CN103493730A - 热带观赏水草香蕉草的组织培养方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种热带观赏水草香蕉草的组织培养方法,包括如下步骤:1)将香蕉草的叶芽接种于诱导培养基上,进行诱导培养,得到香蕉草不定芽;2)将步骤1)所得香蕉草不定芽接种于增殖培养基上,进行增殖培养,得到香蕉草丛生芽;3)将步骤2)所得香蕉草丛生芽接种于生根培养基上,进行生根培养,得到香蕉草无菌苗;4)将步骤3)所得香蕉草无菌苗接种于根诱导培养基上,进行肉质根诱导培养,得到待移栽香蕉草苗。实验证明,利用本发明所提供的方法进行香蕉草组织培养,组培香蕉草的生根率高达100%,组培苗存活率达98%以上,而且成功诱导得到香蕉状根。本发明对于促进观赏水草的生产和新品种的培育,加快水族观赏水草产业的快速发展具有重要作用。
Description
技术领域
本发明属于植物组织培养领域,涉及一种香蕉草的组织培养方法及其专用培养基。
背景技术
香蕉草为睡莲科荇菜属植物,原产于美国东南部及佛罗里达州,叶柄很短,水中叶为心形,长10公分,其突出的根可储藏营养,似香蕉状,故命名为香蕉草。现广泛应用于室内水族绿化中,是最为重要的一种热带观赏水草。
随着国内观赏水族产业的不断发展,有越来越多的人喜爱香蕉草,其市场前景广阔,需求量大,且商品价格较高,因此适宜大规模生产。然而传统的香蕉草的繁殖主要靠分株法,每年只繁殖2~3株,繁殖系数低,且其主要观赏特性在于香蕉状根在温带地区不易形成,极大的限制了香蕉草的规模生产。
目前香蕉草组培方法主要采用叶片或叶柄为外植体,进行组织培养。然而在实际生产中发现,由于香蕉草叶片极薄,消毒过程中极易破叶片组织,导致不能成功诱导;同时水草为维管束植物,叶柄中含有大量的内生菌,在培养诱导过程中需加大量的抗生素抑制内生菌生成,这就大大提高了生产成本。最为重要的是,现有报道均未见香蕉状根的诱导形成,商品化香蕉草组培繁殖技术并未成熟,不能满足市场需要,至今未得到广泛应用推广。
发明内容
本发明的一个目的是提供一种香蕉草的组织培养方法。
本发明所提供的香蕉草的组织培养方法,可包括如下步骤:
(1)将香蕉草的叶芽接种于诱导培养基上,进行诱导培养,得到香蕉草不定芽;
(2)将步骤(1)所得香蕉草不定芽接种于增殖培养基上,进行增殖培养,得到香蕉草丛生芽;
(3)将步骤(2)所得香蕉草丛生芽接种于生根培养基上,进行生根培养,得到香蕉草无菌苗;
(4)将步骤(3)所得香蕉草无菌苗接种于根诱导培养基上,进行肉质根诱导培养,得到待移栽香蕉草苗;
所述诱导培养基是在MS固体培养基中加入6-BA和NAA后得到的培养基;所述诱导培养基中6-BA的终浓度可为1.0mg/L、NAA的终浓度可为0.1mg/L,pH5.7;
所述增殖培养基是在MS固体培养基中加入6-BA和KT后得到的培养基;所述增殖培养基中6-BA的终浓度可为0.8mg/L、KT的终浓度可为0.5-2.0mg/L,pH5.6;
所述生根培养基是在MS固体培养基中加入NAA后得到的培养基;所述生根培养基中NAA的终浓度可为0.01-0.25mg/L,pH5.6;
所述根诱导培养基是在MS固体培养基中加入多效唑后得到的培养基;所述根诱导培养基中多效唑的终浓度可为1-8mg/L,pH5.6。
在本发明的一个实施例中,所述增殖培养基中KT的终浓度具体为1.0mg/L;所述生根培养基中NAA的终浓度具体为0.2mg/L;所述根诱导培养基中多效唑的终浓度具体为2mg/L。
在本发明中,所述MS固体培养基中的碳源具体为蔗糖,当然葡萄糖或麦芽糖也可以;所述MS固体培养基中的凝胶剂具体为卡拉胶,当然琼脂也可以。
