cDNA第一链6解链成单链,当退火温度达到通用反向引物和通用探针Tm值时,通用反向引物和通用探针与cDNA第二链配对结合,在DNA合成酶的作用下通用反向引物以cDNA第二链为模板延伸形成cDNA第二链的互补链,同时当延伸到通用探针时,通用探针被水解,通用探针两端的荧光基团和淬灭基团分开,荧光基团发出荧光,实现定量检测。
优选,所述茎环反转录引物其3`端和5`端分别有一段互补配对的序列长度15-20个核苷酸,该互补双链的Tm值应大于反转录最适温度2-5℃。
优选,所述通用探针区和通用反向引物区序列的Tm值接近或一致,并大于茎环引物内部双链Tm值2-5℃。
最后,所述cDNA第二链的合成的退火温度为60-65℃,PCR扩增循环的退火温度为65-70℃。
本发明的引物所使用的核苷酸可以是DNA,RNA,LNA(锁核酸),或PNA(肽核酸),或任何非自然核苷酸组成。
与现有技术相比,本发明的优点在于:
设计简单:茎环引物设计时没有太多的要求,只要茎环引物内部双链区Tm值高于反转录Tm值2-5℃,低于PCR扩增Tm值2-5℃。任何设计过PCR引物的人员均可以设计。
无引物二聚体产生:在反转录的过程中,由于反转录酶的最适温度低于茎环引物内部双链的Tm值2-5℃,引物内双链不会打开,呈茎环结构,不会与另一条引物形成双链,因此就不会扩增出引物二聚体。
特异性高:由于成熟miR是一类全长为18-25nt的单链小分子非编码RNA,是由茎环结构的转录前体(包括pri-miRNA约1000bp、pre-miRNA约60-70bp)加工而成,因此,生物体内同时存在成熟miR、pri-miRNA和pre-miRNA。在反转录时,茎环引物的内部双链的作用使得引物呈茎环结构,由于空间位组的关系茎环引物的3`端6-8个特异性碱基不能与pri-miRNA和pre-miRNA顺利结合,只会特异地与成熟miR的3`端形成互补结合,实现转录,从而特异性地转录了成熟miR而不受pri-miRNA和pre-miRNA的影响。
适用范围广:对于短小的RNA(甚至DNA)尤其是长度只有18-25nt的成熟miR,无论来自哪一种物种,或是非自然的短小核酸都有很好的适用性。
合成简单、成本低:无需任何特殊的仪器,只需要普通的DNA合成仪就可以完成。并且可以使用通用的反向引物和探针,可以大大减低合成成本。
附图说明
图1茎环引物及其反应原理示意图;
图2cDNA第二链的合成与cDNA的PCR扩增示意图;
图3a、3b茎环RT引物用于实时PCR检测的特异性和有效性的示意图。
具体实施方式
茎环特异性反转录引物的构成及与靶miR反应
本发明的茎环引物为一段寡核苷酸,其5`端核苷酸序列是固定的,形成一个核苷酸茎和核苷酸环的结构,其3`端连接一段核苷酸与成熟的靶miR3`端特异性互补。在核苷酸环的3`端含一段GC含量达70%以上的序列,称为通用探针区;5`端的序列为通用反向引物区。在一定的条件下,比如酸性、碱性或高温条件下,引物内部双链被打开,茎环结构消失,成线性结构,见图1。
根据图1,茎环引物由5段不同长度的寡核苷酸组成。3`端的6-8bp组成第一区域1与miR的3`端形成特异性互补,决定转录的特异性。第二区域2和第五区域5互补结合,形成引物内部双链结构,其Tm值应高于反转录最适温度2-5℃,在反转录的过程中始终保持双链形式。靠近核苷酸环状结构5`端的第四区域4设为通用反向引物区,其Tm值接近特异性正向引物或略高于3-10℃。靠近核苷酸环状结构3`端的第三区域3设为通用探针区,探针区的GC含量一般大于70%,保证探针的长度不超过20bp且Tm值高于特异性正向引物的Tm值3-10℃。第三区域3与第四区域4之间应至少间隔3bp以上。特异性反转录引物在合适的温度和反转录酶的作用下与靶miR的3`端特异性结合,并反转录成cDNA第一链。
cDNA第一链的特异性扩增(合成cDNA第二链)
特异性正向引物长约24-28个核苷酸,在3`端的10-18个核苷酸与相应的miR互补,而剩余的10-15个核苷酸的Tm值大于42℃。探针由核苷酸环的通用探针区20个核苷酸构成。通用反向引物为23个核苷酸,由茎环引物5`端第8-30位核苷酸组成,见图2。