进一步,所述蔗糖在所述MS固体培养基中的终浓度具体为30g/L;所述卡凝胶在所述MS固体培养基中的终浓度具体为7-8g/L(如7g/L或8g/L)。
更加具体的,在本发明的实施例中,组培效果较好的各培养基组成如下:
所述诱导培养基是在所述MS固体培养基(蔗糖的终浓度为30g/L、卡拉胶的终浓度为7g/L)中加入6-BA和NAA后得到的培养基;所述诱导培养基中6-BA的终浓度为1.0mg/L、NAA的终浓度为0.1mg/L;pH5.7。
所述增殖培养基是在所述MS固体培养基(蔗糖的终浓度为30g/L、卡拉胶的终浓度为8g/L)中加入6-BA和KT后得到的培养基;所述增殖培养基中6-BA的终浓度可为0.8mg/L、KT的终浓度可为1.0mg/L;pH5.6。
所述生根培养基是在所述MS固体培养基(蔗糖的终浓度为30g/L、卡拉胶的终浓度为8g/L)中加入NAA后得到的培养基;所述生根培养基中NAA的终浓度可为0.2mg/L;pH5.6。
所述根诱导培养基是在所述MS固体培养基(蔗糖的终浓度为30g/L、卡拉胶的终浓度为8g/L)中加入多效唑后得到的培养基;所述根诱导培养基中多效唑的终浓度可为2mg/L;pH5.6。
在上述方法中,步骤(1)中进行所述诱导培养的条件、步骤(2)中进行所述增殖培养的条件、步骤(3)中进行所述生根培养的条件、以及步骤(4)中进行所述肉质根诱导培养的条件,均可为:光照时间12h/天,光照强度2000Lx,温度25±2℃。
另外,步骤(1)中进行所述诱导培养的周期为7天;步骤(2)中进行所述增殖培养的周期为14~21天(如14天);步骤(3)中进行所述生根培养的周期为5~7天(如7天);步骤(4)中进行所述肉质根诱导培养的周期为10~15天(如10天)。
在上述方法的步骤(1)中,所述香蕉草的叶芽为消毒后的叶芽;所述消毒具体可为:将待消毒的香蕉草叶芽用流水冲洗30分钟,将冲洗过的叶芽置于体积含量为0.1%的升汞水溶液中浸泡1min,再用无菌水冲洗(如冲洗4次)。
在上述方法中,还可包括将所述待移栽香蕉草苗进行移栽和驯化的步骤。
本发明所同时提供的用于香蕉草叶芽组织培养的培养基配方,由如下培养基中的全部或部分组成:
(a)诱导培养基;
所述诱导培养基是在MS固体培养基中加入6-BA和NAA后得到的培养基;所述诱导培养基中6-BA的终浓度可为1.0mg/L、NAA的终浓度可为0.1mg/L;
(b)增殖培养基;
所述增殖培养基是在MS固体培养基中加入6-BA和KT后得到的培养基;所述增殖培养基中6-BA的终浓度可为0.8mg/L、KT的终浓度可为0.5-2.0mg/L;
(c)生根培养基;
所述生根培养基是在MS固体培养基中加入NAA后得到的培养基;所述生根培养基中NAA的终浓度可为0.01-0.25mg/L;
(d)根诱导培养基;
所述根诱导培养基是在MS固体培养基中加入多效唑后得到的培养基;所述根诱导培养基中多效唑的终浓度可为1-8mg/L。
在本发明的一个实施例中,所述增殖培养基中KT的终浓度具体为1.0mg/L;所述生根培养基中NAA的终浓度具体为0.2mg/L;所述根诱导培养基中多效唑的终浓度具体为2mg/L。
在本发明中,所述MS固体培养基中的碳源具体为蔗糖,当然葡萄糖或麦芽糖也可以;所述MS固体培养基中的凝胶剂具体为卡拉胶,当然琼脂也可以。
进一步,所述蔗糖在所述MS固体培养基中的终浓度为30g/L;所述卡凝胶在所述MS固体培养基中的终浓度为7-8g/L(如7g/L或8g/L)。
更加具体的,在本发明的实施例中,组培效果较好的各培养基组成如下:
所述诱导培养基是在所述MS固体培养基(蔗糖的终浓度为30g/L、卡拉胶的终浓度为7g/L)中加入6-BA和NAA后得到的培养基;所述诱导培养基中6-BA的终浓度为1.0mg/L、NAA的终浓度为0.1mg/L;pH5.7。
所述增殖培养基是在所述MS固体培养基(蔗糖的终浓度为30g/L、卡拉胶的终浓度为8g/L)中加入6-BA和KT后得到的培养基;所述增殖培养基中6-BA的终浓度可为0.8mg/L、KT的终浓度可为1.0mg/L;pH5.6。
所述生根培养基是在所述MS固体培养基(蔗糖的终浓度为30g/L、卡拉胶的终浓度为8g/L)中加入NAA后得到的培养基;所述生根培养基中NAA的终浓度可为0.2mg/L;pH5.6。
所述根诱导培养基是在所述MS固体培养基(蔗糖的终浓度为30g/L、卡拉胶的终浓度为8g/L)中加入多效唑后得到的培养基;所述根诱导培养基中多效唑的终浓度可为2mg/L;pH5.6。
在以上本发明所提供的香蕉草的组织培养方法,以及本发明所提供的用于香蕉草组织培养的培养基中,所述的MS固体培养基的pH5.6-5.7,溶剂为水,溶质及其浓度如下:
a.大量:NH4NO31.65g/L,KNO31.9g/L,MgSO4·7H2O0.37g/L,KH2PO40.17g/L,CaCl20.33g/L;
b.微量:KI0.0083mg/L,H3BO38mg/L,MnSO4·4H2O22.3mg/L,ZnSO4·7H2O10mg/L,Na2MoO4·2H2O0.25mg/L,CuSO4·5H2O0.025mg/L,CoCl2·6H2O0.025mg/L;
c.维生素:烟酸0.5mg/L,吡哆醇0.5mg/L,硫胺素0.1mg/L,甘氨酸2mg/L;
d.铁盐:FeSO4·7H2O27.85mg/L,Na2EDTA37.25mg/L;
e.肌醇0.1g/L,MES0.488g/L;
f.蔗糖30g/L;
g.卡拉胶7-8g/L。
以上各浓度为相应组分在所述MS固体培养基中的终浓度。
以上本发明所提供的用于香蕉草组织培养的培养基在以叶芽作为外植体进行香蕉草组培中的应用也属于本发明的保护范围。
本发明改变了观赏水草—香蕉草传统的分株繁殖方法,克服已有组培技术外植体不易灭菌生产,成本高,产品不能满足市场需要的不足,提供一种通过适合生产实际的香蕉草组培技术方法,水草不受病害细菌影响。利用本发明所提供的方法进行香蕉草组织培养,组培香蕉草的生根率高达100%,组培苗存活率达98%以上,而且成功诱导得到香蕉状根。本发明对于促进观赏水草的生产和新品种的培育,加快水族观赏水草产业的快速发展具有重要作用。另外,本发明利用组培技术培育出商品化观赏水草香蕉草,满足观赏水草市场需求量不断扩大的市场需求和我国观赏水族产业的不断发展,具有较好的市场应用价值。
附图说明
图1为本发明组织培养香蕉草的过程。其中,A为在增殖培养基上经增殖培养后得到的香蕉草丛生芽;B为在生根培养基上经生根培养后得到的香蕉草无菌苗;C为在根诱导培养基上经肉质根诱导培养后得到的待移栽香蕉苗。
图2为本发明经组织培养后得到的香蕉草根部图。
具体实施方式
下述实施例中所使用的实验方法如无特殊说明,均为常规方法。
下述实施例中所用的材料、试剂等,如无特殊说明,均可从商业途径得到。
下述实施例中所涉及的MS固体培养基的pH为5.6-5.7,配方如下:
a.20倍大量:NH4NO333g/L,KNO338g/L,MgSO4·7H2O7.4g/L,KH2PO43.4g/L,CaCl26.6g/L;
b.200倍微量母液:KI1.66mg/L,H3BO31600mg/L,MnSO4·4H2O4460mg/L,ZnSO4·7H2O2000mg/L,Na2MoO4·2H2O50mg/L,CuSO4·5H2O5mg/L,CoCl2·6H2O5mg/L;