根据图2,特异性正向引物由3`端的特异性序列7和5`端的尾部序列8构成,通用反向引物10由茎环引物的通用反向引物区的序列构成,通用探针11由茎环引物的通用探针区3的序列构成。经过充分预变性后,当退火温度达到特异性正向引物特异性序列7的Tm值时,特异性正向引物与cDNA第一链6的3`端特异性结合,并在DNA合成酶的作用下延伸合成cDNA第二链9;再变性后,cDNA第二链9与cDNA第一链6解链成单链,当退火温度达到通用反向引物10和通用探针11Tm值时,通用反向引物10和通用探针11与cDNA第二链9配对结合,在DNA合成酶的作用下通用反向引物10以cDNA第二链9为模板延伸形成9的互补链,同时当延伸到通用探针11时,通用探针11被水解,通用探针两端的荧光基团和淬灭基团分开,荧光基团发出荧光,实现定量检测。
实施例1:茎环RT引物结合探针用于实时PCR定量检测hsa-miR-30d
为考察茎环引物应用在实时PCR检测时的特异性和有效性,PCR模板分别为前体hsa-mir-30d
(5`GUUGUUGUAAACAUCCCCGACUGGAAGCUGUAAGACACAGCUAAGCUUUCAGUCAGAUGUUUGCUGCUAC 3`带下划线的碱基为其成熟体的序列)和成熟hsa-miR-30d(5`UGUAAACAUCCCCGACUGGAAG3`)的标准RNA样品、及一系列稀释的hsa-miR-30d标准cDNA样品。RT反应的体系总体积为15μl,包括1.5μl 10×buffer,50U/μl逆转录酶1.0μl,100mM dNTP 0.15μl,20U/μl RNA抑制剂0.19μl,1μM RT引物3μl,0.01μM模板RNA 5μl,DEPC水4.16μl。反转录PCR反应在BIO-RAD MyCycler定性PCR仪上进行。反应条件为:16℃ 30min,42℃ 30min,85℃ 5min,4℃∞。实时PCR反应体系总体积为20μl,包括Universal PCRMaster Mix 10μl,10μM的正、反向引物及探针各0.5μl,102、103、104、105、106倍稀释的cDNA第一链模板1.5μl,DEPC水7.0μl。实时PCR反应在AB 7500实时PCR仪上进行。反应条件为95℃ 10min,64℃ 2min;93℃ 15s,69℃ 40s(检测FAM荧光信号),共40个循环。
茎环RT引物为:
5`
CGAGGTGCTCGTAGT
CGGAGCGTCCCTGCGAGGCT cttccagt 3`方框中的碱基为茎环引物内部双链部分,靠近5`端带下划线的碱基为通用反向引物序列区,3`端带下划线的碱基为通用探针序列区,小写字体的碱基为与靶has-miR-30d 3`端特异性配对的碱基。
特异性正向引物为:TCAGCTTGTAAACATCCCCGACTGG,下划线的碱基为与靶has-miR-30d的cDNA第一链3`端特异性互补配对的碱基。
通用反向引物为:CCAGAGGTCATCGAGGTGCTCGT,通用探针为FAM-CGGAGCGTCCCTGCGAGGCT-TAMRA,均与cDNA第二链配对结合。
图3a显示茎环引物用于检测前体miRNA与成熟miR的特异性,对成熟miR的检测效果非常好(曲线12),而前体miRNA则不能检测出(曲线13);图3b显示茎环引物用于实时RT-PCR检测的有效性。初始的靶浓度在稀释物最浓时的曲线14,曲线15、16、17、18分别表示当模板被连续10倍稀释4个梯度后的荧光曲线。曲线19说明无靶(水)的空白对照。
序列表
<110>刘晓光
<120>一种用于扩增短链RNA的引物及其相关方法
<160>6
<210>1
<211>70
<212>RNA
<213>人工序列
<400>1
gyygyygyaa acayccccga cyggaagcyg yaagacacag cyaagcyyyc agycagaygy
yygcygcyac 70
<210>2
<211>22
<212>RNA
<213>人工序列
<400>2
ygyaaacayc cccgacygga ag 22
<210>3
<211>79
<212>DNA
<213>人工序列
<400>3
gtcgtatcca gaggtcatcg aggtgctcgt agtcggagcg tccctgcgag gctatgacct
ctggatacga ccttccagt 79
<210>4
<211>25
<212>DNA
<213>人工序列
<400>4
tcagcttgta aacatccccg actgg 25
<210>5
<211>23
<212>DNA
<213>人工序列
<400>5
ccagaggtca tcgaggtgct cgt 23
<210>6
<211>20
<212>DNA
<213>人工序列
<400>6
cggagcgtcc ctgcgaggct 20