c.1000倍维生素:烟酸500mg/L,吡哆醇500mg/L,硫胺素100mg/L,甘氨酸2000mg/L;
d.200倍铁盐:FeSO4·7H2O5570mg/L,Na2EDTA7450mg/L;
e.肌醇0.1g/L,MES0.488g/L pH为5.8-5.9;
f.蔗糖30g/L;
g.卡拉胶7-8g/L。
以上各浓度为相应组分在所述MS固体培养基中的终浓度。
实施例1、香蕉草的组织培养
一、植体的选择与灭菌
选取观赏水草—香蕉草的叶芽为外植体,然后流水冲洗半小时左右。用体积含量为0.1%的升汞水溶液中浸泡1min,无菌水冲洗4次,即得到灭菌处理好的叶芽。
二、诱导产生不定芽
诱导培养基(MS+6-BA1.0mg/L+NAA0.1mg/L):在MS固体培养基(蔗糖30g/Lmg/L、卡拉胶7g/L)中加入6-BA和NAA后得到的培养基;所述诱导培养基中6-BA的终浓度为1.0mg/L、NAA的终浓度为0.1mg/L;pH5.7。
将步骤一得到的灭好菌的叶芽切成0.1cm小块,接种在诱导培养基上,进行诱导培养,其培养条件为:光照时间12h/天,光照强度2000Lx,温度25±2℃。诱导培养7天后,得到香蕉草不定芽。
三、增殖得到丛生芽
增殖培养基[MS+6-BA(0mg/L或0.8mg/L)+KT(0mg/L或0.5mg/L或1.0mg/L或1.5mg/L或2.0mg/L)]:在MS固体培养基(蔗糖30g/L mg/L、卡拉胶8g/L)中加入6-BA和KT后得到的培养基;所述增殖培养基中6-BA的终浓度为0mg/L或0.8mg/L、KT的终浓度为0mg/L或0.5mg/L或1.0mg/L或1.5mg/L或2.0mg/L;pH5.6。
从步骤二得到的香蕉草不定芽中选取大小长势基本一致的不定芽芽块,接种在不同的增殖培养基上,进行增殖培养。每瓶4个不定芽芽块,每处理16株,重复4次。进行增殖培养的条件为:光照时间12h/天,光照强度2000Lx,温度25±2℃。增殖培养14天后,得到香蕉草丛生芽,进一步统计各处理的香蕉草丛生芽数。结果取4次重复的平均值。
结果如表1所示,从表中可以看出,“6-BA0.8,KT1.0(mg/L)”这个处理增殖后的平均芽数最多,经统计分析,与其他处理组之间差异显著,具有统计学意义(P<0.05)。可见,最佳增殖培养基为“MS固体培养基+6-BA0.8mg/L+KT1.0mg/L,pH5.6”。增殖得到丛生芽如图1中A所示。
表1不同BA和KT组合处理香蕉草芽的增殖率统计结果
处理(mg/L) | 外植体芽数 | 增殖后平均芽数 |
6-BA0 | 4 | 8.50 |
6-BA0KT0.5 | 4 | 9.75 |
6-BA0KT1.0 | 4 | 10.00 |
6-BA0KT1.5 | 4 | 11.50 |
6-BA0KT2.0 | 4 | 15.00 |
6-BA0.8 | 4 | 12.50 |
6-BA0.8KT0.5 | 4 | 12.50 |
6-BA0.8KT1.0 | 4 | 19.00 |
6-BA0.8KT1.5 | 4 | 15.75 |
6-BA0.8KT2.0 | 4 | 15.00 |
四、生根得到无菌苗
生根培养基:[MS+NAA(0.01mg/L或0.05mg/L或0.1mg/L或0.15mg/L或0.2mg/L或0.25mg/L)]:在MS固体培养基(蔗糖30g/L mg/L、卡拉胶8g/L)中加入NAA后得到的培养基;所述生根培养基中NAA的终浓度为0.01mg/L或0.05mg/L或0.1mg/L或0.15mg/L或0.2mg/L或0.25mg/L;pH5.6。
将经过步骤三增殖培养后得到的具有3片叶以上,高3cm左右的丛生芽切下,转入不同生根培养基上,进行生根培养。每瓶接种4株,每处理16株,重复4次。进行生根培养的条件为:光照时间12h/天,光照强度2000Lx,温度25±2℃。生根培养7天后,得到香蕉草无菌苗,进一步统计各处理香蕉苗的根数,根长,生根率及根粗的等指标。结果取4次重复的平均值。
结果如表2所示,从表中可以看出,进行生根培养后各处理的生根率均为100%,但是“NAA0.2mg/L”这个处理的平均根数最多、平均根粗最粗、平均根长最短,其形态更接近于香蕉外形,更具观赏价值。可见,最佳生根培养基为“MS固体培养基+NAA0.2mg/L,pH5.6”。生根得到的无菌苗如图1中B所示。
表2不同NAA处理下香蕉草的生根率、根数、根长的统计结果
处理 | 平均根数 | 平均根粗(厘米) | 平均根长(厘米) | 生根率(%) |
NAA0.01 | 7.17 | 0.15 | 5.92 | 100 |
NAA0.05 | 7.67 | 0.14 | 6.33 | 100 |
NAA0.1 | 9.25 | 0.16 | 5.38 | 100 |
NAA0.15 | 8.04 | 0.16 | 5.87 | 100 |
NAA0.2 | 10.75 | 0.17 | 5.40 | 100 |
NAA0.25 | 8.67 | 0.14 | 5.41 | 100 |
五、香蕉根的诱导
根诱导培养基[MS+多效唑(PP333)(1mg/L或2mg/L或4mg/L或8mg/L)]:在MS固体培养基(蔗糖30g/L mg/L、卡拉胶8g/L)中加入多效唑(PP333)后得到的培养基;所述根诱导培养基中多效唑(PP333)的终浓度为1mg/L或2mg/L或4mg/L或8mg/L;pH5.6。
在无菌条件下,从步骤四得到的香蕉草无菌苗中选择生长势基本一致的香蕉草无菌苗,接种于不同根诱导培养基上,进行香蕉状肉质根的诱导培养。实验重复4次,每重复接种12瓶,每瓶接种3株。进行根诱导培养的条件为:光照时间12h/天,光照强度2000Lx,温度25±2℃。根诱导培养10天后,得到具有香蕉状肉质根的待移栽香蕉草苗(图1中C),进一步统计各处理香蕉苗的根数,根长,生根率及根粗等指标。结果取4次重复的平均值。
结果如表3所示,从表中可以看出,进行根诱导培养后各处理的生根率均为100%,但是“PP3332mg/L”这个处理的平均根数较多、平均根粗最粗、平均根长最短,其形态粗壮(图2),更接近于香蕉外形,更具观赏价值。可见,最佳根诱导培养基为“MS固体培养基+多效唑(PP333)2mg/L,pH5.6”。
表3PP333处理对香蕉草肉质根的诱导统计结果
处理 | 平均根粗(厘米) | 平均根数 | 平均根长(厘米) | 生根率(%) |
PP3331 | 0.24 | 14.44 | 2.00 | 100 |
PP3332 | 0.28 | 16.22 | 1.25 | 100 |
PP3334 | 0.27 | 16.56 | 1.47 | 100 |
PP3338 | 0.26 | 16.33 | 1.47 | 100 |
六、移栽驯化
将步骤五得到的具有香蕉状肉质根的待移栽香蕉草苗进行驯化、移栽。将炼苗后的香蕉草苗洗去根部培养基,栽种到水族箱的矽砂中。栽培中需定期添加适当的观赏水草液肥和根肥。期间,统计组培苗的成活率,结果发现组培苗的成活率达98%以上。
Claims (10)
1.一种香蕉草的组织培养方法,包括如下步骤:
(1)将香蕉草的叶芽接种于诱导培养基上,进行诱导培养,得到香蕉草不定芽;
(2)将步骤(1)所得香蕉草不定芽接种于增殖培养基上,进行增殖培养,得到香蕉草丛生芽;
(3)将步骤(2)所得香蕉草丛生芽接种于生根培养基上,进行生根培养,得到香蕉草无菌苗;
(4)将步骤(3)所得香蕉草无菌苗接种于根诱导培养基上,进行肉质根诱导培养,得到待移栽香蕉草苗;
所述诱导培养基是在MS固体培养基中加入6-BA和NAA后得到的培养基;所述诱导培养基中6-BA的终浓度为1.0mg/L、NAA的终浓度为0.1mg/L;
所述增殖培养基是在MS固体培养基中加入6-BA和KT后得到的培养基;所述增殖培养基中6-BA的终浓度为0.8mg/L、KT的终浓度为0.5-2.0mg/L;
所述生根培养基是在MS固体培养基中加入NAA后得到的培养基;所述生根培养基中NAA的终浓度为0.01-0.25mg/L;
所述根诱导培养基是在MS固体培养基中加入多效唑后得到的培养基;所述根诱导培养基中多效唑的终浓度为1-8mg/L。
2.根据权利要求1所述的方法,其特征在于:所述增殖培养基中KT的终浓度为1.0mg/L;所述生根培养基中NAA的终浓度为0.2mg/L;所述根诱导培养基中多效唑的终浓度为2mg/L。
3.根据权利要求1或2所述的方法,其特征在于:所述MS固体培养基中的碳源为蔗糖;所述MS固体培养基中的凝胶剂为卡拉胶。
4.根据权利要求3所述的方法,其特征在于:所述蔗糖在所述MS固体培养基中的终浓度为30g/L;所述卡凝胶在所述MS固体培养基中的终浓度为7-8g/L。
5.根据权利要求1-4中任一所述的方法,其特征在于:步骤(1)中进行所述诱导培养的条件、步骤(2)中进行所述增殖培养的条件、步骤(3)中进行所述生根培养的条件、以及步骤(4)中进行所述肉质根诱导培养的条件,均为:光照时间12h/天,光照强度2000Lx,温度25±2℃。
6.用于香蕉草的组织培养的培养基,由如下培养基中的全部或部分组成:
(a)诱导培养基;
所述诱导培养基是在MS固体培养基中加入6-BA和NAA后得到的培养基;所述诱导培养基中6-BA的终浓度为1.0mg/L、NAA的终浓度为0.1mg/L;
(b)增殖培养基;
所述增殖培养基是在MS固体培养基中加入6-BA和KT后得到的培养基;所述增殖培养基中6-BA的终浓度为0.8mg/L、KT的终浓度为0.5-2.0mg/L;
(c)生根培养基;
所述生根培养基是在MS固体培养基中加入NAA后得到的培养基;所述生根培养基中NAA的终浓度为0.01-0.25mg/L;
(d)根诱导培养基;
所述根诱导培养基是在MS固体培养基中加入多效唑后得到的培养基;所述根诱导培养基中多效唑的终浓度为1-8mg/L。
7.根据权利要求6所述的培养基,其特征在于:所述增殖培养基中KT的终浓度为1.0mg/L;所述生根培养基中NAA的终浓度为0.2mg/L;所述根诱导培养基中多效唑的终浓度为2mg/L。
8.根据权利要求6或7所述的培养基,其特征在于:所述MS固体培养基中的碳源为蔗糖;所述MS固体培养基中的凝胶剂为卡拉胶。
9.根据权利要求8所述的培养基,其特征在于:所述蔗糖在所述MS固体培养基中的终浓度为30g/L;所述卡凝胶在所述MS固体培养基中的终浓度为7-8g/L。
10.权利要求6-9中任一所述的培养基在以叶芽作为外植体进行香蕉草组培中的应用。
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Cited By (3)
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Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20060030489A1 (en) * | 2004-08-09 | 2006-02-09 | Northcott Donald O | Aquatic plant product and method for making growth-sustaining plant matrix |
CN102265785A (zh) * | 2010-06-02 | 2011-12-07 | 上海上房园艺有限公司 | 大花萱草圣诞红的组织培养方法 |
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Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20060030489A1 (en) * | 2004-08-09 | 2006-02-09 | Northcott Donald O | Aquatic plant product and method for making growth-sustaining plant matrix |
CN102265785A (zh) * | 2010-06-02 | 2011-12-07 | 上海上房园艺有限公司 | 大花萱草圣诞红的组织培养方法 |
Non-Patent Citations (7)
Title |
---|
孙玉刚等: "两种观赏水草的离体培养", 《中国农学通报》, no. 5, 31 December 2009 (2009-12-31), pages 195 - 199 * |
宋玉: "香蕉草叶柄离体培养与快速繁殖(简报)", 《亚热带植物科学》, vol. 38, no. 4, 31 December 2009 (2009-12-31) * |
李颖章等: "几种热带水草的组织培养和快速繁殖", 《中国会议》, 1 September 2001 (2001-09-01), pages 70 - 71 * |
王存: "多效唑在植物生产上的应用现状", 《热带农业科学》, vol. 29, no. 2, 28 February 2009 (2009-02-28), pages 67 - 72 * |
郑丽屏等: "多效唑在重瓣丝石竹组织培养中的作用", 《资源开发与市场》, vol. 16, no. 5, 31 December 2000 (2000-12-31), pages 276 - 2 * |
韦三立等: "香蕉草的组织培养", 《植物生理学报》, no. 4, 31 December 1997 (1997-12-31), pages 276 - 3 * |
饶秋容等: "香蕉草的固体培养和液体培养", 《植物生理学通讯》, vol. 39, no. 2, 30 April 2003 (2003-04-30), pages 143 * |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN104488722A (zh) * | 2014-12-24 | 2015-04-08 | 广西大学 | 一种南美叉柱花的组织培养快速繁殖方法 |
CN106613824A (zh) * | 2016-11-07 | 2017-05-10 | 王�华 | 一种香蕉草分株繁殖方法 |
CN115669541A (zh) * | 2022-10-08 | 2023-02-03 | 中国热带农业科学院海口实验站 | 一种海丰莕菜组织培养快速繁殖方法 |
CN115669541B (zh) * | 2022-10-08 | 2023-10-31 | 中国热带农业科学院热带作物品种资源研究所 | 一种海丰莕菜组织培养快速繁殖方法 |
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